ES2281094T3 - Preparaciones de virus del herpes equino de proteccion cruzada y procedimiento de fabricacion y uso de las mismas. - Google Patents
Preparaciones de virus del herpes equino de proteccion cruzada y procedimiento de fabricacion y uso de las mismas. Download PDFInfo
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Abstract
ESTA INVENCION SE REFIERE A UNA VACUNA CONTRA EL HERPES-VIRUS DE LOS EQUIDOS (EHV-1) QUE ASEGURA UNA PROTECCION CONTRA LAS ENFERMEDADES ASOCIADAS A LOS VIRUS EHV-1 Y EHV-4, ASI COMO PROCEDIMIENTOS DE PREPARADO Y USO DE DICHAS COMPOSICIONES.
Description
Preparaciones de virus del herpes equino de
protección cruzada, y procedimiento de fabricación y uso de las
mismas.
Esta invención se refiere al descubrimiento de
una preparación de virus del herpes equino que protege frente al
aborto y la enfermedad respiratoria provocada por el virus del
herpes equino de tipo 1 y la enfermedad respiratoria provocada por
el virus del herpes equino de tipo 4. Más específicamente, esta
invención se refiere a una vacuna eficaz, y procedimientos de
fabricación y uso de la misma.
El aborto equino y la rinoneumonitis equina son
enfermedades comúnmente reconocidas atribuidas al virus del herpes
equino de tipo 1 (VHE-1) y 2. El virus del herpes
equino de tipo 2 se denomina ahora VHE-4 ya que se
ha determinado que la estructura molecular es significativamente
diferente del VHE-1. El VHE-1 es
principalmente responsable de provocar la enfermedad respiratoria.
Las pérdidas económicas consecuencia de la enfermedad respiratoria
producida por cualquier subtipo del VHE en caballos jóvenes resultan
de la incapacidad o capacidad afectada para rendir en una
competición. Las pérdidas económicas resultantes de la infección de
yeguas preñadas se deben al aborto. También se ha asociado un
síndrome del sistema nervioso central con el VHE-1,
avanzando tal enfermedad desde una parálisis ascendente hasta la
parálisis completa y, en algunos casos, hasta la muerte.
Debido a la falta de homología entre el
VHE-1 y el VHE-4, se ha propuesto
que sólo una vacuna del virus del herpes equino que contenga tanto
el subtipo VHE-1 como el VHE-4
protegerá del aborto y las diversas formas de enfermedad
respiratoria. De hecho, la patente de los EE.UU. número 4.083.958
describe una vacuna del virus del herpes equino que protege sólo
frente al aborto y la enfermedad respiratoria provocada por el
VHE-1. No reivindica proteger frente a la
enfermedad respiratoria provocada por el VHE-4. La
patente de los EE.UU. número 5.084.271 menciona que la exposición
de potros al VHE-1, tanto vivo como inactivado,
produce una respuesta de anticuerpos sólo frente al
VHE-1. La exposición de potros al
VHE-1, tanto vivo como inactivado, produce una
respuesta de anticuerpos sólo frente al VHE-1. La
exposición de potros al VHE-4 produce una respuesta
serológica tanto frente al VHE-1 como al
VHE-4. Sin embargo, no se mostró ninguna protección
real frente a la
exposición.
exposición.
Esta última patente reivindica que una vacuna
eficaz debe contener VHE-4 solo o una combinación de
VHE-1 y VHE-4. Por tanto, no se
esperaría que una vacuna del VHE-1 monovalente
proteja frente a síndromes respiratorios del VHE-1
y VHE-4 así como del aborto provocado por el
VHE-1.
N- Edington et al.: "One way protection
between equid herpesvirus 1 and 4 in vivo", Research in
veterinary science, vol. 48, nº 2, marzo de 1990, páginas
235-239, describe una cepa del VHE-1
atenuada que proporciona protección unilateral frente a una
exposición al VHE-4 posterior. Sin embargo, este
virus no indujo una actividad de linfocitos T citotóxicos frente al
VHE-1. La vacuna de la presente invención
proporciona protección tanto frente al VHE-1 como
al VHE-4.
La presente invención abarca una cepa del virus
del herpes equino de tipo 1 (VHE-1) denominada en el
presente documento como AB69 o un equivalente de la misma que es
útil en la preparación de antígenos para la inducción de una
respuesta inmunitaria protectora frente al VHE-1 o
al VHE-4. La presente invención también abarca una
preparación tal como una vacuna monovalente que contiene AB69 que
puede usarse para vacunar o bien potros jóvenes, equinos adultos o
bien yeguas preñadas para proporcionar protección frente a la
enfermedad respiratoria provocada o bien por el
VHE-1 o bien por el VHE-4 y además,
proporcionar protección frente al aborto debido al
VHE-1.
VHE-1.
La invención abarca adicionalmente el
procedimiento de fabricación de la preparación y uso de la misma
para proteger caballos. Se prevé que las preparaciones de vacuna de
esta invención también puedan proporcionar protección frente a
incidencias de enfermedad del sistema nervioso central provocada por
el VHE-1.
En la presente realización, la invención abarca
el procedimiento de preparación de una vacuna del
VHE-1 monovalente de este tipo propagando la cepa
AB69 o un equivalente de la misma en un cultivo celular continuo,
recogiendo y purificando los residuos celulares eliminados del
sobrenadante de virus, concentrando, inactivando químicamente y
añadiendo adyuvantes tal como se describe con más detalle a
continuación en el presente documento.
Tal como se expuso anteriormente, la presente
invención se refiere a un virus VHE-1 que, cuando se
fabrica en una preparación tal como una vacuna y se administra por
vía parenteral a caballos, proporciona protección de todos los
caballos frente a enfermedades asociadas con el
VHE-1 y VHE-4. Más específicamente,
la vacuna del VHE-1 descrita proporciona protección
a yeguas preñadas frente al aborto provocado por el
VHE-1, protege a caballos de la enfermedad
respiratoria provocada o bien por el VHE-1 o bien
por el VHE-4, y reduce la incidencia de enfermedad
del sistema nervioso central provocada por el VHE-1.
La cepa del virus VHE-1 útil para la preparación de
esta vacuna se aisló del tejido pulmonar infectado de un feto
abortado durante un estudio de exposición. El aislado, denominado
AB69, se depositó en la ATCC con el número de registro
VR-2581. Se hizo pasar dos veces el virus en una
línea de células dérmicas equinas para establecer una cepa madre.
Puede hacerse crecer el virus en líneas de células susceptibles que
replican eficazmente el virus hasta un nivel suficiente como para
proporcionar una cantidad suficiente (masa antigénica) como para ser
inmunogénicamente suficiente para proporcionar protección frente al
VHE-1 y el VHE-4. Lo que sigue es
una descripción no limitante, sino ilustrativa, de un procedimiento
de replicación del virus y fabricación de una vacuna con el
mismo.
El procedimiento comprende las etapas de 1)
infectar una línea de células susceptibles con un virus
VHE-1; 2) permitir a dicho virus
VHE-1 crecer en un medio de apoyo del crecimiento
hasta que se produce un efecto citopático (ECP) significativo; 3)
recoger dicho medio de apoyo del crecimiento que contiene dicho
virus VHE-1, células muertas, residuos celulares y
células infectadas para producir un material recogido; 4) inactivar
dicho material recogido con un agente de inactivación adecuado; y 5)
añadir adyuvantes a dicho material recogido inactivado. La línea de
células susceptibles es preferiblemente de origen equino, más
preferiblemente una línea de células dérmicas equinas, una línea de
células renales equinas o una línea de células pulmonares equinas
fetales. Esta línea celular se usa para hacer crecer la cepa del
VHE-1 hasta una alta titulación. Puede hacerse
crecer la línea celular en botellas de Roux, frascos rotatorios o
biorreactores como un cultivo en suspensión o en perlas
microportadoras usando cualquier medio y suero que apoya el rápido
crecimiento de las células. Los medios preferidos son los medios
esenciales mínimos de Earle o de Hank (MEME y MEMH, respectivamente)
con glutamina y aminoácidos no esenciales añadidos. Los sueros
preferidos para el crecimiento celular son el suero de ternero,
bovino fetal o equino fetal. Se hace crecer la línea celular hasta
la confluencia y luego se infecta con el virus
VHE-1 con una multiplicidad de infección (MOI) que
se de muestra que produce rendimientos máximos de partículas de
virus infecciosas por mililitro de medio. Preferiblemente, esta MOI
es de entre 0,0001 y 1,0. Se deja crecer la línea celular infectada
hasta que las células muestran un efecto citopático (ECP)
significativo. Un ECP se define como destrucción >80% de las
células según se visualiza microscópicamente mediante células
muertas que abandonan la superficie del vaso de crecimiento de las
perlas microportadoras. Se recoge el medio que contiene las células
infectadas, células muertas, residuos celulares y
VHE-1 eliminándolo de los vasos en los que se hace
crecer y transfiriéndolo a vasos de mantenimiento tales como tanques
o bolsas. Se purifica este material recogido mediante filtración o
centrifugación para eliminar las células y residuos celulares tras
lo cual se concentran los fluidos de sobrenadante mediante
ultrafiltración, ultracentrifugación o cromatografía en columna. Se
inactivan los fluidos concentrados mediante adición de cualquier
agente de inactivación que conservará la antigenicidad del virus.
Los agentes de inactivación preferidos son
beta-propiolactona, formalina o etilenimina
binaria. Pueden añadirse conservantes tales como timerosal a los
fluidos inactivados. Tras la inactivación, se añaden adyuvantes al
material inactivado. Puede usarse cualquier número de adyuvantes
incluyendo, pero sin limitarse a: Carbopol 934P®, Havlogen®,
Polygen^{TM}, copolímeros en bloque, polímeros, aceites, sales de
aluminio tales como hidróxido de aluminio y fosfato de aluminio,
citocinas e inmunomoduladores y combinaciones de los mismos. Tras
añadir adyuvantes, pueden añadirse estabilizantes tales como
glicerol/EDTA para mejorar la estabilidad del
antígeno.
antígeno.
Tal como constatarán los expertos en la técnica,
una vez que el virus pueda propagarse tal como se describió
anteriormente, pueden obtenerse derivados del mismo incluyendo
subunidades mediante medios conocidos en la técnica tales como
extracción del virus. Adicionalmente, pueden identificarse los
antígenos protectores a nivel molecular y reproducirse y expresarse
usando tecnología recombinante.
La invención se ilustra más a fondo, pero no se
pretende que se limite por los siguientes ejemplos, en los que
todas las partes y porcentajes son en peso a menos que se
especifique de otro modo.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
1
Se hace crecer una línea de células dérmicas
equinas hasta aproximadamente el 90% de confluencia en frascos
rotatorios de 1750 cm^{2} usando MEME + suero de ternero fetal al
10%. Se infectaron las células confluyentes con una cepa del
VHE-1 denominada AB69, y se transfirieron a (MEME)
que contenía aminoácidos no esenciales, glutamina, sulfato de
neomicina y (polimixina B). Se incubaron los cultivos de células
infectadas a 37ºC durante de tres a seis días o hasta que hubo un
ECP del 90-95% tras lo cual se recogieron
asépticamente las células y fluidos en un único recipiente.
Entonces se aclaró lo recogido mediante filtración a través de un
filtro de 5 \mu y se concentró cinco veces usando ultrafiltración
a través de un cartucho de 100.000 de PM. Se inactivaron los
fluidos concentrados ajustando el pH hasta entre 8,0 y 8,3,
añadiendo beta-propiolactona hasta una
concentración final de entre el 0,05 y el 0,15% e incubando a 37ºC
durante de tres a seis horas mientras se controlaba el pH entre 6,8
y 7,2 con NaOH 10 N. Este último periodo de incubación hidrolizó la
beta-propiolactona. Tras completarse la
inactivación, se añadieron adyuvantes a los fluidos mediante la
adición de Havlogen®, y se añadió timerosal como conservante para
completar la producción de vacuna. La vacuna producida mediante
este procedimiento se denominó EHV-1 MHD
91-001.
91-001.
Se realizó un estudio de vacunación/exposición
para determinar si la vacuna EHV-1 MHD
91-001 podía proteger a yeguas preñadas frente a la
enfermedad respiratoria del VHE-1 y frente al aborto
provocado por el virus del herpes equino. Durante este estudio, se
separaron cuarenta y cinco yeguas en el segundo trimestre de
embarazo (el promedio fue el 5º mes de embarazo) en dos grupos. Un
grupo que contenía 22 yeguas preñadas se denominó controles no
vacunados. El segundo grupo de 23 yeguas se vacunó con 2,0 ml de
EHV-1 MHD 91-001 durante el 5º, 7º
y 9º mes de embarazo. Para la exposición respiratoria, el grupo
vacunado contenía 22 yeguas ya que una yegua murió tras la
exposición al caer y romperse el cuello. Para la exposición al
aborto, el grupo vacunado sólo contenía 19 yeguas preñadas al final
del periodo de exposición (una yegua abortó pronto en el estudio,
una yegua murió tras la exposición al caer y romperse el cuello y
dos yeguas que se sabía que no estaban preñadas al comienzo del
ensayo se asignaron aleatoriamente al grupo vacunado el primer día
de la vacunación).
Se expusieron todas las yeguas (tanto si estaban
preñadas como si no ya que las yeguas no preñadas todavía podían
usarse para la exposición respiratoria). Se sedaron las yeguas con
Rompun®, disponible de Bayer Corporation, antes de la exposición.
Se expuso cada yegua con AB69 de paso temprano a una tasa de dosis
de aproximadamente 10^{5,0} DICT_{50}. Se administró esta
exposición por vía intranasal utilizando un nebulizador que producía
un aerosol fino que forzó el virus dentro de los pulmones. Se ha
demostrado que el procedimiento y el virus de exposición producen
aborto y enfermedad respiratoria en yeguas preñadas en estudios de
titulación de exposición
anteriores.
anteriores.
Tras la exposición, se colocaron todas las
yeguas en corrales cerrados en los que se observaron para detectar
signos de enfermedad respiratoria y aborto. Con el fin de determinar
la protección frente a la enfermedad respiratoria, se observaron
las yeguas y se tomaron muestras diarias durante 11 días tras la
exposición. La observación diaria tras la exposición de todas las
yeguas incluyó la evaluación y puntuación de los signos clínicos de
enfermedad respiratoria incluyendo rinorrea (exudado) y aumento de
la temperatura rectal. Adicionalmente, se extrajeron muestras de
sangre diariamente. Se midió el recuento de leucocitos y se intentó
aislar el virus de las capas leucocíticas separadas de las muestras
de sangre diarias. Además, en cada día de prueba, se tomaron
muestras con hisopos de los conductos nasales de cada yegua,
colocando los hisopos en medio de transporte para intentos
posteriores de aislamiento del virus. Con el fin de determinar la
protección frente al aborto, se analizaron todos los potros vivos,
potros muertos y fetos abortados para detectar indicaciones de
infección del VHE-1. Se recogieron muestras de
sangre y tejido de necropsia para intentos de aislamiento del virus.
Los resultados de la evaluación respiratoria se muestran en las
tablas 1a, 1b y 1c. Los resultados de la evaluación del aborto se
muestran en la
tabla 2.
tabla 2.
Tal como se muestra en la tabla 1a, las yeguas
vacunadas mostraron una reducción del 96,1% de emisión del virus a
partir de exudados nasales comparado con yeguas control no
vacunadas. Tras la inoculación por exposición a aerosol del
VHE-1, se recuperó virus VHE-1 de
hisopos nasales recogidos de las vacunadas en tan sólo 2 de 242
(9,826%) de los intentos de aislamiento, mientras que se recuperó
virus VHE-1 de 51 de 242 (21,07%) de los hisopos
recogidos de yeguas control no vacunadas.
Tal como se demuestra en la tabla 1b, la
respuesta de temperatura de las yeguas vacunadas tras la exposición
fue significativamente inferior a la de las yeguas control en el día
2 de observación tras la exposición. Este día, todas las vacunadas
presentaron temperaturas rectales normales
(98,0-100,9ºC) y 13 de las 22 (59,09%) yeguas
control no vacunadas presentaron temperaturas rectales aumentadas
(101ºC o superior).
La gravedad de la enfermedad respiratoria del
VHE-1 en las yeguas control no vacunadas se indicó
adicionalmente mediante las puntuaciones de exudado nasal tras la
exposición. Tal como se observa en la tabla 1c, las puntuaciones de
exudado nasal diarias individuales superiores o iguales a 4 son
indicativas de un nivel significativo de enfermedad respiratoria.
Dos de las 22 yeguas vacunadas (9,09%) y 9 de las 22 (40,09%) yeguas
control no vacunadas desarrollaron este nivel de enfermedad. Esta
diferencia entre la enfermedad respiratoria de las yeguas vacunadas
comparado con las yeguas control es estadísticamente significativa
(p<0,03).
La gravedad de la enfermedad respiratoria del
VHE-1 en las yeguas control no vacunadas se indicó
adicionalmente mediante las tendencias mostradas en sus recuentos
leucocíticos (WBC) tras la exposición, que no se muestra. Entre el
día 2 y el día 5 tras la exposición, las yeguas control no vacunadas
mostraron una depresión más pronunciada de sus WBC medias que las
yeguas vacunadas.
En resumen, la vacuna monovalente del
VHE-1 que contenía sólo una cepa del
VHE-1 mostró una protección significativa frente a
la enfermedad respiratoria inducida por el VHE-1
comparado con yeguas control no vacunadas tras la exposición.
Se continuó la observación del aborto tras la
exposición tras completar las observaciones respiratorias. Tal como
se mencionó previamente, se colocaron aleatoriamente las yeguas en
corrales con dos yeguas por corral. La selección de los compañeros
de corral se basó en la compatibilidad. Se observaron las yeguas
diariamente por la mañana y por la noche para detectar cualquier
signo de potros. Siempre que una yegua paría un potro vivo o muerto
y/o un feto abortado, se iniciaba el siguiente procedimiento.
- 1)
- En el caso de que la yegua que estaba pariendo tuviese un parto difícil, el veterinario de la granja ayudaba en el parto. Una yegua del estudio requirió asistencia.
- 2)
- Potros vivos - Cuando se descubría un potro vivo, se recogían inmediatamente muestras de sangre para estudios de aislamiento de virus de la capa leucocítica, y si era necesario, para estudios serológicos en el caso de una muerte neonatal debida al VHE-1.
- 3)
- Fetos abortados y potros muertos - Todos los fetos abortados y potros muertos se colocaron inmediatamente en la nevera de la sala de necropsia para impedir la autolisis. Todas autopsias las realizó el veterinario de la granja y el personal de investigación a cargo del proyecto. Todas las exploraciones de necropsia incluían lo siguiente: a) observaciones visuales de los órganos del potro para detectar pruebas de patología macroscópicas, b) recogida de muestras de sangre para estudios de aislamiento de virus y serológicos; y c) recogida de muestras de tejido del timo, pulmones, corazón, hígado, riñón y bazo que se colocaron en recipientes individuales que contenían o bien formalina tamponada al 10% para estudios de histopatología o bien MEME que contenía una concentración 5X de neomicina y polimicina B para aislamientos de virus.
El resumen del parto de las yeguas se muestra en
las tablas 2a y 2b. Las tablas 2a y 2b incluyen la siguiente
información de cada yegua preñada vacunada y no vacunada: 1) número
de yegua; (2) fecha de parto de la yegua; (3) día tras la
exposición en el que se produjo el parto; (4) tipo de parto
experimentado por cada yegua de prueba; (5) estado de salud de los
potros en el parto; y (6) causa posible de la muerte fetal y/o el
virus infeccioso que contribuyó a la muerte del recién nacido. En
la parte inferior de las tablas, se enumeran los intervalos y
medias de los días de parto tras la exposición para cada grupo de
prueba.
Dieciséis de las diecinueve yeguas vacunadas que
igualaban el 84,21%, parieron potros sanos normales tras la
exposición al VHE-1. Una yegua preñada vacunada tuvo
problemas durante el intento de parto de un feto cercano al término
en presentación transversal dorsal. El feto murió durante el parto
asistido mecánicamente. Se descubrió que este recién nacido con
distocia era negativo al cultivo en estudios de aislamiento viral
para el virus de exposición VHE-1. Esta muerte del
potro no se debió ni a la vacuna ni al virus de exposición
VHE-1. Se descubrió que dos fetos de las yeguas
vacunadas eran positivos para el virus VEH-1 tras la
exposición. Para las yeguas control no vacunadas, 15 de 22 (68,20%)
parieron potros sanos normales. Los 15 potros normales estaban
libres de virus de exposición VHE-1 en el cultivo.
Sin embargo, se aisló el virus VHE-1 de los tejidos
de los 7 recién nacidos abortados o muertos en el grupo de control
no vacunado. Por lo tanto, los vacunados mostraron una reducción
del 67% en la incidencia de fetos y recién nacidos infectados con el
VHE-1 comparado con yeguas control no vacunadas.
Esto demuestra claramente la eficacia de la vacuna monovalente del
VHE-1 con respecto a la protección de yeguas
preñadas frente al aborto.
Esto demostró que la vacuna del
VHE-1 monovalente efectuó una reducción en la
enfermedad respiratoria provocada por el VHE-1 en
yeguas vacunadas comparado con yeguas control no vacunadas. Además,
la vacuna del VHE-1 monovalente efectuó una
reducción en el aborto o muerte en recién nacidos de yeguas preñadas
vacunadas comparado con yeguas preñadas control no vacunadas en un
estudio de vacunación/exposición usando el VHE-1
como virus de exposición.
La media de días tras la exposición para el
parto fue de 58, el intervalo varió desde 16 hasta 87 días. Los
abortos/muertes debidos al VHE-1 fueron 2/19 o el
10,5%.
Potros normales: 16/19 (84,2%).
La media de días tras la exposición para el
parto fue 56, el intervalo varió desde 20 hasta 83 días. Los
abortos/muertes debidas al VHE-1 fueron 7/22
(31,8%).
Potros normales: 15/22 (68,2%).
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
2
Se probó EHV-1 MHD
91-001 en serie tal como se describió en el ejemplo
1 en un estudio de vacunación/exposi-
ción para detectar su capacidad de proteger animales recién destetados seronegativos jóvenes frente a la enfermedad respiratoria provocada por VHE-4. Se usaron en este estudio veinte caballos recién destetados no tratados seronegativos para VHE-1 y VHE-4. Se parieron y se mantuvieron aislados todos los caballos, y por tanto no tuvieron exposición previa ni al VHE-4 ni al VHE-1. Un mes antes de la primera vacunación y en el día de la primera vacunación, se sacó sangre a todos los animales recién destetados para confirmar que eran todos seronegativos. Se vacunaron diez de los animales recién destetados con una dosis de 1 ml de una vacuna monovalente del VHE-1 EHV-1 MHD 91-001. Veintiocho días tras la primera vacunación se administró una dosis de refuerzo de 1 ml a los animales recién destetados vacunados. A los catorce días tras el refuerzo se expusieron todos los animales recién destetados con una cepa del VHE-4 heteróloga denominada T446. Se observaron todos los animales recién destetados para detectar signos clínicos de enfermedad respiratoria del VHE-4 durante 11 días tras la exposición. Se expuso cada animal recién destetado con 10^{4,0} DICT_{50} del virus VHE-4 usando el nebulizador descrito
anteriormente.
ción para detectar su capacidad de proteger animales recién destetados seronegativos jóvenes frente a la enfermedad respiratoria provocada por VHE-4. Se usaron en este estudio veinte caballos recién destetados no tratados seronegativos para VHE-1 y VHE-4. Se parieron y se mantuvieron aislados todos los caballos, y por tanto no tuvieron exposición previa ni al VHE-4 ni al VHE-1. Un mes antes de la primera vacunación y en el día de la primera vacunación, se sacó sangre a todos los animales recién destetados para confirmar que eran todos seronegativos. Se vacunaron diez de los animales recién destetados con una dosis de 1 ml de una vacuna monovalente del VHE-1 EHV-1 MHD 91-001. Veintiocho días tras la primera vacunación se administró una dosis de refuerzo de 1 ml a los animales recién destetados vacunados. A los catorce días tras el refuerzo se expusieron todos los animales recién destetados con una cepa del VHE-4 heteróloga denominada T446. Se observaron todos los animales recién destetados para detectar signos clínicos de enfermedad respiratoria del VHE-4 durante 11 días tras la exposición. Se expuso cada animal recién destetado con 10^{4,0} DICT_{50} del virus VHE-4 usando el nebulizador descrito
anteriormente.
Se indicaron los signos clínicos de la
enfermedad respiratoria mediante la observación de exudados nasales
y una temperatura elevada. Se puntuaron los exudados nasales
diariamente mediante un único individuo para mantener la coherencia
de las observaciones. Se asignaron grados de puntuación de 0 a 6
basándose en la gravedad de la enfermedad. Se determinó que una
puntuación de 4 o superior era indicativa de enfermedad respiratoria
significativa. Adicionalmente, se sacaron muestras de sangre la
para evaluación del recuento de WBC y respuestas de titulaciones
serológicas y se tomaron muestras por hisopo nasal para aislamientos
de virus.
En las tablas 3a y 3b se muestran los resultados
del aislamiento de virus y exudado nasal y en la tabla 4 se
enumeran los resultados serológicos. Las respuestas de temperatura
fueron significativas así como los recuentos de leucocitos. Esto no
es extraño para la enfermedad respiratoria asociada con el
VHE-4.
Hubo una diferencia en la emisión del virus tal
como se determinó mediante aislamientos de virus a partir de
hisopos nasales (tabla 3a). Un número medio de 6,7 controles no
vacunados emitieron el virus en sus exudados nasales a lo largo del
periodo de 11 días tras la exposición mientras que un número medio
de 3,4 vacunados emitieron el virus. Esto fue una reducción del 52%
en la emisión del virus.
La diferencia en las puntuaciones de exudados
nasales entre vacunados y controles no vacunados era
estadísticamente significativa (tabla 3b). El ochenta por ciento de
los animales control no vacunados mostraron puntuaciones de
exudados nasales >4 que indican enfermedad respiratoria grave
mientras que sólo el 20% de los animales vacunados mostraron
puntuaciones de exudados nasales >4. Esto representa una
reducción del 75% de la enfermedad respiratoria en los vacunados.
Es de incluso mayor importancia el hecho de que los vacunados
mostraron sólo 2 días de puntuaciones de exudados nasales >4
mientras que los controles no vacunados mostraron 10 días de
puntuaciones de exudados nasales >4.
La tabla 4 muestra la respuesta serológica
(titulación de neutralización en suero), de los animales recién
destetados tras la vacunación, el día del refuerzo, el día de la
exposición y 14 días tras la exposición. Como prueba de que no hubo
exposición previa o bien al VHE-4 o bien al
VHE-1 antes de la exposición, los controles no
vacunados se mantuvieron seronegativos para ambos subtipos del
virus. Todos los animales recién destetados mostraron titulaciones
serológicas positivas frente al VHE-4 tras la
exposición. A diferencia de informes de otros científicos, todos
los animales recién destetados vacunados excepto uno desarrollaron
titulaciones de neutralización en suero frente al
VHE-1 así como frente al VHE-4 como
resultado de o bien la primera o bien la segunda vacunación. Esto
confirma que esta vacuna monovalente del VHE-1 es
eficaz para producir respuestas serológicas tanto frente al
VHE-1 como frente al
VHE-4.
VHE-4.
El descenso general de las titulaciones de
neutralización en suero frente al VHE-1 y al
VHE-4 14 días tras la inoculación por exposición
sugiere que el virus de exposición VHE-4 es
neutralizante frente a los anticuerpos tanto del
VHE-1 como del VHE-4 que se
desarrollaron mediante la vacuna del VHE-1
monovalente.
En resumen, se ha demostrado que la vacuna del
VHE-1 monovalente de esta invención produce
protección frente una exposición respiratoria del
VHE-4 y produce una respuesta serológica tanto
frente al VHE-1 como frente al
VHE-4 en caballos recién destetados que no se
expusieron previamente a ningún subtipo del virus.
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(Tabla pasa a página
siguiente)
Claims (11)
1. Una vacuna de VHE-1
monovalente que proporciona protección frente a enfermedades
asociadas con el VHE-1 y el VHE-4
que comprende un virus VHE-1 representado por la
cepa AB69 que se denomina ATCC VR-2581.
2. La vacuna según la reivindicación 1 que
proporciona protección frente a la enfermedad respiratoria
provocada tanto por VHE-1, VHE-4
como por una combinación de los mismos.
3. Un procedimiento de preparación de una vacuna
según la reivindicación 1, que comprende las etapas de
- a.
- infectar una línea celular susceptible con un virus VHE-1 que comprende un virus VHE-1 representado por la cepa AB69 o su equivalente que se denomina ATCC VR-2581;
- b.
- dejar crecer dicho virus VHE-1 en un medio de apoyo al crecimiento hasta que se produce un ECP significativo;
- c.
- recoger dicho medio de apoyo al crecimiento que contiene dicho virus VHE-1, células muertas, residuos celulares y células infectadas para producir un material recogido;
- d.
- inactivar dicho material recogido con un agente de inactivación adecuado; y
- e.
- añadir adyuvantes a dicho material recogido inactivado.
4. El procedimiento según la reivindicación 3,
en el que dicha línea celular es una línea celular equina.
5. El procedimiento según la reivindicación 4,
en el que dicha línea celular equina se selecciona del grupo que
consiste en una línea celular dérmica equina, una línea celular
renal equina y una línea celular pulmonar fetal equina.
6. El procedimiento según la reivindicación 3,
en el que el agente de inactivación se selecciona del grupo que
consiste en beta-propiolactona, formalina y
etilenimina binaria.
7. El procedimiento según la reivindicación 3,
en el que el adyuvante se selecciona del grupo que consiste en
Havlogen.RTM, Carbopol 934P.RTM, Polygen.TM, copolímeros en bloque,
polímeros, aceites, sales de aluminio, citocinas, inmunomoduladores
y combinaciones de los mismos.
8. El procedimiento según la reivindicación 4,
en el que se añade un estabilizante a la vacuna.
9. El procedimiento según la reivindicación 4,
en el que se purifica dicho material recogido antes de la
inactivación.
10. El procedimiento según la reivindicación 9,
en el que dicha purificación comprende filtración, ultrafiltración,
cromatografía en columna o combinaciones de las mismas.
11. El procedimiento según la reivindicación 3,
en el que se concentra dicho material recogido antes de la
inactivación.
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---|---|---|---|
US08/698,630 US5853715A (en) | 1996-08-16 | 1996-08-16 | Cross-protective equine herpesvirus preparations and method of making and using the same |
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