ES2280905T3 - Proteina alergenica del caucho natural. - Google Patents

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ES2280905T3 ES04251109T ES04251109T ES2280905T3 ES 2280905 T3 ES2280905 T3 ES 2280905T3 ES 04251109 T ES04251109 T ES 04251109T ES 04251109 T ES04251109 T ES 04251109T ES 2280905 T3 ES2280905 T3 ES 2280905T3
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Abstract

Proteína alergénica del látex (ALP), caracterizada porque la proteína tiene al menos una identidad de secuencia del 80% con la SEQ ID NO. 12.

Description

Proteína alergénica del caucho natural.
1. Campo técnico de la invención
La presente invención se refiere en general a una proteína.
2. Antecedentes de la invención
En los últimos años de 1980 y en los 90, empezaron a recibirse informes, con una frecuencia creciente en Europa y América, de reacciones alérgicas entre los usuarios de guantes quirúrgicos y para exploración compuestos por látex y entre los pacientes con espina bífida. El importante aumento en el número de informes de alergia al látex en la última década también se ha atribuido al aumento de la utilización de guantes de látex en la atención sanitaria conjuntamente con los casos de SIDA en aumento. La sensibilización al látex entre los profesionales sanitarios está claramente relacionada con el trabajo, siendo la causa principal los guantes de látex, o específicamente, la proteína alergénica en los guantes de látex. No obstante, se conocen numerosas sensibilidades cruzadas entre los alérgenos proteicos del látex y diversos alérgenos de los alimentos y el polen. Por tanto, no es improbable que muchos pacientes alérgicos al látex se hayan sensibilizado inicialmente no sólo por proteínas procedentes de productos de látex, sino también por proteínas procedentes de otras fuentes.
Existen cientos de proteínas que se encuentran en el látex de caucho natural. De éstas, sólo unas cuantas son alergénicas (que pueden inducir alergia). Ha habido mucho interés en identificar las proteínas en látex de Hevea responsables de la alergia al látex y se ha dedicado un esfuerzo considerable en el aislamiento y purificación de las proteínas alergénicas del látex de Hevea o productos de látex. Desde un punto de vista distinto al académico, la elucidación de los principales alérgenos en el látex permitiría que se desarrollaran anticuerpos contra estas proteínas. La disponibilidad de los anticuerpos facilitaría el desarrollo de inmunoensayos de látex, tanto para uso en laboratorio como comercial. Existen dos tipos principales de inmunoensayos de látex.
1. Inmunoensayos para el diagnóstico de la alergia al látex
Estos diagnósticos se utilizan para determinar si alguien es alérgico o está sensibilizado al látex. Estos ensayos pueden ser o bien del formato in vitro (normalmente una prueba serológica) o bien del formato in vivo (pruebas cutáneas de punción). Estos ensayos se usan en investigación y en la atención sanitaria.
2. Inmunoensayos para la cuantificación de alérgenos del látex en productos manufacturados
Estos ensayos cuantitativos determinan la cantidad de proteínas alergénicas presentes en los productos de látex. Se usan para someter a prueba productos de látex tales como guantes de látex para determinar el contenido de alérgenos del látex extraíbles. Tales inmunoensayos serían muy valiosos en la fabricación de productos de látex, particularmente en los aspectos de normalización y control de calidad y garantía de calidad. Los futuros clientes de tales inmunoensayos serían fabricantes de productos de látex y agencias reguladoras que tienen la responsabilidad de garantizar el cumplimiento de las especificaciones de los productos.
La identificación de los principales alérgenos del látex proporciona otra función útil en la atención sanitaria. Los alérgenos del látex purificados pueden usarse en inmunoterapia para desensibilizar a pacientes alérgicos al látex. Cuando se lleva a cabo de manera satisfactoria, el paciente no desarrolla más una reacción alérgica al látex. Esto es especialmente importante cuando el paciente trabaja en un entorno (por ejemplo, en atención sanitaria) en el que los productos de látex están omnipresentes.
Hoy en día, la Unión Internacional de Sociedades Inmunológicas (IUIS) reconoce diez alérgenos del látex, Hev b 1 a Hev b 10. (Existen otras proteínas del látex en consideración por la IUIS). Aunque se está realizando un esfuerzo para buscar alérgenos proteicos del látex importantes, muchos investigadores creen que se ya ha dado cuenta de la mayoría de los principales alérgenos proteicos del látex.
En 1995, el Dr. Donald Beezhold en su artículo presentado en Int Conf on Latex Protein Allergy: The Latest Position anunció un nuevo alérgeno del látex que tenía homología proteica parcial con la patatina, la principal proteína de reserva de las patatas. A esta proteína de 43 kDa se le asignó posteriormente el nombre de la OMS/IUIS, Hev b 7. Cuando se dispuso de una versión recombinante de Hev b 7, se encontró que era reactiva con IgE procedente de pacientes alérgicos al látex. Sin embargo, la proporción de pacientes que se sensibilizaron a Hev b 7 recombinante es mucho menor de lo esperado. En inmunotransferencias de tipo Western que mostraron una banda de proteína activa a aproximadamente 43 kDa, se encontró proteína de forma mucho más común que lo que se podría explicar mediante la unión de IgE a Hev b7. Así, el Hev b 7 recombinante no podía explicar la aparición muy frecuente de sensibilidad al látex para una proteína de aproximadamente 43 kDa. Por tanto, es posible que exista otro alérgeno del látex desconocido de aproximadamente 43 kDa. La búsqueda de esta proteína nueva y desconocida ha culminado en la presente invención. Esta proteína es de naturaleza alergénica porque el contacto con la proteína alergénica del látex (ALP, "allergenic latex protein") puede inducir una reacción alérgica en personas sensibilizadas a esta proteína.
3. Sumario de la invención
La presente invención se refiere a una proteína que se origina a partir del látex que puede inducir una reacción alérgica en personas sensibilizadas a la proteína.
Por tanto, en un primer aspecto, la presente invención proporciona una proteína alergénica del látex (ALP, "allergenic latex protein"), caracterizada porque la proteína tiene al menos una identidad de secuencia del 80% con la SEQ ID NO. 12.
Preferiblemente, la proteína o su variante molecular se caracterizan porque la proteína tiene las siguientes propiedades:
a)
tiene un peso molecular de aproximadamente 42.000 Dalton;
b)
tiene un punto isoeléctrico de aproximadamente 4,7;
c)
se une con IgE de pacientes sensibilizados a la proteína; y
d)
contiene la secuencia de aminoácidos como la de la figura 2 (SEQ ID NO. 12) o variaciones menores de esta secuencia de aminoácidos que no dan como resultado propiedades alergénicas de la proteína que se está alterando sustancialmente.
El segundo aspecto de la presente invención proporciona un procedimiento para obtener una proteína o su variante molecular en el que el procedimiento comprende las siguientes etapas:
a)
centrifugar el látex para obtener la fracción inferior;
b)
congelar - descongelar la fracción inferior para obtener el suero B del látex; y
c)
aislar y purificar la proteína del suero B obtenido en (b).
Además, la presente invención proporciona una secuencia de ADN que codifica para la proteína o una parte de la proteína en la que la secuencia de ADN es como en la figura 1 o variaciones menores de esta secuencia.
Además, la presente invención proporciona un método para la producción de una proteína o sus variantes moleculares en forma recombinante insertando el ADN que codifica para la proteína o una variante de la proteína en un vector apropiado e induciendo que el vector exprese la proteína recombinante o en forma recombinante de dicha variante de la proteína, mediante lo cual en este caso, la secuencia de aminoácidos de la secuencia de ADN traducida anterior es como en la figura 2 (SEQ ID NO. 12).
4. Breve descripción de las figuras
La figura 1 muestra la secuencia de ADN del clon de ADNc de longitud completa que codifica para la ALP. La figura 1 también se muestra en la SEQ ID NO. 11.
La figura 2 muestra la secuencia de aminoácidos de la ALP derivada de la traducción del clon de ADNc que codifica para la ALP. La figura 2 también se muestra en la SEQ ID NO. 12.
La figura 3 muestra el espectro de espectrometría de masas de ionización por desorción láser asistida por matriz (EM-MALDI) de la proteína alergénica del látex, ALP.
La figura 4 muestra una inmunotransferencia de tipo Western tras la separación de la proteína mediante electroforesis en gel de SDS-poliacrilamida. La proteína se tiñe con azul de Coomassie para mostrar la presencia y la migración electroforética de ALP (carril 2). La unión de IgE humana de pacientes sensibilizados a ALP en la inmunotransferencia de tipo Western (carril 3), anticuerpos policlonales desarrollados contra ALP (carril 4) y un anticuerpo monoclonal desarrollado contra ALP (carril 5).
La figura 5 muestra una inmunotransferencia de tipo Western tras la separación de la proteína mediante electroforesis en gel de SDS-poliacrilamida. La proteína se tiñe con azul de Coomassie para mostrar la presencia y la migración electroforética de ALP (carril 2). Se lleva a cabo una reacción específica para determinar la presencia de hidratos de carbono, para demostrar la glucosilación de ALP (carril 3).
La figura 6 muestra una inmunotransferencia de tipo Western de la proteína de fusión MBP-ALP recombinante tras separación mediante SDS-PAGE. La proteína se tiñe con azul de Coomassie para mostrar la migración electroforética de la proteína de fusión de ALP recombinante (carril 3). También se muestra la unión de ALP a anticuerpos monoclonales (carril 4) y policlonales (carril 5) desarrollados contra ALP nativa.
Descripción detallada de la invención
La presente invención se refiere a una proteína aislada del suero B de látex centrifugado obtenido mediante incisión en el árbol del caucho, Hevea brasiliensis. La siguiente descripción detalla cómo puede aislarse, purificarse y caracterizarse la proteína, y cómo podría usarse en la clonación del ADNc que codifica para la proteína, cómo pueden obtenerse versiones recombinantes de la proteína, cómo podrían desarrollarse anticuerpos a partir de la proteína y cómo puede usarse la proteína en inmunoensayo e inmunoterapia.
La invención se extiende a cualquier péptido o polipéptido, términos que se usan de manera intercambiable en el presente documento, excepto cuando se requiere lo contrario, que tiene identidad sustancial con la ALP precursora o madura. Los polipéptidos con identidad sustancial incluyen variantes, tales como variantes alélicas.
Una "variante" tal como se utiliza el término en el presente documento, puede referirse a un polinucleótido o polipéptido que difiere de un polinucleótido o polipéptido de referencia respectivamente, pero conserva propiedades esenciales. Una variante típica de un polinucleótido difiere en la secuencia de nucleótidos de otro polinucleótido de referencia. Los cambios en la secuencia de nucleótidos de la variante pueden alterar o no la secuencia de aminoácidos de un polipéptido codificado por el polinucleótido de referencia. Los cambios de nucleótidos pueden dar como resultado sustituciones, adiciones, deleciones, fusiones y truncamientos de aminoácidos en el polipéptido codificado por la secuencia de referencia, tal como se trata más adelante. Una variante típica de un polipéptido difiere en la secuencia de aminoácidos de otro polipéptido de referencia. Generalmente, las diferencias son limitadas de modo que las secuencias del polipéptido de referencia y la variante son enormemente similares en general y, en muchas regiones, idénticas. Una variante y un polipéptido de referencia pueden diferir en la secuencia de aminoácidos en una o más sustituciones, adiciones, deleciones en cualquier combinación. Un residuo de aminoácido sustituido o insertado puede ser o no uno codificado por el código genético. Una variante de un polinucleótido o polipéptido puede ser una que se produce de manera natural tal como una variante alélica, o puede ser una variante que no se sabe que se produce de manera natural. Pueden prepararse variantes que no se producen de manera natural de polinucleótidos y polipéptidos mediante técnicas de mutagénesis o mediante síntesis directa.
Dentro de las variantes se incluyen polipéptidos y polinucleótidos alterados. Las secuencias de ácido nucleico "alteradas" que codifican para ALP incluyen aquellas secuencias con deleciones, inserciones, o sustituciones de diferentes nucleótidos, dando como resultado un polinucleótido igual a ALP o un polipéptido con al menos una característica funcional de ALP. Están incluidos dentro de esta definición los polimorfismos que pueden detectarse fácilmente o no usando una sonda de oligonucleótido particular de ALP, y la hibridación incorrecta o inesperada con variantes alélicas, con un locus distinto al locus cromosómico normal para la secuencia de polinucleótido que codifica para ALP. La proteína codificada también puede "alterarse," y puede contener deleciones, inserciones, o sustituciones de residuos de aminoácidos que producen un cambio silencioso y dan como resultado una ALP funcionalmente equivalente. Pueden realizarse sustituciones de aminoácidos deliberadas basándose en la similitud de polaridad, carga, solubilidad, hidrofobicidad, hidrofilicidad y/o la naturaleza anfipática de los residuos, siempre que se conserve la actividad biológica o inmunológica de ALP. Por ejemplo, los aminoácidos cargados negativamente pueden incluir ácido aspártico y ácido glutámico, los aminoácidos cargados positivamente pueden incluir lisina y arginina, y los aminoácidos con grupos de cabeza polar no cargados que tienen valores de hidrofilicidad similares pueden incluir leucina, isoleucina, y valina; glicina y alanina; asparagina y glutamina; serina y treonina; y fenilalanina y tirosina.
Los fragmentos de ALP pueden adoptar diversas formas, y también se dan a conocer en la descripción. Un fragmento es un polipéptido que tiene una secuencia de aminoácidos que es completamente la misma como parte, pero no toda, de la secuencia de aminoácidos de ALP, o una variante de la misma. Los fragmentos pueden ser "independientes", o estar comprendidos en un polipéptido mayor del que forman una parte o región, lo más preferiblemente como una única región continua. Ejemplos representativos de fragmentos de polipéptido incluyen, por ejemplo, fragmentos de desde aproximadamente el número de aminoácido 1-20, 21-40, 41-60, 61-80, 81-100, y 101 hasta el final del polipéptido de ALP. En este contexto, "aproximadamente" incluye los intervalos citados particularmente mayores o menores en varios, 5, 4, 3, 2 ó 1 aminoácido en cualquier extremo o en ambos extremos.
Los fragmentos preferidos incluyen, por ejemplo, polipéptidos de truncamiento que tienen la secuencia de aminoácidos del polipéptido de ALP, excepto por la deleción de una serie continua de residuos que incluye el extremo amino-terminal, o una serie continua de residuos que incluye el extremo carboxi-terminal o la deleción de dos series continuas de residuos, incluyendo una el extremo amino-terminal e incluyendo la otra el extremo carboxi-terminal. También se prefieren fragmentos caracterizados por atributos estructurales o funcionales tales como fragmentos que comprenden hélices alfa y regiones que forman hélices alfa, láminas beta y regiones que forman láminas beta, giros o regiones que forman giros, espirales o regiones que forman espirales, regiones hidrófilas, regiones hidrófobas, regiones anfipáticas alfa, regiones anfipáticas beta, regiones flexibles, regiones que forman superficies, regiones de unión a sustratos y regiones de alto índice antigénico. Otros fragmentos preferidos son fragmentos biológicamente activos. Los fragmentos biológicamente activos son aquellos que median en la actividad del receptor, incluyendo aquellos con una actividad similar o una actividad mejorada, o con una actividad disminuida no deseada. También están incluidos aquellos que son antigénicos o inmunogénicos en un animal, especialmente en un ser humano si se desea, por ejemplo, bloquear la unión a ALP.
Preferiblemente, todos estos fragmentos de polipéptido conservan la actividad biológica de ALP, incluyendo la actividad antigénica. Las variantes de la secuencia y fragmentos definidos también forman parte de la presente descripción. Las variantes preferidas son aquellas que pueden variar de las referencias en sustituciones de aminoácidos conservativas, es decir, aquellas que sustituyen un residuo por otro de características similares. Tales sustituciones típicas son entre Ala, \/at, Leu e Ile; entre Ser y Thr; entre los residuos ácidos Asp y Glu; entre Asn y Gln; y entre los residuos básicos Lys y Arg; o los residuos aromáticos Phe y Tyr. Se prefieren particularmente las variantes en las que se sustituyen, eliminan o añaden varios, 5-10, 1-5, o 1-2 aminoácidos, en cualquier combinación.
Sustancialmente, los polipéptidos idénticos forman una realización preferida de la presente invención, e incluyen aquellos con una variación en al menos una parte de la molécula, con la opción de conservar inalterada otra parte de la molécula. Por tanto y por ejemplo, si el polipéptido sustancialmente idéntico es para imitar la actividad de ALP, entonces puede ser preferible conservar inalteradas subregiones particulares, mientras adoptan cambios en una o más de las otras subregiones, si se desea. Los cambios pueden incluir la deleción de tales subregiones, proporcionando así fragmentos activos.
Los polipéptidos con identidad sustancial tienen preferiblemente al menos una identidad del 80% con un polipéptido correspondiente que es ALP precursora o madura. Más preferiblemente, existe al menos una identidad del 90%, tal como al menos una identidad del 95% o al menos del 98%. La identidad de secuencia se determina de manera adecuada mediante un programa informático, aunque hay otros métodos disponibles. Se prefiere que se evalúe la identidad usando el programa Gap del Genetic Computer Group ("Grupo Informático para Genética") (1994), (véase el manual del programa para el paquete Wisconsin, versión 8, Madison Wisconsin, EE.UU.).
La "identidad" es una medición de la identidad de secuencias de nucleótidos o secuencias de aminoácidos. En general, las secuencias se alinean de modo que se obtenga la coincidencia de orden superior. "Identidad" per se tiene un significado reconocido en la técnica y puede calcularse usando técnicas publicadas. Véase: por ejemplo: (COMPUTATIONAL MOLECULAR BIOLOGY, Lesk, A.M., ed., Oxford University Press, Nueva York, 1988; BIOCOMPUTING: INFORMATICS AND GENOME PROJECTS, Smith, D.W., ed.: Academic Press, Nueva York, 1993; COMPUTER ANALYSIS OF SEQUENCE DATA, PARTE 1, Griffin, A.M., y Griffin, H.G., eds., Humana Press, Nueva Jersey, 1994; SEQUENCE ANALYSIS IN MOLECULAR BIOLOGY, von Heinje, G., Academic Press, 1987; y SEQUENCE ANALYSIS PRIMER, Gribskov, M. y Devereux, J., eds., M Stockton Press, Nueva York, 1991).
Aunque existen varios métodos para medir la identidad entre dos secuencias de polinucleótido o polipéptido, el término "identidad" se conoce bien por los expertos en la técnica (Carillo, H., y Lipton, D., SIAM J Applied Math (1988) 48:1073). Los métodos empleados comúnmente para determinar la identidad o similitud entre dos secuencias incluyen, pero no se limitan a, los descritos en Guide to Huge Computers, Marlin J. Bishop, ed., Academic Press, San Diego, 1994, y Carillo, H., y Lipton, D., SIAM J Applied Math (1988) 48:1073. Los métodos para determinar la identidad y la similitud se codifican en programas informáticos. Los métodos de programas informáticos preferidos para determinar la identidad y la similitud entre dos secuencias incluyen, pero no se limitan al paquete de programas GCS (Devereux, J., et al., Nucleic Acids Research (1984) 12(1):387); BLASTP, BLASTN, FASTA (Atschul, S.F. et al., J Mol. Biol. (1990) 215:403).
Como ilustración, por un polinucleótido que tiene una secuencia de nucleótidos que tiene al menos, por ejemplo, una "identidad" del 95% con una secuencia de nucleótidos de referencia de la SEQ ID NO: 11 se pretende que la secuencia de nucleótidos del polinucleótido sea idéntica a la secuencia de referencia excepto en que la secuencia del polinucleótido puede incluir hasta cinco mutaciones puntuales por cada 100 nucleótidos de la secuencia de nucleótidos de referencia de la SEQ ID NO: 11. En otras palabras, para obtener un polinucleótido que tiene una secuencia de nucleótidos al menos idéntica en un 95% a una secuencia de nucleótidos de referencia, pueden eliminarse o sustituirse por otro nucleótido hasta el 5% de los nucleótidos en la secuencia de referencia, o pueden insertarse en la secuencia de referencia varios nucleótidos hasta el 5% de los nucleótidos totales en la secuencia de referencia. Estas mutaciones de la secuencia de referencia pueden producirse en las posiciones 5 ó 3 terminales de la secuencia de nucleótidos de referencia o en cualquier sitio entre esas posiciones terminales, intercaladas o bien individualmente entre nucleótidos en la secuencia de referencia o bien en uno o más grupos contiguos dentro de la secuencia de
referencia.
De manera similar, por un polipéptido que tiene una secuencia de aminoácidos que tiene al menos, por ejemplo, una "identidad" del 95% con una secuencia de aminoácidos de referencia de la SEQ ID NO: 12 se pretende que la secuencia de aminoácidos del polipéptido sea idéntica a la secuencia de referencia excepto en que la secuencia del polipéptido puede incluir hasta cinco alteraciones de aminoácidos por cada 100 aminoácidos de los aminoácidos de referencia de la SEQ ID NO: 12. En otras palabras, para obtener un polipéptido que tiene una secuencia de aminoácidos al menos idéntica en un 95% a una secuencia de aminoácidos de referencia, pueden eliminarse o sustituirse por otro aminoácido hasta el 5% de los residuos de aminoácidos en la secuencia de referencia, o pueden insertarse en la secuencia de referencia varios aminoácidos hasta el 5% de los aminoácidos totales en la secuencia de referencia. Estas alteraciones de la secuencia de referencia pueden producirse en las posiciones amino o carboxi-terminales de la secuencia de aminoácidos de referencia o en cualquier sitio entre esas posiciones terminales, intercaladas o bien individualmente entre residuos en la secuencia de referencia o bien en uno o más grupos contiguos dentro de la secuencia de referencia.
Los polipéptidos de esta invención pueden incluirse dentro de una secuencia más larga, en la forma de una proteína de fusión, por ejemplo. Por tanto, los polipéptidos pueden estar en la forma de la proteína "madura", o pueden ser parte de una proteína mayor, tal como una proteína de fusión. A menudo, es ventajoso incluir una secuencia de aminoácidos adicional que contiene secuencias secretoras o líder, secuencias pro, secuencias que ayudan en la purificación, tales como múltiples residuos de histidina, o una secuencia adicional para la estabilidad durante la producción recombinante.
Los polipéptidos que son fragmentos conservan preferiblemente la función deseada de ALP. Los fragmentos comprenden de manera adecuada al menos 10 aminoácidos, más preferiblemente al menos 20 aminoácidos, y normalmente al menos 40 aminoácidos.
Ejemplo 1
Aislamiento y purificación de la proteína
Se recoge látex fresco de árboles de Hevea brasiliensis (clon RRIM 600) en recipientes enfriados. Se centrifuga el látex a 19.000 r.p.m. (43.000 g) en una centrífuga de alta velocidad Sorvall RC 5C durante 1 h a 4-7°C para separarlo en tres fracciones principales: la fracción superior que es la de crema de caucho ("rubber cream"), la fracción pesada inferior y el suero C situado entremedias. El suero B de látex se prepara basándose en el método de Hsia (1958) Trans Instn Rubb Ind. Se lava la fracción inferior de látex procedente del látex centrifugado mediante resuspensión en manitol 0,4 M y se recupera por centrifugación. Se somete entonces la fracción inferior lavada a congelación y descongelación repetidas para romper los lutoides que son sus componentes principales. Se recupera el fluido de los lutoides, el suero B, como el sobrenadante tras una nueva centrifugación.
Se dializa el suero B durante la noche frente a borato de sodio 0,3 mM y ácido bórico 0,016 M pH 7 en la sala fría. Esto va seguido por filtración a través de papel de filtro Whatman nº 1. Se cargan diez ml del suero B filtrado en una columna de carboximetilcelulosa CM32 (Whatman) (20 cm x 1,5 cm) equilibrada con borato de sodio 0,09 M y ácido bórico 0,016 M, pH 8,6. Se eluyen las proteínas con un gradiente de 150 ml de borato de sodio 0,09 M y ácido bórico 0,016 M, pH 8,6 frente a 150 ml de borato de sodio 0,9 M y ácido bórico 0,16 M, pH 8,6. Se recogen fracciones de dos ml a una velocidad de 2,6 min/fracción. Se cargan los materiales no retardados (es decir, fracciones 3 a 11) en una columna DE 52 (Whatman) (12 cm x 1,5 cm) equilibrada con Tris-HCl 0,1 M, pH 8. Se eluye la proteína con un gradiente de NaCl 0 - 0,5 M en el mismo tampón. Se someten a prueba las fracciones que contienen proteínas de aproximadamente 43 kDa, según se determina mediante electroforesis en gel de SDS-poliacrilamida, para determinar la unión de la inmunoglobulina IgE con suero de pacientes alérgicos al látex. Se identifican y reúnen las fracciones que contienen ALP. El peso molecular aproximado de ALP determinado comparando la migración de ALP con la de diversos marcadores de calibración es de 42 kDa (figura 4, carril 2).
Ejemplo 2
Determinación del peso molecular y el punto isoeléctrico y secuenciación de aminoácidos
El peso molecular exacto de la proteína alergénica del látex, ALP, determinado mediante espectrometría de masas es de 42975. En la figura 3 se muestra el espectro de espectrometría de masas de ionización por desorción láser asistida por matriz (EM-MALDI) de la muestra de proteína.
El punto isoeléctrico (pI) de ALP se determina mediante isoelectroenfoque (IEF, "isoelectric focusing"). Se mide la migración de la proteína sobre el gel de IEF y se compara con patrones de calibración de proteínas de pI conocido. Se estima que el pI de ALP es de 4,7.
Se encuentra que la proteína está bloqueada en el extremo N-terminal. La digestión in situ mediante tripsina dio como resultado varios fragmentos. Las secuencias de aminoácidos parciales se obtienen para tres de estos fragmentos.
Secuencia 1 (SEQ ID NO. 1): YLDVQYSQFR
Secuencia 2 (SEQ ID NO. 2): YSLFSEPEK
Secuencia 3 (SEQ ID NO. 3): LPTTIIPAHGGFSSR
en las que las letras del alfabeto son abreviaturas aceptadas para los aminoácidos individuales.
La secuencia 1 se deriva de un péptido de 1319 Da. Los datos de la secuencia de aminoácidos obtenidos mediante espectrometría de masas se comparan frente a la base de datos de secuencias de proteínas del Centro Nacional de Información Biotecnológica (NCBI, "National Centre for Biotechnology Information"), EE.UU., usando el algoritmo BLAST. La búsqueda reveló que la secuencia de aminoácidos tenía homología parcial con la "proteína específica de nódulos tempranos" ("early nodule-specific protein") de Glycine max.
La secuencia 2 se deriva de un péptido de 1100 Da. La secuencia mostró homología parcial con "proteína específica de nódulos tempranos" de Medicago truncatula.
La secuencia 3 se deriva de un péptido de 1556 Da. La secuencia mostró homología parcial con "proteína específica de nódulos tempranos" de Glycine max.
Ejemplo 3
Determinación de la glucosilación de ALP
Para demostrar que está unido un hidrato de carbono a la proteína ALP (convirtiendo ALP en una "proteína glucosilada" o glucoproteína), las proteínas purificadas se separan mediante electroforesis en gel de SDS-poliacrilamida (SDS-PAGE) sobre geles al 15% y se transfieren de manera electroforética a una membrana de nitrocelulosa para obtener una inmunotransferencia de tipo Western. Se lava la membrana con solución salina tamponada con fosfato (PBS) y luego se sumerge en peryodato de sodio 10 mM/EDTA con agitación en la oscuridad durante 20 min. Después de esto, se lava la membrana tres veces con PBS durante 10 minutos en cada ciclo. A continuación, se transfiere la membrana a una disolución compuesta por biotina-hidrazida en acetato de sodio/EDTA y se lleva a cabo una agitación durante 60 min. Después de tres ciclos de lavado con solución salina tamponada con Tris (TBS), se bloquea la membrana y luego se lava otras tres veces con TBS. Luego, se sumerge la membrana en estreptavidina-fosfatasa alcalina durante 60 min. Tras otros tres ciclos de lavado con TBS, se sumerge la membrana en una disolución de sustrato de fosfato de 5-bromo-4-cloro-3-indolilo/azul de nitrotetrazolio (BCIP/NBY). El aspecto del producto de reacción con fosfatasa alcalina coloreado indicó la presencia del componente de hidrato de carbono de la glucoproteína (figura 5).
Ejemplo 4
Producción de anticuerpos contra ALP
Se desarrollan satisfactoriamente tanto anticuerpos policlonales como anticuerpos monoclonales contra ALP.
Anticuerpos policlonales contra ALP
Se mezcla una preparación pura de ALP (aproximadamente 0,5 ml de 0,5 mg de ALP/ml) en solución salina tamponada con fosfato (PBS) con un volumen igual de adyuvante completo de Freund y esta mezcla de antígeno se inyecta por vía subcutánea en el lomo de conejos. Se administran siete dosis de administración de refuerzo de la misma formulación de antígeno, pero con adyuvante incompleto de Freund, a intervalos de dos semanas. Se extrae sangre de los conejos para obtener el anti-suero que contenía anticuerpos policlonales contra ALP.
Para demostrar la unión del anticuerpo policlonal a ALP, se prepara una inmunotransferencia de tipo Western de la proteína sobre membrana de nitrocelulosa, tal como en el ejemplo 3. La membrana de nitrocelulosa se bloquea con leche desnatada al 5% en PBS y después se incuba durante 90 min. con anticuerpos policlonales anti-ALP (diluidos 1:800 en PBS-leche) como el anticuerpo primario. Tras tres ciclos de lavado con PBS-leche, la membrana de nitrocelulosa se incuba durante 1 h con el anticuerpo secundario, anti-IgG de conejo conjugado con fosfatasa alcalina. Tras tres ciclos de lavado adicionales con PBS-leche, la membrana de nitrocelulosa se incuba durante 10 min. en solución salina tamponada con Tris (TBS) antes de sumergirse en sustrato de fosfato de 5-bromo-4-cloro-3-indolilo/azul de nitrotetrazolio (BCIP/NBT) para generar el producto de reacción con fosfatasa alcalina coloreado. En la figura 5, se muestra la unión de los anticuerpos policlonales a ALP en una inmunotransferencia de tipo Western de la proteína tras la separación de la proteína mediante electroforesis en gel de SDS-poliacrilamida (carril 4).
Anticuerpos monoclonales contra ALP
Se fusionan células de bazo de un ratón Balb/c inmunizado con suero C de látex con células de mieloma de ratón siguiendo los protocolos descritos anteriormente por Kohler y Milstein (12, 13). Se seleccionan las células de hibridoma resultantes para determinar anticuerpos específicos contra proteínas del suero C. Se vuelven a clonar dos veces los hibridomas seleccionados y se utilizan los anticuerpos monoclonales secretados, o bien en forma no purificada en los sobrenadantes de células de hibridoma, o bien como preparaciones purificadas mediante cromatografía de
afinidad.
Para demostrar la unión del anticuerpo monoclonal a ALP, se utiliza una inmunotransferencia de tipo Western de la proteína sobre membrana de nitrocelulosa y se trata como para el anticuerpo policlonal, excepto en que se utiliza el anticuerpo monoclonal contra ALP como el anticuerpo primario, mientras que el anti-IgG de ratón conjugado con fosfatasa alcalina se utiliza como el anticuerpo secundario. En la figura 4, se muestra la unión de los anticuerpos monoclonales a ALP en una inmunotransferencia de tipo Western de la proteína tras la separación de la proteína mediante electroforesis en gel de SDS-poliacrilamida (carril 5).
Anticuerpos monoclonales recombinantes contra ALP
Una variación prevista del anticuerpo monoclonal convencional es el anticuerpo recombinante, mediante lo cual puede generarse el anticuerpo utilizando un segmento específico de ADN que codifica para la secuencia de aminoácidos del anticuerpo o un fragmento funcional del anticuerpo, tal como un fragmento variable de cadena sencilla. Hay varios enfoques para el desarrollo de anticuerpos recombinantes, de los que se explica un ejemplo en el presente documento. En primer lugar, se construyen bibliotecas genéticas de anticuerpos, por ejemplo, mediante amplificación por PCR a partir de ADNc de linfocitos B. Para seleccionar estas bibliotecas, los anticuerpos se presentan sobre la superficie de microorganismos que contienen el gen del anticuerpo (presentación en fago). Se exponen a la proteína antigénica para identificar clones específicos que producen un anticuerpo que se une a esta proteína. Una vez que se identifica el microorganismo que lleva el gen del anticuerpo, pueden amplificarse entonces clones específicos y utilizarse para producir el fragmento del anticuerpo en E. coli u otro microorganismo adecuado.
Ejemplo 5
Demostración de la alergenicidad de la proteína
Se incuba una inmunotransferencia de tipo Western de la proteína purificada con suero sanguíneo procedente de pacientes alérgicos al látex para determinar si la IgE (la inmunoglobulina que media la reacción alérgica) se une a la proteína. La unión de IgE a la proteína indicó que la proteína es alergénica.
Para detectar la unión proteína-IgE en las inmunotransferencias de tipo Western, se sigue un procedimiento similar al del ejemplo 2, excepto en que la membrana de nitrocelulosa se incuba durante la noche con suero reunido de varios pacientes alérgicos al látex (diluido 1:5,25 en PBS-leche y 0,05% de azida de sodio) como el anticuerpo primario. El anti-IgE humano conjugado con fosfatasa alcalina sirvió como el anticuerpo secundario. En la figura 4, se muestra la unión de la IgE humana a ALP en una inmunotransferencia de tipo Western de la proteína tras la separación de la proteína mediante electroforesis en gel de SDS-poliacrilamida (carril 3).
Ejemplo 6
Preparación y clonación de ADNc que codifica para ALP
El ADN complementario (ADNc) que codifica para la secuencia de aminoácidos de ALP puede clonarse y multiplicarse en un huésped, tal como un microorganismo. El microorganismo puede seleccionarse del grupo que consiste en bacterias, levaduras y virus. Las células de plantas superiores también pueden utilizarse como vectores. La proteína ALP, en forma recombinante, puede sintetizarse entonces en el mismo huésped o en un huésped alternativo. A continuación, se da una descripción del método utilizado para clonar el ADNc de ALP. Se utilizan métodos convencionales en la preparación y purificación de ADN, mini y maxipreparaciones, purificación de ADN, digestiones con endonucleasas de restricción, electroforesis en gel de agarosa, ligaciones, transformaciones y aislamiento de poli(A)^{+} ARNm mediante cromatografía en columna de oligo(dT)-celulosa.
Preparación de ARNm de látex
Se recoge látex haciendo un sangrado en el árbol Hevea brasiliensis. Antes de realizar el sangrado en el árbol, se le fija una boquilla de drenaje esterilizada. Inmediatamente tras el sangrado, la incisión y la boquilla se lavan con aproximadamente 20 ml de 2x tampón de extracción de ARN (Tris-HCl 0,1 mol, LiCl 0,3 mol, EDTA 0,01 mol, 10% de SDS, pH 9,5). El látex se lava entonces con 100 ml de tampón de extracción de ARN hasta un volumen total recogido de 200 ml en un matraz cónico estéril. En el laboratorio, el látex se mezcla bien y se centrifuga en tubos de polialómero a 112.700 g durante 30 minutos a 15°C. Se decanta suavemente la fase acuosa en tubos de centrífuga estériles y se realiza el tratamiento posterior de la fase acuosa para aislar el ARN total según el método de Prescott y Martin (1987) Plant Mol Biol Rep.
Síntesis de ADNc de ALP
Se prepara la síntesis de ADNc de primera hebra mediante la transcripción inversa de 1 microgramo de ARN de látex total en un volumen de 20 \mul utilizando el kit GeneRacer™ (Invitrogen, EE.UU.) según las instrucciones del vendedor. Se lleva a cabo la síntesis de ADNc mediante amplificación por PCR.
Se amplifica el ADNc por PCR sin purificación previa. Se realiza cada reacción en un volumen de 50 \mul que contiene 2 \mul de la reacción de primera hebra anterior, 12,5 \muM de cebador 3' GeneRacer™ (5'-GCTGTCAACGA
TACGCTACGTAACG-3' (SEQ ID NO. 4) en la que A, G, C y T son las abreviaturas para las bases de nucleótidos adenina, guanina, citosina y timina, respectivamente), 12,5 \muM de cebador específico, dATP 0,2 mMol, dTTP 0,2 mMol, dCTP 0,2 mMol, dGTP 0,2 mMol, pH 7,5, 1 unidad de Taq High Fidelity (Roche Diagnostics GmbH), Tris-HCl 10 mM, MgCl_{2} 1,5 mM, KCl 50 mM, pH 8,3,y se recubre con 50 \mul de aceite mineral. La reacción de PCR tuvo lugar en un termociclador siguiendo las instrucciones del fabricante. Se realiza una segunda tanda de PCR igual que anteriormente pero utilizando 5 \mul de la PCR de la primera tanda como molde. Se utilizan 20 \mul del producto de amplificación por PCR para el análisis en un gel de agarosa al 1,0% teñido con bromuro de etidio.
Clonación de ADNc de ALP
El producto de la PCR (aproximadamente 1,5 Kb de tamaño) se liga en el vector TOPO® (Invitrogen, EE.UU.) según las instrucciones del vendedor. El ligado (2 \mul) se utiliza para la transformación de Escherichia coli químicamente competente One Shot® TOP10 (Invitrogen, EE.UU.) para determinar la resistencia a la ampicilina. Tras incubar durante toda la noche a 37°C en medio agar que contiene ampicilina (100 \mug/ml), se recogieron los transformantes mediante selección de color en Xgal (80 \mug/ml)/IPTG (3 mmol/L). Se seleccionan los clones recogidos mediante ensayo de minipreparaciones utilizando el sistema de purificación de ADN Wizard® SV Minipreps (Promega, EE.UU.) según las instrucciones del vendedor. Entonces se envía 1 \mug de los clones seleccionados para la secuenciación del ácido nucleico.
Las secuencias de ADN (1394 pares de bases, figura 1 y SEQ ID NO. 11) se traducen en los aminoácidos para los que codifican (figura 2 y SEQ ID NO. 12). La secuencia de aminoácidos englobó los siguientes segmentos:
1) ctaccaactactattatacctgctcatggtggatttagt (SEQ ID NO. 5: en la posición 384 a 422) codifica para el péptido LPT
TIIPAHGGFS (SEQ ID NO. 6).
2) taccttgatgtccaatattcgcaattccgg (SEQ ID NO. 7: en la posición 429 a 458) codifica para el péptido YLDVQYSQ
FR (SEQ ID NO. 8)
3) tattctttattcagtgagccagaaaaa (SEQ ID NO. 9: en la posición 897 a 923) codifica para el péptido YSLFSEPEK (SEQ ID NO. 10),
en las que a, g, c y t son las abreviaturas para las bases de nucleótidos adenina, guanina, citosina y timina, respectivamente. Tal como se observó anteriormente, estos tres dominios de proteína se han identificado anteriormente mediante espectrometría de masas. Los solicitantes observan que variaciones menores de la secuencia de ADN no alterarían sustancialmente las características básicas del péptido para el que codifica el ADN.
Ejemplo 7
Sobreexpresión de ALP recombinante
Hay varios kits comerciales que pueden utilizarse para la sobreexpresión de la proteína alergénica del látex. En este ejemplo, se utiliza el sistema de purificación y fusión de la proteína pMAL-c2 (New England Biolabs, EE.UU.) para sobreexpresar proteína recombinante a partir de su ADNc clonado. Los procedimientos utilizados para la sobreproducción de la proteína de fusión, purificación mediante cromatografía de afinidad, escisión de la proteína de fusión mediante la proteasa factor Xa y purificación de la proteína objetivo mediante cromatografía en hidroxiapatita, son según las instrucciones del vendedor. En este ejemplo, se utiliza isopropiltiogalactósido (IPTG) como inductor para el sistema de expresión.
El ADNc de ALP se subclona en el vector pMAL-c2 en el mismo marco de lectura de traducción que el gen malE del vector. Las células bacterianas se hacen crecer durante la noche a 37°C sobre una placa indicadora LB que contiene ampicilina 100 \mug/ml, isopropiltiogalactósido (IPTG) 10 \mumol y Xgal 10 \mug/ml. Se recogen y se seleccionan las colonias blancas para detectar la presencia del plásmido de fusión MBP mediante ensayo de minipreparaciones. Entonces se toma un clon positivo para la sobreproducción de la proteína REF. Se rompen células de E. coli inducidas por IPTG mediante un ciclo de congelación (-20°C)/descongelación (temperatura ambiente) y sonicación (Vibra Cell, Sonics & Materials Inc., EE.UU.), en un baño de agua con hielo con pulsos de 15 segundos durante 3 minutos. Se monitoriza la liberación de la proteína de fusión eluida de la columna de amilosa sometiendo a ensayo la proteína. Aunque la secuencia de aminoácidos del péptido está determinada por la secuencia del ADNc en el vector de expresión, los solicitantes observan que cambios menores en las secuencia de ADNc no alterarían sustancialmente las características básicas de la proteína recombinante. La figura 6 muestra la proteína recombinante expresada y su unión a anticuerpos que se habían desarrollado contra su homólogo nativo (natural) purificado a partir del látex de caucho natural.
Ejemplo 8
Uso de ALP en inmunoensayos
La ALP natural o recombinante o su variante molecular (una proteína similar a ALP, pero que difiere ligeramente, por ejemplo, en algunos aminoácidos) puede utilizarse por sí misma, o en combinación con un anticuerpo desarrollado contra ALP o su variante molecular, en inmunoensayos. Las variantes moleculares de ALP pueden producirse de manera natural en el látex o pueden existir como resultado de la manipulación de laboratorio. Tales variantes de ALP pueden diferir sólo ligeramente unas de otras (por ejemplo, en algunos aminoácidos) y pueden tener sustancialmente funciones o características básicas sustancialmente similares, incluyendo la alergenicidad. Tales inmunoensayos pueden construirse en muchos formatos diferentes, pero básicamente se basan en la reacción inmunológica entre un anticuerpo y su antígeno. En este caso, el anticuerpo puede ser un anticuerpo contra ALP o su variante molecular, o IgE humana. Su antígeno puede ser ALP natural o recombinante o su variante molecular, o un péptido que incorpora el sitio del epítopo de ALP o su variante molecular.
El inmunoensayo puede utilizarse para el diagnóstico de la alergia a ALP o alergia al látex en general. En un formato diferente, el inmunoensayo puede utilizarse para la detección de ALP en látex o productos de látex.
Ejemplo 9
Uso de ALP en inmunoterapia
La inmunoterapia es un tratamiento preventivo para las reacciones alérgicas que se lleva a cabo administrando gradualmente dosis crecientes del alérgeno al que la persona es alérgica. Los aumentos por incrementos del alérgeno hacen que el sistema inmunológico se haga menos sensible a la sustancia cuando se encuentre con la sustancia en el futuro. Hay varios protocolos de tratamiento para inmunoterapia. Como ejemplo, la inmunoterapia con ALP puede llevarse a cabo inyectando una muestra purificada de ALP en la piel del brazo. Puede administrarse una inyección una vez a la semana durante aproximadamente 30 semanas, tras lo cual pueden administrarse inyecciones cada dos semanas. Finalmente, las inyecciones pueden administrarse cada cuatro semanas. La duración del tratamiento puede ser de tres o cuatro años, a veces más larga. En lugar de ALP natural, la inmunoterapia también puede llevarse a cabo con una ALP recombinante adecuada o la variante molecular de ALP (una proteína similar a ALP, pero que difiere ligeramente, por ejemplo, en algunos aminoácidos), o un péptido que representa una parte de ALP o su variante molecular.
A partir de la descripción anterior, un experto en la técnica puede establecer fácilmente las características esenciales de la presente invención, y sin apartarse del espíritu y el alcance de la misma, puede realizar diversos cambios y modificaciones de la invención para adaptarla a diversos usos y condiciones.
<110> Malaysian Rubber Board (Consejo del Caucho Malayo)
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<120> Proteína
\vskip0.400000\baselineskip
<130> Documento EPP89347
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<150> Solicitud de patente malaya nº PI200307
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<151> 28/02/2003
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<160> 12
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<170> PatentIn versión 3.2
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<210> 1
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<211> 10
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<212> PRT
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<213> Hevea brasiliensis
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
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\sa{Tyr Leu Asp Val Gln Tyr Ser Gln Phe Arg}
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Hevea brasiliensis
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
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\sa{Tyr Ser Leu Phe Ser Glu Pro Glu Lys}
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<210> 3
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<211> 15
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<212> PRT
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<213> Hevea brasiliensis
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
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\sa{Leu Pro Thr Thr Ile Ile Pro Ala His Gly Gly Phe Ser Ser Arg}
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<210> 4
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<211> 25
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<212> ADN
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<213> Hevea brasiliensis
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<400> 4
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\hskip-.1em\dddseqskip
gctgtcaacg atacgctacg taacg
\hfill
25
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<210> 5
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<211> 39
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<212> ADN
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<213> Hevea brasiliensis
\newpage
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<400> 5
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ctaccaacta ctattatacc tgctcatggt ggatttagt
\hfill
39
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<210> 6
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<211> 13
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<212> PRT
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<213> Hevea brasiliensis
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<400> 6
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\sa{Leu Pro Thr Thr Ile Ile Pro Ala His Gly Gly Phe Ser}
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<210> 7
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<211> 30
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<212> ADN
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<213> Hevea brasiliensis
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<400> 7
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taccttgatg tccaatattc gcaattccgg
\hfill
30
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<210> 8
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<212> PRT
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<213> Hevea brasiliensis
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<400> 8
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<213> Hevea brasiliensis
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taattctttat tcagtgagcc agaaaaa
\hfill
27
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<210> 10
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<210> 11
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<211> 1394
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<212> ADN
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<213> Hevea brasiliensis
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<400> 11
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1
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\hskip1.5cm
2
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<210> 12
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<211> 464
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<212> PRT
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<213> Hevea brasiliensis
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (404)..(404)
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<223> Xaa puede ser cualquier aminoácido que se produce de manera natural
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (407)..(407)
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<223> Xaa puede ser cualquier aminoácido que se produce de manera natural
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (418)..(418)
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<223> Xaa puede ser cualquier aminoácido que se produce de manera natural
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (438)..(439)
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<223> Xaa puede ser cualquier aminoácido que se produce de manera natural
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> (451)..(451)
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<223> Xaa puede ser cualquier aminoácido que se produce de manera natural
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
3
4
\vskip1.000000\baselineskip

Claims (21)

1. Proteína alergénica del látex (ALP), caracterizada porque la proteína tiene al menos una identidad de secuencia del 80% con la SEQ ID NO. 12.
2. Proteína alergénica del látex (ALP) según la reivindicación 1, que tiene al menos una identidad de secuencia del 90% con la SEQ ID NO. 12.
3. Proteína alergénica del látex (ALP) según la reivindicación 2, que tiene al menos una identidad de secuencia del 95% con la SEQ ID NO. 12.
4. Proteína alergénica del látex (ALP) según la reivindicación 3, que tiene al menos una identidad de secuencia del 98% con la SEQ ID NO. 12.
5. Proteína alergénica del látex (ALP) según la reivindicación 4, que consiste en la secuencia de SEQ ID NO. 12.
6. Proteína alergénica del látex (ALP) según cualquier reivindicación anterior, que puede inducir una reacción alérgica en personas sensibilizadas a la proteína.
7. Proteína alergénica al látex (ALP) según cualquier reivindicación anterior, en la que la secuencia de ADN que codifica para la proteína es la SEQ ID NO. 11.
8. Proteína alergénica al látex (ALP) según cualquier reivindicación anterior, en la que la proteína tiene las siguientes propiedades:
a)
un peso molecular de aproximadamente 42.000 Dalton;
b)
un punto isoeléctrico de aproximadamente 4,7; y
c)
se une con IgE de pacientes sensibilizados a la proteína.
9. Proteína según cualquier reivindicación anterior, que comprende además una secuencia de aminoácidos adicional que contiene secuencias líder o secretoras, prosecuencias y secuencias que ayudan en la purificación, o una secuencia adicional para la estabilidad durante la producción recombinante.
10. Proteína según cualquier reivindicación anterior, que es una proteína de fusión.
11. Procedimiento para obtener una proteína según cualquier reivindicación anterior, en el que el procedimiento comprende las etapas siguientes:
a)
centrifugar el látex para obtener la fracción inferior;
b)
congelar - descongelar la fracción inferior para obtener el suero B del látex; y
c)
aislar y purificar la proteína del suero B obtenido en la etapa (b).
12. Procedimiento según la reivindicación 11, en el que el aislamiento y la purificación de la proteína se llevan a cabo mediante una serie de separaciones cromatográficas.
13. Procedimiento según la reivindicación 12, en el que la separación cromatográfica es cromatografía de intercambio iónico y filtración en gel.
14. Secuencia de ADN que codifica para la proteína según cualquiera de las reivindicaciones 1 - 10, en la que la secuencia de ADN es la de la SEQ ID NO. 11 o una variante que tiene al menos una identidad de secuencia del 95% con ella.
15. Método para la producción de una proteína, según cualquiera de las reivindicaciones 1 - 10, en forma recombinante, que comprende las etapas de:
a)
insertar el ADN que codifica para la proteína en un vector viral o célula huésped apropiados; e
b)
inducir el vector viral o la célula huésped para que expresen una proteína recombinante.
16. Método para la producción de una proteína en forma recombinante según la reivindicación 15, en el que el ADN que codifica para la proteína es la SEQ ID. NO. 11.
\newpage
17. Método para la producción de una proteína en forma recombinante según la reivindicación 15 ó 16, en el que la célula huésped es un microorganismo, una planta o un animal.
18. Método para la producción de una proteína en forma recombinante según la reivindicación 17, en la que el microorganismo es una bacteria o una levadura.
19. Método para la producción de una proteína en forma recombinante según la reivindicación 18, en el que el microorganismo es Escherichia coli.
20. Método para la producción de una proteína en forma recombinante según la reivindicación 15, en el que el inductor es preferiblemente isopropiltiogalactósido (IPTG) o cualquier otro inductor adecuado.
21. Proteína nativa según cualquiera de las reivindicaciones 1 - 10 para su uso en inmunoensayos e inmunoterapia.
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