WO2006098430A1 - 細胞内物質導入装置、細胞クランプ装置及び流路の形成方法 - Google Patents

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WO2006098430A1
WO2006098430A1 PCT/JP2006/305392 JP2006305392W WO2006098430A1 WO 2006098430 A1 WO2006098430 A1 WO 2006098430A1 JP 2006305392 W JP2006305392 W JP 2006305392W WO 2006098430 A1 WO2006098430 A1 WO 2006098430A1
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WO
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cell
substrate
region
photocurable resin
light
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Application number
PCT/JP2006/305392
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English (en)
French (fr)
Inventor
Hidetoshi Kotera
Isaku Kanno
Takaaki Suzuki
Masao Washizu
Original Assignee
Kyoto University
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Publication date
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    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/483Physical analysis of biological material
    • G01N33/487Physical analysis of biological material of liquid biological material
    • G01N33/48707Physical analysis of biological material of liquid biological material by electrical means
    • G01N33/48728Investigating individual cells, e.g. by patch clamp, voltage clamp
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M35/00Means for application of stress for stimulating the growth of microorganisms or the generation of fermentation or metabolic products; Means for electroporation or cell fusion
    • C12M35/02Electrical or electromagnetic means, e.g. for electroporation or for cell fusion

Definitions

  • Intracellular substance introduction device Intracellular substance introduction device, cell clamping device and flow path forming method
  • the present invention relates to an intracellular substance introduction device, a cell clamping device, and a flow path forming method. Specifically, the intracellular substance introduction device for introducing a foreign substance into a cell and the function of the cell are evaluated.
  • the present invention relates to a cell clamping apparatus for forming a flow path, and a flow path forming method particularly suitable for forming these apparatuses.
  • Patent Document 1 discloses a cell chemical injector for the electoral position method.
  • the notch clamp method is generally used as a method for measuring the electrical characteristics, mechanical characteristics, and response to mechanical stimulation of cells. For example, a micropipette made by drawing a glass tube hot is brought into contact with the cell surface, and changes in the electrical properties of the cell surface are measured.
  • Non-Patent Document 2 discloses a technique for forming a microstructure such as a mesh using a resist SU-8 (manufactured by microhem) that can produce a structure with a high aspect ratio! ⁇ .
  • Patent Document 1 Japanese Patent Laid-Open No. 10-337177
  • Non-Patent Document 1 U. Zimmermann, Electrical breakdown, electropermeabilization and el ectrofusion ", Rev. Physiol. Biochem. Pharmacol. 15, p.175—345 (1986)
  • Non-Patent Document 2 Hironobu Sato, Takayuki Kakinuma, Jeung Sang Go and Shuichi Shoji, ⁇ In-channel 3-D micromesh structures using maskless multi-angle exposures and t heir microfilter application ", Sensors and Actuators A: Physical, Volume 111, Issue 1, 1 March 2004, Pages 87-92
  • the elect port position method has the following problems.
  • V (0) 1.5 X a X E X cos 0 (1)
  • this membrane voltage is proportional to the radius a of the cell as shown in the equation (1).
  • cells usually have a distribution with a uniform spread of diameter. Therefore, when a uniform pulsed electric field is applied to a suspension of many cells, a) an excessive membrane voltage is generated in a large cell, and the cell itself is destroyed. The profitable membrane voltage is too low to cause permeabilization of the membrane and no foreign substances are introduced. In other words, foreign substances can be introduced only into cells of a certain size range.
  • the present invention provides an electoral position that does not depend on the cell size.
  • an intracellular substance introduction device that can realize introduction of foreign substances with higher efficiency.
  • the present invention is intended to provide a cell clamping device capable of clamping cells at many sites.
  • the flow path is formed by a method in which another substrate is bonded to a substrate having a groove formed on the main surface.
  • bonding failure occurs due to warpage of the substrate, and it is difficult to form the flow path efficiently.
  • the present invention intends to provide a method of forming a flow channel that can efficiently form a flow channel.
  • the present invention provides an intracellular substance introduction device configured as follows.
  • the intracellular substance introduction device includes an insulating thin film having a small hole and a pair of electrodes disposed on both sides of the insulating thin film so as to face the small hole.
  • the intracellular substance introduction device fixes the cells in the small holes in one region with respect to the insulating thin film, and introduces the cells into the space continuous with the small holes in the other region with respect to the insulating thin film. Then, in a state where the fluid containing the substance is filled, a pulse voltage is applied between the pair of electrodes to break the cell membrane of the cell and introduce the substance into the cell.
  • the small hole portion is electrically charged.
  • the electrode placed on the cell side of the insulating thin film is placed at a position away from the small hole by 10 times or more the diameter of the small hole. As a result, a sufficient electric field can be concentrated in the small holes.
  • the diameter of the small pore is 1Z3 or less of the diameter of the cell.
  • the electric field can be sufficiently concentrated on the portion of the cell membrane that contacts the small hole, and only the portion of the cell membrane that contacts the small hole can be permeabilized.
  • the pulse voltage applied between the pair of electrodes is 10 V or less. If a pulse voltage of 10 V or less is used, only the membrane of the small pore portion can be permeated using an electric field concentrated on the small pore without damaging other portions of the cell membrane.
  • the cells can be fixed to the small holes by suction fixation, gravity sedimentation, dielectrophoresis, or electrophoresis.
  • the space continuing to the small hole is sealed except for the small hole portion.
  • the cells are stably fixed in the small holes by sucking the fluid filled in the spaces. can do.
  • surface modification for adhering to the cells is performed around the small holes of the insulating thin film. According to the above configuration, it is possible to positively prevent the destruction generated in the small pore portion of the cell membrane from propagating to the surroundings.
  • the present invention provides a cell clamping device configured as follows.
  • the cell clamp device includes a rosin film made of a photocurable rosin.
  • the resin membrane includes a plurality of sets of openings formed on one main surface of the resin membrane for fixing cells, small holes continuous to the openings, and communication holes communicating with the small holes. Have.
  • the cells are opened by sucking the cells through the small holes and the communication holes. Can be fixed to the mouth. With multiple openings, cells can be clamped at many sites.
  • the cell clamp device can be used for operations such as introducing foreign substances into cells with the cells clamped, and for measuring cell functions such as mechanical, electrical, and chemical responses to stimulation.
  • a substrate that supports the resin film is provided.
  • a conductive film extending along the communication hole is formed on the substrate, the bottom force of the small hole facing the opening.
  • the conductive film can be used as an electrode or an electrical wiring.
  • a pulse voltage between an electrode arranged on the cell side and a conductive film in a state where a small hole and a communication hole are filled with a fluid containing the substance to be introduced into the cell Can be used. It can also be used to measure the potential between the electrode disposed on the cell side and the conductive film.
  • a columnar support member is further provided.
  • the columnar support member includes a base portion disposed along the one main surface, a protrusion portion that faces the opening through the base and protrudes from the base portion to the opposite side of the opening. And a through hole communicating between the tip of the protrusion and the opening.
  • the cell can be supported by the tip of the protrusion of the columnar support member while the base portion of the columnar support member is floated. At this time, cells can be sucked and fixed through the through-holes and small holes of the resin membrane and the communication holes of the columnar support member.
  • the present invention provides a method of forming a flow path configured as follows.
  • the flow path forming method includes first to fourth steps.
  • a light shielding pattern for blocking light transmission is formed on at least one main surface of the transparent substrate.
  • the one main surface or the other main surface of the substrate Apply a photo-curing resin.
  • the substrate is irradiated with light at a different angle from the side opposite to the photocurable resin, and along the light shielding pattern in the photocurable resin.
  • the light transmitting portion of the photocurable resin is hardened by allowing the light to pass through a region other than the extending non-transmitting region.
  • the non-transparent region of the photocurable resin is removed.
  • the light shielding pattern includes at least one of an elongated first portion and a second portion that is continuous with the first portion and extends in a direction substantially perpendicular to the extending direction of the first portion.
  • the non-transmissive region includes at least one of a first region corresponding to the first portion of the light shielding pattern and a second region corresponding to the second portion of the light shielding pattern. The first region extends to the substrate side in the photocurable resin. The second region extends from the substrate side in the photocurable resin to the main surface of the photocurable resin opposite to the substrate.
  • the first region of the non-transmissive region is removed to form a lateral hole extending along the substrate, the second region of the non-transmissive region is removed, and A vertical hole having an opening is formed in the main surface opposite to the substrate of the photocurable resin.
  • the light-shielding pattern may be only the first part or only the second part, or the first part may be plural or the second part may be plural. Furthermore, a plurality of sets of first and second portions may be provided. Further, only one of the horizontal hole and the vertical hole may be formed. According to the above method, it is easier to form the flow path than in the case where another substrate is bonded to the substrate having a groove formed on the main surface.
  • the light shielding pattern is formed on one main surface of the substrate using a conductive material.
  • the photocurable resin is applied to the one main surface of the substrate.
  • a conductive pattern extending along the flow path from the portion facing the opening of the small hole can be formed at the same time. This conductive pattern can be used as an electrode or electrical wiring.
  • the present invention provides a method of forming a flow path configured as follows.
  • the flow path forming method includes first to fourth steps.
  • a photocurable resin is applied to one main surface of the transparent substrate.
  • a mask member having a light shielding pattern is disposed along the other main surface of the substrate.
  • light is irradiated from the mask member side at a different angle with respect to the mask member, and other than the non-transmissive region extending along the light shielding pattern in the photocurable resin.
  • the light-transmitting portion of the photocurable resin is cured so that the light passes through the region.
  • the non-transmissive region of the photocurable resin is removed.
  • the light shielding pattern includes at least a first elongated portion and a second portion that is continuous with the first portion and extends in a direction substantially perpendicular to the extending direction of the first portion. Including one.
  • the non-transparent region is at least one of a first region corresponding to the first portion of the light shielding pattern and a second region corresponding to the second portion of the light shielding pattern. Including. The first region extends to the substrate side in the photocurable resin. The second region extends from the substrate side in the photocurable resin to the main surface of the photocurable resin opposite to the substrate.
  • the first region of the non-transmissive region is removed to form a lateral hole extending along the substrate, the second region of the non-transmissive region is removed, and A vertical hole having an opening is formed in the main surface of the photocurable resin opposite to the substrate.
  • the intracellular substance introducing device of the present invention since the electoral position can be performed regardless of the cell size, highly efficient introduction of the foreign substance is realized. In addition, by arranging a large number of small holes on the insulating thin film, foreign substances can be introduced into a large number of cells simultaneously in parallel.
  • the flow channel can be efficiently formed.
  • FIG. 1 is a cross-sectional view showing a configuration of an intracellular substance introducing device.
  • Example 1 A cross-sectional view showing the configuration of the intracellular substance introducing device.
  • Example 2 A cross-sectional view showing the configuration of the intracellular substance introducing device.
  • FIG. 5 is a cross-sectional view showing a configuration of a cell clamping device. (Example 4)
  • FIG. 6 is a plan view showing the configuration of the cell clamping device. (Example 5)
  • FIG. 7 is a perspective view showing a configuration of a columnar support member. (Example 6)
  • ⁇ 8 This is a cross-sectional view of the main part showing the configuration when a columnar support member is used in the cell clamping device. (Example 6)
  • the intracellular substance introduction device 10a is a water solution of the chamber 1 and the foreign substance 4 filled with a buffer (for example, physiological saline) on both sides of the insulating thin film 2 having the small holes 1.
  • a buffer for example, physiological saline
  • the cell 9 is sucked and fixed on the side of the chamber 1 filled with the buffer of the small hole 1, and a pulse voltage is applied between the electrodes 6 and 7.
  • the insulating thin film 2 needs to separate the fluid between the electrodes 6 and 7, especially when the chamber 5 is sealed except for the portion of the small hole 1. In addition to facilitating suction fixation, liquid leakage from the chamber 15 is eliminated.
  • the insulating thin film 2 is, for example, a SiO film. Specifically, it is necessary to thermally oxidize the Si substrate.
  • the insulating thin film 2 of the SiO film can be obtained by removing by, for example. Remove all Si substrate
  • the remaining Si substrate may be used to support the insulating thin film 2 [0051]
  • a small hole is opened in the organic thin film by laser or photolithography. These can also be used as the insulating thin film 2.
  • the thickness of the insulating thin film 2 is d
  • the dielectric constant is ⁇
  • the distance between the pair of electrodes 6 and 7 is L
  • the dielectric constant ⁇ is 10 milliseconds or less.
  • the small pore In order to obtain a sufficient concentration of electric field and to permeabilize only the portion of the cell membrane that contacts the small pore, the small pore must be sufficiently small compared to the cell diameter, particularly 1Z3 or less of the cell diameter. Is desirable. At this time, the membrane voltage applied to the cell membrane in the portion in contact with the small hole is determined only by the electric field concentration in the small hole portion, and does not depend on the cell diameter. In other words, the use of this device makes it possible to introduce foreign substances independent of the cell diameter.
  • the cell adhesion modifier BAM Biocompatible Examples include Anchor for Membrane (Nippon Yushi Co., Ltd.), poly-D-lysine, phosphates, and fetal bovine serum (FBS).
  • the present method can introduce foreign substances more efficiently than the conventional electroporation, because the allowable range of the voltage that can be applied without killing the cells is wide.
  • the intracellular substance introducing device of the present invention is not limited to the structure shown in FIG. 1. A solution in which two electrodes are in contact with or immersed in an insulating thin film having small holes.
  • Cell fixation is not limited to aspiration, and sedimentation by gravity, electrophoresis, and dielectrophoresis can also be used.
  • FIG. 2 is an example of simultaneous parallel introduction of foreign substances into cells according to the present invention. Insulating thin film 11 A large number of small holes 12 are provided, cells 13 are fixed to each, and a Norse voltage is applied between electrodes 14 and 15 to introduce foreign substance 16 into all cells simultaneously. can do. Therefore, mass parallel measurement and simultaneous measurement of cell membrane potential are possible.
  • the intracellular substance introduction device of the present invention since electrovola- tion independent of the cell diameter is realized, even when the cells have a wide particle size distribution, the foreign substance can be efficiently introduced. Can be introduced.
  • the composition of the solution inside and outside the cell can be taken arbitrarily, and it is possible to measure substances other than substances that have high conductance, lack membrane permeability, and caged substances (substances that are excited and separated by light).
  • Fig. 3 shows a main configuration of the minimum structural unit 20s of the cell clamping device.
  • a rosin film 23 made of an insulating resin is disposed on an upper surface 21a of a transparent substrate 21.
  • the conductive film 22 includes an elongated first portion 22y, and a second portion 22x having a substantially oval shape that extends from both ends of the first portion 22y and extends in a direction substantially perpendicular to the extending direction of the first portion 22y. Including 22z.
  • the conductive film 22 may include other portions connected to the first portion 22y or the second portions 22x and 22z.
  • Openings 24s and 26s are formed on the upper surface 23a of the rosin film 23.
  • the resin film 23 is formed with small holes 24t and 26t continuous to the openings 24s and 26s, and communication holes 25t communicating with the small holes 24t and 26t.
  • the small holes 24t and 26t are the second part of the conductive film 22, respectively.
  • the second portions 22x and 22z of the conductive film 22 are / J, and the bottom surfaces of the tangles 24t and 26t are formed corresponding to the portions 22x and 22z.
  • the communication hole 25t is formed corresponding to the first portion 22y of the conductive film 22, and the first portion 22y of the conductive film 22 becomes the bottom surface of the communication hole 25t.
  • FIG. 4 is a cross-sectional view of the elongated conductive film 22 as viewed in the direction in which the first portion 22y extends.
  • a conductive film 22 having a predetermined pattern is formed on the upper surface 21 a of the transparent substrate 21.
  • a glass substrate is used as the substrate 21.
  • the substrate 21 may be a Si substrate or a resin substrate.
  • the conductive film 22 is formed by applying a photoresist to the substrate 21, transferring the mask pattern, developing, and evaporating A1.
  • a metal other than A1, such as Pt, Au, or Ag, may be deposited. Further, a method other than vapor deposition may be used.
  • a photocurable resin film 23 (specifically, SU-8, a negative resist manufactured by microchem) is applied to the upper surface 21a of the substrate 21.
  • the light irradiating directions 44a and 44b are obliquely inclined with respect to the lower surface 21b of the substrate 21 and are substantially the same when viewed from the direction in which the elongated first portion 22y of the conductive film 22 extends. Two directions are symmetric.
  • a region 44t that does not transmit light is formed in the resin film 23 by being shaded by the conductive film 22.
  • a region 44s that is shaded by the conductive film 21s and does not transmit light is formed in the resin film 23.
  • a region 44k where the two shadow regions 44s and 44t overlap is a non-transmissive region where no light is transmitted.
  • the portion of the resin film 23 other than the non-permeable region 44k is cured.
  • the non-permeable region 44k of the resin film 23 is removed.
  • the non-permeable region 44k of the resin film 23 is eluted by dipping in a developing solution.
  • the non-transmissive region 44k extends along the conductive film 22.
  • the non-transmissive region 44k includes a first region corresponding to the first portion 22y of the conductive film 22, and a second region corresponding to the second portions 22x and 22z of the conductive film 22.
  • the first region of the non-transmissive region 44k has a triangular cross section in the resin film 23, and is only on the glass substrate 21 plate side in the resin film 23. Extend. Therefore, a tunnel-shaped communication hole (lateral hole) 25t having a triangular cross section is formed corresponding to the first region of the non-transmissive region 44k.
  • the second region of the non-transmissive region 44k is a trapezoidal cross section that reaches the upper surface 23a of the resin film 23 in the resin film 23.
  • the resin film 23 extends from the substrate 21 side to the opposite upper surface 23a. Therefore, openings 24s and 26s are formed on the upper surface 23a of the resin film 23, and roughly truncated cone-shaped small holes (vertical holes) 24t and 26t are formed corresponding to the second region of the non-transmissive region 44k. .
  • the resin film 23 has a thickness of 10 m and a communication hole of 25 t.
  • a cell clamping device with a width of 5 m, a diameter of the opening 24s of 3 m, and a diameter of the opening 26s of 6 ⁇ m can be produced.
  • the manufacturing method described above is a large-scale manufacturing method compared to a general method for forming a microchannel (flow channel) in which a substrate is chemically and physically etched or a substrate having a groove is joined.
  • a manufacturing apparatus is unnecessary, the manufacturing process is simple, and the manufacturing cost is low. Therefore, the flow path can be formed efficiently.
  • the electrode and the electrical wiring can be formed simultaneously with the formation of the flow path.
  • the cell clamp device can be used for various applications in a state where a plurality of cell portions are fixed with the small holes.
  • the cell clamp device 20 can also be used as an intracellular substance introduction device if an electrode is disposed above the cell. For example, if a foreign substance is introduced into one part of a cell and a response at the other part of the cell is detected, the substance transport (gap, passage of ions, small molecules (cAMP, cGMP, etc.)) with gap junction is measured. can do.
  • FIG. 6 shows a configuration of the cell clamp device 30 provided with a large number of small holes 34a to 34h.
  • a resin film 33 of an insulating resin smaller than the glass substrate 32 is disposed on a transparent glass substrate 32 in the same manner as the cell clamping device 20s of the minimum structural unit.
  • a plurality of sets of small holes 34a to 34h for cell fixation, communication holes 35a to 35h, and small holes 36a to 36h for suction are formed in the resin 33.
  • the conductive film formed on the glass substrate 32 has a portion for forming small holes 34a to 34h for fixing cells, communication holes 35a to 35h, and small holes 36a to 36h for suction.
  • Extension portions 32a to 32h, and external terminals 31a to 31h provided at the ends of the extension portions 32a to 32h.
  • the cell clamp device 30 irradiates light at a different angle to the photocurable rosin resin film 33, so that the small holes 34a to 34h for cell fixation, the communication holes 35a to 35h, and the small holes for suction are used.
  • the holes 36a to 36h are formed, and at the same time, flow paths are formed corresponding to the extended portions 32a to 32h of the conductive film formed on the glass substrate 32. Therefore, it is preferable to make the extension portions 32a to 32h as narrow as possible. Moreover, it is preferable that the flow path formed corresponding to the extended portions 32a to 32h is blocked by pressing the resin film 33 with a clip or the like, for example.
  • the cell clamp device 30 can be used for various measurements and operations on the cell 80 in a state where a plurality of parts of the cell 80 are clamped.
  • the cell clamp device is used together with the columnar support member 50 as shown in FIGS.
  • the columnar support member 50 includes a plate-like base portion 52, a plurality of columnar projections 54 protruding from the upper surface 52a of the base portion 52, and tip ends 54a of the projections 54. And a through hole 56 penetrating to the lower surface 52b of the base portion 52.
  • the columnar support member 50 can be manufactured, for example, by the method shown in FIG. That is, as shown in FIG. 10 (a), a ring-shaped light shielding pattern is formed on one main surface 60a of the transparent glass substrate 60. Form turn 62. Next, as shown in FIG. 10 (b), a photocurable resin 64 (for example, negative resist SU-8) is spin-coated on the upper surface 60a of the glass substrate 60, and then, as shown by an arrow 61, the glass substrate The parallel light is exposed from the lower surface 60b side of 60 in the direction perpendicular to the lower surface 60b of the glass substrate 60, and the portion through which the light in the resin 64 is transmitted is cured. Next, as shown in FIG.
  • the unexposed portion of the resin 64 is removed to form a cylindrical space 65.
  • the surface 64a of the resin 64 is coated with resin 66 (for example, PDMS; Polydimethylsiloxane) at a predetermined thickness, and the resin 66 is filled into the cylindrical space 65.
  • the resin 6 6 is cured.
  • the resin 66 is separated from the resin 64.
  • the center hole 68 of the force projection 67 is formed in a non-penetrating state
  • the bottom of the center hole 68 is finally covered with a laser.
  • the central hole 68 is penetrated.
  • the columnar support member 50 is disposed along the resin membrane 33 of the cell clamp device 30. As shown in FIG. At this time, each protrusion 54 of the columnar support member 50 is opposed to the opening of the small hole 34 formed on the upper surface of the resin film 33 via the base 52, and the through-hole 56 of the columnar support member 50. Communicates with the small hole 34 of the cell clamping device 30. Suction from the small hole 36 of the cell clamp device 30 by the syringe pump 38 as indicated by an arrow 39, and through the communication hole 35, the small hole 34, and the through hole 56, to the tip 54a of the projection 54 of the columnar support member 50, Adsorb cells.
  • the cell 80 is supported by the protrusions 54 of the columnar support member 50 in a state where it is floating from the base portion 52 of the columnar support member 50.
  • the projection 54 of the columnar support member 50 is configured to have an appropriate rigidity, and the displacement of the tip of the projection 54 is photographed with the camera 58, and the photographed image is analyzed, whereby each part of the cell 80 is analyzed. Measure the displacement.
  • the current passing through the support site of the cell 80 is measured via the conductive film 37 and the external terminal 31. For example, a constant concentration of reagent or molecule is instantaneously introduced around the cell 80, and the response (extracellular concentration jump) of the cell 80 at this time is measured.
  • a plurality of sites of the cell 80 can be stably supported. Further, by supporting the cell to the tip 54 of the protrusion 54 of the columnar support member 50, the support portion of the cell 80 is supported so as not to shift. be able to. Further, due to the deflection of the protrusion 54 of the columnar support member 50, the cell 80 with less restraint on the cell 80 can move with a high degree of freedom. Therefore, the state of each part of the cell 80 can be accurately measured.
  • the intracellular substance introduction apparatus can perform the electoral portposition regardless of the cell size, highly efficient introduction of the foreign substance is realized.
  • foreign substances can be introduced into a large number of cells simultaneously in parallel.
  • the cell clamping device can clamp cells at many sites.
  • the flow path forming method for manufacturing the cell clamping device can efficiently form the flow path.
  • This flow path forming method is not limited to the cell clamping device and can be widely applied to various fields.
  • a positive resist may be used instead of a negative resist for the photocurable resin.
  • the light shielding pattern may be reversed.
  • the shading pattern may be removed after forming the flow path other than the conductive film.
  • a light-shielding pattern for forming the flow path is formed on the other main surface of the transparent substrate coated with a photocurable resin on one main surface, and photocured through the light-shielding pattern. It may be irradiated with light from different angles.
  • a mask member having a light-shielding pattern is disposed along the other main surface of the transparent substrate having a photocurable resin applied to one main surface, and the photocurable resin is provided through the light-shielding pattern of the mask member.
  • the fat may be irradiated with light at different angles. In either case, the non-transmission region where the irradiated light is not transmitted extends along the light shielding pattern with the light shielding pattern force being separated.
  • the intracellular substance introduction device and the cell clamping device of the present invention renew the research method in the field of bioscience, regenerative medicine science, medicine 'drug discovery, including molecular biology. It is a device that enables simple and minimally invasive medical care and tailor-made medical care.
  • the flow path forming method of the present invention includes a cell clamping device, TAS (To tal Analysis Systems) and other micro devices and micro structures using MEMS technology.

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Abstract

 細胞の大きさに依存しないエレクトロポレーションにより、高効率の外来物質の導入を実現することができる細胞内物質導入装置、細胞を多くの部位でクランプすることが可能な細胞クランプ装置、流路を効率よく形成することができる流路の形成方法を提供する。  細胞内物質導入装置10aは、小孔1を有する絶縁性薄膜2と、小孔1に対向して絶縁性薄膜2の両側に配置された一対の電極6,7とを備える。小孔1に細胞9を固定するとともに、空間5に細胞9内に導入したい物質4を含む流体を満たした状態で、電極6,7間にパルス電圧を印加することによって、小孔部分への電界集中を利用して細胞膜を破壊して、細胞9内に物質4を導入する。

Description

細胞内物質導入装置、細胞クランプ装置及び流路の形成方法 技術分野
[0001] 本発明は、細胞内物質導入装置、細胞クランプ装置及び流路の形成方法に関し、 詳しくは、細胞の内部に外来物質を導入するための細胞内物質導入装置、細胞の 機能を評価するための細胞クランプ装置及びそれらの装置の形成に特に好適な流 路の形成方法に関する。
背景技術
[0002] 従来、細胞内に遺伝子等の外来物質を導入するための手法としては、ガラスキヤピ ラリーにより細胞 1つ 1つに注入するマイクロインジェクション法や、細胞懸濁液に電 界を印加して細胞膜を可逆的に破壊 ·透過化することによるエレクト口ポレーシヨン法 が用いられる。
[0003] マイクロインジェクション法は、 1つ 1つの細胞に確実に外来物質を導入できるが、 煩雑な微細操作を伴うため、大量の細胞を処理することは困難である。これに対し、 エレクト口ポレーシヨン法は、大量の細胞を処理するのには向いている。例えば、特許 文献 1には、エレクト口ポレーシヨン法のための細胞用薬液注入器が開示されている
[0004] また、細胞の持つ電気的特性や機械的特性や力学的刺激に対する応答を計測す る手法として、ノ^チクランプ法が一般的である。例えば、ガラス管を熱間で引き抜い て作製したマイクロピペットを細胞表面に接触させて、細胞表面の電気特性の変化を 計測する。
[0005] また、非特許文献 2には、高アスペクト比の構造物を作製できるレジスト SU— 8 (mi crohem社製)を用いて、網目状などのマイクロ構造を形成する技術が開示されて!ヽ る。
特許文献 1:特開平 10— 337177号公報
非特許文献 1 : U.Zimmermann, Electrical breakdown, electropermeabilization and el ectrofusion", Rev. Physiol. Biochem. Pharmacol. 15, p.175— 345 (1986) 非特許文献 2 : Hironobu Sato, Takayuki Kakinuma, Jeung Sang Go and Shuichi Shoji ,〃In- channel 3-D micromesh structures using maskless multi-angle exposures and t heir microfilter application", Sensors and Actuators A: Physical, Volume 111, Issue 1, 1 March 2004, Pages 87-92
発明の開示
発明が解決しょうとする課題
[0006] エレクト口ポレーシヨン法には、以下のような問題点がある。
[0007] 一様電界 Eの中に置かれた半径 aの細胞の細胞膜に力かる膜電圧 V ( 0 )は、 [0008] V ( 0 ) = 1.5 X a X E X cos 0 (1)
m
で与えられる。ただし、 θは、電気力線と半径のなす角である。(非特許文献 1参照)
[0009] 式(1)は、細胞膜に力かる電圧の大きさは、電気力線の最上流側(北極: 0 =0)の 位置および最下流側(南極: θ = π )の位置で最大となり、その値は細胞の半径 aに 比例することを述べている。従って、細胞に一様な電界パルスを印加すると、北極お よび南極の位置での膜がまず破壊されることになる。
[0010] 膜電圧が約 IVとなるような適度なパルス電圧が印加された場合は、この破壊はい わゆる可逆的破壊となり、膜は自復することが知られている。この可逆的破壊の過程 で、膜の透過性が上昇するので、細胞周囲におかれた外来物質が細胞膜内へと取り 込まれることになる。
[0011] し力しながら、過度の電圧が印加された場合は、膜の破壊は非可逆的で自復でき ず、破壊が膜全体に伝搬する結果、細胞自体が破壊され、細胞は死滅することにな る。
[0012] ところで、この膜電圧は式(1)に示すように細胞の半径 aに比例する。一方、細胞は 、その直径は一様ではなぐある広がりをもった分布を持つのが通常である。従って、 多数の細胞の懸濁液に一様なパルス電界を印加した場合には、 a)大きい細胞には 過大な膜電圧が発生し細胞自体が破壊されてしまう、 b)小さ 、細胞にカゝかる膜電圧 は低すぎて膜の透過化が生じず、外来物質が導入されないということになる。すなわ ち、ある範囲の大きさの細胞のみにしか外来物質が導入できない。
[0013] 本発明は、斯かる実情に鑑み、細胞の大きさに依存しないエレクト口ポレーシヨンに より、高効率の外来物質の導入を実現することができる細胞内物質導入装置を提供 しょうとするちのである。
[0014] また、ノツチクランプ法では、多くて 2から 3個のガラス管を細胞に接続することが限 界であり、細胞内の物質移動や細胞間の物質移動およびより小さな細胞内'細胞間 の作用を計測することは困難である。
[0015] 本発明は、斯かる実情に鑑み、細胞を多くの部位でクランプすることが可能な細胞 クランプ装置を提供しょうとするものである。
[0016] さらに、細胞内物質導入装置や細胞クランプ装置では、流路を形成する必要がある
。一般には、主面に溝を形成した基板に他の基板を接合する方法で流路が形成され る。しかし、この方法では、基板の反りなどにより接合不良が生じやすぐ流路を効率 よく形成することが困難である。
[0017] 本発明は、斯かる実情に鑑み、流路を効率よく形成することができる流路の形成方 法を提供しょうとするものである。
課題を解決するための手段
[0018] 本発明は、上記課題を解決するために、以下のように構成した細胞内物質導入装 置を提供する。
[0019] 細胞内物質導入装置は、小孔を有する絶縁性薄膜と、前記小孔に対向して前記絶 縁性薄膜の両側に配置された一対の電極とを備える。細胞内物質導入装置は、前 記絶縁性薄膜に関して一方の領域において前記小孔に細胞を固定するとともに、前 記絶縁性薄膜に関して他方の領域において前記小孔に連続する空間に前記細胞 内に導入した 、物質を含む流体を満たした状態で、前記一対の電極間にパルス電 圧を印加することによって前記細胞の細胞膜を破壊して前記細胞内に前記物質を導 入する。
[0020] 上記構成において、一対の電極間にパルス電圧を印加すると、絶縁性薄膜に設け た小孔に電界が集中するので、小孔に接した細胞膜を可逆的あるいは非可逆的に 破壊して、小孔に連続する空間に満たした流体中に含まれる物質を、細胞内に導入 することができる。
[0021] エレクト口ポレーシヨンに実際に用いられるパルス幅の電圧に対して小孔部分に電 界集中が生じるためには、絶縁性薄膜の厚さを d、誘電率を ε、前記一対の電極の 間隔を L、流体の抵抗率を pとした時、系の時定数 τ = ε p LZdが 10ミリ秒以下とな るように、前記絶縁性薄膜の厚さ d、前記誘電率 ε、前記一対の電極の間隔 L、前記 流体の抵抗率 pを選ぶこと力 好ましい。
[0022] 好ましくは、前記絶縁性薄膜の細胞が存在する側に置かれた電極が、前記小孔ょ り、前記小孔直径の 10倍以上離れた位置に置く。これにより、小孔に十分な電界を 集中することができる。
[0023] 好ましくは、前記小孔の直径が、前記細胞の直径の 1Z3以下である。この場合、細 胞膜の小孔に接する部分に十分に電界を集中し、細胞膜の小孔に接する部分のみ を透過化することができる。
[0024] 好ましくは、前記一対の電極間に印加する前記パルス電圧が 10V以下である。 10 V以下のパルス電圧を用いれば、細胞膜の他の部分にダメージを与えることなぐ小 孔に集中した電界を用いて、小孔部分の膜のみを透過化することができる。
[0025] 小孔への細胞の固定は、吸引固定、もしくは重力による沈降、誘電泳動,電気泳動 を利用することも可能である
[0026] 好ましくは、前記絶縁性薄膜に関して前記他方の領域において、前記小孔に連続 する前記空間が、前記小孔の部分を除いて密閉される。上記構成によれば、小孔に 連続する空間が、前記小孔の部分を除いて密閉されているので、空間に満たされる 流体を吸引することにより、小孔での細胞の固定を安定ィ匕することができる。
[0027] 好ましくは、前記絶縁性薄膜の前記小孔周辺に、前記細胞に接着する表面修飾を 施す。上記構成によれば、細胞膜の小孔部分で発生した破壊が周囲に伝搬すること を、積極的に防止することができる。
[0028] 本発明は、上記課題を解決するために、以下のように構成した細胞クランプ装置を 提供する。
[0029] 細胞クランプ装置は、光硬化性榭脂からなる榭脂膜を備える。該榭脂膜は、該榭脂 膜の一方の主面に形成された、細胞を固定するための開口と、該開口に連続する小 孔と、該小孔に連通する連通孔とを複数組有する。
[0030] 上記構成において、小孔及び連通孔を介して細胞を吸引することにより、細胞を開 口に固定することができる。複数の開口を備えるので、細胞を多くの部位でクランプ することが可能である。細胞クランプ装置は、細胞をクランプした状態で、外来物質を 細胞内に導入するなどの操作や、刺激に対する機械的、電気的、化学的な応答など の細胞機能の測定などに用いることができる。
[0031] 好ましくは、前記榭脂膜を支持する基板を備える。該基板に、前記開口に対向する 前記小孔の底面力 前記連通孔に沿って延在する導電膜が形成される。
[0032] 上記構成によれば、導電膜は、電極や電気配線として用いることができる。例えば 、細胞内に導入したい物質を含む流体を小孔及び連通孔に満たした状態で、細胞 側に配置した電極と導電膜との間にパルス電圧を印加し、細胞内に物質を導入する ために用いることができる。また、細胞側に配置した電極と導電膜との間の電位ゃ電 流を計測するために用いることもできる。
[0033] 好ましくは、柱状支持部材をさらに備える。前記柱状支持部材は、前記一方の主面 に沿って配置されるベース部と、前記ベースを介して前記開口に対向し、前記べ一 ス部から前記開口とは反対側に突出する突起部と、前記突起部の先端と前記開口と の間を連通する貫通孔とを有する。
[0034] 上記構成にお 、て、柱状支持部材の突起部の先端により、細胞を、柱状支持部材 のベース部力 浮いた状態で支持することができる。このとき、榭脂膜の貫通孔及び 小孔と柱状支持部材の連通孔とを介して、細胞を吸引固定することができる。
[0035] 上記構成によれば、柱状支持部材の突起部の先端から細胞内に外来物質を瞬時 に導入したときの応答 (細胞内濃度ジャンプ)以外に、細胞の周囲に、一定濃度の試 薬や分子などを瞬時に導入したときの応答 (細胞外濃度ジャンプ)を測定することが できる。応答は、柱状支持部材の突起部ごとの電位や電流値のほか、応答に伴う突 起部の橈み (変形、変位)を測定することができる。
[0036] また、本発明は、上記課題を解決するために、以下のように構成した流路の形成方 法を提供する。
[0037] 流路の形成方法は、第 1ないし第 4のステップを備える。前記第 1のステップにおい て、透明な基板の少なくとも一方の主面に、光の透過を阻止する遮光パターンを形 成する。前記第 2のステップにおいて、前記基板の前記一方の主面又は他方の主面 に光硬化性榭脂を塗布する。前記第 3のステップにおいて、前記基板に関して前記 光硬化性榭脂とは反対側から、前記基板に対して異なる角度で光を照射し、前記光 硬化性榭脂内において、前記遮光パターンに沿って延在する非透過領域以外の領 域を前記光が透過するようにして、前記光硬化性榭脂の前記光が透過した部分を硬 化させる。前記第 4のステップにおいて、前記前記光硬化性榭脂の前記非透過領域 を除去する。前記第 1のステップにおいて、前記遮光パターンは、細長い第 1部分と、 該第 1部分に連続しかつ該第 1部分の延在方向に対して略直角方向に広がった第 2 部分との少なくとも一方を含む。前記第 3のステップにおいて、前記非透過領域は、 前記遮光パターンの前記第 1部分に対応する第 1領域と、前記遮光パターンの前記 第 2部分に対応する第 2領域との少なくとも一方を含む。前記第 1領域は、前記光硬 化性榭脂内の前記基板側に延在する。前記第 2領域は、前記光硬化性榭脂内の前 記基板側から前記光硬化性榭脂の前記基板とは反対側の主面まで延在する。前記 第 4のステップにおいて、前記非透過領域の前記第 1領域を除去して、前記基板に 沿って延在する横孔を形成し、前記非透過領域の前記第 2領域を除去して、前記前 記光硬化性榭脂の前記基板とは反対側の前記主面に開口を有する縦孔を形成する
[0038] 上記方法にお!、て、遮光パターンは、第 1部分のみ又は第 2部分のみであっても、 第 1部分が複数であっても、第 2部分が複数であってもよい。さらには、複数組の第 1 部分及び第 2部分を備えてもよい。また、横孔又は縦孔のいずれか一方のみの流路 を形成してもよい。上記方法によれば、主面に溝を形成した基板に他の基板を接合 する場合に比べ、流路の形成が簡単である。
[0039] 好ましくは、前記第 1のステップにおいて、前記基板の一方の主面に、導電材料を 用いて前記遮光パターンを形成する。前記第 2のステップにおいて、前記基板の前 記一方の主面に前記光硬化性榭脂を塗布する。この場合、小孔の開口に対向する 部分から流路に沿って延在する導電パターンを同時に形成することができる。この導 電パターンは、電極や電気配線として用いることができる。
[0040] また、本発明は、上記課題を解決するために、以下のように構成した流路の形成方 法を提供する。 [0041] 流路の形成方法は、第 1ないし第 4のステップを備える。前記第 1のステップにおい て、透明な基板の一方の主面に光硬化性榭脂を塗布する。前記第 2のステップにお いて、前記基板の他方の主面に沿って、遮光パターンを有するマスク部材を配置す る。前記第 3のステップにおいて、前記マスク部材側から、前記マスク部材に対して異 なる角度で光を照射し、前記光硬化性榭脂内において、前記遮光パターンに沿って 延在する非透過領域以外の領域を前記光が透過するようにして、前記光硬化性榭 脂の前記光が透過した部分を硬化させる。前記第 4のステップにおいて、前記前記 光硬化性榭脂の前記非透過領域を除去する。前記第 1のステップにおいて、前記遮 光パターンは、細長い第 1部分と、該第 1部分に連続しかつ該第 1部分の延在方向 に対して略直角方向に広がった第 2部分との少なくとも一方を含む。前記第 3のステ ップにおいて、前記非透過領域は、前記遮光パターンの前記第 1部分に対応する第 1領域と、前記遮光パターンの前記第 2部分に対応する第 2領域との少なくとも一方 を含む。前記第 1領域は、前記光硬化性榭脂内の前記基板側に延在する。前記第 2 領域は、前記光硬化性榭脂内の前記基板側から前記光硬化性榭脂の前記基板とは 反対側の主面まで延在する。前記第 4のステップにおいて、前記非透過領域の前記 第 1領域を除去して、前記基板に沿って延在する横孔を形成し、前記非透過領域の 前記第 2領域を除去して、前記前記光硬化性榭脂の前記基板とは反対側の前記主 面に開口を有する縦孔を形成する。
発明の効果
[0042] 本発明の細胞内物質導入装置によれば、細胞の大きさに関係なくエレクト口ポレー シヨンが行えるため、高効率の外来物質の導入が実現される。また、絶縁性薄膜の上 に多数の小孔を配列することにより、大量の細胞に同時並列的に外来物質を導入す ることがでさる。
[0043] また、本発明の細胞クランプ装置によれば、細胞を多くの部位でクランプすることが 可能である。
[0044] さらに、本発明流路の形成方法によれば、流路を効率よく形成することができる。
図面の簡単な説明
[0045] [図 1]細胞内物質導入装置の構成を示す断面図である。(実施例 1) 圆 2]細胞内物質導入装置の構成を示す断面図である。(実施例 2)
圆 3]細胞クランプ装置の最小構成単位を示す説明図である。(実施例 3) 圆 4]照射の説明図である。(実施例 3)
圆 5]細胞クランプ装置の構成を示す断面図である。(実施例 4)
圆 6]細胞クランプ装置の構成を示す平面図である。(実施例 5)
圆 7]柱状支持部材の構成を示す斜視図である。(実施例 6)
圆 8]細胞クランプ装置に柱状支持部材を用いたときの構成を示す要部断面である。 (実施例 6)
圆 9]細胞クランプ装置に柱状支持部材を用いた計測の説明図である。(実施例 6) 圆 10]柱状支持部材の製作方法の説明面である。(実施例 6)
符号の説明
1 小孔
2 絶縁性薄膜
6, 7 電極
9 細胞
10a, 10b 細胞内物質導入装置
11 絶縁性薄膜
12 小孔
14, 15 電極
20 細胞クランプ装置
21 基板
22, 22a, 22b 導電膜
23 榭脂膜
24s 開口
24a, 24b, 24t 小孔(縦孔)
25a, 25b, 25t 連通孔(横孔)
30 細胞クランプ装置
32 基板 33 榭脂膜
34a〜34h 小孔(縦孔)
35a〜35h 連通孔 (横孔)
50 柱状支持部材
52 ベース部
54 突起部
54a 先端
56 貝通孑し
80 細胞
発明を実施するための最良の形態
[0047] 以下、本発明の実施の形態として実施例について図 1〜図 10を参照しながら説明 する。
[0048] まず、細胞内物質導入装置について、図 1及び図 2を参照しながら説明する。
[0049] 図 1に示すように、細胞内物質導入装置 10aは、小孔 1を持つ絶縁性薄膜 2の両側 に、バッファー(例えば生理食塩水)を満たしたチャンバ一 3および外来物質 4の水溶 液を満たしたチャンバ一 5があり、各々に電極 6および 7が接触している。 8は電極を 保持するためのスぺーサで、電極とともにチャンバ一壁を兼ねている。小孔 1のバッ ファーを満たしたチャンバ一 3の側に、細胞 9を吸引固定し、電極 6と 7の間にパルス 電圧を印加する。なお、絶縁性薄膜 2は、電極 6, 7間の流体を分離する必要がある 力 特にチャンバ一 5が小孔 1の部分を除いて密閉されている場合には、細胞 9を小 孔 1に吸引固定することが容易になる上、チャンバ一 5からの液漏れもなくなる。
[0050] 絶縁性薄膜 2は、例えば、 SiO膜である。具体的には、 Si基板を熱酸化すること〖こ
2
SiO膜を形成し、 SiO膜にフォトレジストを塗布してマスクパターンを転写した後、現
2 2
像を行い、 SiO膜の小孔 1となる部分をエッチングし、最後に、 Si基板をエッチング
2
等により除去することにより、 SiO膜の絶縁性薄膜 2が得られる。 Si基板を全部除去
2
するのではなく一部を残し、残した Si基板で絶縁性薄膜 2を支持するようにしてもょ ヽ [0051] または、有機薄膜に、レーザーまたはフォトリソグラフィ一によつて小孔を開口したも のを、絶縁性薄膜 2として用いることも可能である。
[0052] 図 1にお 、て点線で示したように、絶縁性薄膜 2の厚さを d、誘電率を ε、一対の電 極 6, 7の間隔を L、チャンバ一 3, 5内の流体の抵抗率を pとした時、系の時定数 τ = ε β LZdが 10ミリ秒以下となるように、絶縁性薄膜 2の厚さ d、誘電率 ε、一対の電 極 6, 7の間隔 L、チャンバ一 3, 5内の流体の抵抗率 pを選んだ条件下では、電気力 線 10は絶縁性薄膜 2を通過することができないので、小孔 1を通ることになる。すなわ ち、電気力線 10が収束するため、小孔の位置での電界強度が、溶液中での電界強 度に比べて極めて強くなる。これにより、細胞膜の小孔に接している部分にのみ、ェ レクト口ポレーシヨンすなわち膜の透過化が生じ、チャンバ一 5の中にある外来物質 4 力 拡散または電気泳動により、細胞内へと導入されることになる。
[0053] 十分な電界の集中を得て、細胞膜の小孔に接する部分のみを透過化するために は、小孔が細胞直径に比して十分小さいこと、特に細胞直径の 1Z3以下であること が望ましい。この時、小孔に接する部分の細胞膜に力かる膜電圧は、小孔部分の電 界集中によってのみ決まり、細胞の直径に依存しない。すなわち、本装置を用いれ ば、細胞の直径に依存しない外来物質の導入が可能になる。
[0054] ここで、一対の電極 6, 7間に 10V以下の適度なパルス電圧を選択すれば、小孔 1 に接した部分の膜が可逆的に破壊され、自復するため、細胞に大きなダメージを与 えることなく外来物質の導入が可能になる。溶液中に懸濁された細胞にパルス電圧 を印加する通常のエレクト口ポレーシヨンの場合には、細胞膜の部分的破壊が細胞 全体に伝搬して、細胞全体の破壊 '死滅につながる力 本装置の場合には、細胞膜 が絶縁性薄膜に固定されているので、小孔部分力 発生する破壊の伝搬が生じにく い。さらに積極的にこの伝搬を防止するためには、小孔周辺の薄膜に細胞接着性の 表面修飾を施すことが有効で、それを行うための物質としては、たとえば細胞付着性 修飾剤 BAM (Biocompatible Anchor for Membrane;日本油脂株式会社)、 ポリ—D—リジン(poly—D— lysine)、リン酸塩(phosphates)、ゥシ胎仔血清(FBS ; fetal bovine serum)が例示される。このことにより、本法は、通常のエレクトロポ レーシヨンに比して、細胞を死滅させずに印加できる電圧の許容範囲が広ぐひいて は高 、効率での外来物質導入が行える。 [0055] なお、本発明の細胞内物質導入装置は図 1に示した構造に限定されるものではな ぐ小孔を持つ絶縁性薄膜の両側に 2つの電極と接するあるいは電極を浸漬した溶 液がありさえすれば、スぺーサ 8や電極 6, 7によってチャンバ一壁を構成する必要も なぐチャンバ一 3とチャンバ一 5が電気的に絶縁されていない構造でも、電気力線 の集中は生ずるので、適用可能である。細胞の固定も吸引に限定されるものではなく 、重力による沈降、電気泳動、誘電泳動を利用することも可能である。
[0056] 図 2は、本発明による、外来物質の細胞への同時並列導入の例である。絶縁性薄 膜 11多数の小孔 12を設け、各々に細胞 13を固定して、電極 14と 15の間にノルス 電圧を印加することにより、外来物質 16をすベての細胞内に同時に導入することが できる。したがって、大量並列測定や、細胞膜電位の同時計測が可能である。
[0057] 本発明の細胞内物質導入装置によれば、細胞の直径に依存しないエレクトロボレ ーシヨンが実現されるので、細胞が広い粒径分布を持つ場合にも、高い効率での外 来物質の導入が行える。また、細胞内外の溶液組成が任意にとれ、コンダクタンスが 大きぐ膜透過性がない物質や、 caged物質 (光などで励起 '分離し発現する物質) 以外の物質に対する測定が可能である。
[0058] 次に、細胞クランプ装置について、図 3〜図 10を参照しながら説明する。
[0059] 図 3に、細胞クランプ装置の最小構成単位 20sの要部構成を示す。
[0060] 細胞クランプ装置は、透明な基板 21の上面 21aに、絶縁性の樹脂からなる榭脂膜 23が配置されている。
[0061] 基板 21の上面 21aには、光の透過を阻止するとともに導電性を有する導電膜 22が 形成されている。導電膜 22は、細長い第 1部分 22yと、第 1部分 22yの両端に連続し かつ第 1部分 22yの延在方向に対して略直角方向に広がった略長円形状の第 2部 分 22x, 22zとを含む。導電膜 22は、第 1部分 22y又は第 2部分 22x, 22zに接続さ れた他の部分を含んでもょ 、。
[0062] 榭脂膜 23の上面 23aには、開口 24s, 26sが形成され、例えば、一方の開口 24sに 細胞を固定し、他方の開口 26sからシリンジポンプや真空ポンプなどで吸引を行う。 榭脂膜 23には、開口 24s, 26sに連続する小孔 24t, 26tと、小孔 24t, 26tに連通す る連通孔 25tとが形成されている。小孔 24t, 26tは、それぞれ、導電膜 22の第 2部 分 22x, 22zに対応して形成され、導電膜 22の第 2咅分 22x, 22zは/ J、孑し 24t, 26t の底面となる。連通孔 25tは、導電膜 22の第 1部分 22yに対応して形成され、導電膜 22の第 1部分 22yは連通孔 25tの底面となる。
[0063] 次に、製造方法について、図 4を参照しながら説明する。図 4は、大略、導電膜 22 の細長 、第 1部分 22yが延在する方向に見た断面図である。
[0064] まず、透明な基板 21の上面 21aに、所定パターンの導電膜 22を形成する。具体的 には、基板 21にはガラス基板を用いる。基板 21に Si基板ゃ榭脂基板を用いてもよい 。導電膜 22は、基板 21にフォトレジストを塗布し、マスクパターンを転写した後、現像 し、 A1を蒸着することにより形成する。 Pt、 Au、 Agなど、 A1以外の金属を蒸着しても よい。また、蒸着以外の方法によってもよい。
[0065] 次いで、基板 21の上面 21aに光硬化性の榭脂膜 23 (具体的には、 microchem社 製のネガレジストである SU— 8)を塗布する。
[0066] 次いで、矢印 44a, 44bで示すように、基板 21の下面 21b側(すなわち、基板 21に 関して榭脂膜 23とは反対側)から、基板 21の下面 21bに対して異なる角度で光を照 射し、榭脂膜 23の光が透過した部分を硬化させる。
[0067] このとき、光を照射する方向 44a, 44bは、導電膜 22の細長い第 1部分 22yが延在 する方向から見ると、基板 21の下面 21bに対して斜めに傾き、かつ、互いに略対称と なる 2方向である。矢印 44aで示す方向力も光を照射したとき、榭脂膜 23内には、導 電膜 22によって影となり、光が透過しない領域 44tが形成される。一方、矢印 44bで 示す方向から光を照射したとき、榭脂膜 23内には、導電膜 21sによって影となり、光 が透過しない領域 44sが形成される。 2つの影の領域 44s, 44tが重なり合う領域 44k は、光が全く透過しない非透過領域となる。榭脂膜 23は、非透過領域 44k以外の部 分が硬化する。
[0068] 具体的には、紫外線の照射方向に対して基板 21を ±45° 傾けて配置した状態で 、露光装置を用いて紫外線の平行光を、基板 21側力も榭脂膜 23に照射した後、榭 脂膜 23の SU— 8が硬化を開始する温度よりも高い温度 (例えば、 95°C)まで加熱す る。
[0069] 次いで、榭脂膜 23の非透過領域 44kを除去する。榭脂膜 23が SU— 8の場合には 、現像液に浸して、榭脂膜 23の非透過領域 44kを溶出させる。
[0070] 非透過領域 44kは、導電膜 22に沿って延在する。非透過領域 44kは、導電膜 22 の第 1部分 22yに対応する第 1領域と、導電膜 22の第 2部分 22x, 22zに対応する第 2領域と含む。
[0071] 導電膜 22の第 1部分 22yの幅が狭いので、非透過領域 44kの第 1領域は、榭脂膜 23内において断面三角形となり、榭脂膜 23内のガラス基 21板側にのみ延在する。 そのため、非透過領域 44kの第 1領域に対応して断面三角形のトンネル状の連通孔 (横孔) 25tが形成される。
[0072] 一方、導電膜 22の第 2部分 22x, 22zの幅が広いので、非透過領域 44kの第 2領 域は、榭脂膜 23内において榭脂膜 23の上面 23aにまで達する断面台形となり、榭 脂膜 23内の基板 21側カゝら反対側の上面 23aまで延在する。そのため、榭脂膜 23の 上面 23aに開口 24s, 26sが形成され、非透過領域 44kの第 2領域に対応して、大略 、円錐台状の小孔 (縦孔) 24t, 26tが形成される。
[0073] 例えば、基板 21にガラス基板を用い、榭脂膜 23に SU— 8を用い、導電膜 22として A1を蒸着することにより、榭脂膜 23の膜厚が 10 m、連通孔 25tの幅が 5 m、開口 24sの直径が 3 m、開口 26sの直径が 6 μ mとなる細胞クランプ装置を製作すること ができる。
[0074] 上記の製造方法は、基板を化学的、物理的にエッチングしたり、溝を形成した基板 を接合したりする一般的なマイクロチャネル (流路)の形成方法に比べ、大規模な製 造装置が不要であり、製造工程が簡単であり、製造コストも少なくてすむ。したがって 、流路を効率よく形成することができる。また、流路の形成と同時に、電極や電気配 線ち形成することができる。
[0075] 細胞クランプ装置は、複数の小孔及び連通孔を備えることにより、細胞の複数の部 位を小孔で固定した状態で、種々の用途に用いることができる。
[0076] 図 5に示すように、細胞クランプ装置 20力 第 1組の小孔 24a, 26a及び連通孔 25 aと、第 2組の小孔 24b, 26b及び連通孔 25bとを備える場合、小孔 26a, 26bに設け たシリンジポンプ 28a, 28bで矢印 29a, 29bで示すように吸引し、細胞 80の 2つの部 位を小孔 24a, 24bに固定し、小孔 24a, 24bを通る電流を、導電膜 22a, 22b、外部 端子 22p, 22qを介して電流計 30a, 30bで計測する。
[0077] 細胞クランプ装置 20は、細胞の上方に電極を配置すれば、細胞内物質導入装置 として用いることもできる。例えば、細胞の一方の部位力 外来物質を導入し、細胞の 他方の部位での応答を検知すれば、ギャップ結合を有する物質輸送 (イオン、小分 子(cAMP, cGMP他)の通過)を測定することができる。
[0078] 図 6に、多数の小孔 34a〜34hを設けた細胞クランプ装置 30の構成を示す。
[0079] 細胞クランプ装置 30は、最小構成単位の細胞クランプ装置 20sと同様に、透明な ガラス基板 32に、ガラス基板 32より小さい絶縁性榭脂の榭脂膜 33が配置されている 。榭脂 33には、複数組の細胞固定用の小孔 34a〜34h、連通孔 35a〜35h、吸引 用の小孔 36a〜36hが形成されている。ガラス基板 32上に形成される導電膜は、細 胞固定用の小孔 34a〜34h、連通孔 35a〜35h、吸引用の小孔 36a〜36hを形成 する部分のほか、これらの部分力 延長された延長部分 32a〜32hと、延長部分 32a 〜32hの端部に設けられた外部端子 31a〜31hとを含む。
[0080] 細胞クランプ装置 30は、光硬化性榭脂の榭脂膜 33に異なる角度で光を照射する ことによって、細胞固定用の小孔 34a〜34h、連通孔 35a〜35h、吸引用の小孔 36a 〜36hが形成されるが、同時に、ガラス基板 32上に形成される導電膜の延長部分 3 2a〜32hに対応して流路が形成される。そのため、延長部分 32a〜32hはできるだ け幅を狭くすることが好ましい。また、延長部分 32a〜32hに対応して形成される流 路は、例えばクリップ等で榭脂膜 33を押さえて塞ぐことが好ましい。
[0081] 細胞クランプ装置 30は、細胞 80の複数の部位をクランプした状態で、種々の計測 や細胞 80に対する操作のために用いることができる。
[0082] 細胞クランプ装置は、図 7〜図 10に示すように、柱状支持部材 50とともに用いるこ とちでさる。
[0083] 図 7に示すように、柱状支持部材 50は、板状のベース部 52と、ベース部 52の上面 52aから突出した複数の柱状の突起部 54と、各突起部 54の先端 54aからベース部 5 2の下面 52bまで貫通する貫通孔 56とを有する。
[0084] 柱状支持部材 50は、例えば図 10に示す方法で作製することができる。すなわち、 図 10 (a)に示すように、透明なガラス基板 60の一方の主面 60aに、リング状の遮光パ ターン 62を形成する。次いで、図 10 (b)に示すように、ガラス基板 60の上面 60aに 光硬化性榭脂 64 (例えば、ネガレジスト SU— 8)をスピンコートした後、矢印 61で示 すように、ガラス基板 60の下面 60b側から、ガラス基板 60の下面 60bに垂直方向に 、平行光を露光し、榭脂 64内の光が透過した部分を硬化させる。次いで、図 10 (c) に示すように、榭脂 64の未露光部分を除去し、筒状の空間 65を形成する。次いで、 図 10 (c)に示すように、榭脂 64の上面 64aに、所定厚さで榭脂 66 (例えば、 PDMS ; Polydimethylsiloxane)を塗布し、榭脂 66を筒状の空間 65に充填した後、榭脂 6 6を硬化させる。そして、図 10 (d)に示すように、榭脂 66を榭脂 64から分離する。この とき、榭脂 66には、筒状の突起部 67が形成される力 突起部 67の中心孔 68は非貫 通の状態であるので、最後に、中心孔 68底をレーザーでカ卩ェし、中心孔 68を貫通さ せる。
[0085] 図 8に示すように、柱状支持部材 50は、細胞クランプ装置 30の榭脂膜 33に沿って 配置される。このとき、柱状支持部材 50の各突起部 54は、それぞれ、ベース部 52を 介して、榭脂膜 33の上面に形成された小孔 34の開口に対向し、柱状支持部材 50の 貫通孔 56は、細胞クランプ装置 30の小孔 34と連通する。細胞クランプ装置 30の小 孔 36からシリンジポンプ 38により矢印 39で示すように吸引し、連通孔 35、小孔 34、 貫通孔 56を介して、柱状支持部材 50の突起部 54の先端 54aに、細胞を吸着するこ とがでさる。
[0086] このとき、図 9に示すように、細胞 80は、柱状支持部材 50のベース部 52から浮いた 状態で、複数の部位が柱状支持部材 50の突起部 54で支持される。柱状支持部材 5 0の突起部 54が適宜な剛性を有するように構成し、突起部 54の先端の変位を、カメ ラ 58で撮影し、撮影画像を分析することによって、細胞 80の各部位の変位を計測す る。あるいは、導電膜 37、外部端子 31を介して、細胞 80の支持部位を通る電流を計 測する。例えば、細胞 80の周囲に一定濃度の試薬や分子などを瞬時に導入し、この ときの細胞 80の応答 (細胞外濃度ジャンプ)を計測する。
[0087] 柱状支持部材 50と細胞クランプ装置 30とを組み合わせることによって、細胞 80の 複数の部位を安定して支持することができる。また、柱状支持部材 50の突起部 54の 先端 54に細胞を吸着することにより、細胞 80の支持部位がずれないように支持する ことができる。また、柱状支持部材 50の突起部 54のたわみによって、細胞 80に対す る拘束が少なぐ細胞 80は高い自由度で動くことができる。したがって、細胞 80の各 部位の状態を正確に計測することができる。
[0088] 以上に説明したように、細胞内物質導入装置は、細胞の大きさに関係なくエレクト口 ポレーシヨンが行えるため、高効率の外来物質の導入が実現される。また、絶縁性薄 膜の上に多数の小孔を配列することにより、大量の細胞に同時並列的に外来物質を 導人することができる。
[0089] また、細胞クランプ装置は、細胞を多くの部位でクランプすることが可能である。
[0090] さらに、細胞クランプ装置を製作する流路の形成方法は、流路を効率よく形成する ことができる。この流路の形成方法は、細胞クランプ装置に限らず、種々の分野に広 く適用することがでさる。
[0091] なお、本発明は、上記した実施の形態に限定されるものではなぐ種々変更を加え て実施することができる。
[0092] 例えば、光硬化性榭脂に、ネガレジストの代わりに、ポジレジストを用いてもょ 、。こ の場合、遮光パターンは反転すればよい。遮光パターンは、導電膜以外でもよぐ流 路形成後に除去するようにしてもょ 、。
[0093] また、流路の形成を行うための遮光パターンを、一方の主面に光硬化性榭脂を塗 布した透明な基板の他方の主面に形成し、遮光パターンを介して光硬化性榭脂〖こ 異なる角度で光を照射してもよい。また、遮光パターンを有するマスク部材を、一方の 主面に光硬化性榭脂を塗布した透明な基板の他方の主面に沿って配置し、マスク部 材の遮光パターンを介して光硬化性榭脂に異なる角度で光を照射してもよい。いず れの場合も、照射した光が透過しない非透過領域は、遮光パターン力 離れた状態 で、遮光パターンに沿って延在する。
産業上の利用可能性
[0094] 本発明の細胞内物質導入装置及び細胞クランプ装置は、分子生物学をはじめ、生 理学 ·再生医科学 ·医療 '創薬の分野の研究方法を一新するものであると同時に、ポ イントォブケア一やテーラーメード医療をより簡便かつ低侵襲に行うことを可能にする デバイスである。また、本発明の流路の形成方法は、細胞クランプ装置、 TAS (To tal Analysis Systems)など、 MEMS技術を利用したマイクロデバイスやマイクロ 構造物などの製作に用いることができる。

Claims

請求の範囲
[1] 小孔を有する絶縁性薄膜と、
前記小孔に対向して前記絶縁性薄膜の両側に配置された一対の電極とを備え、 前記絶縁性薄膜に関して一方の領域において前記小孔に細胞を固定するとともに 、前記絶縁性薄膜に関して他方の領域において前記小孔に連続する空間に前記細 胞内に導入した 、物質を含む流体を満たした状態で、前記一対の電極間にパルス 電圧を印加することによって生ずる小孔部分への電界集中を利用して、前記細胞の 細胞膜を破壊して前記細胞内に前記物質を導入することを特徴とする、細胞内物質 導入装置。
[2] 前記絶縁性薄膜の厚さを d、誘電率を ε、前記一対の電極の間隔を L、流体の抵 抗率を pとした時、系の時定数 τ = ε p LZdが 10ミリ秒以下となるように、前記絶縁 性薄膜の厚さ d、前記誘電率 ε、前記一対の電極の間隔 L、前記流体の抵抗率 pが 選ばれたことを特徴とする、請求項 2に記載の細胞内物質導入装置。
[3] 前記一対の電極のうち、前記絶縁性薄膜の細胞が存在する側に置かれた電極が、 前記小孔より、前記小孔直径の 10倍以上離れた位置に置かれていることを特徴とす る、請求項 1又は 2に記載の細胞内物質導入装置。
[4] 前記小孔の直径が、前記細胞の直径の 1Z3以下であることを特徴とする、請求項
1、 2又は 3に記載の細胞内物質導入装置。
[5] 前記一対の電極間に印加する前記パルス電圧が 10V以下であることを特徴とする
、請求項 1な!、し 4の 、ずれか一つに記載の細胞内物質導入装置。
[6] 前記絶縁性薄膜に関して前記他方の領域において、前記小孔に連続する前記空 間力 前記小孔の部分を除いて密閉されることを特徴とする、請求項 1ないし 5のい ずれか一つに記載の細胞内物質導入装置。
[7] 前記絶縁性薄膜の前記小孔周辺に、前記細胞に接着する表面修飾を施したことを 特徴とする、請求項 1ないし 6のいずれか一つに記載の細胞内物質導入装置。
[8] 光硬化性榭脂からなる榭脂膜を備え、
該榭脂膜は、
該榭脂膜の一方の主面に形成された、細胞を固定するための開口と、 該開口に連続する小孔と、
該小孔に連通する連通孔とを複数組有することを特徴とする、細胞クランプ装置。
[9] 前記榭脂膜を支持する基板を備え、
該基板に、前記開口に対向する前記小孔の底面力 前記連通孔に沿って延在す る導電膜が形成されたことを特徴とする、請求項 8に記載の細胞クランプ装置。
[10] 前記一方の主面に沿って配置されるベース部と、
前記ベースを介して前記開口に対向し、前記ベース部から前記開口とは反対側に 突出する突起部と、
前記突起部の先端と前記開口との間を連通する貫通孔とを有する、柱状支持部材 をさらに備えたことを特徴とする、請求項 8又は 9に記載の細胞クランプ装置。
[11] 透明な基板の少なくとも一方の主面に、光の透過を阻止する遮光パターンを形成 する第 1のステップと、
前記基板の前記一方の主面又は他方の主面に光硬化性榭脂を塗布する第 2のス テツプと、
前記基板に関して前記光硬化性榭脂とは反対側から、前記基板に対して異なる角 度で光を照射し、前記光硬化性榭脂内において、前記遮光パターンに沿って延在 する非透過領域以外の領域を前記光が透過するようにして、前記光硬化性榭脂の 前記光が透過した部分を硬化させる第 3のステップと、
前記前記光硬化性榭脂の前記非透過領域を除去する第 4のステップとを備え、 前記第 1のステップにおいて、前記遮光パターンは、細長い第 1部分と、該第 1部分 に連続しかつ該第 1部分の延在方向に対して略直角方向に広がった第 2部分との少 なくとも一方を含み、
前記第 3のステップにおいて、前記非透過領域は、前記遮光パターンの前記第 1部 分に対応する第 1領域と、前記遮光パターンの前記第 2部分に対応する第 2領域との 少なくとも一方を含み、
前記第 1領域は、前記光硬化性榭脂内の前記基板側に延在し、
前記第 2領域は、前記光硬化性榭脂内の前記基板側から前記光硬化性榭脂の前 記基板とは反対側の主面まで延在し、 前記第 4のステップにお!/、て、
前記非透過領域の前記第 1領域を除去して、前記基板に沿って延在する横孔を形 成し、
前記非透過領域の前記第 2領域を除去して、前記前記光硬化性榭脂の前記基板 とは反対側の前記主面に開口を有する縦孔を形成することを特徴とする、流路の形 成方法。
[12] 前記第 1のステップにおいて、前記基板の一方の主面に、導電材料を用いて前記 遮光パターンを形成し、
前記第 2のステップにお 、て、前記基板の前記一方の主面に前記光硬化性榭脂を 塗布することを特徴とする、請求項 11に記載の流路の形成方法。
[13] 透明な基板の一方の主面に光硬化性榭脂を塗布する第 1のステップと、
前記基板の他方の主面に沿って、遮光パターンを有するマスク部材を配置する第 2のステップと、
前記マスク部材側から、前記マスク部材に対して異なる角度で光を照射し、前記光 硬化性榭脂内において、前記遮光パターンに沿って延在する非透過領域以外の領 域を前記光が透過するようにして、前記光硬化性榭脂の前記光が透過した部分を硬 化させる第 3のステップと、
前記前記光硬化性榭脂の前記非透過領域を除去する第 4のステップとを備え、 前記第 1のステップにおいて、前記遮光パターンは、細長い第 1部分と、該第 1部分 に連続しかつ該第 1部分の延在方向に対して略直角方向に広がった第 2部分との少 なくとも一方を含み、
前記第 3のステップにおいて、前記非透過領域は、前記遮光パターンの前記第 1部 分に対応する第 1領域と、前記遮光パターンの前記第 2部分に対応する第 2領域との 少なくとも一方を含み、
前記第 1領域は、前記光硬化性榭脂内の前記基板側に延在し、
前記第 2領域は、前記光硬化性榭脂内の前記基板側から前記光硬化性榭脂の前 記基板とは反対側の主面まで延在し、
前記第 4のステップにお!/、て、 前記非透過領域の前記第 1領域を除去して、前記基板に沿って延在する横孔を形 成し、
前記非透過領域の前記第 2領域を除去して、前記前記光硬化性榭脂の前記基板 とは反対側の前記主面に開口を有する縦孔を形成することを特徴とする、流路の形 成方法。
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