ES2280335T3 - Metodo para medir la concentracion y composicion de biomasa, sonda y celda. - Google Patents
Metodo para medir la concentracion y composicion de biomasa, sonda y celda. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2280335T3 ES2280335T3 ES01500079T ES01500079T ES2280335T3 ES 2280335 T3 ES2280335 T3 ES 2280335T3 ES 01500079 T ES01500079 T ES 01500079T ES 01500079 T ES01500079 T ES 01500079T ES 2280335 T3 ES2280335 T3 ES 2280335T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- cells
- region
- cell
- biomass
- medium
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/483—Physical analysis of biological material
- G01N33/487—Physical analysis of biological material of liquid biological material
- G01N33/48707—Physical analysis of biological material of liquid biological material by electrical means
- G01N33/48735—Investigating suspensions of cells, e.g. measuring microbe concentration
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M41/00—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation
- C12M41/30—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of concentration
- C12M41/36—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of concentration of biomass, e.g. colony counters or by turbidity measurements
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N27/00—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
- G01N27/02—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating impedance
- G01N27/028—Circuits therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
- C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
- C02F2209/00—Controlling or monitoring parameters in water treatment
- C02F2209/36—Biological material, e.g. enzymes or ATP
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N27/00—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
- G01N27/02—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating impedance
- G01N27/04—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating impedance by investigating resistance
- G01N27/06—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating impedance by investigating resistance of a liquid
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Pathology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Immunology (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Sustainable Development (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Hematology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Electrochemistry (AREA)
- Investigating Or Analyzing Materials By The Use Of Electric Means (AREA)
- Investigating Or Analysing Materials By Optical Means (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Método para medir la concentración y composición de biomasa, cuyo método comprende la estimación de la concentración celular en el cultivo, mediante la medición de la impedancia eléctrica del medio en la biomasa a varias frecuencias, en un rango comprendido entre 1 kHz y 20 MHz, caracterizado porque se procede a la medición de la impedancia eléctrica, dentro del medio, en dos regiones del mismo, una carente de células y otra con células, ambas mediciones mediante conjuntos de electrodos idénticos, a los que se conectan dos etapas frontales del sistema de medida; obteniéndose de las mediciones en la región carentes de células información sobre las variaciones de la conductividad del medio extracelular (sigmae), en base a cuya información se corrige la estimación de la concentración celular del cultivo en la región con células.
Description
Método para medir la concentración y composición
de biomasa, sonda y celda.
La presente invención tiene por objeto unas
mejoras introducidas en la patente española 9700500, relativa a un
método y aparato para medir la concentración y composición de
biomasa, que permite medir bajas concentraciones de biomasa, así
como la concentración y composición de biomasa en fangos
activos.
Ya se conocen sistemas de medida de biomasa,
pero con problemas a la hora de medir a bajas concentraciones. Ello
es debido a que la medida que realizan es muy sensible a cambios de
temperatura y conductividad del medio donde se cultiva la biomasa.
A bajas concentraciones la señal es muy baja y al ser sensible a
ruido electrónico implica que no se pueden realizar medidas
correctamente.
Este problema se resuelve con el procedimiento
descrito en la patente ES 9700500, de los mismos solicitantes,
según la cual el procedimiento de medida se inicia con la generación
de la corriente eléctrica digitalmente, aunque también se puede
realizar analógicamente, y su inyección en el medio de cultivo a
través de dos electrodos. A través de otros dos electrodos se mide
la caída de tensión en el medio. Esto es una medida a cuatro hilos
que independiza en gran medida el resultado de las mediciones de
impedancia del contacto de los electrodos con el medio. Los
amplificadores de la señal van colocados muy cerca de la sonda para
evitar que capacidades parásitas afecten la señal, ya que se
utilizan en ciertos momentos frecuencias altas. La relación entre la
señal de tensión y la de corriente eléctrica es la impedancia
eléctrica. El proceso se repite para varias frecuencias de 1 kHz a
20 MHz. Las frecuencias son seleccionables y dicha selección depende
del tipo de cultivo biológico. La impedancia eléctrica se corrige
continuamente con la medida de temperatura y conductividad indicadas
anteriormente según coeficientes lineales
conocidos.
conocidos.
A partir de los datos obtenidos se pueden hacer
dos procesados de datos que llevan a la obtención de parámetros de
estimación de concentración de biomasa o células:
1) La relación entre la impedancia a baja
frecuencia y la impedancia a alta frecuencia es proporcional a la
concentración de células en el medio. Antes se habrá calibrado el
medidor con el tipo de células mencionado. La relación entre el
valor alto y el bajo es un buen estimador:
[1]E(%) =
\frac{|Z(BF)| - |Z(AF)|}{|Z(BF)|} \cdot
100
donde |Z(AF)| y
|Z(BF)| son los módulos de la impedancia medida a más alta y
más baja
frecuencia.
2) Las medidas de impedancia eléctrica
resultantes del barrido en frecuencia (como mínimo cuatro medidas de
1 kHz a 20 Mhz) se ajustan a una curva:
[2]Z(f)
= R_{\infty} + \frac{R_{0} - R_{\infty}}{1 + \left(j
\frac{f}{f_{c}}\right)^{1 -
\alpha}}
mediante un ajuste de mínimos
cuadrados. Los parámetros R_{0} y R\infty son las resistencias
que presenta el medio en corriente continua y a muy alta frecuencia
respectivamente, f_{c} es la frecuencia a la que se produce el
máximo de la parte imaginaria y que depende del tipo de
microorganismo; y \alpha es un parámetro que está relacionado con
la dispersión de dimensiones de las células y formas de los
microorganismos.
La impedancia medida se puede modelar como el
circuito que se presenta en la figura 1. Las relaciones entre los
parámetros del circuito (Re, resistencia del medio extracelular y
Ri, resistencia intracelular) con los del modelo matemático
(R_{0} y R\infty) son las siguientes:
R_{e} =
R_{0}
[3]R_{i} =
\frac{R_{0} \cdot R_{\infty}}{R_{0} -
R_{\infty}}
[4]E(%) =
\frac{R_{0} - R_{\infty}}{R_{0}} \cdot
100
\newpage
donde R_{0} y R\infty se
obtienen del ajuste de la ecuación donde se modela la variación de
impedancia con la frecuencia y antes presentada. La
relación:
[5]E(%) =
\frac{R_{0} - R_{\infty}}{R_{0}} \cdot
100
da un estimador de la concentración
de biomasa. Esta relación es la misma que la opción 1 del procesado
de datos pero con valores resultantes de un ajuste al
modelo.
En resumen, las dos opciones (fórmulas 1 y 5)
nos permiten obtener un buen estimador de biomasa con la relación
entre la impedancia a alta y baja frecuencia. Una de las opciones
utiliza directamente los valores medidos a alta y baja frecuencia y
otra dos valores resultantes de ajustar los datos de impedancia de
un barrido de frecuencia a un modelo.
Utilizando la segunda opción (fórmula 5), además
se obtienen dos parámetros adicionales (f_{c} y \alpha) que dan
información sobre las células en el sistema, pudiéndose determinar
el tipo de célula en cuestión, así como la dispersión de tamaños.
El sistema podría asimismo determinar si el cultivo estuviese
contaminado por células de un tipo diferente.
Los datos finales obtenidos por el medidor son
procesados informáticamente y puede presentarse al usuario de
manera continua la concentración de células en el medio.
Este procedimiento, sin embargo, tiene
limitaciones cuando se intenta llegar a concentraciones más bajas.
La principal limitación de los estimadores descritos es que suponen
que la conductividad del medio extracelular (\sigma_{e}) y la
del medio intracelular (\sigma_{i}) son similares y constantes.
Las moderadas variaciones que experimenta \sigma_{e} en un
cultivo no son críticas para la estimación de la densidad de biomasa
si ésta es elevada, pero pueden enmascarar la medida de
concentraciones débiles. En este caso hemos de introducir un
procedimiento adicional, que afecta a la estructura de la
medida.
La presente invención propone añadir un paso más
para poder llegar a concentraciones más bajas: este paso consiste
en medir el parámetro E (%) con la primera o la segunda opción
(fórmulas 1 o 5) comparando las medidas en un medio de referencia
sin células y en otro con células. Los medios usados (con células y
sin células) son idénticos excepto por la presencia de células.
La medida en el medio sin células proporciona
información sobre las variaciones de \sigma_{e} y permite
corregir el estimador E(%). Esto puede hacerse de dos formas:
- 1)
- Usando una expresión obtenida a partir del modelo teórico:
[6]E_{c}(%) =
E(%) \cdot 3 \frac{k}{2 + k} ; k =
\frac{\sigma_{i}}{\sigma_{e}}
\sigma_{i} puede considerarse
constante para un microorganismo
determinado.
- 2)
- Mediante una curva de calibración obtenida a partir de medidas experimentales variando artificialmente \sigma_{e}.
Si además la medida de referencia se toma con un
conjunto de electrodos igual en material, tamaño y geometría al que
se usa para la medida de densidad de biomasa, pueden cancelarse los
efectos relacionados con la no idealidad de los amplificadores,
cables de conexión y electrodos, así como su variación con la
temperatura.
La comparación y/o procesado de las medidas
hechas con ambas sondas puede hacerse de dos modos:
- 1)
- Medida individual en cada sonda y comparación por software. Cada medida individual puede llevarse a cabo usando una etapa frontal para cada sonda o bien multiplexando una única etapa frontal entre ambas sondas.
- 2)
- Medida diferencial directa de las tensiones de los electrodos detectores de ambas sondas mediante su conexión en forma de puente de Wheatstone adaptado a impedancias de 4 hilos (puente de Kelvin) o estructura similar.
Otro objeto de esta invención es cómo conseguir
que el medio sin células y el medio con células tengan la mismas
condiciones. Para ello se diseña una sonda que tiene dos regiones de
medida exactamente igual en dimensiones. La sonda se introduce en
el cultivo para la medida en línea de biomasa, es decir para la
medida directamente durante el proceso sin necesidad de extraer
ninguna muestra del cultivo. Una de las regiones se cubre con una
malla que no permita el paso de la célula de interés (diámetro de
agujero en malla menor a radio menor de la célula bajo medida) y la
otra queda en contacto directo con el cultivo con células. La
comparación se realizará entre la medida en ambas regiones.
Para medidas de concentraciones más bajas,
deberán realizarse medidas fuera de línea. Para ello: 1) Se tomará
una muestra del cultivo y se dividirá en dos muestras iguales que se
introducirán en sendos recipientes iguales con dos conjuntos de 4
electrodos iguales. 2) Uno de los recipientes se someterá a ondas
ultrasónicas para producir la lisis de las células en el cultivo.
También alternativamente la lisis se podrá llevar a cabo por
procedimiento químico, eléctrico o térmico. 3) Siendo este último
recipiente, el recipiente de referencia, se colocaran los dos
recipientes a la misma temperatura (por ejemplo, poniéndolos en
bloque a temperatura constante) y se procederá a la medida por
comparación de la concentración de células en el cultivo.
En cultivos donde las células se cultiven en
capas adheridas a una superficie, se realizará un montaje de dos
grupos de 4 electrodos idénticos en 2 regiones idénticas cada grupo,
pero con un grupo montado en una región que no sea biocompatible y
no permita el crecimiento de las células sobre la región donde miden
los electrodos.
Con el sistema descrito y los dos procedimientos
anteriores, la medida de concentraciones bajas de biomasa es
factible (por ejemplo, con Saccharomyces cerevisiae por
debajo de una concentración de 1x10^{6} células por
mililitro).
Las mejoras objeto de la presente invención
permiten también medir la biomasa presente en fangos activos. Los
fangos activos se cultivan en reactores biológicos en depuradoras
urbanas y en plantas de tratamiento de residuos. En estos reactores
biológicos, los fangos activos actúan depurando el agua presente en
el reactor.
La medida en línea de la biomasa presente en
fangos activos consistiría en la medida del parámetro E(%) con
respecto a su valor en el líquido libre de biomasa del reactor.
Utilizando una sonda adecuada, podría realizarse la medida
necesaria de comparación.
Una evolución de este procedimiento sería el
utilizado en la medida fuera de línea. Para estas medidas se
utiliza de manera corriente el estándar de medida
V-30, que consiste en medir la altura del fango
activo después de llenar una probeta hasta 1000 cc y tras esperar
30 minutos a que la sedimentación del fango activo tenga lugar. Se
propone una probeta que dispone de 4 electrodos en la parte del
sobrenadante y 4 electrodos en la parte inferior donde sedimenta el
fango activo.
El procedimiento de medida con dicha sonda es el
siguiente: 1) se introduce el líquido que será una muestra del
reactor donde se halle el fango activo a medir 2) se llena hasta los
1000 cc, 3) se mide la velocidad de sedimentación de la siguiente
manera: se mide repetidamente Z(f) en el electrodo inferior y
se analiza la evolución temporal del módulo de la impedancia a una
sola frecuencia o bien la del estimador E(%). Debido a la
sedimentación, dichas evoluciones temporales van a seguir un patrón
exponencial con saturación:
[7]y(t)
= y_{0} + A \cdot \left(1 -
e^{\tfrac{t}{\tau}}\right)
La constante de tiempo \tau proporciona
información sobre la velocidad de sedimentación del fango y del
tiempo de espera necesario para obtener una medida estable del
estimador de densidad de biomasa. Los parámetros y_{0} A, dan
información sobre las propiedades de medio agitado y sobre el medio
sedimentado, respectivamente.
4) Una vez se comprueba que la sedimentación
llega a su fin, o una vez se ha podido calcular \tau se produce
la medida de impedancia eléctrica por comparación entre parte
sobrenadante y parte inferior de fango, tal como se ha descrito
anteriormente, y además se mide la altura del medio sedimentado (h)
por ejemplo por medios ópticos, 5) Se obtiene un estimador final
E(%), junto con características de la biomasa bajo medida (f_{c}
y \alpha), 6) Estas medidas de f_{c} y \alpha dan idea del
tipo de población de células bajo estudio. El sistema podrá
comparar estos valores con otros de otros cultivos para poder dar
una estimación de la distribución genérica de población.
Este método puede considerarse como una variante
del descrito anteriormente, caracterizándose el que ahora
describimos por tener la zona libre de microorganismos en la parte
superior de la probeta aprovechando la fuerte sedimentación que
experimentan los sólidos en suspensión y la biomasa presente en los
fangos activos. La acumulación de biomasa en la proximidad del
electrodo inferior permite obtener una medida más alejada del nivel
de ruido del equipo que la que se obtendría sobre la suspensión
agitada. La relación entre la medida sobre el sedimento y la
densidad media de biomasa en dicha suspensión agitada se obtendrá
usando el nivel de sedimentación y una curva de calibración
obtenida experimentalmente.
Las características de la invención se
comprenderán mejor con el siguiente descripción, hecha con
referencia a los dibujos adjuntos, dada a título de ejemplo no
limitativo:
En los dibujos:
La figura 1 es un esquema de un circuito
equivalente al modelo eléctrico de un material biológico que se mide
en un medio de cultivo, con el procedimiento objeto de la patente
principal nº 9700500.
La figura 2 es un esquema de medición individual
en cada sonda.
La figura 3 es un esquema de medición
diferencial directa de las tensiones de los electrodos detectores de
ambas sondas.
La figura 4 muestra una sonda, parcialmente
seccionada, constituida para llevar a cabo el objeto de la
invención.
La figura 5 es un esquema de la medición de
concentraciones mediante recipientes independientes.
Las figuras 6 y 7 son una vista lateral y en
planta de una probeta para llevar a cabo el proceso de la
invención.
La figura 8 es un esquema de una variante de
ejecución en el sistema de medición de concentraciones.
La figura 9 es un diagrama comparativo de
valores característicos de biomasa perteneciente a diferentes
cultivos.
En la figura 1 se muestra un circuito
equivalente de lo que se mide en un medio de cultivo con el
procedimiento objeto de la patente principal 9700500. Cuando la
frecuencia de la corriente inyectada es muy alta, el condensador C
se comporta como si estuviera cortocircuitado y toda la corriente
circula por el medio intracelular con una resistencia eléctrica
R_{i} y por el medio extracelular con una resistencia R_{e}.
Cuando la frecuencia es muy baja, el condensador C se comporta como
si estuviera en circuito abierto y obliga a que toda la corriente
pase sólo por el medio extracelular, con una resistencia
R_{e}.
Tal y como se puso anteriormente, el objeto de
la invención es llegar a la medición de biomasas con concentraciones
más bajas que las conseguidas mediante la patente principal
9700500, para lo que se procede a la medición de la impedancia
eléctrica dentro del medio que se analiza en dos regiones del mismo,
una carente de células y otra con células. Estas mediciones se
llevan a cabo mediante sondas con conjuntos de electrodos
idénticos.
La comparación y/o procesado de las medidas
hechas con ambas sondas puede llevarse a cabo en la forma
representada en la figura 2, en la cual se representa dos regiones:
la región A contiene biomasa y la región B comparte el mismo medio
de cultivo que la región A, pero está libre de biomasa mediante
cualquiera de los procedimientos ya descritos, por ejemplo mediante
el uso de un filtro 1.
En ambos casos se inyecta corriente a las
muestras mediante un generador 2 a través de los electrodos 3 y 4.
La corriente que fluye a través de las muestras se mide en el
electrodo 4 mediante un circuito de medida de corriente 5, que nos
proporciona las medidas Im en la región A e Imr en la región de
referencia B.
La caída de potencial en ambas regiones se
detecta con otro par de electrodos 6 y 7 y se mide en un
amplificador diferencial 8, proporcionando las medias Vm para la
región A y Vmr para la región de referencia B.
La impedancia de la región A se determina a
partir de las medidas Vm e Im a distintas frecuencias y la
impedancia de la región B se determina con Vmr e Imr, a las mismas
frecuencias.
El amplificador diferencial 8, al igual que el
circuito de medida de corriente 5 puede ser doble, uno para cada
región, o bien pueden ser únicos y conmutarse su conexión a los
electrodos correspondientes para la medida de cada región.
La comparación y el procesado de las medidas
hechas con las dos sondas puede hacerse también mediante la medida
diferencial directa de las tensiones de los electrodos detectores de
ambas sondas, según se muestra en la figura 3.
En este caso se aplica la corriente del
generador 9 simultáneamente a las regiones 10 y 11 mediante su
conexión en puentes según el esquema de la figura. La corriente se
divide en dos ramas a través de las resistencias 12 que están
conectadas a un electrodo 13 de cada región. Se mide la caída entre
otro par de electrodos 14, uno conectado a cada región, mediante el
amplificador diferencial 15. Para que esta diferencia sea
representativa del comportamiento diferencial entre ambas regiones
se conectan los electrodos restantes 16 y 17 a un circuito de
control y medida de la corriente 18 que puede operar en dos modos:
a) ajustando y midiendo las corrientes drenadas por los electrodos
17, de forma que las tensiones en los electrodos 16 se mantengan a 0
voltios en ambas regiones; y b) haciendo que las dos corrientes de
los electrodos 17 sean iguales y midiendo entonces las tensiones
que aparecen en los electrodos 16 de ambas regiones.
Se pretende de este modo aumentar la
sensibilidad del sistema midiendo directamente las diferencias entre
las regiones A y B en lugar de medirlas por separado y hacer la
comparación por software. La región A es una región donde hay
células y la región B es una región idéntica, pero sin células, lo
cual puede lograrse, como en el caso de la figura 2, mediante un
filtro 19.
En la figura 4 se representa una sonda para la
medida de biomasa que consta de dos partes: base 20 vástago 21. En
la base se hallan dos zonas de medidas de iguales dimensiones,
regiones 22 y 23, pero de una característica diferente: en la
región 22 hay presencia de biomasa que se pretende medir, mientras
que en la región 23 una malla 24 evita la entrada de biomasa. En la
zona 25 se coloca una parte de la electrónica y los electrodos,
compuestos por dos conjuntos de cuatro electrodos, 26 y 27.
La sonda descrita se introduce en el cultivo
para la medida directamente durante el proceso, sin necesidad de
extraer ninguna muestra del cultivo. La región 23 va cubierta con la
malla 24 que no permite el paso de células de interés, para lo cual
el diámetro de agujero de la malla 24 será menor al radio menor de
la célula bajo medida. La región 22 quedará en contacto con el
cultivo con células. La comparación se realizará entre la medida en
las regiones 22 y 23.
Para medidas de concentraciones más bajas se
realizan medidas fuera de línea, es decir con extracción de muestra
de cultivo. Para ello puede seguirse el montaje representado en la
figura 5, que incluye dos muestras de biomasa 28 y 29 que están
situadas en dos recipientes idénticos 30 y 31, respectivamente, con
dos conjuntos de cuatro electrodos, también idénticos y en idéntica
colocación en los recipientes 30 y 31. Los dos recipientes se
colocan en un bloque termostatado 32. Las muestras 28 y 29 tienen
una característica diferente: una es el medio a medir con biomasa y
el otro es el medio a medir con células lisadas, es decir con
membranas no intactas. El recipiente 30 puede someterse a ondas
ultrasónicas, hasta producir la lisis de las células en el cultivo.
También alternativamente la lisis se podrá llevar a cabo por
procedimientos químicos, eléctricos o térmicos.
Como ya se ha señalado, la invención es
aplicable para medir la biomasa presente en fangos activos. Esta
medición puede llevarse a cabo fuera de línea, por ejemplo mediante
una probeta como la representada en las figuras 6 y 7, con una
capacidad de 1000 ml en el ejemplo representado en los dibujos y que
sirve para medir la velocidad de sedimentación y la biomasa
presente en una muestra de 1 litro de un reactor de fangos activos.
Esta probeta tiene dos juegos 33 y 34 de cuatro electrodos
conectados a la pared de la cubeta por piezas de plástico 35 y 36
que se atornillan y se hacen estancas mediante juntas. Los dos
conjuntos de electrodos se colocan de manera que uno mida en la
región 37, done solo habrá sobrenadante cuando el fango sedimente, y
otro mida en la región 38 donde el fango activo se acumulará.
La figura 8 es una vista de una superficie donde
se realiza medida de biomasa que se adhiere y crece en capas finas
sobre aquella (del orden de varias células de grosor). Sobre la
superficie se depositan dos conjuntos de capa fina de un metal
biocompatible para poder ser utilizados como electrodos. Estas capas
metálicas han de ser dos conjuntos de cuatro electrodos. La región
39 será la región formada por la superficie de los electrodos 40 y
sus alrededores. En esta región 39 crecerán las células sin ningún
problema. En la superficie alrededor del conjunto de electrodos 41
se realizará un tratamiento para que las células no crezcan (por
ejemplo se pondrá una sustancia no biocompatible o se le hará un
tratamiento a la superficie para que las células no se adhieran).
La región donde no crecerá la biomasa será la región 42. De este
modo dispondremos de dos regiones donde se pueda medir el medio con
o y sin biomasa.
En cualquiera de las realizaciones descritas,
por ejemplo mediante la probeta representada en las figuras 6 y 7,
una vez se comprueba que la sedimentación llega a su fin, se produce
la medida de impedancia eléctrica por comparación entre las
regiones 37 y 38 y se obtiene un estimador final E(%), junto con
características de la biomasa bajo medida (f_{c} y \alpha).
Estas medidas dan idea del tipo de población de células bajo
estudio. Este sistema podrá comparar estos valores con otros de
otros cultivos para dar una estimación de la distribución genérica
de la población, tal y como se representa en el diagrama de la
figura 9, en el que en abscisa se lleva la distribución de
población y en ordenada el porcentaje en población, incluyendo este
diagrama diferentes tipos de células, tales como por ejemplo algas
43 protozoos 44, levaduras 45 y bacterias 46.
Claims (13)
1. Método para medir la concentración y
composición de biomasa, cuyo método comprende la estimación de la
concentración celular en el cultivo, mediante la medición de la
impedancia eléctrica del medio en la biomasa a varias frecuencias,
en un rango comprendido entre 1 kHz y 20 MHz, caracterizado
porque se procede a la medición de la impedancia eléctrica, dentro
del medio, en dos regiones del mismo, una carente de células y otra
con células, ambas mediciones mediante conjuntos de electrodos
idénticos, a los que se conectan dos etapas frontales del sistema
de medida; obteniéndose de las mediciones en la región carentes de
células información sobre las variaciones de la conductividad del
medio extracelular (\sigma_{e}), en base a cuya información se
corrige la estimación de la concentración celular del cultivo en la
región con células.
2. Método según la reivindicación 1,
caracterizado porque la corrección de la estimación de la
concentración celular respecto a la variación de la conductividad
del medio extracelular \sigma_{e}, se consigue mediante la
expresión:
E_{c}(%) =
E(%) \cdot \frac{k}{2 + k} ; k =
\frac{\sigma_{i}}{\sigma_{e}}
en la que la conductividad del
medio intracelular (\sigma_{i}) puede considerarse constante
para un microorganismo
determinado.
3. Método según la reivindicación 1,
caracterizado porque la corrección de la estimación de la
concentración celular se consigue mediante una curva de calibración
obtenida a partir de medidas experimentales, variando
artificialmente la conductividad del medio extracelular
(\sigma_{e}).
4. Método según la reivindicación 1,
caracterizo porque la región carente de células y la región
con células se encuentran dentro de un mismo reactor o celda de
cultivo, estando la región carente de células separada del cultivo
por una malla con un paso suficientemente estrecho.
5. Método según la reivindicación 1,
caracterizo porque la separación entre las regiones carente
de células y con células se logra mediante sedimentación.
6. Método según la reivindicación 1,
caracterizado porque la obtención de la región carente de
células se logra mediante el depósito de una sustancia no
biocompatible en la región de referencia, o tratamiento que hace
que la región de referencia sea no biocompatible.
7. Método según la reivindicación 1,
caracterizado porque la región con células y la región
carente de células se obtienen a partir de una muestra de cultivo
que se divide en dos muestras iguales, las cuales se introducen en
recipientes iguales con conjuntos de electrodos iguales, destruyendo
las células de una de las muestras mediante la aplicación de
ultrasonidos, radiaciones ultravioletas, sustancias químicas,
tratamiento térmico (altas temperaturas) o la aplicación de señales
eléctricas de alta tensión.
8. Método según las reivindicaciones anteriores,
caracterizado porque para la comparación y/o procesado de
las medidas hechas en las dos regiones se lleva a cabo una medida
individual en cada región, utilizando una etapa frontal para cada
conjunto de electrodos o multiplexando una única etapa frontal entre
ambos conjuntos de electrodos de cada región.
9. Método según las reivindicaciones anteriores,
caracterizado porque para la comparación y/o procesado de
las medidas hechas con las sondas se lleva a cabo una medida
diferencia directa de las tensiones de los electrodos detectores de
ambas sondas, mediante su conexión en forma de puente de Wheatstone
o Kelvin.
10. Método según la reivindicación 5,
caracterizado porque la sedimentación se lleva a cabo en una
probeta, en la que se introduce un volumen prefijado de fango, se
mide su velocidad de sedimentación y se realiza, durante y una vez
finalizada la sedimentación, la medida de la impedancia eléctrica
por comparación entre las regiones del sobrenadante y zona de fango
activo, obteniéndose un estimador final E(%), junto con
características de la biomasa bajo medida, según los parámetros
f_{c}, y_{o,} \alpha y A, que dan información del tipo de
población de células bajo estudio, y donde f_{c} es la frecuencia
a la que se produce el máximo de la parte imaginaria y que depende
del tipo de microorganismo; y_{o} da información sobre las
propiedades de medio agitado; \alpha es un parámetro que está
relacionado con la dispersión de dimensiones de las células y
formas de los microorganismos y A da información sobre el medio
sedimentado.
11. Método según las reivindicaciones
anteriores, caracterizado porque de la medición de la
impedancia en las dos regiones citadas del medio se obtienen, junto
con el estimador E (%), características de la biomasa medida, según
los parámetros f_{c}, y_{o,} \alpha y A, que dan información
sobre el tipo de población de células bajo estudio, para su
comparación con valores de otros cultivos para dar una estimación de
la distribución genérica de la población.
12. Sonda para llevar a cabo la medida de
biomasa, caracterizada porque comprende dos regiones de
medida de dimensiones coincidentes, estando una de las regiones
cubierta con una malla que no permita el paso de las células que se
analizan, mientras que la otra región queda en contacto directo con
el cultivo con células.
13. Celda para el cultivo de células en
superficie, caracterizada porque comprende dos juegos de
electrodos de medida, siendo la región alrededor de uno de los
juegos biocompatible y la región alrededor del otro juego de
electrodos no biocompatible.
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
ES200000745A ES2183677B1 (es) | 1997-03-06 | 2000-03-27 | Mejoras en la patente n-* 9700500 relativa a un metodo y aparato para medir la concentracion y composicion de biomasa. |
ES200000745 | 2000-03-27 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2280335T3 true ES2280335T3 (es) | 2007-09-16 |
Family
ID=8492886
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES01500079T Expired - Lifetime ES2280335T3 (es) | 2000-03-27 | 2001-03-26 | Metodo para medir la concentracion y composicion de biomasa, sonda y celda. |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP1138758B1 (es) |
AT (1) | ATE351900T1 (es) |
DE (1) | DE60126006D1 (es) |
ES (1) | ES2280335T3 (es) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2011086216A1 (es) * | 2010-01-14 | 2011-07-21 | Consejo Superior De Investigaciones Científicas (Csic) | Dispositivo inductivo detector de presencia bacteriana |
Families Citing this family (23)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2835921B1 (fr) * | 2002-02-11 | 2005-06-24 | Gervais Danone Sa | Utilisation d'une sonde capacitive pour determiner la biomasse de bacteries lactiques |
US7732127B2 (en) | 2002-12-20 | 2010-06-08 | Acea Biosciences, Inc. | Dynamic monitoring of cell adhesion and spreading using the RT-CES system |
US8206903B2 (en) | 2002-12-20 | 2012-06-26 | Acea Biosciences | Device and method for electroporation-based delivery of molecules into cells and dynamic monitoring of cell responses |
US7470533B2 (en) | 2002-12-20 | 2008-12-30 | Acea Biosciences | Impedance based devices and methods for use in assays |
US8263375B2 (en) | 2002-12-20 | 2012-09-11 | Acea Biosciences | Dynamic monitoring of activation of G-protein coupled receptor (GPCR) and receptor tyrosine kinase (RTK) in living cells using real-time microelectronic cell sensing technology |
US7468255B2 (en) | 2002-12-20 | 2008-12-23 | Acea Biosciences | Method for assaying for natural killer, cytotoxic T-lymphocyte and neutrophil-mediated killing of target cells using real-time microelectronic cell sensing technology |
US7560269B2 (en) | 2002-12-20 | 2009-07-14 | Acea Biosciences, Inc. | Real time electronic cell sensing system and applications for cytotoxicity profiling and compound assays |
WO2004010103A2 (en) | 2002-07-20 | 2004-01-29 | Acea Biosciences, Inc. | Impedance based devices and methods for use in assays |
US10551371B2 (en) | 2003-11-10 | 2020-02-04 | Acea Biosciences, Inc. | System and method for monitoring cardiomyocyte beating, viability and morphology and for screening for pharmacological agents which may induce cardiotoxicity or modulate cardiomyocyte function |
US10215748B2 (en) | 2002-12-20 | 2019-02-26 | Acea Biosciences, Inc. | Using impedance-based cell response profiling to identify putative inhibitors for oncogene addicted targets or pathways |
US10539523B2 (en) | 2002-12-20 | 2020-01-21 | Acea Biosciences, Inc. | System and method for monitoring cardiomyocyte beating, viability, morphology, and electrophysiological properties |
US11346797B2 (en) | 2002-12-20 | 2022-05-31 | Agilent Technologies, Inc. | System and method for monitoring cardiomyocyte beating, viability, morphology and electrophysiological properties |
CA2550274A1 (en) | 2003-11-12 | 2005-05-26 | Acea Biosciences, Inc. | Real time electronic cell sensing systems and applications for cell-based assays |
FR2874264B1 (fr) * | 2004-08-16 | 2006-11-24 | Nanotec Solution Soc Civ Ile | Procede et dispositif de determination de biomasse dans un milieu, notamment d'un milieu contenant des cellules biologiques, et appareil de mesure mettant en oeuvre ce procede |
DE102006009885A1 (de) * | 2006-03-03 | 2007-09-06 | Fraunhofer-Gesellschaft zur Förderung der angewandten Forschung e.V. | Verfahren und Vorrichtung zur Bestimmung des Volumenanteils von elektrisch isolierenden partikulären Stoffen in einer Flüssigkeit |
US8041515B2 (en) | 2006-09-20 | 2011-10-18 | Acea Biosciences, Inc. | Use of impedance-based cytological profiling to classify cellular response profiles upon exposure to biologically active agents |
WO2009137440A1 (en) | 2008-05-05 | 2009-11-12 | Acea Biosciences, Inc. | Label-free monitoring of excitation-contraction coupling and excitable cells using impedance based systems with millisecond time resolution |
WO2009140796A1 (zh) * | 2008-05-23 | 2009-11-26 | 西门子公司 | 一种微粒浓度的检测装置和方法 |
WO2011047314A2 (en) * | 2009-10-16 | 2011-04-21 | Brigham Young University | Cell for broadband dielectric spectroscopy |
GB2479783A (en) * | 2010-04-23 | 2011-10-26 | Aber Instr Ltd | A bioreactor with an impedance or biomass measuring probe. |
WO2011146531A1 (en) | 2010-05-18 | 2011-11-24 | Acea Biosciences, Inc | Data analysis of impedance-based cardiomyocyte-beating signals as detected on real-time cell analysis (rtca) cardio instruments |
DE102016203576A1 (de) * | 2016-03-04 | 2017-09-07 | Hamilton Bonaduz Ag | Verfahren zur Kalibration von impedanzspektroskopischen Biomassesensoren und Verwendung einer Suspension zur Durchführung eines solchen Verfahrens |
CN110582569B (zh) | 2017-03-03 | 2024-04-02 | 安捷伦科技有限公司 | 用于iPSC和ESC衍生的心肌细胞的功能成熟的方法和系统 |
Family Cites Families (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5666749A (en) * | 1979-11-02 | 1981-06-05 | Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd | Measuring method of activity of animal/botanical tissue |
DE3871168D1 (de) * | 1987-02-04 | 1992-06-25 | Kobe Steel Ltd | Verfahren zur messung von biomasse. |
EP0319198A3 (en) * | 1987-12-01 | 1990-05-16 | University College Cardiff Consultants Ltd. | Microenvironmental sensor assemblies |
JPH0231148A (ja) * | 1988-07-20 | 1990-02-01 | Kobe Steel Ltd | 生物量の計測方法 |
CA2140892A1 (en) * | 1992-07-29 | 1994-02-17 | Patricia J. Malin | An improved system for electronically monitoring and recording cell cultures |
GB9018886D0 (en) * | 1990-08-30 | 1990-10-17 | Univ Wales | Non linear dielectric |
ES2143911B1 (es) * | 1997-03-06 | 2000-12-01 | Nte Sa | Metodo y aparato para medir la concentracion y composicion de biomasa. |
US5981268A (en) * | 1997-05-30 | 1999-11-09 | Board Of Trustees, Leland Stanford, Jr. University | Hybrid biosensors |
GB2329711B (en) * | 1997-09-27 | 2002-07-17 | Univ Wales Aberystwyth The | Capacitance measurement of a dielectric medium |
-
2001
- 2001-03-26 AT AT01500079T patent/ATE351900T1/de not_active IP Right Cessation
- 2001-03-26 EP EP01500079A patent/EP1138758B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2001-03-26 ES ES01500079T patent/ES2280335T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2001-03-26 DE DE60126006T patent/DE60126006D1/de not_active Expired - Lifetime
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2011086216A1 (es) * | 2010-01-14 | 2011-07-21 | Consejo Superior De Investigaciones Científicas (Csic) | Dispositivo inductivo detector de presencia bacteriana |
ES2363289A1 (es) * | 2010-01-14 | 2011-07-28 | Consejo Superior De Investigaciones Científicas (Csic) | Dispositivo inductivo detector de presencia. |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DE60126006D1 (de) | 2007-03-08 |
EP1138758A1 (en) | 2001-10-04 |
EP1138758B1 (en) | 2007-01-17 |
ATE351900T1 (de) | 2007-02-15 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2280335T3 (es) | Metodo para medir la concentracion y composicion de biomasa, sonda y celda. | |
AU2003216353B2 (en) | Cell viability detection using electrical measurements | |
Weisenseel et al. | Ionic currents as control mechanism in cytomorphogenesis | |
ES2341753T3 (es) | Electroporacion controlada. | |
Giaever et al. | Use of electric fields to monitor the dynamical aspect of cell behavior in tissue culture | |
ES2317844T3 (es) | Procedimiento y dispositivo para controlar la electroporacion. | |
ES2401235T3 (es) | Sistema y método para la caracterización de células | |
ES2340118B1 (es) | Dispositivo y procedimiento para medir concentracion de biomasa, y uso de un elemento electronico chip para medir dicha concentracion de biomasa. | |
CN101712925B (zh) | 检测单细胞和群细胞行为的多尺度集成细胞阻抗传感器 | |
US20060121610A1 (en) | Controlled electroporation and mass transfer across cell membranes | |
CN101233237A (zh) | 跨组织细胞膜的受控电穿孔和传质 | |
EP1300678A1 (en) | Extracellular recording integrated composite electrode | |
US20050237065A1 (en) | Compartment-arrayed probe for measuring extracellular electrical potential and method of measuring pharmacological effect using the same | |
Zieschang et al. | Changing proton concentrations at the surfaces of gravistimulated Phleum roots | |
CN106489463B (zh) | 一种模拟湖滨湿地土壤植物的方法 | |
EP1408105A1 (en) | Device and method for cultivation | |
Darwent et al. | Exploring the radial and longitudinal aeration of primary maize roots by means of Clark-type oxygen microelectrodes | |
Manning | A method for obtaining continuous records of dissolved oxygen in lake waters | |
CN101936930A (zh) | 一种测定苦草叶片中超氧阴离子自由基的方法 | |
Novák et al. | Orientation of Fucus egg polarity by electric ac and dc fields | |
Schmukler et al. | A transient impedance approach to nonfaradaic electrochemical kinetics at living cell membranes | |
CN105815003A (zh) | 一种基于微观动态分子流检测技术判定种子活力的方法 | |
Soga et al. | Population differentiation in the leaf shape and growth form of Cardamine scutata Thunb. in tidal and non‐tidal habitats | |
Deveau et al. | An improved method for constructing and selectively silanizing double-barreled, neutral liquid-carrier, ion-selective microelectrodes | |
Kuznetsov et al. | Magnetophoretic characterization of the plant gravity receptor |