ES2341753T3 - Electroporacion controlada. - Google Patents
Electroporacion controlada. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2341753T3 ES2341753T3 ES00948879T ES00948879T ES2341753T3 ES 2341753 T3 ES2341753 T3 ES 2341753T3 ES 00948879 T ES00948879 T ES 00948879T ES 00948879 T ES00948879 T ES 00948879T ES 2341753 T3 ES2341753 T3 ES 2341753T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- cell
- electroporation
- voltage
- biological
- cells
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/483—Physical analysis of biological material
- G01N33/487—Physical analysis of biological material of liquid biological material
- G01N33/48707—Physical analysis of biological material of liquid biological material by electrical means
- G01N33/48728—Investigating individual cells, e.g. by patch clamp, voltage clamp
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M35/00—Means for application of stress for stimulating the growth of microorganisms or the generation of fermentation or metabolic products; Means for electroporation or cell fusion
- C12M35/02—Electrical or electromagnetic means, e.g. for electroporation or for cell fusion
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Electromagnetism (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Pathology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Sustainable Development (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Hematology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Electrotherapy Devices (AREA)
- Selective Calling Equipment (AREA)
Abstract
Un método para realizar la electroporación de una célula biológica de una manera controlada, que comprende: (a) colocar una célula biológica en un medio eléctricamente conductor y aplicar un voltaje a través del medio; (b) detectar continuamente la proporción de la corriente eléctrica a través del medio frente al voltaje a través del medio; y (c) ajustar la magnitud del voltaje aplicado de acuerdo con cambios en la proporción de corriente frente a voltaje detectados para conseguir un grado de electroporación controlado de la célula biológica; en el que un aumento en la proporción de corriente frente a voltaje a través de una célula biológica se produce cuando la membrana celular se hace permeable debido a la formación de poros, daño celular u otros modos de formación de poros en la membrana.
Description
Electroporación controlada.
Esta invención se refiere al campo de la
electroporación y transferencia de masa a través de las membranas
celulares en general y al transporte de iones a través de una
membrana celular en particular.
\vskip1.000000\baselineskip
La electroporación es una técnica que se usa
para introducir especies químicas en células biológicas y se
realiza exponiendo las células a un potencial eléctrico que
atraviesa la membrana celular. Aunque su mecanismo no se comprende
por completo, se piensa que la electroporación implica la
degradación de la bicapa lipídica de la membrana celular
conduciendo a la formación de poros transitorios o permanentes en la
membrana que permite que las especies químicas entren en la célula
por difusión. El potencial eléctrico se aplica típicamente en
impulsos y tanto si la formación de poros es reversible como
irreversible depende de parámetros tales como la amplitud,
longitud, forma y velocidad de repetición de los impulsos, además
del tipo y etapa de desarrollo de la célula. Como un método de
introducción de especies químicas en las células, la electroporación
ofrece numerosas ventajas: es simple de usar; puede usarse para
tratar poblaciones enteras de células simultáneamente; puede usarse
para introducir esencialmente cualquier macromolécula en una célula;
puede usarse con una amplia diversidad de líneas celulares
primarias o establecidas y es particularmente eficaz con
determinadas líneas celulares; y puede usarse tanto en células
procariotas como eucariotas sin modificaciones o adaptaciones
importantes para el tipo de célula y origen. La electroporación se
usa actualmente en células en suspensión o en cultivo, así como en
tejidos y órganos.
La electroporación se realiza actualmente
colocando una o más células, en suspensión o en tejidos, entre dos
electrodos conectados a un generador que emite impulsos de un campo
eléctrico de alto voltaje. La formación de poros o permeabilización
de la membrana se produce en los polos de la célula que son los
sitios en las membranas celulares que orientan directamente los
electrodos y por tanto los sitios en los que el potencial de
transmembrana es mayor. Desgraciadamente, el grado de
permeabilización que se produce en la electroporación varía con el
tipo de célula y también varía entre células de una población
determinada. Además, como el procedimiento se realiza en grandes
poblaciones de células cuyas propiedades varían entre las células
individuales en la población, las condiciones de electroporación
únicamente pueden seleccionarse para tratar las cualidades promedio
de la población celular; el procedimiento practicado actualmente no
puede adaptarse a las características específicas de células
individuales. Un asunto particular es que en determinadas
condiciones, el potencial eléctrico es demasiado bajo para que una
membrana celular se haga permeable, mientras que en otras
condiciones la electroporación puede inducir la formación
irreversible de poros y la muerte celular. Un campo eléctrico
elevado, por ejemplo, puede producir así un aumento de la eficacia
de transfección en una parte de una población celular causando al
mismo tiempo la muerte celular en otra. Un problema adicional con
los métodos de electroporación conocidos es que la eficacia de la
transfección por electroporación a veces puede ser baja. En el caso
del ADN, por ejemplo, para conseguir la transformación eficaz de la
célula se necesita una gran cantidad de ADN en el medio
circundante.
Muchos de los problemas identificados
anteriormente son una consecuencia del hecho de que el proceso de
electroporación tanto en células individuales como en tejidos no
puede controlarse en tiempo real. Actualmente no existen medios
para determinar en tiempo real cuándo una célula entra en un estado
de electroporación. Como resultado, la consecuencia de un protocolo
de electroporación únicamente puede determinarse mediante las
consecuencias eventuales de los procesos de transferencia de masa y
su efecto en la célula. Esto sucede mucho tiempo después de haberse
producido la transferencia de masa bajo electroporación. La presente
invención considera estos y otros defectos de los métodos actuales
de electroporación.
También relevante para la presente invención son
las técnicas actuales para el estudio y control de transferencia de
masa a través de las membranas celulares. El conocimiento de la
transferencia de masa a través de las membranas celulares en la
naturaleza, tanto en células que funcionan normalmente como en
células enfermas, es valioso en el estudio de determinadas
enfermedades. Además, la capacidad para modificar y controlar la
transferencia de masa a través de las membranas celulares es una
herramienta útil para realizar investigación y terapia en la
biotecnología y la medicina moderna. La introducción o eliminación
de especies químicas tales como ADN o proteínas de la célula para
controlar la función, fisiología o comportamiento de la célula
proporcionan información valiosa con respecto a los procesos
fisiológicos normales y anómalos de la célula.
El método más común para efectuar y estudiar la
transferencia de masa a través de una membrana celular es poner la
célula en contacto con una solución que contiene el compuesto que va
a transportarse a través de la membrana, con o sin electroporación.
Este método de transferencia masivo no permite controlar o medir con
precisión la transferencia de masa a través de la membrana. La
composición de la disolución en sitios específicos no se conoce y
es variable. Además, cuando un campo eléctrico está presente, la
intensidad local del campo variará de un punto al otro.
Adicionalmente, la superficie de la célula que se expone a la
solución no está bien definida. Las áreas superficiales celulares
varían entre células en una determinada población y esto conduce a
diferencias significativas entre las células en la cantidad de
transferencia de masa. Debido a estas razones, la cantidad de
transferencia de masa conseguida por procesos de transferencia en
masa no es uniforme entre las células y la cantidad real
transferida para cualquier célula particular no puede
determinarse.
Hasta ahora los intentos realizados para superar
las limitaciones de las técnicas de transferencia en masa incluyen
técnicas para tratar células individuales que incluyen la inyección
mecánica (microinyección) de los compuestos químicos a través de la
membrana celular o la electroporación con microelectrodos. En las
técnicas de inyección, una aguja penetra en la membrana para
suministrar un agente químico, localizando la aplicación del agente
químico en una región pequeña cercana al punto de inyección. Esto
requiere manipular la célula con la mano humana, una técnica que es
difícil de realizar, laboriosa y no reproducible fácilmente. La
electroporación con microelectrodos experimenta estos problemas así
como la carencia de cualquier medio para detectar el inicio de
electroporación en una célula individual. La presente invención
también considera estos problemas.
El documento
US-A-4 946 793 describe un
dispositivo para modificar membranas vesiculares y que puede usarse
para modificar las mismas membranas usando el ajuste de impedancia.
Vesículas tales como células se someten a múltiples impulsos cuando
las células están presentes en una suspensión para modificar las
membranas celulares de una manera que hace que las células sean más
susceptibles a la fusión de materiales exógenos.
El documento
US-A-5 134 070 describe un
dispositivo y un método para cultivar células en un electrodo. Un
cultivo monocapa de células se somete a un campo eléctrico y las
células pueden estar presentes en un disco de cultivo que puede ser
eléctricamente conductor. Se usa un electrodo metálico para someter
a las células a un campo eléctrico intermitente o continuo que
ayuda transfectando las células con materiales exógenos.
De acuerdo con la presente invención se
proporciona un método para realizar la electroporación en una célula
biológica de una manera controlada, que comprende:
- (a)
- colocar una célula biológica en un medio eléctricamente conductor y aplicar un voltaje a través del medio;
- (b)
- detectar ininterrumpidamente la proporción de corriente eléctrica a través del medio frente al voltaje a través del medio; y
- (c)
- ajustar la magnitud del voltaje aplicado de acuerdo con cambios en la proporción de corriente frente al voltaje detectada para conseguir un grado de electroporación controlado de la célula biológica;
en el que se produce un aumento en la proporción
corriente frente al voltaje a través de una célula biológica cuando
la membrana celular se hace permeable debido a la formación de
poros, daño celular y otros modos de formación de poros en la
membrana celular.
En lo sucesivo en este documento se describen y
se ilustran dispositivos, sistemas y métodos que hacen posible
controlar exactamente la transferencia de material a través de una
membrana celular. La información obtenida del control de la
transferencia de material a través de una membrana celular puede
aplicarse directamente para deducir información con respecto a la
célula y/o su membrana. De manera alternativa, la información
obtenida del control puede aplicarse para controlar la
transferencia de material a través de la membrana celular tal como
controlando la aplicación de corriente eléctrica. Los dispositivos y
sistemas descritos e ilustrados hacen posible transferir moléculas
cargadas y en particular especies iónicas, a través de una membrana
celular y controlar exactamente que dicha transferencia suceda.
Cuando se realiza la electroporación usando estos dispositivos,
sistemas y métodos, la información obtenida del control de la
transferencia de las partículas cargadas a través de la membrana se
usa para controlar el proceso de transferencia de masa a través de
una membrana celular. Específicamente, el sistema se usa para
obtener mediciones y cambios de la impedancia eléctrica a través de
una membrana celular mientras que las propiedades de transferencia
de masa de la célula cambian por la aplicación de la corriente
eléctrica. Por tanto, la información obtenida en los cambios de
impedancia eléctrica producidos por la aplicación de corriente
eléctrica se usa, en tiempo real, para controlar la transferencia
de moléculas cargadas a través de una membrana celular.
Puede usarse un dispositivo o sistema dentro del
método para transferir una amplia diversidad de materiales dentro o
fuera de la célula biológica para obtener un resultado deseado. El
proceso puede realizarse en una célula individual, un grupo de
células, células dentro de un cultivo celular o dentro de un
organismo vivo, por ejemplo, células dentro de invertebrados y
vertebrados incluyen mamíferos así como plantas. Cuando el proceso
se realiza en una pluralidad de células (por ejemplo, un tejido)
puede usarse un proceso de formación de imágenes del tejido y
ajustar la corriente eléctrica en tiempo real basándose en imágenes.
Una tecnología de formación de imágenes que puede aplicarse es la
tomografía de impedancia eléctrica (EIT). Esta tecnología se basa
en diferencias en los atributos bioeléctricos dentro del cuerpo o un
organismo (por ejemplo, un ser humano) para producir una imagen. En
el método de la invención las imágenes EIT pueden usarse de la misma
manera que se usa la etapa de medición cuando el proceso se realiza
en una sola célula biológica. En esencia, la tecnología EIT hace
posible "observar" el efecto del flujo de corriente eléctrica
aumentado resultante de la electroporación proporcionando de esta
manera información que puede usarse para ajustar exactamente el
flujo de corriente eléctrica de manera que las membranas celulares
se permeabilizan pero no se desestabilicen permanentemente.
El método puede consistir en enviar una
corriente eléctrica entre un primer punto y un segundo punto
separado del primer punto por un medio eléctricamente conductor
comprendiendo tejido. El tejido puede estar presente dentro de un
organismo vivo tal como un vertebrado o invertebrado y
específicamente incluye mamíferos y seres humanos. Después de
enviar la corriente se crea una imagen del tejido en la que la
imagen se basa en un parámetro eléctrico tal como la impedancia
eléctrica del tejido. Usando la imagen como una guía se ajusta un
parámetro eléctrico para obtener un grado deseado de
electroporación de las células biológicas en el tejido. La
electroporación cambiará la impedancia eléctrica y el cambio puede
visualizarse en la imagen creada. El parámetro eléctrico ajustado
puede ser cualquier parámetro tal como corriente, voltaje o una
combinación de ambos. En una realización preferida se coloca un
material en el medio eléctricamente conductor tal como inyectándose
en el tejido y, basándose en la imagen, se realiza el ajuste de la
corriente, de tal manera que el material se transfiere dentro de
las células biológicas del tejido. La imagen creada es
preferiblemente una imagen de la impedancia creada a partir de
aportes de corriente conocidos y voltaje de aporte medido usando un
algoritmo de reconstrucción. La imagen de la impedancia puede
crearse a partir de un aporte de voltaje conocido, un aporte de
corriente medido o combinación del aporte de voltaje conocido y
aporte de corriente medido.
Para llevar a cabo este método un dispositivo
puede incluir un medio para crear una corriente eléctrica a través
de un medio eléctricamente conductor. El dispositivo adicionalmente
incluye un medio para analizar un primer parámetro eléctrico del
medio eléctricamente conductor para crear una imagen y un medio para
ajustar un segundo parámetro eléctrico basándose en la imagen para
obtener un grado de electroporación deseado de las células
biológicas en el medio eléctricamente conductor. El primer parámetro
eléctrico es preferiblemente la impedancia eléctrica y el segundo
parámetro eléctrico se selecciona preferiblemente del grupo
constituido por corriente, voltaje o una combinación de ambos.
Preferiblemente la corriente se crea mediante una pluralidad de
electrodos colocados alrededor de un área de tejido sobre el cual se
va a realizar la electroporación.
La presente invención surge en parte del
descubrimiento de que el inicio y el grado de electroporación en
una célula biológica puede correlacionarse con cambios en la
impedancia eléctrica (cuyo término se usa en este documento para
referirse a la proporción de corriente frente a voltaje) de la
célula biológica o de un medio conductor que incluye la célula
biológica. Se produce un aumento en la proporción de corriente
frente a voltaje a través de una célula biológica cuando la
membrana celular se hace permeable debido a la formación de poros o
debido al daño celular u otros modos de formación de poros en la
membrana celular. Del mismo modo, se produce una disminución en la
proporción de corriente frente a voltaje a través de un fluido
conductor que fluye cuando se extrae fluido de una célula biológica
en la región entre los electrodos en una célula eléctrica a través
de flujo. Por tanto controlando la impedancia de la célula biológica
o de una solución electrolítica en la que se suspende la célula,
puede detectarse el momento en el que se produce la formación de
poros en la membrana celular, así como el grado relativo de
permeabilidad de la membrana celular debido a la formación de
poros. Esta información puede usarse entonces para establecer que
una célula determinada ha experimentado en realidad electroporación
o para controlar el proceso de electroporación dirigiendo la
selección de los parámetros eléctricos del proceso por ejemplo la
magnitud del voltaje. Este descubrimiento también es útil en la
electroporación simultánea de multitud de células en un cultivo
celular o en vertebrados, invertebrados o plantas. Realizaciones
específicas aplican la invención en mamíferos incluyendo seres
humanos. El proceso proporciona una indicación directa de la
ocurrencia real de electroporación y una indicación del grado de
electroporación promediado de todas las células que se someten al
proceso. El descubrimiento también es útil en la electroporación de
tejido biológico (masas de células biológicas con membranas
contiguas) por las mismas razones.
Los beneficios de este proceso incluyen un
elevado nivel de control sobre el inicio y grado de electroporación,
junto con un conocimiento más detallado de la ocurrencia y grado de
permeabilidad creado en células individuales particulares o masas
de células. Cuando se aplica a células individuales o a una sucesión
de células individuales, este proceso garantiza que las células
individuales se han vuelto efectivamente permeables y se han
transformado efectivamente por la introducción de especies
químicas. El proceso también ofrece la capacidad de aumentar la
eficacia de electroporación evitando variaciones en el entorno
eléctrico que destruiría algunas células teniendo al mismo tiempo
un efecto insuficiente en otras.
La invención puede entenderse describiendo una
sola realización que implica el uso de un dispositivo o sistema
eléctrico en el cual puede colocarse una célula biológica y que
contiene una barrera que dirige el flujo de corriente eléctrica y
por tanto el flujo de iones a través de una trayectoria de flujo que
pasa a través de la célula biológica mientras que permite
sustancialmente que ninguna corriente eléctrica evite la célula
biológica. En algunas de estas realizaciones, la invención implica
el uso de un aparato que contiene dos cámaras retenedoras de
líquido separadas por una barrera que es sustancialmente impermeable
a una corriente eléctrica. La barrera contiene una abertura que es
más pequeña que la célula biológica por lo que la célula biológica
una vez alojada en la abertura tapará o cerrará la abertura. Para
conseguir la electroporación, la célula biológica se sujeta sobre
la abertura por medios mecánicos, químicos y/o bioquímicos,
preferiblemente de una manera reversible de modo que la célula
biológica pueda después extraerse sin dañar la célula biológica. Una
vez sujeta la célula biológica sobre la abertura, se impone un
voltaje entre las dos cámaras y a través de la célula biológica
alojada en la abertura. El paso de corriente entre las cámaras está
limitado por tanto a una trayectoria que pasa a través de la
abertura y por tanto a través de la célula biológica. Controlando la
relación corriente-voltaje en la célula eléctrica,
se detecta el inicio de la electroporación y se controla el grado
de formación de poros, para asegurar que se produce la
electroporación y para prevenir la excesiva formación de poros y la
muerte celular. Se facilita por tanto al usuario un conocimiento y
control muy preciso del estado de y del flujo a través de la
membrana celular biológica.
En otra serie de realizaciones, esta invención
es útil en el transporte difusivo de especies químicas dentro o
fuera de una célula biológica. En estas realizaciones, el aparato se
divide de nuevo en dos cámaras separadas por una barrera y la
célula biológica se aloja a través de una abertura en la barrera de
tal manera que el paso de líquido alrededor de la célula de una
cámara a la otra se evita sustancialmente. Una solución líquida de
la especie a introducir en la célula biológica se coloca en una o en
las dos cámaras. La concentración de la especie en la solución
difiere de la de la célula (mayor o menor, dependiendo de si se
pretende introducir o extraer la especie de la célula) o la
concentración en una cámara difiere de la de la otra cámara.
En métodos preferidos de la aplicación de esta
invención para el transporte difusivo, las soluciones en las dos
cámaras difieren de concentración de manera que la fuerza conductora
para el transporte difusivo es entre las mismas dos cámaras en
lugar de entre las cámaras y el interior de la célula biológica. El
seguimiento conocido y controlado de las concentraciones en cada
una de las dos cámaras sobre una base periódica o continua a medida
que avanza la difusión, junto con el conocimiento exacto de las
dimensiones de la abertura, permite al usuario observar y controlar
exactamente la proporción y cantidad de las especies que entran en
la célula. El tiempo de difusión puede controlarse imponiendo
cambios gradualmente en las concentraciones en cualquier cámara o
en ambas cámaras, imponiendo o eliminando por lo tanto el
diferencial de concentración. Una aplicación de interés particular
es la combinación de este tipo de transporte difusivo de una especie
química con la electroporación controlada como se describe en el
párrafo anterior.
Además de ser útil en conexión con la tecnología
de electroporación la presente invención puede proporcionar
información valiosa con respecto a una célula o grupo de células o
tejidos que contienen un grupo de células controlando la impedancia
eléctrica y por lo tanto proporcionando información con respecto a
la integridad de una membrana celular. Específicamente, las
mediciones se realizan con respecto al movimiento de partículas
cargadas a través de una membrana celular. Estas mediciones se
relacionan con la cantidad de corriente eléctrica necesaria para
realizar la difusión a través de una membrana celular. La
información obtenida puede analizarse directamente o compararse con
mediciones previas de un mismo tejido o mediciones realizadas en
tejidos enfermos o normales proporcionando por lo tanto una
indicación de la cantidad de cambio que se ha producido en el tejido
que se mide (basándose en mediciones anteriores de los mismos
tejidos) o la cantidad de varianza entre el tejido que se mide y el
tejido con membranas celulares deterioradas (por ejemplo células
enfermas) o una célula o tejido normal. El método se realiza de
una manera similar al usado para realizar la electroporación. Sin
embargo, no es necesario añadir materiales al medio que rodea a las
células. El dispositivo es similar porque se divide en dos partes
con un electrodo positivo en un lado y un electrodo negativo en el
otro lado separados por una barrera colocándose las células a lo
largo de las aberturas de la barrera de manera que se permite el
paso de partículas cargadas a través de la célula y a través de la
abertura en la barrera desde un electrodo al otro. La barrera
impide o elimina completamente el flujo de las partículas cargadas
excepto a través de las aberturas. La medición de la impedancia
eléctrica entre los electrodos hace posible distinguir entre células
con una membrana intacta y células con membranas deterioradas. Para
realizar las mediciones con mayor precisión es posible hacer
determinaciones con respecto a la integridad de una membrana celular
normal en relación con a una membrana celular deteriorada (por
ejemplo, enferma).
Cada una de las diversas realizaciones de esta
invención puede usarse con dos o más (es decir, una pluralidad de)
células biológicas simultáneamente o masas celulares tales como en
tejido que puede ser en un animal o planta durante el proceso. El
aparato descrito anteriormente puede adaptarse para usar con dos o
más células biológicas colocando la barrera de manera que la
corriente o transporte difusivo se limite a una trayectoria de
flujo que pasa a través de todas las células impidiendo al mismo
tiempo la circunvalación alrededor de las células. Una aplicación
adicional de los conceptos de esta invención es la electroporación
de las células biológicas suspendidas en un líquido fluido. Los
electrodos se colocan en posiciones fijas en el canal de flujo y se
impone un voltaje entre los electrodos mientras se controla la
corriente que pasa entre los electrodos. Las células biológicas que
entran en la región entre los electrodos disminuirán la corriente,
sirviendo la impedancia como una indicación de la presencia de una
o más células en la región y opcionalmente también como una señal
para iniciar la aplicación de un mayor voltaje suficiente para
conseguir la electroporación.
Una aplicación adicional del método de la
invención es la electroporación de células biológicas presentes
dentro de un tejido cuyo tejido puede estar presente dentro de un
organismo vivo tal como un mamífero. Los electrodos se colocan en
posiciones fijas dentro del tejido y se aplica al voltaje entre los
electrodos mientras se controla la corriente que pasa entre los
electrodos. Las células biológicas con membranas intactas en la
región entre los electrodos aumentará la impedancia eléctrica. Por
consiguiente, una medición de la impedancia eléctrica proporciona
una indicación de la presencia de una o más células en la región. La
electroporación disminuirá la cantidad de impedancia medida. Cuando
el proceso se realiza sobre un tejido entonces la medición de la
impedancia eléctrica es un promedio estadístico de las células
presentes entre los electrodos.
La metodología de electroporación de la
invención puede realizarse en tejidos en un organismo vivo usando
una tecnología de formación de imágenes que hace posible determinar
cuándo (y preferiblemente hasta que punto) se transforman las
membranas celulares para permitir el flujo de corriente eléctrica a
través de sus membranas. La tecnología de formación de imágenes
preferida es la tomografía de impedancia eléctrica (EIT) que
proporciona una imagen cambiada creada a partir de información en
diferencias en atributos bio-eléctricos del tejido
en el que se realiza la formación de imagen. Una imagen EIT típica
se adquiere inyectando corrientes eléctricas en el cuerpo y
midiendo los voltajes resultantes a través de una matriz de
electrodos. Una imagen de impedancia se produce por tanto a partir
de entradas de corriente conocida y los datos de voltaje medidos
usando un algoritmo de reconstrucción. La EIT es particularmente
apropiada para la implementación de la invención en tejidos porque
realmente mapea impedancias eléctricas. Por lo tanto, la región de
tejido que experimentará electroporación y en el cual,
consecuentemente, la impedancia eléctrica equivalente de las células
cambiará formará imágenes mediante EIT. La imagen se usa para
ajustar los parámetros eléctricos (por ejemplo, flujo de corriente
eléctrica) de una manera que permita que se produzca la
electroporación sin dañar las membranas celulares.
Entre las ventajas que ofrece esta invención con
respecto a la técnica anterior están la posibilidad de tratar
células individualmente y de ajustar las condiciones de tratamiento
a las necesidades de las células individuales. En realizaciones en
las que se aplica voltaje, el control de la impedancia aporta al
usuario conocer la presencia o ausencia de poros y mostrar el
progreso de la formación de poros y si la formación irreversible de
poros podría conducir a que se produzca la muerte celular.
Una ventaja del aparato de barrera y apertura es
la elevada sensibilidad de la proporción de señal frente a
interferencia en virtud de su restricción de la corriente con
respecto a la trayectoria del flujo de corriente que pasa a través
de la abertura.
Otra ventaja adicional es la capacidad del
aparato y del método para integrarse en un sistema automatizado en
el que la condición de cada célula se controla mediante
instrumentación y las células individuales se alojan en la abertura
y después se eliminan en momentos regidos por las condiciones
controladas.
Un aspecto de la invención es un método de
control de la electroporación de células biológicas en tiempo real
ajustando un parámetro eléctrico (por ejemplo, voltaje y/o
corriente) aplicado a un sistema basado en mediciones en tiempo
real de cambios en la corriente detectada.
Una característica de la invención es que pueden
aplicarse los conceptos generales para realizar la electroporación
en una célula, en células múltiples, en un tejido o en áreas de
tejidos en un animal vivo.
Una ventaja de la invención es que puede
obtenerse una cantidad exacta de electroporación y evitar el daño
celular controlando cualquier parámetro eléctrico determinado (por
ejemplo, corriente y/o voltaje) aplicado basándose en mediciones en
tiempo real de cambios en la corriente que relaciona la cantidad de
electroporación a obtener.
Otra ventaja de la invención es que puede usarse
para transfectar células con secuencias de nucleótidos sin
necesidad de integrar las secuencias en un vector viral para el
transporte, evitando de esta manera las especificidades celulares
de dichos vectores.
Aún otras ventajas son que el proceso puede
realizarse de manera relativamente rápida con un grado relativamente
bajo de experiencia técnica.
Otra ventaja adicional es que el proceso puede
usarse para transfectar células sin generar una respuesta
inmune.
Aún otra ventaja es que el proceso no se limita
por el tamaño del ADN (es decir, la longitud de las secuencias de
ADN) y la cantidad de ADN introducido en una célula puede
controlarse.
Otra característica de la invención es que
pueden usarse tecnologías de formación de imagen tales como la EIT
para detectar cambios en la impedancia en un volumen de células.
Otra característica de la invención es que puede
usar la EIT para mapear la impedancia de un área de tejido y por lo
tanto detectar cambios en la impedancia celular en un volumen de
células para ajustar cualquier parámetro eléctrico determinado (por
ejemplo, flujo de corriente y/o voltaje) para obtener la
electroporación deseada.
Estas y otras características, ventajas, y
objetos de la invención se entenderán mejor a partir de la siguiente
descripción.
La Fig. 1 es una sección transversal de un
dispositivo de microdifusión útil en la práctica de la presente
invención para infundir una célula biológica con una especie química
sin la ayuda de una corriente eléctrica para efectuar la
electroporación.
La Fig. 2 es una sección transversal de un
dispositivo de microelectroporación útil en la práctica de la
presente invención para conseguir la formación de poros en una
célula biológica y opcionalmente para infundir la célula con una
especie química con la ayuda de electroporación.
La Fig. 3a es una sección transversal
longitudinal de un dispositivo de electroporación de acuerdo con
esta invención, diseñado para una suspensión móvil de células
biológicas.
La Fig. 3b es una sección transversal del
dispositivo mostrado en la Fig. 3a.
La Fig. 4 es un gráfico de corriente frente a
voltaje o una serie de experimentos de electroporación realizados
usando un dispositivo de microelectroporación de estructura similar
a la de la Fig. 2.
Las Figs. 5a, 5b, 5c, 5d son gráficos de
corriente frente a voltaje en una serie de experimentos de
electroporación adicionales realizados usando un dispositivo de
microelectroporación similar al de la Fig. 2.
La Fig. 6a muestra el flujo de corriente
alrededor de las células antes de la electroporación y la Fig. 6b
muestra el flujo de corriente eléctrica a través de las células
después (durante) la electroporación.
La Fig. 7 muestra un sistema de tomografía de
impedancia eléctrica (EIT) típico para usar con la invención.
La Fig. 8a es una imagen del flujo de corriente
a través de las células con electroporación irreversible y la Fig.
8b es una imagen del flujo de corriente a través de las células con
electroporación reversible.
La Fig. 9a es una vista esquemática gráfica de
una retícula de elementos finitos mostrando una región circular de
tejido rodeada por electrodos (puntos oscuros) - - - el
dominio tiene dos impedancias diferentes.
La Fig. 10 muestra esquemáticamente la
configuración típica del electrodo, variables eléctricas medidas y
líneas equipotenciales en un dominio circular que tiene una
inclusión con una impedancia eléctrica diferente.
La Fig. 11 muestra una imagen real en la parte
superior izquierda mientras que en la parte inferior derecha se
muestra el mapeo de impedancia que muestra el mapeo de impedancia
diferencial.
Antes de describir los dispositivos y métodos
presentes incluyendo los métodos para realizar la electroporación,
ha de entenderse que esta invención no se limita a métodos y
dispositivos particulares descritos, y por tanto, por supuesto,
puede variar. También ha de entenderse que la terminología usada en
este documento es con el propósito de describir realizaciones
particulares únicamente y no pretende ser limitante, puesto que el
alcance de la presente invención se limitará únicamente mediante
las reivindicaciones adjuntas.
Cuando se proporciona un intervalo de valores,
se entiende que cada valor intermedio, hasta la décima unidad del
límite inferior a menos que el contexto indique claramente otra
cosa, entre los límites superior e inferior de este intervalo
también se describe específicamente. Cada intervalo más pequeño
entre cualquier valor indicado o valor intermedio en un intervalo
indicado y cualquier otro valor indicado o intermedio en ese
intervalo indicado se incluye dentro de la invención. Los límites
superior e inferior de estos intervalos más pequeños pueden
incluirse o excluirse independientemente en el intervalo y cada
intervalo en el que cualquiera, ninguno o ambos límites se incluyen
en los intervalos menores también está incluido dentro de la
invención, sometido a cualquier límite específicamente excluido en
el intervalo indicado. Cuando el intervalo indicado incluye uno o
los dos límites, los intervalos que excluyen cualquiera o ambos de
estos límites incluidos también se incluyen en la invención.
A menos que se defina otra cosa, todos los
términos técnicos y científicos usados en este documento tienen el
mismo significado que el comúnmente entendido por un experto en la
materia y a la que pertenece esta invención. Aunque pueden usarse
cualquiera de los métodos y materiales similares o equivalentes a
los descritos en este documento en la práctica o ensayo de la
presente invención, los métodos y materiales preferidos se describen
a continuación. Todas las publicaciones mencionadas en este
documento se incorporan en el mismo por referencia para divulgar y
describir los métodos y/o materiales en relación con los cuales se
citan las publicaciones.
Debe observarse que como se usa en este
documento y en las reivindicaciones adjuntas, las formas singulares
"un", "y", "el" incluye referentes plurales a menos
que el contexto indique claramente otra cosa. Por tanto, por
ejemplo, con respecto a "una célula biológica" incluye una
pluralidad de dichas células biológicas y con respecto a "un
electrodo" incluye con respecto a uno o más electrodos y
equivalentes de los mismos conocidos por los expertos en la
materia, y así sucesivamente.
Las publicaciones descritas en este documento se
proporcionan exclusivamente para su descripción anterior a la fecha
de presentación de la presente solicitud. Nada de lo indicado en
este documento debe interpretarse como una admisión de que la
presente invención no otorgue derecho a tal publicación precedente
en virtud de la invención anterior. Además, los datos de
publicación proporcionados podrán ser diferentes a los datos de
publicación actuales que podrán necesitarse para confirmarse de
manera independiente.
El término "electrodo" pretende significar
cualquier material conductor, preferiblemente un metal, más
preferiblemente un metal no corrosivo que se usa para establecer el
flujo de corriente eléctrica de un electrodo a otro electrodo.
"Eléctricamente conductor" significa para transmitir la
corriente eléctrica que puede referirse de alguna manera, por
ejemplo, a corriente o voltaje. Los electrodos se fabrican con
diversos materiales eléctricamente conductores diferentes y pueden
ser aleaciones o metales puros tales como cobre, oro, platino,
acero, plata, cloruro de plata y aleaciones de los mismos.
Adicionalmente, el electrodo puede estar compuesto por un no metal
que es eléctricamente conductor tal como un material basado en
silicona usado en relación con microcircuitos. Los electrodos
típicos usados en electroporación de tejidos preferiblemente tienen
forma de varilla, forma de placa plana o estructuras en forma de
aguja hueca. Los electrodos pueden usarse para suministrar corriente
eléctrica continuamente o para suministrar impulsos. Los electrodos
pueden ser específicos con respecto a la aplicación y pueden estar
formados por placas paralelas de acero inoxidable, cables
implantados, pares de agujas y matrices de aguja. Los expertos en
la materia diseñaran electrodos específicos que son particularmente
útiles en relación con los resultados deseados para obtener la
electroporación de acuerdo con la presente invención.
El término "tejido" significará una
pluralidad de células. Las células pueden ser del mismo tipo o de
diversos tipos diferentes. Estas células se organizan
preferiblemente para realizar una función específica. Los tejidos
incluyen tejidos presentes dentro de un organismo vivo así como
tejido extraído y puede referirse a situaciones in vivo o
in vitro. Adicionalmente, el tejido puede ser de cualquier
organismo incluyendo plantas y animales o un tejido desarrollado
usando ingeniería genética y por tanto ser de una fuente artificial.
En una realización el tejido es una pluralidad de células presentes
dentro de una zona distinta de un ser humano.
El término "dispositivo" y "dispositivo
de electroporación" se usa de manera intercambiable en este
documento para describir cualquier dispositivo que se divulga y se
describe en todo el documento. El dispositivo preferible incluye un
primer electrodo y un segundo electrodo en el que el primer y
segundo electrodo está conectado a una fuente de electricidad para
proporcionar a los electrodos carga positiva y negativa
respectivamente. El dispositivo preferiblemente también incluye un
medio para impedir el flujo de electricidad entre los dos
electrodos excepto a través de una o más aberturas específicas. Por
ejemplo el medio para impedir el flujo puede ser un material no
conductor que tiene una o más aberturas en su interior en el que las
aberturas se diseñan para sujetar específicamente una célula
biológica o un grupo de células biológicas. Por lo tanto la
corriente eléctrica debe fluir a través de la abertura y a través de
las células hacia el otro electrodo. El dispositivo también incluye
preferiblemente un medio para medir el flujo de corriente eléctrica
entre los electrodos. Los medios para medir pueden incluir un
voltímetro, amperímetro o cualquier dispositivo conocido por los
expertos en la materia que pueda medir el flujo de corriente
eléctrica de cualquier manera. Adicionalmente, el dispositivo
preferiblemente incluye un medio para ajustar la cantidad de flujo
de corriente eléctrica entre los electrodos. Por lo tanto el
voltaje, corriente u otro parámetro deseado de flujo de corriente
eléctrica pueden ajustarse específicamente basándose en el flujo
medido para obtener la electroporación óptima de la célula o
células colocadas entre los electrodos. Cuando se usa el término
"electroporación" no significa necesariamente que el
dispositivo se va a usar para transferir un compuesto tal como un
fármaco o una secuencia de ADN en una célula.
Las expresiones "fuente de energía",
"fuente de electricidad" y similares, se usan de manera
intercambiable en este documento para describir cualquier medio
para proporcionar energía eléctrica, corriente o voltaje creando
por lo tanto un flujo de corriente eléctrica entre los electrodos.
El dispositivo preferiblemente es capaz de proporcionar un modo y
amplitud controlados y puede proporcionar corriente DC (corriente
continua) o corriente AC (corriente alterna) constante,
proporcionar voltaje por impulso o voltaje continuo. Los
dispositivos preferidos son capaces de voltaje de decaimiento
exponencial, voltaje de rampa, corriente de rampa o cualquier otra
combinación. Por ejemplo, puede usarse un suministro energético en
combinación con una microplaca del tipo usado en relación con
microprocesadores y proporcionar una amplificación de energía de
alta velocidad en relación con un circuito de pared convencional
que proporciona corriente alterna a 110 voltios. La forma del
impulso puede generarse por un dispositivo microprocesador tal como
un desarrollo informático Toshiba en un programa LabView con
alimentación de salida a un amplificador de energía. Un amplio
intervalo de diferentes proveedores de energía comercialmente
disponibles puede proporcionar la función deseada. El potencial
eléctrico suministrado para la electroporación generalmente se
indica en términos de gradientes de voltaje que se crea en la
región afectada que se define en unidades de V/cm creadas en el
tejido. Los intervalos incluyen un intervalo de 10 V/cm a 100.000
V/cm o más preferiblemente 100 V/cm a 10.000 V/cm. Sin embargo, el
intervalo es específico de la amplificación y puede extenderse
fuera del intervalo para cualquier aplicación deseada. Los impulsos
eléctricos varían de microsegundos a milisegundos en general. Sin
embargo, dependiendo de los resultados deseados, pueden utilizarse
otros intervalos de impulsos.
Aunque esta invención se extiende a una
diversidad de estructuras, métodos y aplicaciones, esta parte de la
memoria descriptiva ilustrará determinadas estructuras y métodos
específicos con detalle, a partir de los cuales los conceptos de la
invención se pondrán de manifiesto en su totalidad.
Para llevar a cabo el método de la invención
puede usarse una amplia variedad de dispositivos y sistemas
diferentes. El dispositivo debe comprender primer electrodo que
tiene un primer voltaje y un segundo electrodo que tiene un segundo
voltaje. Además, el dispositivo comprenderá un medio para detectar
el flujo de las partículas cargadas entre los electrodos y un medio
para variar la corriente eléctrica entre los electrodos basándose en
los datos obtenidos por la detección de cambios en el flujo de las
partículas cargadas entre los electrodos. Preferiblemente el
dispositivo comprende además un componente que evita o reduce
sustancialmente el flujo de las partículas cargadas entre los
electrodos excepto el flujo que se produce a través de una o más
células biológicas colocadas entre el primer y segundo
electrodo.
Puede añadirse al medio cualquier material
deseado para transferir ese material dentro de una célula que está
presente en el medio. Además, la invención no incluye necesariamente
una etapa de proceso de inclusión de un material en el medio que
vaya a introducirse en el interior de una célula. El proceso puede
realizarse simplemente para determinar cambios que se producen en
una membrana celular basándose en la corriente eléctrica aplicada.
Esta información puede ser valiosa para determinar características
sobre la célula o grupos de células presentes en el medio y,
específicamente, puede usarse para comparar información con células
normales y enfermas o para determinar las diferencias entre células
previamente ensayadas y las que se van a ensayar actualmente.
La primera estructura que se describirá es una
célula de electroporación con un soporte interno para sujetar una
sola célula biológica y una barrera interna que restringe el flujo
de corriente eléctrica en la célula eléctrica a una trayectoria de
flujo que pasa a través de la célula biológica. Cuando no se aplica
voltaje, la estructura puede usarse sólo para transporte difusivo,
sin ayuda de voltaje inducido para la formación de poros.
La configuración de la barrera y las dos cámaras
en realizaciones que incluyen dos cámaras, no es crítica para la
invención y puede variar ampliamente sirviendo al mismo tiempo aún
para los propósitos y ventajas de la invención. Sin embargo, como
las células biológicas son de tamaño microscópico, el tipo de
aparato preferido para realizar esta invención en cada una de sus
formas variadas es uno en el que la estructura en su conjunto y/o
sus cámaras son del tamaño de microplacas electrónicas fabricadas
por técnicas de microfabricación tales como las usadas en la
fabricación de microplacas electrónicas. Además se prefiere que las
cámaras estén construidas como cámaras de paso de flujo para
permitir el paso de fluidos en flujo continuo, flujo intermitente o
flujo en la dirección del usuario y para permitir cambios de
concentraciones, presión y otras condiciones según sea necesario
para conseguir el control restringido sobre el paso de especies a
través de la membrana celular biológica. Por consiguiente, una
estructura preferida y un método de fabricación del aparato son los
que implican la formación del aparato en capas o plaquetas con
aberturas apropiadas que forman pasos de flujo cuando las capas o
plaquetas están unidas entre sí.
Las cámaras de paso de flujo ofrecen la ventaja
de permitir la entrada y extracción sucesiva de células individuales
de manera que pueden tratarse un gran número de células en
sucesión. Las cámaras de paso de flujo también permiten el
suministro de soluciones empobrecidas de soluto para mantener
constantemente cuando se desee los gradientes de concentración. Una
función adicional de las cámaras de paso de flujo es el aumento y
disminución de la presión, una función que es útil para diversos
propósitos como se describe a continuación.
El soporte para la célula biológica en esta
estructura puede ser cualquier estructura que sujete la célula
biológica en una posición fija y que permita el paso de corriente
eléctrica. El soporte más conveniente es una abertura en la
barrera. La sujeción de una célula biológica sobre la abertura sirve
para cerrar, sellar o tapar la abertura, dirigiendo de esta manera
el paso de la corriente eléctrica, el transporte difusivo o ambos,
a través de la célula y eliminando o minimizando la filtración
alrededor de la célula. Un medio mecánico conveniente para
conseguir esto es imponer un diferencial de presión a través de la
abertura en una dirección que presionará la célula contra la
abertura. El diámetro de la abertura será menor que el de la célula
y después de introducirse en el aparato la célula pasará hacia el
interior de una de la dos cámaras. Aumentando la presión en la
cámara en la que se encuentra la célula, o disminuyendo la presión
en la otra cámara, la célula quedará presionada contra la abertura,
cerrándola. Una vez completado el procedimiento, la célula se libera
fácilmente de la abertura igualando las presiones en las dos
cámaras o invirtiendo el diferencial de manera que la presión más
elevada está en la cámara distinta a la cámara en la que se ha
introducido la célula. El flujo de líquido en la cámara en la que
se ha introducido la célula retirará entonces la célula de la
abertura, exponiendo la abertura para otra célula.
Un método alternativo para sellar la abertura
con la célula es usando un recubrimiento en la superficie de la
barrera o por encima del borde de la abertura, de una sustancia que
se una a la membrana celular. Como las membranas celulares
biológicas están cargadas negativamente, el recubrimiento puede ser
un sustrato que lleve una carga positiva, tal como polilisina,
poliarginina o polihistidina. La muestra biológica puede dirigirse
a la abertura por un diferencial de presión a través de la abertura
y sujetarse mediante el recubrimiento. Una vez completado el
procedimiento, la célula puede liberarse del recubrimiento aumentado
momentáneamente el caudal del líquido en la cámara en el lado de la
abertura de la célula o imponiendo un diferencial de presión
inverso a través de la abertura para sacar a la célula de la
abertura.
El tamaño de la abertura no es crítico para la
invención siempre que la abertura exponga un área superficial
suficiente en la membrana celular para conseguir el grado deseado de
transferencia de masa o el paso de una corriente eléctrica o ambos,
dentro de un período de tiempo controlable y económicamente
razonable. El tamaño óptimo variará por tanto con las células
particulares a tratar o a estudiar. En general, la abertura es
preferiblemente circular o aproximadamente de forma circular y
dependiendo del tamaño de la célula, preferiblemente el diámetro
varía de aproximadamente 1 micrómetro a aproximadamente 100
micrómetros, más preferiblemente de aproximadamente 1 micrómetro a
aproximadamente 50 micrómetros y más preferiblemente de
aproximadamente 2 micrómetros a aproximadamente 20 micrómetros. La
barrera en la que se forma el orificio y que separa las dos cámaras
preferiblemente es de un material dieléctrico rígido que es
impermeable tanto al agua como a los solutos y que mantendrá un
diferencial de presión suficiente para sujetar a una célula contra
la abertura. Para dispositivos que se fabrican por técnicas de
microfabricación, un material conveniente para la barrera es el
nitruro de silicio. Otros materiales que servirán igualmente bien
serán fácilmente evidentes para los expertos en la materia.
Una característica adicional de las
realizaciones preferidas de esta invención es el uso de aparatos
fabricados con materiales transparentes. Esto permite al usuario
observar el interior de la célula y los procesos de micro difusión
y microelectroporación a través de un microscopio a medida que se
producen.
Las técnicas de electroporación de la presente
invención son útiles en relación con el tratamiento, análisis o
diagnóstico de un organismo incluyendo mamíferos y seres humanos que
necesitan tratamiento. En general, el tratamiento puede realizarse
inyectando un material continuamente o en un bolo rápido en una zona
del tejido a tratar. Los electrodos se colocan adyacentes al tejido
y la corriente o voltaje se aplica y se mide continuamente para
determinar cuando se obtiene el nivel deseado de electroporación
haciendo posible por lo tanto transferir el material inyectado
dentro de las células del tejido a tratar.
El compuesto farmacéuticamente activo que se
inyecta puede ser un fármaco convencional normalmente denominado
molécula pequeña o puede ser una proteína o una secuencia de
nucleótidos que codifica una proteína. Además, la composición
inyectada en el tejido puede administrarse antes, durante o incluso
después de aplicar los impulsos eléctricos del dispositivo de
electroporación. El objetivo global del proceso es proporcionar la
abertura de poros mediante electroporación y por lo tanto introducir
los compuestos en las células cuyos compuestos normalmente no
penetrarían en la membrana celular. Por ejemplo, es posible
introducir bleomicina o diversas construcciones de genes y/o
plásmidos en las células del tejido a tratar. Esto se consigue
generando potenciales y corrientes eléctricos a través de las
células dentro del tejido a tratar en el que los potenciales
eléctricos se generan como impulsos eléctricos. Para generar los
impulsos, es preferible utilizar una pluralidad de electrodos a
diferencia de un sólo electrodo.
Un ejemplo de un diseño de electrodo útil es uno
que comprende dos tiras planas de acero de 10 mm de anchura y 0,6
mm de espesor. Los electrodos se separan entre sí a una distancia
fija de aproximadamente 6 a 7 mm. Un segundo diseño de electrodo
comprende de dos a, como mucho, ocho soportes planos de acero de 20
mm. Los electrodos están conectados a un electro impulsor PS 15.
Los impulsos pueden suministrarse colocando los electrodos en la
piel con el lado plano en la piel o colocando los electrodos
alrededor de los tumores en la piel. El contacto con la piel puede
conseguirse usando materiales convencionalmente usados en relación
con electrocardiógrafos de rendimiento tal como geles o soluciones
salinas electro conductoras. Para realizar el procedimiento un
paciente puede recibir un impulso o una pluralidad de impulsos y
preferiblemente recibe una pluralidad de impulsos. Pueden diseñarse
diferentes configuraciones para realizar la electroporación del
tejido dentro de un organismo tal como dentro del cuerpo de un ser
humano, es decir sin aplicar electrodos fuera en la piel.
Dichas configuraciones pueden comprender
matrices de agujas que comprenden una pluralidad de electrodos de
aguja. Como un ejemplo los electrodos positivos y negativos pueden
comprender cada uno seis o más agujas que tienen de 0,5 mm de
diámetro y compuestas de acero inoxidable de 1 cm de longitud
conectadas a un generador de impulsos BTX 820. Los electrodos
pueden insertarse en paralelo en el tejido alrededor de las células
afectadas por electroporación. Los electrodos pueden colocarse en
círculos de diversos diámetros que varían de 5 mm a 1 cm. Puede
usarse la proporción de electrodo voltaje en el intervalo de
aproximadamente 1300 V/cm. Aunque puede suministrarse cualquier
número de impulsos es preferible comenzar el proceso suministrando
aproximadamente seis impulsos en intervalos de un segundo con una
anchura de impulso de 100 microsegundos. La presente invención es
particularmente deseable en relación con la electroporación de
tejidos ya que el método puede determinar si se produce la
electroporación sin usar colorantes ni marcadores para rastrear el
material que se introduce dentro de la célula.
Como se muestra en las Fig. 6a y 6b la corriente
eléctrica puede fluir alrededor de las células (Fig. 6a) o a través
de las células (Fig. 6b) después de haberse producido la
electroporación. El proceso de la invención hace posible determinar
el punto en el que ocurre la transición entre lo que se muestra en
la Fig. 6a y lo que ocurre en la Fig. 6b y adicionalmente hace
posible impedir la ocurrencia de efectos irreversibles en las
membranas celulares. Como se muestra en la Fig. 8a de la
electroporación puede realizarse hasta el punto de dañar las
membranas celulares dando como resultado por lo tanto a efectos
irreversibles en las células. En general, esto no se desea. Sin
embargo, modulando la cantidad de corriente eléctrica es posible
obtener electroporación sin producir daños significativos en las
membranas celulares obteniendo por lo tanto una situación reversible
como se muestra en la Fig. 8b.
Como se muestra en las Fig. 6a y 6b la
impedancia eléctrica creada en las células y la presente invención
se refieren a determinar con precisión el grado de esta impedancia
eléctrica y a ajustar la corriente para obtener los resultados
deseados con respecto a la electroporación. Sin embargo, cuando una
gran cantidad de células están implicadas tal como en un tejido
puede ser deseable usar otros mecanismos para medir otros efectos
de la corriente creando electroporación en una pluralidad de células
en el tejido. La impedancia eléctrica es una medición de cómo la
electricidad viaja a través de un material proporcionado. Cada
material tiene una impedancia eléctrica diferente determinada por
su composición eléctrica. Algunos materiales tienen elevada
impedancia eléctrica y otros tienen una baja impedancia eléctrica.
El tejido mamario que es maligno (canceroso) tiene una impedancia
eléctrica mucho más baja (electricidad conducida mucho mejor) que la
del tejido normal o un tumor benigno (no canceroso).
La impedancia es una medición del grado hasta el
cual un circuito eléctrico resiste el flujo de corriente eléctrica
cuando se aplica voltaje a través de sus terminales. La impedancia
expresada en OHMS, es la proporción de voltaje aplicado a través de
un par de terminales frente al flujo de corriente entre estas
terminales. En circuitos de corriente continua (DC), la impedancia
se corresponde con la resistencia. En circuitos de corriente
alterna (AC), la impedancia es una función de resistencia,
inductancia y capacitancia. Los inductores y condensadores acumulan
voltajes que se oponen al flujo de corriente. Esta oposición se
denomina reactancia, y debe combinarse con resistencia para definir
la impedancia. La resistencia producida por la inductancia es
proporcional a la frecuencia de la corriente alterna, mientras que
la reactancia producida por capacitancia es inversamente
proporcional a la frecuencia.
Los conceptos básicos descritos anteriormente se
utilizan en los aspectos básicos de la presente invención y también
son aplicables para describir la formación de imágenes por
impedancia eléctrica denominada también tomografía de impedancia
eléctrica (EIT). Debe observarse que puede usarse una diversidad de
terminologías diferentes para describir la misma técnica y aquellas
que incluyen la tomografía del potencial aplicado (APT). Estas
tecnologías de formación de imágenes hacen posible producir imágenes
basándose en la variación espacial de las propiedades eléctricas de
los tejidos biológicos. Técnicas tales como APT e EIT podrían
utilizarse para realizar la invención en relación a tejidos. La
base física de la tomografía del potencial aplicado (APT) se basa
en la medición de una distribución de potencial en una superficie de
un material biológico, cuando se aplica una corriente eléctrica
entre dos puntos de su superficie. Otros investigadores han
utilizado la técnica y se han referido a ella como formación de
imágenes de impedancia eléctrica, formación de imágenes por
conductividad, tomografía de impedancia eléctrica, etc. En este
documento, la tecnología se denomina generalmente EIT o tomografía
de impedancia eléctrica. Por consiguiente, en el resto de la
descripción la tecnología se denominará únicamente tecnología EIT y
en el Ejemplo 3 más adelante se muestra un ejemplo de la misma.
Los expertos en la materia contemplarán
diferentes medios de determinación de cambios en la corriente
eléctrica después de leer esta descripción. Un método preferido
para determinar dichos cambios cuando se realiza la invención en
tejido es usar tecnología de formación de imágenes y específicamente
tomografía de impedancia eléctrica (EIT) que controla y analiza
diferencias en los atributos bio-eléctricos de la
muestra que se va a controlar para producir una imagen. La
tecnología EIT puede usarse en relación a la presente invención
creando una imagen EIT y usando esta imagen para ajustar el flujo
de corriente para obtener los resultados deseados. Específicamente,
la imagen EIT se crea inyectando corrientes eléctricas en el tejido
y midiendo los voltajes resultantes a través de una matriz de
electrodo. Esto hace posible producir una imagen de impedancia a
partir de entradas de corriente conocida y la medición de datos de
voltaje de entrada usando un algoritmo de reconstrucción. El uso de
tecnología EIT es particularmente deseado con respecto a la presente
invención aplicada al tejido ya que esta formación de imágenes EIT
proporciona un mapa de impedancias eléctricas. El mapa de
impedancias eléctricas permite esencialmente al usuario visualizar
cuándo está comenzando la electroporación. Cuando la
electroporación comienza el usuario puede estabilizar la cantidad de
corriente que se está aplicando y por lo tanto evitar la aplicación
de demasiada corriente que produce un daño irreversible a las
células como se muestra en la Fig. 8a. La tecnología EIT hace
posible visualizar la zona de tejido que experimenta electroporación
basándose en cambios de impedancia eléctrica equivalentes de las
células dentro del tejido a controlar.
La Fig. 7 muestra una vista conceptual de un
sistema EIT que se usa para realizar un proceso de la presente
invención en tejido (71). Una fuente de corriente (72) se controla
mediante un generador de señal (73) y se usa para dirigir una
corriente eléctrica dentro de la muestra de tejido (71) a través de
un par de multiplexores controlados por ordenador (74) y (75) que
conducen a un amplificador diferencial (76) y a un desmodulador
(77). Las señales medidas se comparan con las originales para
registrar los datos de amplitud y fase para construir la imagen
posterior. El ordenador de control (78) selecciona típicamente que
par de electrodos inyectará corriente leyendo al mismo tiempo los
voltajes del resto de electrodos. Existen varias configuraciones
hardware diferentes que pueden utilizarse en relación con la
presente invención.
Como se muestra en la Fig. 7 el sistema EIT se
refiere generalmente a un sistema en serie debido a su fuente de
corriente sencilla y amplificador de medición. Se han utilizado
diversos grados de paralelismo (fuentes de corriente múltiple y
amplificadores de medición de voltaje) en otros sistemas aumentando
por lo tanto la flexibilidad y velocidad del sistema de inyección
de corriente.
Los algoritmos de reconstrucción se usan para
obtener el voltaje medido en una superficie externa de una región
de interés en el cuerpo (los datos de la corriente inyectada) y la
información relacionada con la geometría del electrodo y producir
una imagen que representa la distribución del tejido de impedancia
de tejido espacial dentro de la región del tejido (71). Existe una
diversidad de métodos que pueden usarse para crear una imagen de
impedancia. La formación de imágenes estática es la producción de
una distribución de impedancia absoluta. Cook, R. D. et al.
ACT3: a high speed, high precision electrical impedance tomography.
IEEE, Trans. Biomed. Eng. 41, 713-22 (1994). Los
métodos de formación de imagen diferenciales producen distribuciones
basándose en diferencias entre dos conjuntos de datos. Barber, D.
C. in Avances in Biomed Eng. (ed. En Benek in, W., Thevenin, V.)
165-173 (IOS Press, Amsterdam, 1995). Este tipo de
técnica proporciona una imagen de cómo ha cambiado la distribución
de impedancia a partir de una medición inicial. La formación
imágenes de impedancia multi frecuencia se aprovecha de la
dependencia de frecuencia de la impedancia del tejido. Grofhths, H.
The importance of phase measurement in electrical impedance
tomography. Physics in Medicine and Biololgy 32,
1435-1444 (1987). Usando la técnica diferencial
anterior pueden producirse imágenes cuasi-estáticas
con una imagen de baja frecuencia usada como medida inicial. Por
consiguiente el sistema hace posible producir un tipo de formación
de imágenes estáticas sin las dificultades de la formación de
imágenes estáticas verdaderas.
Para proporcionar la reconstrucción y por tanto
la imagen, se usó un modelo matemático de cómo se comporta la
corriente en el tejido. En general mediante la ecuación de Poisson
bien conocida se proporciona un modelo que gobierna el flujo de
corriente en EIT. El tipo de análisis matemático que se necesita en
la reconstrucción de imágenes EIT así como en muchas otras
tecnologías médicas de formación de imágenes, pertenece a una clase
general conocida como problemas de valores límite. Existen varios
métodos diferentes para resolver problemas de valores límite. Sin
embargo, todos estos problemas pueden clasificarse en técnicas
iterativas analíticas o numéricas y los expertos en la materia
pueden aplicar dichas técnicas para llevar a cabo la presente
invención.
La inmensa mayoría de los algoritmos de
reconstrucción actualmente en uso emplean soluciones numéricas
iterativas frente a la ecuación de Poisson. La mayoría de las
estrategias numéricas iterativas intentan resolver el problema de
valor límite calculando una distribución de impedancia en el tejido
y resolviendo reiteradamente el problema anterior (detectando el
voltaje y densidades de corriente dada una distribución de
impedancia) y ajustando la impedancia calculada
correspondientemente hasta que el voltaje y las corrientes medidas
se ajusten a las calculadas. El problema anterior debe resolverse
numéricamente y se realiza habitualmente usando esquemas de
elementos finitos o de diferencias finitas. El FEM (método de los
elementos finitos) es un método popular y muy eficaz para
solucionar los problemas anteriores y debido a esto, tiende a
dominar soluciones de diseño a través de muchos campos
interdisciplinarios.
En la Fig. 1 se muestra un ejemplo de un aparato
de microdifusión de acuerdo con esta invención para una sola célula
biológica, para transportar materiales a través de la membrana sin
la aplicación de un campo eléctrico. Los componentes de este
aparato, desde abajo hacia arriba, son una base acrílica (11), una
capa intermedia de silicio (12) (de 1 micrómetro de espesor) con
una parte (13) esculpida para definir los límites laterales de la
parte inferior de las dos cámaras de líquido, una capa de nitruro de
silicio (14) que sirve como la barrera entre las dos cámaras, una
arandela de silicio (15) que define los límites laterales de la
cámara de líquido superior (16) y una placa de cubierta de vidrio
(17). Un orificio (18) en la barrera de nitruro de silicio sirve
como la abertura y una célula o masa de células contiguas tal como
tejido (19) se muestra cubriendo el orificio. Los canales se
extienden a través de la base acrílica para servir como canales de
entrada y de salida para los líquidos que pasan a través de las
cámaras superior e inferior como se muestra por las flechas en la
Figura.
Cuando la presión en la cámara superior (16) es
superior a la de la cámara inferior (13), la célula se mantendrá en
posición sobre el orificio, sirviendo como un tapón para separar los
líquidos en las dos cámaras entre sí. Cuando la composición de las
soluciones en las dos cámaras difiere de la del interior de la
célula, se produce la transferencia de masa a través de la membrana
celular entre las cámaras y la célula. Cuando la composición de la
solución en una cámara difiere de la de la otra, la transferencia de
masa se produce a través de la célula de una cámara a la otra.
Controlando con precisión las composiciones de las soluciones en las
dos cámaras, puede controlarse con precisión la proporción y la
dirección de la transferencia masa dentro de la célula. Como se
conoce el diámetro de la abertura (18), puede determinarse con
precisión la transferencia de masa que se produce a través de la
abertura.
Las numerosas aplicaciones de este dispositivo
de microdifusión serán fácilmente aparentes. Por ejemplo, el
dispositivo puede usarse para infundir una célula con un
crioconservante tal como glicerol, llenando la cámara superior (16)
con solución salina fisiológica y la cámara inferior (13) con
glicerol. Cuando se usa una célula (19) para la que se conoce el
coeficiente de transferencia de masa del glicerol a través de la
membrana, puede calcularse fácilmente la cantidad de glicerol que
entrará en la célula y ajustar las concentraciones y tiempos de
exposición para infundir la célula con la cantidad que se sabe que
es necesaria para la crioconservación.
En la Figura 2 se muestra un ejemplo de un
aparato de microelectroporación de acuerdo con esta invención para
una sola célula biológica. El aparato es de construcción similar a
la del aparato de microdifusión de la Figura 1. Sus componentes
estructurales, de abajo hacia arriba, son una base acrílica (21),
una capa de silicio inferior (22) con una parte esculpida para
definir los límites laterales de la cama de líquido inferior (23),
una capa de nitruro de silicio (24) (1 micrómetro de espesor) que
sirve como la barrera entre las dos cámaras, una capa de silicio
superior (25) que define los límites laterales de la cámara de
líquido superior (26) y una cubierta constituida por una capa de n+
poli-silicio (5.000 \ring{A} de espesor) (27) y
una capa de nitruro de silicio (1 micrómetro de espesor) (28). Un
orificio (29) en la barrera de nitruro de silicio (24) sirve como la
abertura, y una célula (30) (o masa de células) cubre el orificio.
Los canales que se extienden a través de la base acrílica sirven
como canales de entrada y salida para los líquidos que pasan a
través de las cámaras superior e inferior, como muestran las
flechas en la Figura. Una capa adicional de n+
poli-silicio
(5.000 \ring{A}) (31) se sitúa por encima de la base acrílica (21) y esta capa, junto con la capa de n+ poli-silicio (27) por encima de la cámara superior (26) sirve como los dos electrodos. Cada electrodo está unido por conducciones eléctricas a una placa de circuito impreso (32) que controla el voltaje aplicado entre los electrodos y mide la corriente que pasa entre ellos.
(5.000 \ring{A}) (31) se sitúa por encima de la base acrílica (21) y esta capa, junto con la capa de n+ poli-silicio (27) por encima de la cámara superior (26) sirve como los dos electrodos. Cada electrodo está unido por conducciones eléctricas a una placa de circuito impreso (32) que controla el voltaje aplicado entre los electrodos y mide la corriente que pasa entre ellos.
El aparato de microelectroporación mostrado en
Fig. 2 puede fabricarse por técnicas de microfabricación
convencionales, que implican típicamente la deposición química de
vapor, enmascaramiento, grabado al aguafuerte y pulverización
catódica. El funcionamiento del aparato será análogo al
funcionamiento del aparato de microdifusión de la Fig. 1. El
movimiento de las células biológicas a través del aparato se
consigue suspendiendo las células en el líquido usado para llenar
la cámara superior y las células se extraen de la abertura, de una
en una, imponiendo un diferencial de presión entre las cámaras, que
también sujeta una célula en su sitio una vez que la célula ha
salido de la abertura. Un método conveniente de imposición de dicho
diferencial de presión es mantener la presión atmosférica en la
cámara superior mientras que se reduce la presión en la cámara
inferior por debajo de la presión atmosférica uniendo una jeringa a
la cámara inferior y empujando el émbolo de la jeringa. Se debe
tener cuidado de limitar el diferencial de presión a uno que no dañe
a la célula.
Las Figs. 3a y 3b ilustran un aparato y un
método diferente dentro del ámbito de esta invención. Este aparato
y método implica una suspensión de fluido de las células biológicas
que fluyen a través de un conducto o canal de flujo, en el que las
células pasan a través de una región entre un par de electrodos. La
sección transversal longitudinal de Fig. 3a muestra las paredes
(41) del canal y una célula biológica (42) pasando hacia abajo a
través del lumen del canal (en la dirección de la flecha). La
sección transversal de la Fig. 3b muestra que el canal es
rectangular en sección transversal, aunque pueden usarse otras
geometrías de sección transversal. Los electrodos (43, 44) están
formados como recubrimientos en dos paredes opuestas del canal. Los
electrodos están conectados a través de cables a una placa de
circuito impreso (45) que mide la impedancia y controla el voltaje
aplicado en los electrodos. La célula biológica (42) se muestra
pasando a través de la región entre los dos electrodos.
El área de la sección transversal del canal es
lo suficientemente grande para permitir que la célula lo atraviese
esencialmente sin que las paredes de los canales lo obstaculicen
pero a la vez lo suficientemente pequeño para que únicamente pueda
pasar una célula a través de la región
inter-electrodo. Además, cada electrodo (43, 44)
mide aproximadamente lo mismo o ligeramente más que el diámetro de
la célula biológica, de manera que la célula después de entrar en
la región produce una disminución significativa o mensurable de la
corriente que pasa a través de la región debido al voltaje aplicado
a través de los electrodos. El espaciamiento de los electrodos, es
decir, la distancia entre ellos, también está sometido a las mismas
consideraciones. Las células biológicas se suspenden en una
solución líquida de las especies a introducir en las células y la
suspensión se hace pasar a través del canal. A medida que la
suspensión fluye a través del canal se aplica un voltaje entre los
electrodos y se controla la corriente entre los electrodos (o la
impedancia). Una caída significativa de la corriente indica la
presencia de una célula biológica en la región
inter-electrodo. Una vez que la célula se detecta
de esta manera, puede aplicarse un impulso de electroporación en los
electrodos mientras la célula aún está en la región
inter-electrodo y puede observarse la impedancia
adicionalmente para detectar la aparición de electroporación. Las
especies disueltas en la solución líquida entrarán en la célula como
resultado de la electroporación.
Variaciones sobre estas estructuras y métodos
serán fácilmente aparentes para los expertos en la materia. Por
ejemplo, las barreras descritas anteriormente pueden minimizarse o
evitarse usando microelectrodos que tengan el mismo tamaño o menor
que el de las células biológicas. Son ejemplos de dicho
microelectrodos los microelectrodos de fibra de carbono (tales como
ProCFE, Axon Instruments, Foster City, California, USA) usados
junto con micromanipuladores de graduación elevada (tales como los
disponibles de Narishige MWH-3, Tokyo, Japón). En
lugar de los electrodos mostrados en la Fig. 2 o los mostrados en
las Figs. 3a y 3b pueden usarse microelectrodos.
Para proporcionar a los expertos en la materia
una completa divulgación y descripción de cómo preparar y usar la
presente invención, se incluyen los siguientes ejemplos y no
pretenden limitar el alcance de lo que los inventores consideran
como su invención ni tampoco pretenden representar que los
experimentos que se indican a continuación sean todos o los únicos
experimentos realizados. Se han realizado esfuerzos para garantizar
la precisión con respecto a los números usados (por ejemplo
cantidades, temperatura, etc.) pero deben tenerse en cuenta algunos
errores y desviaciones experimentales. A menos que se indique otra
cosa, las partes son partes en peso, el peso molecular es peso
mo-
lecular promedio en peso, la temperatura es en grados Centígrados y la presión es o se aproxima a la atmosférica.
lecular promedio en peso, la temperatura es en grados Centígrados y la presión es o se aproxima a la atmosférica.
Se realizaron una serie de experimentos usando
un sistema de microelectroporación constituido por un dispositivo
de microelectroporación descrito anteriormente y mostrado en la Fig.
2, combinado con unidades de control de flujo y presión y
manómetros para los líquidos que circulan a través de las cámaras
superior e inferior, una fuente de alimentación de DC variable, un
generador de impulsos y un amplificador de energía para imponer
impulsos de voltaje a través del dispositivo, un osciloscopio
digital para controlar los impulsos, un microscopio de
fluorescencia, una cámara CCD (dispositivo de acoplamiento de carga)
y un ordenador con software de procesamiento de imágenes y
procesamiento de formación de ondas. Ambas cámaras del dispositivo
se llenaron con solución salina fisiológica y en la cámara superior
se introdujeron las células. El movimiento del líquido en las
cámaras superior e inferior se controló mediante jeringas. La
presión en la cámara superior era atmosférica mientras que la
presión en la cámara inferior se redujo por debajo de la presión
atmosférica tirando del émbolo de la jeringa conectado a esta
cámara. Se aplicó el voltaje en impulsos métricos únicos variando de
0 a 120 V de magnitud y de 2 microsegundos a 100 milisegundos de
duración. La distancia entre los electrodos en la cámara superior o
inferior era de 900 micrómetros.
En este ejemplo los ensayos se realizaron usando
células de adenocarcinoma prostáticas humanas ND-1
con un diámetro típico de 20 micrómetros. La abertura en el
dispositivo de microelectroporación era de 5 micrómetros de
diámetro. Se aplicó un impulso de voltaje rectangular con una
duración de 60 milisegundos y se aplicó el impulsó a diversas
amplitudes que variaban de 10 V a 60 V en incrementos de 5 voltios.
A cada impulso, se midió la corriente eléctrica que pasaba a través
de la abertura. Los experimentos se realizaron con las células y se
repitieron tanto con la abertura cerrada con una perla de vidrio
como sin obstruir toda la abertura. En cada caso los resultados se
expresaron como microamperios de corriente frente a voltios de
amplitud de impulso y se representaron en la Fig. 4, en la que la
curva superior (puntos de datos representados por el eje x)
representa la abertura no obstruida, la curva inferior (puntos de
datos representados por asteriscos) representa los datos tomados
con la perla de vidrio alojada en la abertura y las tres curvas del
medio (cuadrados sin relleno, triángulos rectos sin relleno y
triángulos invertidos sin relleno) representan los datos tomados
con tres células ND-1 diferentes alojadas en la
abertura.
La cámara superior muestra que la corriente
aumenta de una manera sustancialmente continua a medida que aumenta
el voltaje cuando no hay barrera para el paso de corriente a través
de la abertura. La curva inferior también muestra un ascenso
sustancialmente continuo a medida que aumenta el voltaje, aunque a
un nivel mucho menor. Los valores de corriente mostrados en la
curva inferior representan corrientes aisladas a través del
dispositivo. Las curvas de los datos tomados con las células
ND-1 a través de la abertura muestran que a voltajes
bajos la corriente tiene un valor próximo al obtenido cuando la
perla de vidrio cierra la abertura mientras a voltajes elevados la
corriente asciende a los niveles obtenidos con una abertura no
obstruida. La transición es un aumento brusco que es indicativo de
la formación de poros en la membrana celular a través de la cual
puede pasar la corriente eléctrica, es decir, el inicio de la
electroporación. En las tres células, la transición se produjo a
voltajes entre 30 V y 40 V. En dos de las tres células (cuadrados
sin relleno y triángulos rectos sin relleno), el inicio de la
electroporación se produjo esencialmente al mismo voltaje, mientras
que en la tercera (triángulos invertidos), el inicio se produjo a
un voltaje que era aproximadamente 5 V inferior al de las otras
dos. Esto ilustra el valor del control del proceso para conseguir
resultados óptimos con células individuales.
Después de generarse los datos mostrados en la
Fig. 4, los impulsos se volvieron a aplicar en orden descendiente
de valores de amplitud y las curvas resultantes mostraron
histéresis, es decir, las curvas obtenidas con amplitudes
descendientes eran de voltaje superior a las obtenidas con
amplitudes ascendentes. Esto indica que la electroporación en estos
experimentos era irreversible.
Usando el mismo sistema de microelectroporación
que el del Ejemplo 1, se realizó una serie de ensayos en hepatocitos
de rata (ATCC #CRL-1439), cuyo diámetro típico era
de 20 micrómetros, el aparato de microelectroporación tenía una
abertura que tenía 4 micrómetros de diámetro. En este caso también
se usaron impulsos de voltaje rectangular que tenían una duración
de 60 milisegundos, variando en amplitud de 10 V a 37,5 V en
incrementos de 5 V en el tramo de 10 V a 30 V y en incrementos de
2,5 V en el tramo de 30 V a 37,5 V. Los experimentos se realizaron
en algunos casos únicamente aumentando las amplitudes y en otros
aumentando primero, y después disminuyendo las amplitudes para
evaluar la reversibilidad. Los resultados se representan en los
gráficos mostrados en las Figs. 5a, 5b, 5c y 5d. En cada caso, la
curva superior (puntos de datos representados por círculos)
representa los datos tomados sin célula ni perla de vidrio alojada
en la abertura, la curva inferior (puntos de datos representados
por cuadrados) son los datos tomados con una perla de vidrio en la
abertura y la curva del medio (puntos de datos representados por
triángulos) son los datos tomados con un hepatocito en la abertura,
usando hepatocitos diferentes para cada una de las cuatro
Figuras.
En la Fig. 5a, la amplitud aumentó y no
disminuyó, mostrando un voltaje de umbral de electroporación de
entre 25 V y 30 V. En las Figs. 5b y 5c, la amplitud aumentó
primero y después disminuyó para producir las dos curvas del medio.
Aunque las curvas ascendentes y descendentes no se diferencian, son
sustancialmente idénticas en cada Figura, se indica que la membrana
celular en cada uno de estos dos casos se soltó después de cada
impulso de voltaje y por tanto que la formación de poros era
reversible. En el ensayo representado en la Fig. 5d, la célula se
desintegró una vez que el voltaje superó los 37,5 V, aunque esto no
se muestra en la Figura. Es significativo observar que a pesar del
hecho de que se usaron los mismos tipos de células en cada una de
las Figs. 5a, 5b, 5c y 5d, el voltaje del umbral de electroporación
fue distinto entre las células individuales, aunque todas estaban
incluidas en el intervalo de 20 V a 35. La adaptación del
procedimiento para células individuales se consiguió fácilmente
controlando la corriente de esta manera para observar cuando se
producía el umbral de electroporación. Para conseguir el
tratamiento deseado de la célula sin destruirla puede realizarse la
selección óptima del tiempo de exposición, voltaje, cambios de
composición en los líquidos circundantes y otros parámetros del
sistema.
Los métodos descritos en este documento son
herramientas útiles en el laboratorio para realizar investigaciones
fundamentales sobre las propiedades de electroporación de las
células biológicas y herramientas útiles en la industria para
procesar grandes cantidades de células de una manera a través de
flujo. Al permitir observar y registrar el flujo de corriente a
través de las células individuales, se puede controlar la amplitud y
duración del impulso de voltaje para conseguir resultados óptimos.
Además, los dispositivos descritos y mostrados en este documento
para usar en la práctica de la invención pueden construirse con
partes transparentes y con un tamaño adecuado para montar sobre una
pletina del microscopio. Esto permitirá correlacionar las mediciones
de corriente eléctrica frente a observaciones visuales y mediciones
de fluorescencia en el interior de la célula. El dispositivo puede
usarse para detectar eléctricamente, a través de mediciones de
corrientes, el momento en el que una célula se aloja en la abertura
así como el momento en el que se consigue la formación de poros en
la membrana celular. Para aplicaciones a mayor escala e
industriales, pueden colocarse en paralelo gran cantidad de
aparatos de microelectroporación del tipo descritos en este
documento. Para cada célula, puede usarse la información eléctrica
que indica el atrapamiento de una célula en la abertura (tal como
una caída brusca de la corriente) para generar una señal que
iniciará una secuencia de electroporación e información eléctrica
adicional indicando la terminación de la electroporación (tal como
un ascenso brusco de corriente) generará una señal que liberará la
célula (por ejemplo eliminando o invirtiendo el diferencial de
presión) y permitirá a la siguiente célula fluir a través de la
abertura.
Además de usar el dispositivo y el sistema de la
invención para transferir un material dentro o fuera de la célula
el sistema y el dispositivo pueden usarse en un modo diagnóstico o
analítico. Esto se realiza midiendo la impedancia eléctrica de una
célula o células colocadas en un medio y usando la información de la
impedancia eléctrica medida. Es posible deducir información
relacionada con la integridad de las membranas celulares y por
tanto permitir análisis. También es posible comparar la información
con la información previamente obtenida en células normales o
enfermas del mismo tipo y por lo tanto obtener información de
diagnóstico. Por ejemplo, la impedancia eléctrica de una célula con
una membrana intacta será mucho mayor que la impedancia de la misma
célula con la membrana dañada. Por tanto, analíticamente el proceso
puede proporcionar información con respecto a la integridad
estructural de la membrana celular. Diagnósticamente el método puede
proporcionar información con respecto a la integridad estructural
relativa de las membranas celulares.
Para ilustrar la capacidad de EIT para controlar
la electroporación en los tejidos se ha resuelto una simulación
matemática del problema.
Para proporcionar los datos necesarios para la
simulación de formación de imágenes de electroporación, se creó un
tejido imaginario simulado usando primero un modelo FEM
2-D de red fina (\sim1600 nodos, \sim3100
elementos). El tejido imaginario, mostrado en la Fig. 9, consistía
en un dominio de formación de imágenes circular (radio 20 mm,
resistividad 500 ohm\cdotcm) para músculo con un número variable
de electrodos de fuente de puntos espaciados equitativamente
alrededor de la periferia. En el interior de esta región de
formación de imagen, se definió una sola región electroporada
conformada arbitrariamente con una resistividad diferente. Se usó
un patrón de inyección de corriente de electrodo opuesto,
proporcionando mediciones de voltaje independientes
N(N-1)/2 en el que N es el número de
electrodos. El modelo se resolvió usando los algoritmos de
generación de redes adaptativas y de solución FEM disponibles en
MATLAB's Partial Differential Equation Toolbox (The Mathworks
Inc.).
En la Fig. 9 se muestra un ejemplo de red para
la geometría proporcionada. La información del módulo imaginario
permite reconstruir algoritmos que representan datos que podrían
haber estado disponibles durante parte de la electroporación de un
experimento, es decir corriente y voltaje en electrodos diferentes
alrededor del tejido. A partir de estos datos se intentó
reconstruir la imagen original del tejido que se introdujo en el
modelo. (Debe observarse que se usó una corriente de inyección DC en
lugar de la corriente típica AC para la EIT para simplificar el
problema. La derivación e implementación de AC es una ampliación
sencilla de la presentada en este documento). En la Fig. 10 se
ilustra un ejemplo típico para la distribución de voltaje y
corriente en el tejido imaginario durante una etapa de adquisición
de datos simulada para un sistema EIT de 8 electrodos.
Los datos obtenidos del tejido imaginario se
introdujeron en dos algoritmos de formación de imágenes EIT, uno
usando el método del elemento finito y el segundo el método del
elemento del límite para generar la imagen de impedancia. Los
algoritmos usan una técnica Newton Raphson convencional para
producir la imagen. La Fig. 11 compara la imagen de un dominio
circular con dos impedancias eléctricas diferentes en comparación
con la imagen del tejido imaginario original como se recrea con la
técnica del elemento finito y con la técnica del elemento del
límite.
La tomografía de impedancia eléctrica puede
usarse para formar imágenes de la región electroporada en el tejido
porque la EIT produce una imagen del tejido a partir de un mapa de
la impedancia eléctrica del tejido y la electroporación produce
cambios de la impedancia. Los electrodos para la formación de
imágenes por electroporación de tejidos pueden ser diferentes a los
usados para los procesos de electroporación en sí mismos o pueden
ser los mismos.
Como parte de la investigación sobre la
electroporación celular se estudiaron las características eléctricas
de las células durante la electroporación reversible e
irreversible. En la electroporación reversible la célula no resultó
dañada por el proceso de electroporación y la célula vuelve a
sellar. En la electroporación irreversible la membrana celular
resultó dañada y no vuelve a sellar. En una serie de experimentos en
los que se usaron células ND-1 para medir
corrientes a través de las células en las microplacas de
microelectroporación se obtuvieron los resultados ilustrados en las
Figs. 8a y 8b. Los resultados se obtuvieron exponiendo a las células
a impulsos eléctricos con forma triangular (parte superior de la
curva) en 8a y 8b. Las corrientes eléctricas que fluyen a través de
las células se muestran en la curva inferior en 8a y 8b. La Fig. 8a
representa una célula con electroporación irreversible y la Fig. 8b
representa una célula con electroporación reversible. Puede
observarse fácilmente que cuando se redujo el voltaje en la célula
electroporada de manera reversible mantiene los mismos valores que
durante la etapa de aumento de voltaje. Sin embargo, en el caso
irreversible la corriente a través de la célula con la membrana
dañada tenía una corriente superior a la de la célula intacta. Esto
conduce a la conclusión de que las corrientes eléctricas que fluyen
a través de las células pueden proporcionar indicaciones en los
cambios de permeabilidad en la membrana en general y una medida de
la integridad de la membrana celular en particular en una
diversidad de situaciones y no únicamente durante la
electroporación. Por ejemplo, a menudo la viabilidad celular se
mide con azul tripán o con colorantes fluorescentes que penetran a
través de las membranas dañadas. Estos resultados demuestran que un
método alternativo para detectar células con membranas dañadas
sería medir la proporción de corriente eléctrica frente a voltaje a
través de la célula. De manera similar, existen compuestos, tales
como ionóforos, que inducen la formación de poros en la membrana
celular. La medición de la proporción corriente frente a voltaje
(impedancia) a través de una membrana celular podría también
detectar si estos productos químicos han dañado la membrana. Las
mediciones eléctricas tendrían ventaja sobre los medios químicos
para detectar el daño en la membrana celular porque producirían
información inmediata. Un posible método para detectar cambios en
la permeabilidad de la membrana celular y en particular en
membranas celulares dañadas es usar la microplaca de electroporación
como se describe para los procesos de electroporación. La medida
del daño sería la diferencia entre una impedancia de la célula
intacta y una impedancia de la célula dañada como se ilustra en las
Figs. 8a y 8b. En los tejidos sería posible detectar células con
membranas dañadas de manera similar a los métodos usados para
detectar la electroporación descritos en este documento.
Claims (7)
1. Un método para realizar la electroporación de
una célula biológica de una manera controlada, que comprende:
(a) colocar una célula biológica en un medio
eléctricamente conductor y aplicar un voltaje a través del
medio;
(b) detectar continuamente la proporción de la
corriente eléctrica a través del medio frente al voltaje a través
del medio; y
(c) ajustar la magnitud del voltaje aplicado de
acuerdo con cambios en la proporción de corriente frente a voltaje
detectados para conseguir un grado de electroporación controlado de
la célula biológica;
en el que un aumento en la proporción de
corriente frente a voltaje a través de una célula biológica se
produce cuando la membrana celular se hace permeable debido a la
formación de poros, daño celular u otros modos de formación de
poros en la membrana.
2. Un método de acuerdo con la reivindicación 1
en el que la etapa (b) comprende detectar continuamente la
proporción de corriente frente a voltaje como una indicación de la
electroporación de la célula biológica y la etapa (c) comprende
ajustar la duración del voltaje aplicado de acuerdo con la
proporción de corriente frente a voltaje para conseguir una
cantidad específica deseada de electroporación.
3. Un método de acuerdo con la reivindicación 1
en el que se coloca una pluralidad de células biológicas en el
medio eléctricamente conductor y se establece el promedio de la
proporción de corriente frente a voltaje sobre la pluralidad de las
células biológicas, consiguiendo por lo tanto un grado promediado
controlado de electroporación en la pluralidad de células
biológicas.
4. Un método de acuerdo con la reivindicación 1
en el que se aplica voltaje entre dos microelectrodos y la célula
biológica se coloca entre los microelectrodos.
5. Un método de acuerdo con la reivindicación 1
en el que:
el voltaje se aplica entre dos electrodos en un
canal a través de flujo, los electrodos se colocan para aplicar el
voltaje en una dirección transversal para fluir a través del
canal;
la etapa (a) comprende suspender la célula
biológica en el medio y hacer pasar continuamente el medio a través
del canal;
la etapa (b) comprende adicionalmente
correlacionar la proporción de corriente frente a voltaje con la
presencia de la célula biológica entre los electrodos; y
la etapa (c) comprende ajustar la magnitud del
voltaje mientras la célula biológica está entre los electrodos.
6. Un método de acuerdo con la reivindicación 5
que comprende suspender una pluralidad de células biológicas en el
medio eléctricamente conductor y hacer pasar continuamente el medio
a través del canal de tal manera que a través de los electrodos
pasa aproximadamente una célula a la vez.
7. Un método de acuerdo con la reivindicación 1,
en el que la detección continuada en (b) proporciona una indicación
del grado de electroporación en el tejido biológico y en el que
adicionalmente el ajuste en (c) proporciona un grado de
electroporación controlado en el tejido biológico.
Applications Claiming Priority (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US618949 | 1984-06-08 | ||
US358510 | 1999-07-21 | ||
US09/358,510 US6300108B1 (en) | 1999-07-21 | 1999-07-21 | Controlled electroporation and mass transfer across cell membranes |
US09/618,949 US6403348B1 (en) | 1999-07-21 | 2000-07-19 | Controlled electroporation and mass transfer across cell membranes |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2341753T3 true ES2341753T3 (es) | 2010-06-28 |
Family
ID=27000090
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES00948879T Expired - Lifetime ES2341753T3 (es) | 1999-07-21 | 2000-07-20 | Electroporacion controlada. |
Country Status (8)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US6403348B1 (es) |
EP (1) | EP1196549B1 (es) |
JP (1) | JP2003505073A (es) |
AT (1) | ATE463565T1 (es) |
CA (1) | CA2378113C (es) |
DE (1) | DE60044129D1 (es) |
ES (1) | ES2341753T3 (es) |
WO (1) | WO2001007584A1 (es) |
Families Citing this family (96)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7053063B2 (en) * | 1999-07-21 | 2006-05-30 | The Regents Of The University Of California | Controlled electroporation and mass transfer across cell membranes in tissue |
US6300108B1 (en) * | 1999-07-21 | 2001-10-09 | The Regents Of The University Of California | Controlled electroporation and mass transfer across cell membranes |
US6927049B2 (en) * | 1999-07-21 | 2005-08-09 | The Regents Of The University Of California | Cell viability detection using electrical measurements |
IT1320187B1 (it) | 2000-04-21 | 2003-11-26 | Igea Srl | Dispositivo e metodo di elettro-porazione che fornisce un segnalemodulato sotto il controllo continuo della elettro-permeabilizzazione |
IT1320186B1 (it) * | 2000-04-21 | 2003-11-26 | Igea Srl | Dispositivo e metodo di elettro-porazione in cui l'ampiezzadell'impulso o degli impulsi viene stabilita in modo automatico in |
US6697670B2 (en) | 2001-08-17 | 2004-02-24 | Minnesota Medical Physics, Llc | Apparatus and method for reducing subcutaneous fat deposits by electroporation with improved comfort of patients |
US6892099B2 (en) | 2001-02-08 | 2005-05-10 | Minnesota Medical Physics, Llc | Apparatus and method for reducing subcutaneous fat deposits, virtual face lift and body sculpturing by electroporation |
US6795728B2 (en) | 2001-08-17 | 2004-09-21 | Minnesota Medical Physics, Llc | Apparatus and method for reducing subcutaneous fat deposits by electroporation |
US8251986B2 (en) | 2000-08-17 | 2012-08-28 | Angiodynamics, Inc. | Method of destroying tissue cells by eletroporation |
US6460413B1 (en) * | 2001-03-15 | 2002-10-08 | Gerald J. Diebold | Imaging based on the electroacoustic effect |
USRE42016E1 (en) | 2001-08-13 | 2010-12-28 | Angiodynamics, Inc. | Apparatus and method for the treatment of benign prostatic hyperplasia |
US6994706B2 (en) * | 2001-08-13 | 2006-02-07 | Minnesota Medical Physics, Llc | Apparatus and method for treatment of benign prostatic hyperplasia |
US7130697B2 (en) * | 2002-08-13 | 2006-10-31 | Minnesota Medical Physics Llc | Apparatus and method for the treatment of benign prostatic hyperplasia |
DE10144486C1 (de) * | 2001-09-10 | 2003-04-24 | Karlsruhe Forschzent | Verfahren zum kontinuierlichen nichtthermischen Aufschluß und Pasteurisieren industrieller Mengen organischen Prozessguts durch Elektroporation und Reaktor zum Durchführen des Verfahrens |
DE10202094B4 (de) | 2002-01-21 | 2006-09-28 | Eppendorf Ag | Verfahren und Vorrichtung zur Elektroporation biologischer Zellen |
ITTO20020477A1 (it) | 2002-06-07 | 2003-12-09 | Igea Srl | Dispositivo per elettroporazione. |
US20040115784A1 (en) * | 2002-09-30 | 2004-06-17 | Maxcyte, Inc. | Apparatus and method for streaming electroporation |
JP2004344003A (ja) * | 2003-04-22 | 2004-12-09 | Institute Of Physical & Chemical Research | 細胞刺激装置及び細胞刺激方法 |
US6969604B1 (en) | 2003-06-20 | 2005-11-29 | Yakovenko Sergey A | Electroporation chamber |
US20050118705A1 (en) * | 2003-11-07 | 2005-06-02 | Rabbitt Richard D. | Electrical detectors for microanalysis |
US20050170510A1 (en) * | 2003-12-08 | 2005-08-04 | Yong Huang | Device and method for controlled electroporation and molecular delivery into cells and tissue |
EP2474281B1 (en) * | 2003-12-24 | 2019-03-27 | The Regents of The University of California | Tissue ablation with irreversible electroporation |
US8298222B2 (en) | 2003-12-24 | 2012-10-30 | The Regents Of The University Of California | Electroporation to deliver chemotherapeutics and enhance tumor regression |
US8058056B2 (en) * | 2004-03-12 | 2011-11-15 | The Regents Of The University Of California | Method and apparatus for integrated cell handling and measurements |
JP4443278B2 (ja) * | 2004-03-26 | 2010-03-31 | テルモ株式会社 | 拡張体付カテーテル |
JP4188289B2 (ja) * | 2004-07-27 | 2008-11-26 | 株式会社東芝 | 体内細胞通電装置 |
WO2006098430A1 (ja) * | 2005-03-17 | 2006-09-21 | Kyoto University | 細胞内物質導入装置、細胞クランプ装置及び流路の形成方法 |
US20060264752A1 (en) * | 2005-04-27 | 2006-11-23 | The Regents Of The University Of California | Electroporation controlled with real time imaging |
US20060293725A1 (en) * | 2005-06-24 | 2006-12-28 | Boris Rubinsky | Methods and systems for treating fatty tissue sites using electroporation |
US20060293730A1 (en) | 2005-06-24 | 2006-12-28 | Boris Rubinsky | Methods and systems for treating restenosis sites using electroporation |
US8114070B2 (en) | 2005-06-24 | 2012-02-14 | Angiodynamics, Inc. | Methods and systems for treating BPH using electroporation |
US20060293731A1 (en) * | 2005-06-24 | 2006-12-28 | Boris Rubinsky | Methods and systems for treating tumors using electroporation |
WO2007004831A1 (en) * | 2005-06-30 | 2007-01-11 | Lg Electronics Inc. | Method and apparatus for encoding and decoding an audio signal |
US20070156135A1 (en) * | 2006-01-03 | 2007-07-05 | Boris Rubinsky | System and methods for treating atrial fibrillation using electroporation |
US8293524B2 (en) * | 2006-03-31 | 2012-10-23 | Fluxion Biosciences Inc. | Methods and apparatus for the manipulation of particle suspensions and testing thereof |
US7687267B2 (en) * | 2006-09-30 | 2010-03-30 | Rational Biotechnology Inc. | High-throughput cell transfection device and methods of using thereof |
WO2008048620A2 (en) | 2006-10-16 | 2008-04-24 | The Regents Of The University Of California | Gels with predetermined conductivity used in irreversible electroporation of tissue |
US20080132884A1 (en) * | 2006-12-01 | 2008-06-05 | Boris Rubinsky | Systems for treating tissue sites using electroporation |
DE102007016927A1 (de) | 2007-04-05 | 2008-10-16 | Kern, Martin | Verfahren zur reversiblen und irreversiblen elektrophysikalischen Zellporation und die zur Durchführung erforderlichen Porationsreaktoren |
US20090137925A1 (en) * | 2007-11-23 | 2009-05-28 | Divya Cantor | Impedance Spectroscopy Cervix Scanning Apparatus and Method |
WO2009121009A2 (en) | 2008-03-27 | 2009-10-01 | The Regents Of The University Of California | Irreversible electroporation device for use in attenuating neointimal |
US20100004623A1 (en) * | 2008-03-27 | 2010-01-07 | Angiodynamics, Inc. | Method for Treatment of Complications Associated with Arteriovenous Grafts and Fistulas Using Electroporation |
US10448989B2 (en) | 2009-04-09 | 2019-10-22 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | High-frequency electroporation for cancer therapy |
US9198733B2 (en) | 2008-04-29 | 2015-12-01 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | Treatment planning for electroporation-based therapies |
US10702326B2 (en) | 2011-07-15 | 2020-07-07 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | Device and method for electroporation based treatment of stenosis of a tubular body part |
US10272178B2 (en) | 2008-04-29 | 2019-04-30 | Virginia Tech Intellectual Properties Inc. | Methods for blood-brain barrier disruption using electrical energy |
US10238447B2 (en) | 2008-04-29 | 2019-03-26 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | System and method for ablating a tissue site by electroporation with real-time monitoring of treatment progress |
US8992517B2 (en) * | 2008-04-29 | 2015-03-31 | Virginia Tech Intellectual Properties Inc. | Irreversible electroporation to treat aberrant cell masses |
US9867652B2 (en) | 2008-04-29 | 2018-01-16 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | Irreversible electroporation using tissue vasculature to treat aberrant cell masses or create tissue scaffolds |
US10245098B2 (en) | 2008-04-29 | 2019-04-02 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | Acute blood-brain barrier disruption using electrical energy based therapy |
US11254926B2 (en) | 2008-04-29 | 2022-02-22 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | Devices and methods for high frequency electroporation |
US8926606B2 (en) * | 2009-04-09 | 2015-01-06 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | Integration of very short electric pulses for minimally to noninvasive electroporation |
US11272979B2 (en) | 2008-04-29 | 2022-03-15 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | System and method for estimating tissue heating of a target ablation zone for electrical-energy based therapies |
US9283051B2 (en) | 2008-04-29 | 2016-03-15 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | System and method for estimating a treatment volume for administering electrical-energy based therapies |
US10117707B2 (en) | 2008-04-29 | 2018-11-06 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | System and method for estimating tissue heating of a target ablation zone for electrical-energy based therapies |
US9598691B2 (en) * | 2008-04-29 | 2017-03-21 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | Irreversible electroporation to create tissue scaffolds |
WO2009137800A2 (en) | 2008-05-09 | 2009-11-12 | Angiodynamics, Inc. | Electroporation device and method |
US9173704B2 (en) * | 2008-06-20 | 2015-11-03 | Angiodynamics, Inc. | Device and method for the ablation of fibrin sheath formation on a venous catheter |
WO2010008834A2 (en) * | 2008-06-23 | 2010-01-21 | Angiodynamics, Inc. | Treatment devices and methods |
US20100152725A1 (en) * | 2008-12-12 | 2010-06-17 | Angiodynamics, Inc. | Method and system for tissue treatment utilizing irreversible electroporation and thermal track coagulation |
WO2010085765A2 (en) * | 2009-01-23 | 2010-07-29 | Moshe Meir H | Therapeutic energy delivery device with rotational mechanism |
US8231603B2 (en) * | 2009-02-10 | 2012-07-31 | Angiodynamics, Inc. | Irreversible electroporation and tissue regeneration |
US11382681B2 (en) | 2009-04-09 | 2022-07-12 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | Device and methods for delivery of high frequency electrical pulses for non-thermal ablation |
US11638603B2 (en) | 2009-04-09 | 2023-05-02 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | Selective modulation of intracellular effects of cells using pulsed electric fields |
USD630321S1 (en) | 2009-05-08 | 2011-01-04 | Angio Dynamics, Inc. | Probe handle |
US8903488B2 (en) | 2009-05-28 | 2014-12-02 | Angiodynamics, Inc. | System and method for synchronizing energy delivery to the cardiac rhythm |
US9895189B2 (en) | 2009-06-19 | 2018-02-20 | Angiodynamics, Inc. | Methods of sterilization and treating infection using irreversible electroporation |
WO2011047387A2 (en) * | 2009-10-16 | 2011-04-21 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | Treatment planning for electroporation-based therapies |
US20110118732A1 (en) | 2009-11-19 | 2011-05-19 | The Regents Of The University Of California | Controlled irreversible electroporation |
WO2012051433A2 (en) | 2010-10-13 | 2012-04-19 | Angiodynamics, Inc. | System and method for electrically ablating tissue of a patient |
US9266725B2 (en) | 2011-04-27 | 2016-02-23 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Nanotube structures, methods of making nanotube structures, and methods of accessing intracellular space |
US9078665B2 (en) | 2011-09-28 | 2015-07-14 | Angiodynamics, Inc. | Multiple treatment zone ablation probe |
US9414881B2 (en) | 2012-02-08 | 2016-08-16 | Angiodynamics, Inc. | System and method for increasing a target zone for electrical ablation |
US10390874B2 (en) | 2013-11-14 | 2019-08-27 | Rm2 Technology Llc | Methods, systems, and apparatuses for tissue ablation using electrolysis and permeabilization |
US10166321B2 (en) | 2014-01-09 | 2019-01-01 | Angiodynamics, Inc. | High-flow port and infusion needle systems |
CN112807074A (zh) | 2014-05-12 | 2021-05-18 | 弗吉尼亚暨州立大学知识产权公司 | 电穿孔系统 |
US12114911B2 (en) | 2014-08-28 | 2024-10-15 | Angiodynamics, Inc. | System and method for ablating a tissue site by electroporation with real-time pulse monitoring |
WO2016100325A1 (en) | 2014-12-15 | 2016-06-23 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | Devices, systems, and methods for real-time monitoring of electrophysical effects during tissue treatment |
WO2016161081A1 (en) | 2015-04-03 | 2016-10-06 | Fluxion Biosciences, Inc. | Molecular characterization of single cells and cell populations for non-invasive diagnostics |
WO2016178697A1 (en) | 2015-05-01 | 2016-11-10 | Inter Science Gmbh | Methods, systems, and apparatuses for tissue ablation using pulse shape designs |
AU2016315883B2 (en) * | 2015-09-04 | 2021-01-28 | Rutgers, The State University Of New Jersey | High throughput, feedback-controlled electroporation microdevice for efficient molecular delivery into single cells |
NZ748519A (en) * | 2016-06-09 | 2024-08-30 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior Univ | Nanostraw well insert devices for improved cell transfection and viability |
JP7102414B2 (ja) | 2016-09-13 | 2022-07-19 | ザ ボード オブ トラスティーズ オブ ザ レランド スタンフォード ジュニア ユニバーシティー | 細胞の長期モニタリングの為の非破壊ナノストロー細胞内試料採取の方法 |
US10905492B2 (en) | 2016-11-17 | 2021-02-02 | Angiodynamics, Inc. | Techniques for irreversible electroporation using a single-pole tine-style internal device communicating with an external surface electrode |
US10702690B2 (en) | 2017-02-03 | 2020-07-07 | Infinitesimal Llc | Electroporation system with micromanipulator and probe |
AU2018304182B2 (en) | 2017-07-19 | 2023-04-13 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Apparatuses and methods using nanostraws to deliver biologically relevant cargo into non-adherent cells |
US11607537B2 (en) | 2017-12-05 | 2023-03-21 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | Method for treating neurological disorders, including tumors, with electroporation |
US11925405B2 (en) | 2018-03-13 | 2024-03-12 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | Treatment planning system for immunotherapy enhancement via non-thermal ablation |
US11311329B2 (en) | 2018-03-13 | 2022-04-26 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | Treatment planning for immunotherapy based treatments using non-thermal ablation techniques |
US11300558B2 (en) * | 2018-06-14 | 2022-04-12 | Nokomis, Inc. | Apparatus and system for spectroscopy and tomography of fragile biologic materials |
JP2019093146A (ja) * | 2018-12-13 | 2019-06-20 | パルティ、ヨーラム | 交番電界によって腫瘍を治療し、推定される細胞サイズに基づいて治療周波数を選択するための装置および方法 |
US11950835B2 (en) | 2019-06-28 | 2024-04-09 | Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. | Cycled pulsing to mitigate thermal damage for multi-electrode irreversible electroporation therapy |
WO2021015779A1 (en) * | 2019-07-25 | 2021-01-28 | Hewlett-Packard Development Company, L.P. | Cell poration and transfection apparatuses |
WO2021015778A1 (en) * | 2019-07-25 | 2021-01-28 | Hewlett-Packard Development Company, L.P. | Cell poration and transfection apparatuses |
WO2021221658A1 (en) * | 2020-04-30 | 2021-11-04 | Hewlett-Packard Development Company, L.P. | Reagent injections into cells |
US12006507B2 (en) | 2020-07-22 | 2024-06-11 | Nantcell, Inc. | Electroporation with active compensation |
Family Cites Families (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4946793A (en) | 1986-05-09 | 1990-08-07 | Electropore, Inc. | Impedance matching for instrumentation which electrically alters vesicle membranes |
US5098843A (en) | 1987-06-04 | 1992-03-24 | Calvin Noel M | Apparatus for the high efficiency transformation of living cells |
US5134070A (en) | 1990-06-04 | 1992-07-28 | Casnig Dael R | Method and device for cell cultivation on electrodes |
US5173158A (en) | 1991-07-22 | 1992-12-22 | Schmukler Robert E | Apparatus and methods for electroporation and electrofusion |
DE69727500T2 (de) * | 1997-06-10 | 2004-10-07 | Cyto Pulse Sciences Inc | Verfahren und apparatur zur behandlung von material mit elektrischen feldern unterschiedlicher orientierung |
-
2000
- 2000-07-19 US US09/618,949 patent/US6403348B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-07-20 JP JP2001512854A patent/JP2003505073A/ja active Pending
- 2000-07-20 DE DE60044129T patent/DE60044129D1/de not_active Expired - Lifetime
- 2000-07-20 ES ES00948879T patent/ES2341753T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2000-07-20 WO PCT/US2000/019975 patent/WO2001007584A1/en active Application Filing
- 2000-07-20 EP EP00948879A patent/EP1196549B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2000-07-20 CA CA2378113A patent/CA2378113C/en not_active Expired - Fee Related
- 2000-07-20 AT AT00948879T patent/ATE463565T1/de not_active IP Right Cessation
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP1196549B1 (en) | 2010-04-07 |
WO2001007584A1 (en) | 2001-02-01 |
WO2001007584A8 (en) | 2001-07-26 |
US6403348B1 (en) | 2002-06-11 |
CA2378113A1 (en) | 2001-02-01 |
ATE463565T1 (de) | 2010-04-15 |
DE60044129D1 (de) | 2010-05-20 |
JP2003505073A (ja) | 2003-02-12 |
EP1196549A4 (en) | 2006-06-07 |
EP1196549A1 (en) | 2002-04-17 |
CA2378113C (en) | 2010-11-23 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2341753T3 (es) | Electroporacion controlada. | |
ES2317844T3 (es) | Procedimiento y dispositivo para controlar la electroporacion. | |
US6482619B1 (en) | Cell/tissue analysis via controlled electroporation | |
US6927049B2 (en) | Cell viability detection using electrical measurements | |
US7053063B2 (en) | Controlled electroporation and mass transfer across cell membranes in tissue | |
Davalos et al. | A feasibility study for electrical impedance tomography as a means to monitor tissue electroporation for molecular medicine | |
US20120179091A1 (en) | Gels with predetermined conductivity used in electroporation of tissue | |
WO2012009606A1 (en) | Electrophysiological recording system and methods of using same | |
Liu et al. | Design of a microscopic electrical impedance tomography system using two current injections | |
Granot et al. | Mathematical models of mass transfer in tissue for molecular medicine with reversible electroporation | |
Meir | A study of electrolytic processes in micro-electroporation and electroporation | |
Sánchez | Development of devices and techniques for electroporation and electrical impedance spectroscopy analysis of adherent cells | |
Davalos | Real-time imaging for molecular medicine through electrical impedance tomography of electroporation | |
Davalos et al. | A Feasibility Study for Imaging Tissue Electroporation With Electrical Impedance Tomography | |
WO2009067142A1 (en) | Controlled multi-holes electroporation | |
García Sánchez | Development of devices and techniques for electroporation and electrical impedance spectroscopy analysis of adherent cells |