ES2283563T3 - Procedimiento que mejora la extracion de inhibidores de proteasa. - Google Patents
Procedimiento que mejora la extracion de inhibidores de proteasa. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2283563T3 ES2283563T3 ES02737587T ES02737587T ES2283563T3 ES 2283563 T3 ES2283563 T3 ES 2283563T3 ES 02737587 T ES02737587 T ES 02737587T ES 02737587 T ES02737587 T ES 02737587T ES 2283563 T3 ES2283563 T3 ES 2283563T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- extraction
- approximately
- acid
- solution
- extraction solution
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 30
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 title claims description 13
- 238000000605 extraction Methods 0.000 claims abstract description 52
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims abstract description 49
- 235000002639 sodium chloride Nutrition 0.000 claims abstract description 36
- 235000002595 Solanum tuberosum Nutrition 0.000 claims abstract description 35
- 244000061456 Solanum tuberosum Species 0.000 claims abstract description 35
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims abstract description 26
- 239000000137 peptide hydrolase inhibitor Substances 0.000 claims abstract description 22
- 239000000463 material Substances 0.000 claims abstract description 11
- 239000002245 particle Substances 0.000 claims abstract description 11
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims abstract description 11
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 claims abstract description 10
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 claims abstract description 9
- 150000007524 organic acids Chemical class 0.000 claims abstract description 8
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims abstract description 6
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims abstract description 6
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 6
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims abstract description 5
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 claims abstract description 4
- 238000005352 clarification Methods 0.000 claims abstract description 3
- 238000001035 drying Methods 0.000 claims abstract description 3
- BDAGIHXWWSANSR-UHFFFAOYSA-N methanoic acid Natural products OC=O BDAGIHXWWSANSR-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 38
- OSWFIVFLDKOXQC-UHFFFAOYSA-N 4-(3-methoxyphenyl)aniline Chemical compound COC1=CC=CC(C=2C=CC(N)=CC=2)=C1 OSWFIVFLDKOXQC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 19
- 235000019253 formic acid Nutrition 0.000 claims description 19
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 11
- 239000002253 acid Substances 0.000 claims description 8
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 7
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 6
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 claims description 6
- 102000035195 Peptidases Human genes 0.000 claims description 6
- KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-N citric acid Chemical compound OC(=O)CC(O)(C(O)=O)CC(O)=O KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- 235000019833 protease Nutrition 0.000 claims description 5
- CIWBSHSKHKDKBQ-JLAZNSOCSA-N Ascorbic acid Chemical compound OC[C@H](O)[C@H]1OC(=O)C(O)=C1O CIWBSHSKHKDKBQ-JLAZNSOCSA-N 0.000 claims description 4
- 239000011668 ascorbic acid Substances 0.000 claims description 2
- 235000010323 ascorbic acid Nutrition 0.000 claims 1
- 229960005070 ascorbic acid Drugs 0.000 claims 1
- 235000013311 vegetables Nutrition 0.000 claims 1
- 238000005507 spraying Methods 0.000 abstract description 2
- 101000622007 Crotalus adamanteus Snake venom metalloproteinase adamalysin-2 Proteins 0.000 description 43
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 37
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 15
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 15
- 235000012015 potatoes Nutrition 0.000 description 13
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 8
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 7
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 7
- WEVYAHXRMPXWCK-UHFFFAOYSA-N Acetonitrile Chemical compound CC#N WEVYAHXRMPXWCK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 6
- 238000004128 high performance liquid chromatography Methods 0.000 description 5
- 102000005367 Carboxypeptidases Human genes 0.000 description 4
- 108010006303 Carboxypeptidases Proteins 0.000 description 4
- 229920005654 Sephadex Polymers 0.000 description 4
- 239000012507 Sephadex™ Substances 0.000 description 4
- DTQVDTLACAAQTR-UHFFFAOYSA-N Trifluoroacetic acid Chemical compound OC(=O)C(F)(F)F DTQVDTLACAAQTR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 108091006086 inhibitor proteins Proteins 0.000 description 4
- 238000005457 optimization Methods 0.000 description 4
- 239000000047 product Substances 0.000 description 4
- 229940122644 Chymotrypsin inhibitor Drugs 0.000 description 3
- 101710137926 Chymotrypsin inhibitor Proteins 0.000 description 3
- DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M Ilexoside XXIX Chemical compound C[C@@H]1CC[C@@]2(CC[C@@]3(C(=CC[C@H]4[C@]3(CC[C@@H]5[C@@]4(CC[C@@H](C5(C)C)OS(=O)(=O)[O-])C)C)[C@@H]2[C@]1(C)O)C)C(=O)O[C@H]6[C@@H]([C@H]([C@@H]([C@H](O6)CO)O)O)O.[Na+] DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M 0.000 description 3
- 229940019748 antifibrinolytic proteinase inhibitors Drugs 0.000 description 3
- 239000003541 chymotrypsin inhibitor Substances 0.000 description 3
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 3
- 238000004007 reversed phase HPLC Methods 0.000 description 3
- 230000036186 satiety Effects 0.000 description 3
- 235000019627 satiety Nutrition 0.000 description 3
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 description 3
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 3
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-M Chloride anion Chemical compound [Cl-] VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 101001044900 Solanum tuberosum Proteinase inhibitor 1 Proteins 0.000 description 2
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 2
- 238000012512 characterization method Methods 0.000 description 2
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 2
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 2
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 2
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 2
- 239000012467 final product Substances 0.000 description 2
- 238000009472 formulation Methods 0.000 description 2
- 235000012054 meals Nutrition 0.000 description 2
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 2
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 2
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 2
- 239000012266 salt solution Substances 0.000 description 2
- 241000894007 species Species 0.000 description 2
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 2
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 2
- PXRKCOCTEMYUEG-UHFFFAOYSA-N 5-aminoisoindole-1,3-dione Chemical compound NC1=CC=C2C(=O)NC(=O)C2=C1 PXRKCOCTEMYUEG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102100034613 Annexin A2 Human genes 0.000 description 1
- 229940121981 Carboxypeptidase inhibitor Drugs 0.000 description 1
- 101710127041 Carboxypeptidase inhibitor Proteins 0.000 description 1
- 102100025841 Cholecystokinin Human genes 0.000 description 1
- 101800001982 Cholecystokinin Proteins 0.000 description 1
- 101710140999 Metallocarboxypeptidase inhibitor Proteins 0.000 description 1
- 239000004677 Nylon Substances 0.000 description 1
- 239000004365 Protease Substances 0.000 description 1
- 102000002067 Protein Subunits Human genes 0.000 description 1
- 108010001267 Protein Subunits Proteins 0.000 description 1
- 101000986540 Solanum tuberosum Patatin Proteins 0.000 description 1
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 description 1
- 229940122618 Trypsin inhibitor Drugs 0.000 description 1
- 101710162629 Trypsin inhibitor Proteins 0.000 description 1
- 230000002411 adverse Effects 0.000 description 1
- 230000001476 alcoholic effect Effects 0.000 description 1
- BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N ammonium sulfate Chemical compound N.N.OS(O)(=O)=O BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052921 ammonium sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000011130 ammonium sulphate Nutrition 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 230000000845 anti-microbial effect Effects 0.000 description 1
- 230000000636 anti-proteolytic effect Effects 0.000 description 1
- 239000004599 antimicrobial Substances 0.000 description 1
- 235000019789 appetite Nutrition 0.000 description 1
- 230000036528 appetite Effects 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 235000013361 beverage Nutrition 0.000 description 1
- 238000011088 calibration curve Methods 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 229940107137 cholecystokinin Drugs 0.000 description 1
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 1
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 description 1
- 206010061428 decreased appetite Diseases 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 238000007865 diluting Methods 0.000 description 1
- 229940042399 direct acting antivirals protease inhibitors Drugs 0.000 description 1
- 238000010494 dissociation reaction Methods 0.000 description 1
- 230000005593 dissociations Effects 0.000 description 1
- 230000008030 elimination Effects 0.000 description 1
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 description 1
- 238000010828 elution Methods 0.000 description 1
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 1
- 230000008020 evaporation Effects 0.000 description 1
- 239000004744 fabric Substances 0.000 description 1
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 235000011389 fruit/vegetable juice Nutrition 0.000 description 1
- 238000002523 gelfiltration Methods 0.000 description 1
- 238000000227 grinding Methods 0.000 description 1
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 1
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 1
- 239000008176 lyophilized powder Substances 0.000 description 1
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 1
- 230000003880 negative regulation of appetite Effects 0.000 description 1
- 238000010606 normalization Methods 0.000 description 1
- 229920001778 nylon Polymers 0.000 description 1
- 235000005985 organic acids Nutrition 0.000 description 1
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000011002 quantification Methods 0.000 description 1
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 1
- IZTQOLKUZKXIRV-YRVFCXMDSA-N sincalide Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H](CCSC)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CC=1C2=CC=CC=C2NC=1)C(=O)N[C@@H](CCSC)C(=O)N[C@@H](CC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(N)=O)NC(=O)[C@@H](N)CC(O)=O)C1=CC=C(OS(O)(=O)=O)C=C1 IZTQOLKUZKXIRV-YRVFCXMDSA-N 0.000 description 1
- JVBXVOWTABLYPX-UHFFFAOYSA-L sodium dithionite Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]S(=O)S([O-])=O JVBXVOWTABLYPX-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 239000007921 spray Substances 0.000 description 1
- 239000007858 starting material Substances 0.000 description 1
- 239000002753 trypsin inhibitor Substances 0.000 description 1
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/81—Protease inhibitors
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/81—Protease inhibitors
- C07K14/8107—Endopeptidase (E.C. 3.4.21-99) inhibitors
- C07K14/811—Serine protease (E.C. 3.4.21) inhibitors
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Biophysics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Medicines Containing Plant Substances (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
Abstract
Procedimiento para la extracción de un inhibidor de proteinasa a partir de tubérculos de patata que contienen el inhibidor proteinasa, que comprende las etapas de: (a) preparar una solución de extracción libre de alcohol mediante la adición de un ácido orgánico a agua en una concentración entre aproximadamente 0, 5 por ciento en peso y aproximadamente 2, 5 por ciento en peso y una sal en una cantidad para proporcionar entre aproximadamente 0, 3 y aproximadamente 5, 0 de sal común; (b) añadir el material vegetal a la solución de extracción en una relación en peso de entre aproximadamente 1:1 y aproximadamente 1:10 de solución de extracción respecto el material vegetal; y (c) pulverizar el material vegetal en la solución de extracción para reducir el tamaño de partícula medio del material vegetal hasta entre aproximadamente 100 micras y aproximadamente 1500 micras y generando así una suspensión que contiene una fracción sólida y una líquida; y (d) aislar y purificar el inhibidor de proteinasamediante centrifugación, clarificación, filtración y secado de dicha fracción líquida.
Description
Procedimiento que mejora la extracción de
inhibidores de proteasa.
La presente invención se refiere a un
procedimiento para mejorar la extracción de un inhibidor de
proteinasa, y más específicamente, a un procedimiento para mejorar
el rendimiento y la pureza del Inhibidor II de Proteinasa (PI2)
extraído de patatas enteras.
La extracción, el aislamiento y la purificación
de proteínas a partir de plantas es conocido en el campo de la
bioquímica. En 1972, Melville y Ryan publicaron un procedimiento de
preparación a gran escala para el aislamiento del inhibidor I de
quimotripsina a partir de tubérculos de patata (Melville, J.C. y
Ryan, C.A. Chymotrypsin inhibitor I from potatoes. J. Biological
Chem., 247: 3445-3453, 1972). Según el método
de Melville y Ryan, las patatas se cortaron con la piel intacta y se
pusieron en remojo en una solución de hidrosulfito de sodio, se
homogeneizaron, y se exprimieron a través de tela de nylon. El zumo
resultante se ajustó a pH 3, se centrifugó a 1000 x g durante 15
minutos a 5ºF, y se recogió y fraccionó el sobrenadante con sulfato
de amonio.
La purificación se llevó a cabo mediante lavado
en agua y tratamiento calorífico, se juntaron y liofilizaron los
filtrados transparentes de las fracciones calentadas. El extracto
crudo se obtuvo suspendiendo el polvo liofilizado en agua,
sometiéndolo a diálisis contra agua durante 48 horas, y liofilizando
el filtrado transparente resultante. A continuación, se centrifugó
el extracto resuspendido y se cargó en una columna Sephadex
G-75. Se juntaron las fracciones recogidas que
contenían el inhibidor I, se evaporaron y se desalaron en una
columna Sephadex G-25. Se determinó que el producto
inhibidor resultante del filtrado en gel se purificó aproximadamente
un 90% en la proteína inhibidora I mediante disociación en una
columna Sephadex G-75 y desalado en una columna
Sephadex G-25.
El laboratorio de Ryan continuó publicando sobre
el aislamiento y la caracterización del inhibidor II de proteinasa
de manera parecida a como lo describió para el inhibidor I (Bryant,
J., Green, T.R., Gurusaddaiah, T., Ryan, C.L. Proteinase inhibitor
II from potatoes: Isolation and characterization of its protomer
components. Biochemistry 15: 3418-3424,
1976). Bryant et al. diferenciaron los inhibidores proteinasa
derivados de patata en dos grupos en función de su estabilidad a una
temperatura de 80ºC durante 10 minutos. El inhibidor I de
proteinasa (PI_{1}) está caracterizado como una proteína
tetramérica compuesta de cuatro especies protoméricas hibridadas
isoinhibidoras con un peso molecular de 39.000, mientras que PI2
está caracterizado como un inhibidor dimérico que comprende cuatro
especies promotoras isoinhibidoras con un peso molecular de
21.000.
El documento WO 99/01474 describe la extracción
y el aislamiento de las proteínas inhibidoras de proteinasa a
partir de patatas. Las proteínas de los tubérculos de patata se
extraen en forma soluble con un medio de extracción acuoso/alcohol,
como por ejemplo diluyendo ácido fórmico y etanol 20%. El extracto
alcohólico se calienta hasta una primera temperatura para
desnaturalizar la mayor parte de las proteínas no deseadas y se
enfría hasta una segunda temperatura para formar una fase de
precipitado que contiene los restos de éstas y una fase soluble que
contiene las proteínas inhibidoras de proteinasa estables frente al
calor. Las proteínas inhibidoras de proteinasa estables frente al
calor se precipitan desde la fase soluble mediante diálisis contra
un medio de diálisis apropiado, como por ejemplo ácido fórmico
diluido.
Recientemente, se ha asociado PI2 con el aumento
de la saciedad de individuos que han sido alimentados con una
composición nutricional en forma de bebida que contiene PI2. El
documento con número de publicación
US2002119915 describe que, al ingerir una comida que comprendía una composición nutricional en forma de bebida que contenía PI2, los individuos mostraron una reducción importante del apetito durante hasta 3 horas después de la comida. Además, se mejoró la sensación de saciedad, y cada individuo del estudio perdió una media de 2 kg en un periodo de 30 días sin experimentar los efectos secundarios adversos asociados normalmente con los compuestos para la eliminación del apetito. En relación a su mecanismo, se cree que, como inhibidor de tripsina y de quimotripsina, cuando un individuo consume PI2 estimula la liberación de colecistoquinina endógena, un agente supuestamente retroactivo conocido por que es efectivo en la reducción de la necesidad de ingerir alimento.
US2002119915 describe que, al ingerir una comida que comprendía una composición nutricional en forma de bebida que contenía PI2, los individuos mostraron una reducción importante del apetito durante hasta 3 horas después de la comida. Además, se mejoró la sensación de saciedad, y cada individuo del estudio perdió una media de 2 kg en un periodo de 30 días sin experimentar los efectos secundarios adversos asociados normalmente con los compuestos para la eliminación del apetito. En relación a su mecanismo, se cree que, como inhibidor de tripsina y de quimotripsina, cuando un individuo consume PI2 estimula la liberación de colecistoquinina endógena, un agente supuestamente retroactivo conocido por que es efectivo en la reducción de la necesidad de ingerir alimento.
Los procedimientos existentes para la extracción
de los inhibidores de proteinasa implican diversas etapas
laboriosas y largas con lo que se pierde rendimiento y se reduce la
pureza del inhibidor de proteinasa que se recupera. Además, los
procedimientos más prometedores del estado de la técnica anterior se
basan en la utilización de etanol en la solución de extracción que,
en las concentraciones utilizadas, hace que la solución sea
inflamable. Ninguno de los procedimientos del estado de la técnica
anterior ha llegado a escala comercial. Por lo tanto, existe la
necesidad de disponer de un procedimiento para la extracción a gran
escala de PI2 de una manera efectiva y con costes apropiados que
cumpla con los estándares industriales cualitativos y
cuantitativos.
Los tubérculos de patata que contienen un
inhibidor de proteinasa de interés se combinan con una solución de
un ácido orgánico y una sal. El material tuberculoso de patata se
pulveriza, formando una suspensión en la solución de ácido y sal,
para reducir el tamaño de partícula e incrementar el área
superficial de las partículas para mejorar la eficiencia de la
extracción. Se ha elegido un procedimiento de suspensión para
reducir el tamaño de partícula sin desnaturalizar el inhibidor
proteinasa de interés por causa de efectos locales de
calentamiento. La solución de ácido y sal mejora la extracción del
inhibidor de proteinasa a partir del material tuberculoso de patata
suspendido y lo protege contra la degradación provocada por otros
compuestos que pueden liberarse de las células vegetales lisadas.
Una vez extraído en la solución, el inhibidor proteinasa se aísla y
se purifica mediante centrifugación, clarificación, filtración y
secado de la solución del extracto. El ácido y la sal se eliminan
durante la etapa de filtración de manera que no se adultere el
producto inhibidor de proteinasa purificado.
En una realización preferida, el inhibidor
proteinasa II (PI_{2}) se extrae a partir de los tubérculos de
patata enteros. Los ácidos orgánicos efectivos para el procedimiento
incluyen ácido acético, ascórbico, cítrico y fórmico. El ácido
fórmico resultó ser el que rindió el producto final PI2 de mayor
grado de pureza y rendimiento. El contenido de ácido fórmico de la
solución se ajusta al intervalo de 0,5% a 2,5% p/p, preferiblemente
con un contenido de aproximadamente 1,5%. Se añade cloruro de sodio
a la solución de extracción para incrementar la solubilidad de las
proteínas de patata. Las concentraciones de cloruro de sodio
utilizadas están entre 1 N y 3 N, preferiblemente una concentración
de aproximadamente 1,5 N. La solución se añade a las patatas en una
relación en peso de entre 1:1 y 1:10, preferiblemente una relación
de 1:2,5 de solución de extracción:patata p/p, respectivamente.
La pulverización se lleva a cabo mediante
molido. El tamaño de partícula estará comprendido en el intervalo
de 100 a 1500 \mum. En este intervalo, los rendimientos del
producto se incrementaron y las características de fluidez de la
suspensión fueron aceptables. Al disminuir el tamaño de partícula
por debajo de 100 \mum, la recuperación de PI2 fue inferior y no
mejoraron las características de fluidez. El molido durante un
periodo mayor de tiempo también llevó a un rendimiento inferior de
PI2, se cree que a causa de un incremento de la temperatura y de la
liberación de proteasas no deseadas que hacen disminuir el
rendimiento de PI2. El ácido fórmico y el cloruro de sodio se
eliminan eficientemente durante la etapa de filtración.
Un objeto de la presente invención es
proporcionar un procedimiento mejorado para la extracción de
inhibidores de proteinasa de los tubérculos de patata.
Otro objeto de la invención es proporcionar un
procedimiento mejorado para la extracción de inhibidor II de
proteinasa de tubérculos de patata sin utilizar etanol en la
solución de extracción.
Otro objeto de la invención es proporcionar un
procedimiento mejorado para la extracción de inhibidor II de
proteinasa de tubérculos de patata, eficiente y rentable a escala
comercial.
La extracción y aislamiento de PI2 a partir de
patatas comienza con la adición de un ácido orgánico a las patatas
de partida, preferiblemente ácido fórmico, y una sal,
preferiblemente cloruro de sodio. La mezcla se pulveriza para
reducir el tamaño de las partículas de patata y extraer proteínas
solubles. Se utiliza centrifugación para eliminar sólidos y la
fracción sólida se calienta a una temperatura suficiente para
desnaturalizar muchas de las proteínas no deseadas, pero no el PI2.
A continuación la solución se centrifuga de nuevo para eliminar las
proteínas insolubles desnaturalizadas y se microfiltra la fracción
líquida para eliminar las partículas relativamente grandes. La
ultrafiltración se utiliza para eliminar el ácido orgánico y la sal
y para purificar adicionalmente el PI2 en el concentrado.
Como intento para maximizar el rendimiento,
minimizar las impurezas, minimizar el coste, y conseguir que fuera
comercializable, se desarrolló un procedimiento para la extracción
de PI2 a partir de patatas enteras. La solución de extracción se
ensayó en base a la capacidad del procedimiento para solubilizar el
PI2, proteger el PI2 de la degradación, y maximizar el PI2 total
extraído de los componentes insolubles de la patata, a la vez que
se minimiza la cantidad de proteínas cosolubilizadas. La solución de
extracción presenta la solubilidad y estabilidad de PI2 en medio
ácido y a temperaturas elevadas. Para este objetivo se ha encontrado
apropiada una solución de extracción que contiene cloruro de sodio y
ácido fórmico. A causa de los costes, se minimizó la relación
utilizada de solución de extracción respecto al producto de partida
a extraer, y a la vez se consiguió el rendimiento máximo de PI2 por
kilogramo de tubérculos de patata de partida.
Las cantidades de PI2, Kunitz e inhibidores
carboxipeptidasa se midieron utilizando HPLC de fase inversa. Se
utilizó una columna Microsorb C-18 (4,6 mm x 250 mm,
partículas de 5 \mum con 300 Angstroms de tamaño de poro; Varian
Analytical Instruments). Se prepararon dos disolventes para la fase
móvil, el disolvente A compuesto de 800 g de H_{2}O desionizada,
150 g de acetonitrilo, y 0,95 de ácido trifluoroacético, y el
disolvente B compuesto de 850 g de acetonitrilo y 0,85 de ácido
trifluoroacético. Aproximadamente 50 mg de la muestra se añadió a
100 ml del disolvente A. La muestra se mezcló en un vortex durante
30 segundos y a continuación se centrifugó a 10.000 revoluciones
durante 10 minutos. El sobrenadante se recogió para someterlo a un
análisis RP-HPLC. Se inyectaron en la columna 100
\mul de la muestra, con la bomba ajustada a 2500 psig, y una
temperatura de 30,0ºC. Los otros caudales, tiempos, y
com-
posiciones de los disolventes se ajustaron tal como se indica en la Tabla 1. El diodo del detector se ajustó a 220 nm.
posiciones de los disolventes se ajustaron tal como se indica en la Tabla 1. El diodo del detector se ajustó a 220 nm.
Se preparó un patrón externo para construir una
curva estándar para la calibración de la columna. Se disolvieron 5
mg de BSA en 10 ml de disolvente A. Se inyectaron cuatro volúmenes
en la columna, es decir, 25, 50, 75 y 100 \mul. Con los resultados
se generó una curva de calibración.
500 gramos de tubérculos de patata se sometieron
a una extracción con 213 ml de una solución de ácido fórmico al 1%
en un mezclador Waring durante 2,5 minutos. La suspensión se
centrifugó a 10.000 rpm durante 40 minutos. Se decantó el líquido y
se filtró a través de papel de filtro Whatman #4, rindiendo 486 g de
extracto clarificado. En cada uno de 6 erlenmeyers con barras
magnéticas de agitación se vertieron 50 gramos de este extracto
clarificado. En cada matraz se añadió la cantidad de NaCl
correspondiente según la Tabla 2 y se agitó hasta que se disolvió
la sal. Los matraces se calentaron sobre una placa calefactora con
agitación hasta que la temperatura del extracto alcanzó 70ºC.
Después de dejarlos enfriar hasta temperatura ambiente, las
soluciones se centrifugaron a 12.000 rpm durante 5 minutos y a
continuación se analizaron utilizando el método de HPLC de fase
inversa descrito arriba. El nivel de PI2 conseguido se calculó
mediante la integración del área del pico PI2. El volumen de
inyección fue 100 \mul y se utilizó la siguiente ecuación para
equiparar las áreas de los picos a niveles de proteínas:
Proteína
(mg/ml) = [(Área del pico/4) x 8,17 x 10^{-5}] +
0,0338
Al extracto clarificado de patata se le
añadieron diferentes cantidades de cloruro de sodio, a continuación
se calentó a 70ºC durante 10 minutos. Después de enfriarlas hasta
temperatura ambiente, se analizó la elución de proteínas PI2
de
las soluciones mediante el método de HPLC para la cuantificación de PI2. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
las soluciones mediante el método de HPLC para la cuantificación de PI2. Los resultados se muestran en la Tabla 2.
Para establecer la eliminación de las impurezas
Kunitz del extracto de patata, que según se ha descrito disminuyen
la efectividad de PI2 para incrementar la saciedad, se utilizó el
método de HPLC de fase inversa sobre un patrón de Kunitz comercial
provisto por Sigma. Un cromatograma del patrón de Kunitz reveló que
el mayor pico de las impurezas Kunitz aparece aproximadamente a los
25 minutos. Otro inhibidor que se sabe presente en la patata es el
inhibidor de carboxipeptidasa. Se utilizó el método de HPLC de fase
inversa sobre un patrón de carboxipeptidasa comercial provisto por
Sigma. El cromatograma del patrón de carboxipeptidasa reveló que los
mayores picos de las impurezas carboxipeptidasa son un doblete que
aparece aproximadamente a los 17 minutos. A niveles de 0,3 N de
cloruro de sodio y superiores, el nivel de proteína posterior al
tratamiento calorífico se mantiene relativamente constante. La
cantidad de PI2 se mantiene relativamente constante en todos los
ensayos, indicando que a 70ºC PI2 no precipita a niveles salinos
hasta 0,5 N. Para llegar al nivel de NaCl necesario en la fase de
tratamiento térmico es necesario utilizar un extractante con
aproximadamente 2 veces la concentración final de sal. Así, en la
solución de extracción es preferible un nivel de sal de al menos 0,3
N durante el tratamiento térmico a 70ºC para asegurar la eliminación
eficaz de las proteínas de tipo Kunitz. La pureza del producto final
de PI2 puede mejorarse con cantidades mayores de cloruro de
sodio.
Se realizó un estudio de optimización para
determinar el contenido apropiado de NaCl y el contenido apropiado
de ácido fórmico de la solución de extracción. La formulación ideal
de la solución de extracción maximizaría la cantidad de PI2
liberada de la matriz de patata, a la vez que minimizaría la
cantidad de contaminantes proteicos solubilizados. La liberación de
PI2 se midió como rendimiento, normalizado para una composición de
una solución de extracción de 1,0 N en NaCl. Se escogió ésta como
base de normalización debido a la predicción previa de que el
incremento del doble de NaCl por encima de 0,5 N se mostró efectivo
para la eliminación de impurezas en el tratamiento térmico. Para la
optimización, se midió la pureza proteica de PI2 y se comparó
empíricamente con los rendimientos normalizados de extracción. Se
examinaron las soluciones que contenían concentraciones de NaCl de
0,0 N a 2,0 N. De manera similar, se optimizó el contenido en ácido
fórmico de la solución de extracción. Se ensayaron contenidos de
ácido fórmico entre el 0,0 por ciento y el 2,5 por ciento.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Aunque se observó que las normalidades de 0,5 N
y superiores de NaCl conducían a rendimientos altos, se seleccionó
una normalidad de 1,0 N para maximizar tanto el rendimiento como la
pureza.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Los datos indican la utilización de un contenido
de 1,5% de ácido fórmico en la solución de extracción. Aunque otras
concentraciones de ácido fórmico ofrecen rendimientos similares, un
contenido de 1,5% de ácido fórmico maximiza claramente la
pureza.
Se realizó un ensayo para determinar el efecto
de la utilización de diferentes cantidades de la solución de
extracción que comprende 1,5% de ácido fórmico y 1,0 N NaCl en agua
sobre el rendimiento. La proporción en peso de las patatas respecto
a la solución de extracción se modificó de 1:1 a 1:10. Las
proporciones utilizadas y los rendimientos observados se muestran en
la Tabla 11.
Aunque el mayor rendimiento se obtuvo con el
mayor porcentaje de solución de extracción, la ganancia total en
rendimiento es mínima por encima de la relación 0,4 hasta uno (1:2,5
p/p solución de extracción respecto patatas, respectivamente). Se
ha seleccionado esta relación con el objetivo de minimizar el coste
de la solución de extracción y los problemas de la manipulación de
los materiales, tales como calentamiento, enfriamiento y
evaporación.
Los datos dictaron la elección de 1,0 N de
cloruro de sodio como la concentración preferida en la solución de
extracción para el aislamiento de PI2. La utilización de 1,0 N de
cloruro de sodio resulta en un rendimiento maximizado de PI2 en las
condiciones ensayadas, y aunque otras concentraciones llevan a
rendimientos similares, la pureza de la proteína PI2 conseguida con
la utilización de 1,0 N de NaCl está maximizada a 1,0 N. Pueden
conseguirse mayores purezas de PI2 mediante la utilización de menos
cloruro de sodio, aunque eso representaría una reducción del
rendimiento de PI2. Este nivel de cloruro de sodio también es
apropiado para la eliminación de las impurezas de tipo Kunitz. De
manera similar, los datos llevan a la selección de 1,5% de ácido
fórmico como la concentración preferida para la extracción de PI2.
Una solución de extracción que contiene 1,5% de ácido fórmico
muestra un comportamiento antimicrobiano y antiproteolítico
beneficioso. El rendimiento de PI2 se maximiza en las condiciones
ensayadas con una solución de extracción con un contenido de 1,5% en
ácido fórmico, y esta concentración también proporciona la pureza
más alta en PI2/Kunitz de las formulaciones con rendimientos
comparables. No hay un incremento significativo en el rendimiento
total cuando se crea una suspensión que está compuesta de un
porcentaje mayor al 30% en peso de solución de extracción. Una
suspensión del treinta por ciento en solución de extracción es
aproximadamente equivalente a una parte de solución de extracción y
una parte y media de material de partida (1:2,5 relación
solvente:sólido).
Claims (10)
1. Procedimiento para la extracción de un
inhibidor de proteinasa a partir de tubérculos de patata que
contienen el inhibidor proteinasa, que comprende las etapas de:
(a) preparar una solución de extracción libre de
alcohol mediante la adición de un ácido orgánico a agua en una
concentración entre aproximadamente 0,5 por ciento en peso y
aproximadamente 2,5 por ciento en peso y una sal en una cantidad
para proporcionar entre aproximadamente 0,3 y aproximadamente 5,0 de
sal común;
(b) añadir el material vegetal a la solución de
extracción en una relación en peso de entre aproximadamente 1:1 y
aproximadamente 1:10 de solución de extracción respecto el material
vegetal; y
(c) pulverizar el material vegetal en la
solución de extracción para reducir el tamaño de partícula medio
del material vegetal hasta entre aproximadamente 100 micras y
aproximadamente 1500 micras y generando así una suspensión que
contiene una fracción sólida y una líquida; y
(d) aislar y purificar el inhibidor de
proteinasa mediante centrifugación, clarificación, filtración y
secado de dicha fracción líquida.
2. Procedimiento según la reivindicación 1 donde
el inhibidor de proteinasa es inhibidor II de proteinasa de
patata.
3. Procedimiento según la reivindicación 1 o la
reivindicación 2 donde el ácido orgánico se selecciona del grupo que
consiste en ácido acético, ácido ascórbico, ácido cítrico y ácido
fórmico.
4. Procedimiento según la reivindicación 3 donde
el ácido orgánico es ácido fórmico y la sal es cloruro de sodio.
5. Procedimiento según la reivindicación 3 donde
la concentración de ácido fórmico está entre aproximadamente 1,2 y
1,7 por ciento en peso, y la normalidad del cloruro de sodio está
entre aproximadamente 0,8 y 1,5.
6. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores donde la relación en peso de la solución
de extracción y el tubérculo de patata está entre aproximadamente
1:1,5 y 1:4.
7. Procedimiento según la reivindicación 6 donde
la relación en peso entre la solución de extracción y los
tubérculos de patata está entre aproximadamente 1:2 y 1:3.
8. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores donde el tamaño de partícula de
tubérculo medio en la mezcla es inferior a aproximadamente 1000
\mum.
9. Procedimiento según la reivindicación 8 donde
la suspensión se filtra utilizando un filtro con un tamaño de malla
entre aproximadamente 15 \mum y aproximadamente 100 \mum.
10. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores donde la etapa de suspensión no eleva la
temperatura de la suspensión por encima de 90ºC.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US09/900,555 US6767566B2 (en) | 2001-07-06 | 2001-07-06 | Method of enhancing the extraction of proteinase inhibitors |
US900555 | 2001-07-06 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2283563T3 true ES2283563T3 (es) | 2007-11-01 |
Family
ID=25412710
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES02737587T Expired - Lifetime ES2283563T3 (es) | 2001-07-06 | 2002-06-20 | Procedimiento que mejora la extracion de inhibidores de proteasa. |
Country Status (7)
Country | Link |
---|---|
US (2) | US6767566B2 (es) |
EP (1) | EP1414307B1 (es) |
JP (1) | JP4072122B2 (es) |
AT (1) | ATE356146T1 (es) |
DE (1) | DE60218694T2 (es) |
ES (1) | ES2283563T3 (es) |
WO (1) | WO2003003838A1 (es) |
Families Citing this family (15)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US8377877B2 (en) * | 2001-07-06 | 2013-02-19 | Kemin Foods, L.C. | Composition and method for reducing post-prandial blood glucose |
KR100568607B1 (ko) * | 2002-07-22 | 2006-04-07 | 김송배 | 헤데라게닌3-O-α-L-람노피라노실(1→2)-[β-D-글루코피라노실(1→4)]-α-L-아라비노피라노사이드 또는 그를 함유하는백두옹 추출물의 고형암 치료제로서의 용도 |
US7829277B2 (en) | 2004-03-01 | 2010-11-09 | The Regents Of The University Of California | Methods for identifying compounds that suppress chemically-induced carcinogenesis |
US20060035827A1 (en) * | 2004-06-24 | 2006-02-16 | Green Gary M | Compositions and methods for the treatment or prevention of gallbladder disease |
WO2007075448A2 (en) * | 2005-12-15 | 2007-07-05 | Rutgers, The State University Of New Jersey | Method for producing plant extracts enriched with protease inhibitors for regulation of appetite and food intake in mammals |
DE102007012439A1 (de) | 2007-03-15 | 2008-09-18 | Emsland-Stärke GmbH | Verfahren zur Gewinnung pflanzlicher Proteine und/oder Peptide, danach hergestellte Proteine und/oder Peptide und Verwendung derselben |
US20090176000A1 (en) * | 2008-01-03 | 2009-07-09 | Jeremy Ivie | Dietary compositions for promoting weight loss |
US8986253B2 (en) | 2008-01-25 | 2015-03-24 | Tandem Diabetes Care, Inc. | Two chamber pumps and related methods |
US8408421B2 (en) | 2008-09-16 | 2013-04-02 | Tandem Diabetes Care, Inc. | Flow regulating stopcocks and related methods |
WO2010033878A2 (en) | 2008-09-19 | 2010-03-25 | David Brown | Solute concentration measurement device and related methods |
WO2011014704A2 (en) | 2009-07-30 | 2011-02-03 | Tandem Diabetes Care, Inc. | Infusion pump system with disposable cartridge having pressure venting and pressure feedback |
US9180242B2 (en) | 2012-05-17 | 2015-11-10 | Tandem Diabetes Care, Inc. | Methods and devices for multiple fluid transfer |
US9173998B2 (en) | 2013-03-14 | 2015-11-03 | Tandem Diabetes Care, Inc. | System and method for detecting occlusions in an infusion pump |
US10492141B2 (en) | 2015-11-17 | 2019-11-26 | Tandem Diabetes Care, Inc. | Methods for reduction of battery usage in ambulatory infusion pumps |
US10155176B1 (en) | 2016-11-03 | 2018-12-18 | Healer, LLC | Process for the production of a concentrated cannabinoid product |
Family Cites Families (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4491578A (en) | 1982-06-14 | 1985-01-01 | Peikin Steven R | Method of stimulating satiety in mammals |
US4906457A (en) | 1988-09-06 | 1990-03-06 | Washington State University Research Foundation, Inc. | Compositions and methods for reducing the risk of sunlight and ultraviolet induced skin cancer |
NO905003D0 (no) * | 1990-11-19 | 1990-11-19 | Norsk Potetindustrier Al | Fremgangsmaate for fremstilling av proteaseinhibitorer frapotetsaft. |
US5187154A (en) | 1990-12-13 | 1993-02-16 | Board Of Regents, The University Of Texas System | Diagnosis and treatment of humans with diabetes or at risk to develop diabetes |
ES2126031T3 (es) * | 1994-09-03 | 1999-03-16 | Nestle Sa | Procedimiento de preparacion de te negro instantaneo. |
DE69835957T2 (de) | 1997-07-02 | 2007-05-24 | Washington State University Research Foundation, Pullman | Methoden zur isolation von proteinaseinhibitor proteinen von kartoffel knollen |
-
2001
- 2001-07-06 US US09/900,555 patent/US6767566B2/en not_active Expired - Fee Related
- 2001-07-06 US US09/900,057 patent/US7371418B2/en not_active Expired - Fee Related
-
2002
- 2002-06-20 WO PCT/US2002/020115 patent/WO2003003838A1/en active IP Right Grant
- 2002-06-20 AT AT02737587T patent/ATE356146T1/de not_active IP Right Cessation
- 2002-06-20 DE DE60218694T patent/DE60218694T2/de not_active Expired - Lifetime
- 2002-06-20 ES ES02737587T patent/ES2283563T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2002-06-20 JP JP2003509863A patent/JP4072122B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 2002-06-20 EP EP02737587A patent/EP1414307B1/en not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
US7371418B2 (en) | 2008-05-13 |
US20030092150A1 (en) | 2003-05-15 |
JP2004531582A (ja) | 2004-10-14 |
US6767566B2 (en) | 2004-07-27 |
US20050037474A9 (en) | 2005-02-17 |
WO2003003838A1 (en) | 2003-01-16 |
JP4072122B2 (ja) | 2008-04-09 |
ATE356146T1 (de) | 2007-03-15 |
EP1414307A1 (en) | 2004-05-06 |
EP1414307A4 (en) | 2004-12-15 |
DE60218694T2 (de) | 2007-12-06 |
DE60218694D1 (de) | 2007-04-19 |
US20030092152A1 (en) | 2003-05-15 |
EP1414307B1 (en) | 2007-03-07 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2283563T3 (es) | Procedimiento que mejora la extracion de inhibidores de proteasa. | |
Ashaolu et al. | Phycocyanin, a super functional ingredient from algae; properties, purification characterization, and applications | |
Chaiklahan et al. | Stability of phycocyanin extracted from Spirulina sp.: Influence of temperature, pH and preservatives | |
Cohen et al. | A tropomyosin-like protein from human platelets | |
JP2802434B2 (ja) | 植物抽出物からなる過酸化脂質生成抑制剤 | |
JP2013516429A (ja) | ボーマン・バークインヒビタープロテインを大豆加工ストリームから回収する方法 | |
JPS62138434A (ja) | アルフア−1−プロテイナ−ゼ阻害剤の製造法 | |
CN105254708B (zh) | 一种胡萝卜籽抗氧化三肽及其制备方法与应用 | |
AU738102B2 (en) | Methods for the isolation of proteinase inhibitor proteins from potato tubers | |
JP4786912B2 (ja) | トリペプチドからなるコラゲナーゼ阻害剤、それを含有する発酵物、食品製剤、化粧品製剤 | |
Johns et al. | Kafirin, an alcohol-soluble protein from kafir, andropogon sorghum | |
US20070148267A1 (en) | Method for producing plant extracts enriched with protease inhibitors for regulation of appetite and food intake in mammals | |
WO2003003835A1 (en) | Method for controlling the yield and purity of proteinase inhibitor ii during extraction | |
CN109627323A (zh) | 蛇皮胶原蛋白肽及其制备和应用 | |
US3394120A (en) | Process of extracting protein from mistletoe and resultant product | |
CN114213512B (zh) | 增强藻胆蛋白光热稳定性的组合物及其制备方法与应用 | |
CN112898410B (zh) | 一种中国鲎血蓝蛋白及其制备方法和应用 | |
BR112021014081A2 (pt) | Purificação de proteínas derivadas de plantas. | |
Kong et al. | Purification of soybean Kunitz trypsin inhibitor and the mechanism of its passivation by lysine and disulfide bond modifications | |
ES2358110T3 (es) | Proceso de extracción mejorado. | |
ES2245610A1 (es) | Producto de origen vegetal y su procedimiento de obtencion. | |
JP2007084460A (ja) | 美肌用組成物 | |
CN103349210B (zh) | 稻米的ɑ-淀粉酶抑制剂和ɑ-球蛋白混合物的制备方法 | |
WO2022004621A1 (ja) | 精製サラシア属植物抽出物の製造方法 | |
CN109438558A (zh) | 活性肽、重组载体、重组细胞、药物组合物及其制备方法和应用 |