ES2242631T3 - Espuma de una proteina adhesiva para usos quirurgicos y/o terapeuticos. - Google Patents
Espuma de una proteina adhesiva para usos quirurgicos y/o terapeuticos.Info
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Abstract
Procedimiento para obtener una espuma de proteína adhesiva fluida que es biocompatible, bioreabsorbible y no tóxica, para uso quirúrgico y/o terapéutico, especialmente para proteger/cicatrizar heridas de tejidos y para fijar tejidos biológicos entre sí o a un biomaterial implantado, caracterizado por el hecho de que incluye el hecho de mezclar de manera extemporánea, de una manera homogénea: - un compuesto de proteína potencialmente adhesivo que se puede polimerizar/reticular, contenido en una primera jeringuilla, con - un agente de polimerización/reticulación contenido en una segunda jeringuilla para formar un material de matriz de proteína adhesiva fluida que es biocompatible, bioreabsorbible y no tóxico, y - un gas o una mezcla de gas biocompatibles y no tóxicos seleccionados entre aire, nitrógeno, oxígeno o dióxido de carbono o la mezcla de uno o más de estos gases, contenidos en la primera y/o en la segunda jeringuilla y/o una tercera jeringuilla, con este material de matriz de proteína adhesiva fluida, o con uno de los constituyentes básicos de este material solubilizado en medio acuoso, mediante la transferencia recíproca de la mezcla entre dos jeringuillas.
Description
Espuma de una proteína adhesiva para usos
quirúrgicos y/o terapéuticos.
La presente invención está incluida dentro del
dominio de los adhesivos biológicos, que son biodegradables y no
tóxicos, diseñados para uso quirúrgico y/o terapéutico.
Más específicamente, la presente invención se
refiere a una espuma de proteína adhesiva fluida biocompatible que
es bioreabsorbible y no tóxica, para uso quirúrgico y/o
terapéutico.
También se refiere a una espuma de este tipo que
contiene sustancias bioactivas que se pueden liberar en un lugar
dado.
La invención se refiere, además, a un
procedimiento para producir una espuma adhesiva de este tipo y a un
equipo para su preparación.
También se refiere al uso de la espuma adhesiva
en cirugía y/o para propósitos terapéuticos, en particular para
proteger heridas y fijar tejidos biológicos entre sí o a un
biomaterial implantado.
Se conocen colas biológicas que se pueden adherir
a tejidos y fijarse entre sí, en pocos minutos, sin usar grapas o
suturas. Estas colas se eliminan, en general después de la
cicatrización de la herida, mediante biodegradación, reabsorción o
mediante la simple caída en forma de costras.
Se han desarrollado varias tecnologías para la
formulación de adhesivos de tejido. Algunos de los mismos son de
origen sintético, tal como las colas basadas en cianoacrilatos
(2-butil cianoacrilato, 2-octil
cianoacrilato), o en polímeros sintéticos, y otros que contienen
materiales biológicos tales como colágeno o fibrina.
En general, los adhesivos sintéticos se usan para
el sellado estanco de vasos o de pulmones y para "pegar" los
bordes de las incisiones de la piel. Los derivados biológicos
adhesivos tales como colágeno y fibrina además tienen propiedades
hemostáticas y también actúan para controlar el sangrado.
Las colas de cianoacrilato forman productos
tóxicos cuando se degradan, aunque las colas desarrolladas
recientemente son menos nocivas.
Producen productos que son frágiles después de la
polimerización en el lugar de aplicación. Permanecen en posición de
7 a 10 días y se eliminan mediante su simple caída, después de la
cicatrización. Su tiempo de polimerización es relativamente
inmodificable, menor de 1 minuto, y no permite el uso flexible de
estas colas. También se pueden desplazar fácilmente y, en
consecuencia, pegar tejidos adyacentes al lugar deseado.
Focal (patente US 5.844.016) ha descrito
adhesivos sintéticos basados en la polimerización fotoquímica de
hidrogel hecho de polietileno glicol (PEG). Su procedimiento de uso
no es práctico. Específicamente, implica la aplicación en varias
etapas, al lugar de operación, de la solución que contiene el
iniciador fotoquímico (eosina Y) y de la otra solución de monómero
(derivado de PEG y de acrilato) que contiene posiblemente una
sustancia biológicamente activa, y a continuación irradiación con
luz hasta que se obtiene un gel sólido transparente y adherente,
después de 40 a 60 segundos. Este tipo de adhesivo requiere por lo
tanto la aplicación de varias soluciones que, debido a su fluidez,
se pueden extender fácilmente sobre los lugares adyacentes al lugar
objetivo.
Estos adhesivos también se han descrito para el
suministro determinado de sustancias biológicamente activas (factor
de crecimiento endotelial vascular [VEGF], factor de crecimiento de
células endoteliales [ECGF], factor de crecimiento de fibroblasto
básico [bFGF], proteína morfogénica ósea [BMP], etc.) contenidas en
su red de micropartículas (Focal, patente US 5.879.713).
Bard (WO 97/42986) ha descrito un adhesivo
similar al de Focal, mencionado anteriormente, para el que la
polimerización se induce mediante rayos ultravioletas.
Cohesion Technologies (patente US 5.874.500,
patente US 5.744.545, patente US 5.550.187) también ha descrito
colas líquidas en PEG activado (por ejemplo PEG que comprende grupos
succinimidilo y maleimidilo) que polimerizan después de una simple
aplicación al lugar objetivo de aplicación, en un periodo de tiempo
que varía. Estas colas son potencialmente tóxicas y tienen el
inconveniente de que son fluidas, que evitan la aplicación precisa
al lugar de intervención.
Cryolife ha desarrollado otro tipo de adhesivo,
basado en una mezcla de albúmina bovina y de glutaraldehído. Además
de los efectos tóxicos conocidos de este agente de reticulación y de
la naturaleza antigénica de la albúmina bovina, este adhesivo
también tiene los problemas de fluidez citados anteriormente.
Las colas de fibrina, una mezcla de fibrinógeno
concentrado y de trombina, crean una matriz de fibrina que se
degrada lentamente mediante el sistema fibrinolítico endógeno. Antes
de la polimerización, son muy fluidas y se desplazan fácilmente,
aunque su tiempo de reacción se puede ajustar modificando la
cantidad total de trombina. Pueden liberar sustancias biológicas
activas (por ejemplo, Zarge et al., "J. Surg. Res.",
1997, 67, 4-8; Greisler et al.,
"Surgery", 1992, 112, 244-255; Gray et
al., "Surg. Forum", 1993, 44, 394-396;
Clinica, 199, 848, 18).
También se han descrito dispositivos que combinan
colas de fibrina con liposomas (patente US 5.651.982).
Las colas de fibrina se pueden vaporizar sobre el
lugar de aplicación, usando un pulverizador, y pueden formar una
película de coágulo espumosa (patente US 5.607.694; WO
97/33646).
Se han previsto dispositivos complejos que
combinan una proteína de polímero sintética con un agente de
reticulación como adhesivos biológicos (patente US 5.817.303).
Finalmente, se han descrito varios adhesivos
basados en colágeno o en gelatina en la literatura. Muy pronto, la
gelatina se combinó con resorcinol y con formaldehído o con
glutaraldehído para producir un adhesivo que también tiene
propiedades hemostáticas (Tatooles et al., "Surgery",
1966, 60, 857-861; Braunwald et al.,
"Surgery", 1966, 59, 1024-1030; Guilmet et
al., "J. Thorac. Cardiovasc. Surg.", 1979, 77,
516-521). Con este tipo de adhesivo, hay, sin
embargo, un riesgo de liberación de formaldehído o de glutaraldehído
que provoque reacciones tóxicas, provocando necrosis del tejido o
reacciones menos severas, produciendo una pobre cicatrización o su
ralentización.
En ciertas formulaciones, el colágeno está muy
asociado con la trombina (CoStasis de Cohesion Technol. Y
Flo-Seal de Fusion).
Para aplicaciones en cirugía, también se puede
modificar químicamente con agentes de acilación o sulfonación, de
manera que el colágeno así transformado se puede polimerizar en el
lugar de aplicación, en presencia o ausencia de un iniciador
(patente US 5.874.537; WO 97/42986).
También se han descrito un adhesivo obtenido
usando colágeno calentado y, como agente de reticulación, un
polialdehído macromolecular biodegradable (FR 2.754.267; FR
2.754.268).
Las colas para uso quirúrgico y/o terapéutico,
descritas en la literatura, son esencialmente en forma líquida.
Se ha descrito un material liofilizado no
inyectable que comprende los elementos de la cola de fibrina
(trombina y fibrinógeno) (patente US 4.442.655). Se introduce
opcionalmente un gas inerte en la solución acuosa reactiva de
fibrinógeno/trombina para aligerar el material que tiene un papel
hemostático o un papel de soporte para el suministro de sustancias
de cicatrización, y está pensado principalmente para la limpieza de
heridas. Otro material liofilizado no inyectable que comprende,
entre otros, los elementos de la cola de fibrina y colágeno también
se ha descrito en la literatura, como agente hemostático efectivo y
adhesivo (Nishida et al., Geka Shinryo ["Surgical Diagnosis
Treatment"], 1994, 36, 1449-1459; Ochiai et
al., Sanpujinka no Jissai ["Obstretic and Gynecologic
Practice"], 1995, 44, 253-262; Schelling et
al., "Ann. Surg.", 1987, 205, 432-435;
Schimamura et al., "The Clinical Report", 1994, 28,
2994-2507).
Algunos adhesivos también se han propuesto en
forma de un pulverizador para permitir una aplicación más homogénea
y más discreta sobre un área de superficie considerable. Sin
embargo, el uso de un pulverizador tiene inconvenientes, que
incluyen:
i) la contribución de cantidades no
insignificantes de dióxido de carbono o de otros gases, produciendo
riesgos de una peligrosa presión muy alta y proporcionando
posiblemente que sea tóxico para aplicaciones en cirugía no
invasiva;
ii) el considerable desplazamiento de la mezcla
adhesiva sobre el sitio de depósito mediante el gas propelente del
aplicador;
iii) el desarrollo de un aplicador pulverizador
especial, que aumenta notablemente el precio de coste del
dispositivo adhesivo y, posiblemente requiriendo un ambiente más
complejo, en particular debido a la conexión del dispositivo a
fuente de gas propelente.
Además, se conocen espumas de proteína rígidas
que se obtienen introduciendo un gas (aire) en una solución de
proteínas, y a continuación secando la masa espumosa a alta
temperatura, para paneles de espuma de aislamiento térmico (patente
US 2.584.082).
Una espuma resultante a partir de la agitación de
una solución de proteínas en presencia de aire u otro gas inerte
también se ha incorporado en cremas cosméticas (CH 674 804).
También se conocen espumas de polisacáridos que
se obtienen mezclando con agitación, después de la introducción de
un gas en la solución de polisacáridos, y que se pueden aplicar
mediante pulverización para la cicatrización de heridas o como
barreras antiadhesión post-operativas (EP 747
420).
No se ha descrito ninguna propiedad de adhesión a
heridas u órganos para estas espumas.
Un objetivo de la invención es proporcionar un
adhesivo que no tenga los importantes inconvenientes citados
anteriormente, en particular los riesgos de toxicidad, dificultades
de aplicación en particular debido a la fluidez, aplicación en
varias etapas y el tiempo de reactividad de los componentes, uso de
gases propelentes (pulverizadores), etc.
Un objetivo de la invención es, por lo tanto,
proporcionar un adhesivo que sea fluido y opcionalmente inyectable,
biocompatible, bioreabsorbible y no tóxico, adecuado para uso
quirúrgico y/o terapéutico y estable a lo largo del tiempo, y que se
puede conservar bajo condiciones relativamente simples.
Un objetivo de la invención también es
proporcionar un adhesivo de este tipo para fijar tejidos biológicos,
que incluyen tejidos vivos, entre sí o a un biomaterial implantado,
o para rellenar cavidades de tejido o para proteger heridas en el
tejido.
Un objetivo de la invención también es
proporcionar un adhesivo de este tipo en una forma fácil de usar,
que sea simple y práctica de uso y, en particular, que se pueda
inyectar con la ayuda de catéteres o cánulas.
Otro objetivo de la invención es proporcionar un
adhesivo cuya estructura facilite la colonización del tejido.
Otro objetivo es proporcionar un adhesivo cuya
biodegradabilidad sea controlable a lo largo del tiempo, después de
su aplicación.
Otro objetivo de la invención es proporcionar un
adhesivo que contenga posiblemente sustancias biológicamente
activas.
Un objetivo de la presente invención es, además,
proporcionar un procedimiento para preparar este adhesivo, que sea
fácil de realizar y sin peligro para el organismo recipiente.
Un objetivo de la invención es también
proporcionar equipos que permitan la preparación simple y rápida de
este adhesivo.
Estos objetivos, y otros que aparecerán a partir
de la descripción dada a continuación, se consiguen con la ayuda de
una espuma de proteína adhesiva fluida biocompatible, que es
bioreabsorbible y no tóxica, para uso quirúrgico y terapéutico, en
particular para fijar tejidos biológicos entre sí o a un biomaterial
implantado y para proteger/cicatrizar heridas en el tejido, que
comprende una matriz adhesiva de proteína fluida biocompatible, que
es bioreabsorbible y no tóxica, que contiene un gas biocompatible y
no tóxico o una mezcla de gases.
Un objeto de la invención es un procedimiento
para preparar una espuma adhesiva tal como se ha mencionado
anteriormente, caracterizado por el hecho de que comprende la mezcla
extemporáneamente, de una manera homogénea, según la reivindicación
1.
Un objeto de la invención es también un equipo
para preparar esta espuma adhesiva, caracterizada por el hecho de
que comprende según la reivindicación 31.
Los inventores han demostrado, sorprendentemente,
que las espumas fluidas y adhesivas se pueden preparar mediante la
incorporación de manera extemporánea de un gas o mezcla de gases en
"colas" biológicas, para producir espumas de proteína listas
para usar que se pueden aplicar en particular mediante inyección,
usando varios dispositivos tales como cánulas o catéteres.
Los inventores han demostrado de manera
totalmente sorprendente, la posibilidad de producir una espuma de
proteína adhesiva biocompatible que es bioreabsorbible y no tóxica,
fluida e inyectable, y adecuada para uso quirúrgico y/o terapéutico,
usando un compuesto de proteína en forma solubilizada en medio
acuoso o en forma sólida, en particular una forma liofilizada o seca
con un solvente volátil.
Los inventores han mostrado, de manera totalmente
inesperada, que estas espumas tienen propiedades de adhesión, en
particular a tejidos biológicos, incluyendo tejidos vivos,
comparables a las "colas" biológicas en forma líquida, mientras
que al mismo tiempo son más elásticas, y son toleradas perfectamente
por el organismo recipiente. Pueden conservar sus propiedades
adhesivas hasta que se han degradado completamente.
También han descubierto que estas espumas tienen
propiedades inesperadas de colonización rápida y efectiva mediante
células del organismo recipiente.
También han descubierto, igualmente de manera
inesperada, que estas espumas adhesivas se pueden aplicar con gran
precisión a los tejidos biológicos, para su fijación entre sí o a un
biomaterial implantado que tiene funciones reactivas respecto a la
matriz adhesiva, sin experimentar los problemas de desplazamiento
encontrados de manera convencional con las colas biológicas
químicas, o los riesgos de dispersión de las colas mediante los
gases propelentes de los pulverizadores. Los depósitos de estas
espumas adhesivas sobre los tejidos son también fáciles de
visualizar debido a su textura particular microporosa y a su
opacidad, siendo éstas características que difieren muy notablemente
de las colas líquidas convencionales y a partir de tejidos humanos o
animales.
También han mostrado que ciertas formulaciones de
estas espumas pierden su naturaleza "adhesiva" sobre su
superficie externa, después de la polimerización de los agentes
adhesivos, permitiendo la aplicación selectiva y precisa de estas
espumas a los tejidos objetivo sin pegar tejidos no deseados.
También han descubierto que es posible incorporar
fácilmente en estas espumas adhesivas sustancias biológicamente
activas combinadas con un vehículo que las protege, por lo menos
parcialmente, contra modificaciones químicas posiblemente causadas
por los agentes de polimerización.
La presente invención se describirá en mayor
detalle a continuación.
Según la invención, la expresión "matriz de
proteína adhesiva" está pensada para indicar una red formada a
partir de uno o más componentes de proteína que tienen propiedades
adhesivas y que son no tóxicos, biocompatibles y biodegradables,
conteniendo dicha red un gas biocompatible y no tóxico o una mezclas
de gases.
Las propiedades adhesivas de la matriz
generalmente se adquieren mediante un procedimiento de
polimerización y/o de reticulación de su(s)
constituyente(s) básico(s), preferiblemente iniciado
mediante uno o más agente(s) de de
polimerización/reticulación suministrados antes de la formación de
la espuma.
El término "no tóxico" está pensado para
indicar cualquier producto cuya toxicidad es suficientemente baja
para permitir su uso en cirugía y/o en su terapéutico para el cuerpo
humano o animal, sea cual sea el lugar de aplicación, mientras se
satisfagan los criterios y los estándares impuestos por la
legislación.
El término "biodegradable" está pensado para
indicar cualquier componente capaz de desaparecer mediante
degradación progresiva (metabolización).
La matriz adhesiva puede corresponder, desde el
punto de vista de su composición química, a adhesivos y colas
biológicas conocidas.
Por lo tanto, puede consistir o comprender un
compuesto de proteína (constituyente básico), por lo menos
parcialmente polimerizado/reticulado, que es no tóxico,
biocompatible y biodegradable, y que tiene propiedades
adhesivas.
La expresión "compuesto de proteína" se
refiere a una proteína o mezcla de proteínas opcionalmente
modificadas químicamente, en particular mediante metilación o
succinilación.
El procedimiento según la invención permite
obtener matrices adhesivas producidas usando una composición que
comprende, por un lado, un compuesto de proteína (constituyente
básico) que se puede polimerizar/reticular y que es potencialmente
adhesivo y, por otro lado, un agente de polimerización/reticulación,
mezclándolos de manera extemporánea antes de su uso.
Según la invención, la expresión "compuesto de
proteína que se puede polimerizar/reticular y que es potencialmente
adhesivo" está pensado para indicar cualquier compuesto de
proteína tal como se ha definido anteriormente capaz de desarrollar,
en presencia de agua, propiedades adhesivas mediante polimerización
y/o reticulación bajo el efecto de un agente de
polimerización/reticulación.
Según la invención, el agente de
polimerización/reticulación puede comprender un compuesto o mezcla
de compuestos compatible con el compuesto de proteína que se puede
polimerizar/reticular para provocar la polimerización de este último
mediante mezcla extemporánea, generalmente en pocos minutos.
El compuesto de proteína se usa en forma
solubilizada en medio acuoso o en forma de un sólido, en particular
de un polvo o de fibras.
El agente de polimerización/reticulación también
se puede usar en forma solubilizada en medio acuoso o en una forma
pulverulenta, preferiblemente una forma liofilizada.
Las proteínas usadas para los propósitos de la
invención se seleccionan preferiblemente a partir de colágeno,
gelatina, albúmina, elastina y fibrinógeno, y más preferiblemente a
partir de colágeno y albúmina. El colágeno se prefiere
particularmente.
El colágeno usado para los propósitos de la
invención puede ser igualmente de origen humano o animal, u obtenido
mediante recombinación genética. Puede ser colágeno de tipo I, III,
IV o V, o una mezcla de los mismos en cualquier proporción.
Puede ser colágeno nativo, es decir colágeno que
ha conservado su estructura helicoidal de origen, opcionalmente
químicamente modificado mediante metilación, mediante succinilación
o mediante cualquier otro procedimiento conocido, en particular para
hacerlo más soluble en el pH fisiológico, o tratado para eliminar
telopéptidos, en particular mediante digestión de pepsina.
También es posible usar colágeno no hidrolizado
que consiste principalmente en unas cadenas cuyo peso molecular está
cercano a 100 kDa. En este caso, la estructura helicoidal del
colágeno está desnaturalizada, por lo menos parcialmente, por
ejemplo mediante calentamiento moderado, en presencia de agua, en
particular a una temperatura entre 40 y 70ºC, bajo condiciones
suaves para evitar la degradación mediante división hidrolítica de
la gelatina así formada, generalmente menor del 10% de las cadenas
de colágeno que tienen un peso molecular menor de 100 kDa.
Esta gelatina se llama a partir de ahora
"colágeno calentado", para distinguirla de la gelatina
comercialmente disponible que también se puede usar para los
propósitos de la invención, pero de una manera no preferida.
El colágeno nativo o el colágeno calentado
descritos anteriormente se usan en forma de fibras o polvo seco, o
en forma de una solución acuosa con una concentración de entre el 1
y el 5%, preferiblemente entre el 2,5 y el 4%, en peso para el
colágeno nativo, y entre el 4 y el 20%, preferiblemente entre el 5 y
el 16%, en peso para el colágeno calentado.
El pH de las soluciones de colágeno nativo y de
colágeno calentado es preferiblemente neutro, más preferiblemente
entre 6 y 8.
Cuando la matriz adhesiva se obtiene usando
albúmina, se usa preferiblemente en forma de polvo seco o en forma
de una solución acuosa con una concentración de entre el 20 y el 50%
en peso, preferiblemente entre el 40 y el 50%.
En el caso de fibrinógeno, se usa preferiblemente
un polvo o una solución acuosa con una concentración de entre el 10
y el 20%.
Según la presente invención, el agente de
reticulación se puede seleccionar entre polímeros reactivos
naturales o sintéticos, preferiblemente con un peso molecular mayor
de 1.000, tal como polialdehídos macromoleculares o polímeros
hidrofílicos, cuya difusión posterior a partir de la cola se
dificulta mediante el considerable peso molecular, evitando una
toxicidad directa inmediata.
La expresión "polímeros reactivos" está
pensada para indicar polímeros capaces de reaccionar con los
compuestos de proteína tal como se han definido anteriormente, en
particular respecto a funciones de amino o sulfidrilo que puedan
contener.
Los polialdehídos macromoleculares que se pueden
usar según la invención comprenden polialdehídos biodegradables de
origen natural, es decir, cualquier compuesto que tenga varias
funciones de aldehído derivadas a partir de un polímero natural
biodegradable.
Los polialdehídos se pueden usar en solitario o
como mezcla, refiriéndose el término "polialdehído" aquí usado
igualmente a un compuesto sólo o a una mezcla de varios de estos
compuestos.
Estos polialdehídos macromoleculares se pueden
preparar mediante oxidación de polisacáridos o de mucopolisacáridos,
en particular con ácido periódico o una sal del mismo, según un
procedimiento conocido por sí mismo.
Entre los polisacáridos o mucopolisacáridos
adecuados para la preparación de la invención, se pueden mencionar
almidón, dextrano, agarosa, celulosa, chitita, chitosán, ácido
algínico, glicominoglicanos, ácido hialurónico y sulfato de
condroitina, o derivados de los mismos. Se prefieren almidón,
dextrano o ácido hialurónico, siendo particularmente preferido el
almidón.
El polialdehído se puede obtener añadiendo una
solución de ácido periódico o una sal del mismo a la solución de
polisacárido o mucopolisacárido, hasta que se obtiene una
concentración final de entre 0,01 y 1 M, preferiblemente entre 0,25
y 0,5 M. La etapa de oxidación se puede realizar en soluciones,
geles o suspensiones de polisacárido(s).
La preparación del polisacárido oxidado se puede
someter a continuación a diálisis, filtraciones y ultrafiltraciones,
para el propósito de eliminar los productos y reagentes de reacción
de oxidación, así como los derivados iodinados formados durante la
reacción, o en exceso.
Antes de su uso, el polisacárido o
mucopolisacárido oxidado se conserva preferiblemente en una solución
ácida, con el pH que adquiere espontáneamente, con una concentración
de entre el 0,5 y el 20% en peso, preferiblemente entre el 1 y el
10%.
La solución es estable en ausencia de aire y se
conserva preferiblemente entre +1ºC y +25ºC.
En una variante, el polisacárido o
mucopolisacárido oxidado puede estar en una forma ácida liofilizada,
siendo la redisolución del liofilizado en agua con el tampón
fisiológico requerido.
Los polímeros hidrofílicos útiles para los
propósitos de la invención preferiblemente tienen un peso molecular
de 1.000 a 15.000 Da, preferiblemente entre 2.000 y 5.000.
Comprenden, por ejemplo, derivados de poli(etileno) glicol
(PEG), poli(oxietilenos), poli(metilelno glicoles),
poli(trimetileno glicoles) y poli(vinilpirrolidonas),
siendo los preferidos los derivados de PEG. Pueden ser lineales o
ramificados, pero no están muy reticulados. También pueden ser
adecuados polímeros de bloque
poli(oxietileno)-poli(oxipropileno),
teniendo opcionalmente un núcleo de etilenediamina (polímero con 4
cadenas de extremo).
Los polímeros hidrofílicos se "activan" para
reaccionar de manera selectiva con las aminas y los tioles de las
proteínas. En el extremo de las cadenas de los polímeros, hay una
estructura similar a: -cadenas de
polímero-ligando-LG (grupo saliente)
para los polímeros que reaccionan con las aminas, o -cadenas de
polímero-GRT (grupo que reacciona respecto a los
tioles) de los polímeros que reaccionan con los tioles.
El ligando se puede seleccionar entre los grupos
que consisten en un carbonato -C(O)-, un monoéster
-R-CH_{2}-C(O)- o un
diéster
-C(O)-O-CH_{2})n-O-C(O)-;
el LG puede ser un derivado de succinimidilo, maleimidilo,
ftalimidilo, imidazolilo, nitrofenilo o tresilo, siendo el derivado
de succionimidilo el más preferido. Finalmente, los GRTs se pueden
seleccionar entre derivados de vinilsulfonio, iodoacetamida,
maleimida, y disulfuro de ortopiridilo.
Estos polímeros hidrofílicos se sintetizan según
los procedimientos conocidos por los técnicos en la materia.
Se pueden conservar en forma deshidratada,
empaquetados en jeringuillas.
Para la producción de la matriz adhesiva según
una primera realización, los compuestos de proteína citados
anteriormente, en particular el colágeno, el colágeno calentado o la
albúmina, pueden estar en solución acuosa. Se mezclan de manera
extemporánea con el agente de polimerización/reticulación, bajo
condiciones tales que la polimerización/reticulación de dichos
compuestos de proteína pueden realizarse en un tiempo
preferiblemente menor de 5 minutos.
Según una segunda realización para la producción
de la matriz adhesiva, los compuestos de proteína citados
anteriormente, en particular el colágeno, el colágeno calentado o la
albúmina, pueden ser en forma de sólido, en particular de un polvo
seco, opcionalmente esterilizado, por ejemplo en una primera
jeringuilla. En esta realización, se prefiere planear una etapa
adicional para solubilizar el polvo antes de introducir el agente de
polimerización/reticulación. A continuación se puede usar una
segunda jeringuilla que contenga una solución acuosa de tampón. Por
lo menos una de las dos jeringuillas está asociada con medios de
calentamiento para volver a calentar la mezcla a una temperatura de
37 a 50ºC.
El compuesto de proteína se disuelve mediante la
transferencia sucesiva de los contenidos de las dos jeringuillas de
la una a la otra, haciendo el mejor uso de la posibilidad de volver
a calentar, lo cual facilita la rápida solubilización del compuesto
de proteína.
Cuando la mezcla está en suspensión acuosa
homogénea, entonces es posible introducir el agente de reticulación
para continuar la preparación y la aplicación de la espuma de
proteína adhesiva como en la primera realización.
En las dos realizaciones, si el compuesto de
proteína está en solución preformada o como polvo seco, es
preferiblemente empezar a partir de preparaciones estériles para las
aplicaciones quirúrgicas.
Esta esterilidad se puede obtener mientras el
material en crudo esté esterilizado por filtración, trabajando a
continuación en un ambiente estéril (áreas estériles especiales,
equipo esterilizado previamente y en una atmósfera aislada).
Sin embargo, es ventajoso poder simplificar las
condiciones operativas y disminuir la complejidad y su coste
adoptando un procedimiento validado de esterilización final. Esta
esterilización se puede obtener mediante radiación gamma o beta,
preferiblemente cuando la solución o polvo de proteína se ha
suplementado de antemano con un agente "radioprotector" que
atrapa radicales libres, tal como un azúcar o un polisacárido, en
particular almidón con una concentración próxima al 1%.
El tiempo de polimerización/reticulación se puede
controlar según los constituyentes usados para la producción de la
matriz adhesiva de una manera que es conocida por sí misma.
En una realización de la invención, la matriz
adhesiva se produce usando la mezcla de un compuesto de proteína en
solución, preferiblemente del colágeno nativo, del colágeno
calentado o de la albúmina, con un polisacárido o mucosacárido
oxidado, preferiblemente almidón oxidado, dextrano oxidado o ácido
hialurónico oxidado.
La matriz adhesiva se puede preparar de esta
manera, según una primera realización de la invención, usando una
mezcla de polialdehído y de colágeno calentado, en una relación en
peso de 1:10 a 1:160, preferiblemente de 1:15 a 1:50, con una
concentración final de colágeno calentado del 4 al 16%,
preferiblemente del 4 al 13% en peso. La temperatura de la solución
de polisacárido está preferiblemente entre +1ºC y +30ºC, y la de la
solución de colágeno calentado en un valor que permita su
fluidificación, principalmente entre +37ºC y +50ºC.
La temperatura de la mezcla adhesiva está
preferiblemente entre +35ºC y +41ºC. El tiempo de reacción de la
mezcla se puede ajustar en función del pH del colágeno calentado,
que varía entre 6,5 y 7,5. Se puede obtener un tiempo de
polimerización corto, menor de 1 minuto, a un pH de 7,5, y se puede
aumentar gradualmente acidificando la solución de colágeno calentado
a un pH de 6,5.
Según otra realización de la invención, la matriz
adhesiva se prepara usando una mezcla de polialdehído oxidado y
colágeno nativo en una relación en peso de 1:10 a 1:50,
preferiblemente de 1:10 a 1:30, con una concentración de colágeno
final del 1 al 5%, preferiblemente del 2 al 4%. La temperatura de la
solución de polisacárido oxidado está preferiblemente entre +1ºC y
+30ºC, y la de la solución de colágeno nativo entre +18ºC y +37ºC.
La temperatura de la mezcla adhesiva está preferiblemente entre
+18ºC y +37ºC. El tiempo de reacción de la mezcla se puede ajustar
en función del pH del colágeno, entre 6,5 y 7,5, y de la temperatura
de la mezcla. El tiempo de polimerización aumenta cuando disminuye
el pH y/o la temperatura de la mezcla.
Según otra realización de la invención, la matriz
adhesiva se prepara usando una mezcla de polímero hidrofílico
activado en polvo y de colágeno calentado en solución, con una
relación en peso de 1:50 a 1:1, preferiblemente de 1:10 a 1:1, con
una concentración final de colágeno calentado del 4 al 20%,
preferiblemente entre el 10 y el 18%. La temperatura de la solución
de colágeno calentado está entre +37ºC y +50ºC, y el pH de la
solución de colágeno calentado puede variar entre 6,9 y 9,0, según
el tiempo de reticulación deseado, desde menos de un minuto a varias
decenas de minutos. La temperatura de la mezcla adhesiva resultante
está preferiblemente entre +35ºC y +41ºC.
Según otra realización, se puede usar una mezcla
1:4 de polialdehído oxidado y albúmina.
Según una realización de la invención, la matriz
adhesiva se puede preparar usando proteínas que han sufrido
separación oxidativa.
En este caso, el tratamiento con ácido periódico
o una sal del mismo, preferiblemente periodato de sodio, se puede
realizar según un procedimiento conocido por sí mismo.
El colágeno se prefiere particularmente para los
propósitos de la invención, y puede ser de cualquier tipo mencionado
previamente. Las preferencias mencionadas anteriormente también se
aplican en este caso.
La modificación mediante separación oxidativa del
colágeno se describe en la patente US 4.931.546.
Este tratamiento provoca separaciones en ciertos
constituyentes del colágeno, hidroxilisina y azúcares, y así crea
sitios reactivos (grupos aldehído) sin provocar su reticulación
mientras el pH de la solución de colágeno permanece ácida.
El colágeno oxidado se puede conservar en forma
liofilizada, a una temperatura entre +4ºC y +25ºC.
Según esta realización, el agente de
polimerización/reticulación consiste entonces en un tampón a un pH
ligeramente alcalino para permitir la reticulación de la mezcla, a
un pH neutro.
Según la invención, la matriz adhesiva se puede
producir de esta manera mezclando colágeno oxidado en forma
deshidratada con un tampón en solución, resultando la solución
posiblemente, por sí misma, a partir de la disolución previa de un
tampón en forma deshidratada, en agua.
Según otra realización de la invención, las
proteínas modificadas mediante un agente de acilante o de
sulfonación se pueden usar para la preparación de la matriz
adhesiva.
Las proteínas citadas anteriormente y sus
preferencias también se aplican a esta realización.
El agente de polimerización/reticulación también
es, en este caso, un tampón de pH ligeramente alcalino a neutro,
preferiblemente entre 6,0 y 9,0, más preferiblemente de entre 8,0 y
8,5.
La matriz adhesiva se produce mediante un
procedimiento similar al mencionado, mezclando las proteínas con un
grupo acilante o de sulfonación con la solución tampón, de manera
que la reacción de acilación o sulfonación puede producirse,
produciendo la matriz adhesiva.
Según otra realización de la invención en la que
la matriz adhesiva se basa en cola de fibrina, las colas actualmente
disponibles en el mercado, en particular en las vendidas bajo los
nombres "Tissucol®" o "Tisseel®", vendidos por Baxter, o
"Beriplast®", vendido por Cénteon, se pueden usar para los
propósitos de la invención.
Es una solución de fibrinógeno concentrado
(70-140 mg/ml) que contiene factor XIII y,
opcionalmente, fibronectina.
En este caso, el agente de
polimerización/reticulación consiste en una solución de trombina
(4-100 I.U) al cual se le puede añadir opcionalmente
colágeno.
Según la invención, sea cual sea el tipo de
matriz adhesiva seleccionada, la espuma adhesiva se prepara durante
la formación de la matriz adhesiva.
Cuando esto se produce a partir de la mezcla de
dos constituyentes básicos (compuesto de
proteína-agente de polimerización/reticulación), en
particular en los casos citados anteriormente, esta mezcla se
prepara de manera extemporánea y antes de su aplicación a los
tejidos. Durante esta operación, se introduce un gas mediante
cualquier procedimiento conocido por los técnicos en la materia.
El gas se puede introducir en particular durante
la mezcla de los constituyentes, o directamente en la mezcla
preformada (es decir, en el material de la matriz de proteína
adhesiva fluida).
El gas usado para los propósitos de la invención
puede consistir en aire o en uno o más de sus componentes, por
ejemplo nitrógeno, oxígeno, dióxido de carbono.
Los gases preferidos son aire, dióxido de carbono
y nitrógeno.
Puede ser gas o una mezcla de gases (indicados a
partir de ahora usando el término general "gas").
Según la invención, el gas usado para la
formación de la espuma adhesiva se puede asociar, preferiblemente,
con uno de los constituyentes básicos para la formación de la matriz
adhesiva, donde sea apropiado con el compuesto de proteína que se
pueda polimerizar/reticular y/o con el agente de
polimerización/reticulación, y/o suministrado de manera
independiente con uno de estos constituyentes.
El término "asociado" se refiere al caso en
el que el gas está simplemente contenido en el mismo recipiente que
el constituyente de la matriz adhesiva (fases polvo/gas o
líquido/gas), tal como el caso en el que el gas se mezcla con el
agente de polimerización/reticulación, que está, por ejemplo, en
forma pulverulenta o liofilizada.
Cuando el gas está asociado con uno de los
componentes de la matriz adhesiva, la espuma se forma durante la
mezcla de dichos componentes para la producción de la matriz
adhesiva.
El gas también se puede suministrar de manera
independiente, por separado o combinado con un vehículo que sea no
tóxico, biocompatible y biodegradable y que se mezcla con la matriz
adhesiva y sus elementos constituyentes en el momento de la
preparación de la espuma adhesiva.
Puede ser un compuesto de proteína tal como el
que se usa para la formación de la matriz adhesiva. Sin embargo, en
este caso, la cantidad de compuesto de proteína que se usa como
vehículo es tal que no puede, por sí mismo, permitir la formación de
la matriz adhesiva.
El vehículo se puede reforzar o añadir de la
espuma, o tener actividad biológica. En particular, puede
constituir, en paralelo, un vehículo para una o más sustancias
biológicas tal como se indica posteriormente.
En este caso, la mezcla para la formación de la
matriz adhesiva se puede preparar de antemano (para producir el
material de la matriz adhesiva), y a continuación el gas
opcionalmente combinado con un vehículo tal como se ha de descrito
anteriormente se introduce en la matriz adhesiva ya en el
procedimiento de formación.
El agente de polimerización/reticulación y/o el
vehículo que contiene el gas están preferiblemente en forma
deshidratada, en particular en forma liofilizada.
En una variante, el vehículo puede ser, en una
manera menos preferida, en forma líquida.
Según otro aspecto de la invención, se pueden
incorporar otros componentes que no interfieren con la formación de
la espuma.
La espuma adhesiva puede permitir así el
suministro de sustancias activas al sitio objetivo al cual se
aplica.
De esta manera, se pueden mezclar una gran
variedad de sustancias biológicamente activas con el vehículo.
Ejemplos de estas sustancias incluyen, pero no de una forma
limitativa: medicamentos, vitaminas, factores de crecimiento,
hormonas, derivados esteroides, antibióticos, vacunas, agentes
antivirales, agentes antimicóticos, agentes antiparásitos, agentes
antitumores, agentes anticancerígenos, toxinas, enzimas, inhibidores
de enzimas, proteínas, péptidos, compuestos inorgánicos (por
ejemplo, derivados de zinc, cobre, selenio, calcio),
neurotransmisores, lipoproteínas, glicoproteínas, inmunomoduladores,
inmunoglobulinas y fragmentos de las mismas, agentes de contraste,
derivados de ácidos grasos, polisacáridos, ácidos nucleicos (por
ejemplo, fragmentos de ADN, ARN) y polinucleótidos.
Entre los factores de crecimiento, los siguientes
factores o sus genes correspondientes se prefieren particularmente:
factores del tipo EGF (Factor de Crecimiento Endotelial), FGF
(Factor de Crecimiento de Fibroblasto) y TGF-E
(Factor-E de Crecimiento de Transformación),
incluyendo BMPs (Proteínas Morfogenéticas Óseas), IGFs (Factor de
Crecimiento a modo de Insulina), PDGFs (Factores de Crecimiento
Derivados de Plaquetas) y Vegas (Factores de Crecimiento
Endoteliales Vasculares), o análogos y derivados de estos
factores.
Estas sustancias biológicamente activas se pueden
mezclar en solución con el vehículo, y a continuación se deshidratan
opcionalmente mediante medios conocidos por los técnicos en la
materia.
También es posible aceptar un vehículo
deshidratado en un volumen mínimo de solución que contenga
la(s) sustancia(s) biológicamente activa(s) o
añadir una solución concentrada esta(s) sustancia(s)
biológicamente activa(s) hasta un vehículo deshidratado.
Finalmente, menos preferiblemente, también es
posible preparar una solución acuosa del vehículo mezclada con una o
más sustancias biológicamente activas antes de mezclarlas con el
gas.
Cualquier procedimiento conocido por los técnicos
en la materia se puede usar para preparar la espuma, que consiste
simplemente en mezclar varios productos y un gas de una manera
homogénea. La mezcla se prepara de manera extemporánea antes de
usarla para producir una espuma adhesiva lista para su uso.
Para este propósito, se pueden usar los equipos
que forman el objeto de la presente invención.
Los constituyentes requeridos para la formación
de la espuma están preferiblemente contenidos de manera separada en
jeringuillas, produciéndose la espuma mediante la transferencia del
contenido hacia atrás y adelante desde una jeringuilla a la otra
hasta que se produce una mezcla homogénea.
La espuma recogida en una única jeringuilla se
puede aplicar a continuación al sitio deseado.
Para este propósito, se puede usar un equipo tal
como el descrito en la solicitud de patente WO 98/15299 para la
preparación de una cola basada en colágeno y en polialdehído
macromolecular.
Se recuerda que este equipo puede ser en forma de
dos jeringuillas que contienen el componente de colágeno y el
polialdehído, respectivamente.
Estas jeringuillas están fijadas a un dispositivo
de mantenimiento equipado con medios de fijación diseñados para
poder mezclar de manera extemporánea su contenido de una manera
homogénea, después de haber recalentado la jeringuilla de colágeno a
la temperatura adecuada, de entre 37ºC y 50ºC, según la fluidez
deseada.
El compuesto de proteína y el agente de
polimerización/reticulación se empaquetan en una de las formas
descritas anteriormente.
La cantidad requerida de gas está también
presente en una de las jeringuillas o compartida entre cada una de
las mismas, de manera que el gas se introduce en el momento de
formación del material de la matriz adhesiva mediante la mezcla de
los constituyentes.
En una variante, la cantidad requerida de gas,
opcionalmente combinada con un vehículo tal como se ha descrito
anteriormente, puede originarse a partir de otra jeringuilla, en
cuyo caso se introduce en el material de la matriz adhesiva en el
procedimiento de formación, por ejemplo mediante
polimerización/reticulación, después de la mezcla de los
constituyentes básicos, formando esta premezcla posiblemente el
material de la matriz adhesiva, por sí mismo, produciéndose usando
el equipo según la solicitud de patente WO 98/15299.
Cuando está mezclado con un vehículo,
opcionalmente combinado con una o más sustancias biológicamente
activas, el gas representa preferiblemente un mínimo del 50% del
volumen total de la preparación, y más preferiblemente del 90% del
volumen total.
La mezcla se produce preferiblemente mientras se
incorpora un volumen de gas que representa del 25 al 90% del volumen
total de la espuma, preferiblemente entre el 40 al 75%.
Esta mezcla se produce, además, a una temperatura
que promueve la incorporación del gas en la cola biológica. Esta
temperatura es preferiblemente fisiológica, más preferiblemente
entre 18ºC y 41ºC.
Cuando es apropiado, esta mezcla se produce muy
al inicio de la reticulación, preferiblemente cuando es más baja la
viscosidad inicial de la mezcla.
Las espumas producidas según la invención tienen
propiedades adhesivas que son satisfactorias para su uso en cirugía
y/o en prácticas terapéuticas, y que son comparables con las de las
colas biológicas conocidas basadas bajo las que se preparan.
Se han de usar inmediatamente, dentro de los
primeros cinco minutos de la preparación.
Según los elementos constituyentes de la matriz
adhesiva y el procedimiento de producción de la misma, es posible,
de una manera conocida, controlar el tiempo de
polimerización/reticulación para permitir la formación de la espuma
y su aplicación al sitio deseado.
La espuma adhesiva que es objeto de la presente
invención se aplica inmediatamente después de su formación, cuando
está todavía en el proceso de polimerización/reticulación.
Se puede aplicar mediante procedimientos
conocidos por los técnicos en la materia. Preferiblemente, se puede
inyectar, a través de jeringuillas, catéteres, cánulas o cualquier
otro material equivalente que permita que la espuma fluya
fácilmente. En particular, para dispositivos cilíndricos, el
diámetro interior puede ser de entre 0,1 y 2 mm. El sistema de
inyección puede comprender un aplicador, cuya forma es
particularmente adecuada para el uso deseado.
Según otra realización de la invención, la espuma
se puede forma in situ mediante la aplicación posterior de
los constituyentes requeridos tal como se ha mencionado
anteriormente.
La espuma puede perder su naturaleza adhesiva
después de la polimerización/reticulación, permitiendo la aplicación
selectiva y precisa a los tejidos objetivo sin pegarse a los tejidos
no deseados que rodean el sitio de intervención.
El índice de endurecimiento de la matriz adhesiva
en la estructura de la espuma no está afectado por la introducción
de gas.
La espuma adhesiva según la invención es no
tóxica y se tolera perfectamente por el organismo huésped, mientras
que al mismo tiempo es más elástica que las colas conocidas.
La densidad final de la espuma es variable según
la cantidad de gas introducida y la aplicación prevista.
Se caracteriza por la presencia de poros con un
diámetro de generalmente entre 50 y 200 micrones.
Esta porosidad confiere al producto remarcables
propiedades respecto a las plaquetas de la sangre, que se pueden
adherir al mismo más rápidamente debido a la gran área de superficie
exterior de contacto. Un agregado de plaquetas que segregan los
factores de coagulación requerido para las formas de hemostasis. De
esta manera, la matriz adhesiva adquiere, debido a esta porosidad,
propiedades hemostáticas que permiten detener el sangrado a través
de la acción combinada del sellado mecánico de la herida y la
activación de las plaquetas en contacto con la sangre.
Esta porosidad confiere una gran elasticidad a la
matriz adhesiva, que lo hace un producto de elección para sellar
heridas pulmonares y detener escapes de aire, mientras que al mismo
tiempo produce hemostasis después de exéresis de un tumor.
La porosidad del material adhesivo facilita su
colonización celular, su biodegradación y su transformación en
tejido de cicatrización, evitando al mismo tiempo la formación de
adhesiones post-operativas con los órganos
adyacentes a la herida.
Los depósitos de espuma sobre los tejidos vivos
son en particular más fáciles de visualizar debido a sus
particulares estructuras microporosas y su opacidad.
Debido a su baja densidad, se puede aplicar con
mayor precisión a los tejidos, sin experimentar los problemas de
desplazamiento que se encuentran de manera convencional con las
colas biológicas líquidas, o los riesgos de dispersión de las colas
mediante los gases propelentes de los pulverizadores.
Su fluidez inicial permite su inyección con la
ayuda de jeringuillas y su uso mediante laparoscopia con la ayuda de
cánulas y catéteres adecuados. Se puede extender fácilmente usando
una espátula o un cepillo mediante pintado en cirugía abierta, tal
como en laparoscopia.
Este adhesivo de tejido poroso está, por lo
tanto, particularmente indicado para producir la hemostasis de
heridas quirúrgicas o traumáticas, vasculares o de tejido,
protegiéndolas y facilitando su cicatrización, evitando al mismo
tiempo la formación de adhesiones
post-operativas.
La espuma adhesiva según la invención se puede
usar, de una manera no limitativa, para evitar o detener el sangrado
de heridas vasculares o del tejido, para fijar tejidos biológicos,
incluyendo tejidos vivos, entre sí o a un biomaterial implantado,
para cicatrizar heridas quirúrgicas o crónicas, proteger o sellar
suturas, evitar la formación de adhesiones
post-operativas, suministrar sustancias
biológicamente activas en particular con medicinas para aplicación
local y llenado de cavidades del tejido (huesos, cartílagos,
lesiones de la piel, etc.).
Un objeto de la invención también es, por lo
tanto, los procedimientos de tratamiento quirúrgico o médico que
comprenden la colocación, en un sitio adecuado del organismo, a
través de una ruta de acceso adecuada, de una cantidad de espuma
según la invención que sea efectiva para adherirse al sitio y
provocar el efecto deseado.
De esta manera, la invención proporciona un
procedimiento para proteger o fijar tejidos biológicos, incluyendo
tejidos vivos, entre sí o a un biomaterial implantado que tiene
funciones que son reactivas respecto a unos de los constituyentes de
la matriz adhesiva, que comprende la mezcla de los constituyentes
(constituyentes de la matriz adhesiva y gas) requeridos para la
formación de la espuma, de manera simultánea o sucesiva tal como se
ha mencionado anteriormente.
La espuma fluida resultante se aplica a
continuación rápidamente, es decir, en menos de 3 minutos, durante
la polimerización/reticulación de la matriz adhesiva, a dichos
tejidos y/o a dicho biomaterial a una temperatura de entre 20ºC y
41ºC, y a continuación todo esto se deja que se
polimerice/reticule.
La mezcla antes de la aplicación se puede
realizar con el equipo descrito anteriormente.
\newpage
El tiempo de polimerización/reticulación se puede
ajustar en función de los constituyentes de la matriz adhesiva y de
su conservación, de una manera conocida por sí misma, variando el
pH, las concentraciones y la temperatura.
El tiempo de reabsorción en vivo también se puede
ajustar, en particular modificando químicamente los constituyentes
básicos de la matriz adhesiva, como es conocido en la técnica, o
controlando la concentración del agente de
polimerización/reticulación.
Según la composición de la matriz adhesiva, este
tiempo puede variar de unos pocos días a varios meses.
Según las aplicaciones, el biomaterial implantado
consiste en la propia espuma adhesiva, que a continuación se usa en
solitario.
En otros casos, puede implicar la fijación de un
biomaterial que tenga, por ejemplo, funciones que contienen amina
que son reactivas respecto al polialdehído constituyente de la
matriz adhesiva.
Para otras aplicaciones, en particular la
prevención de las adhesiones post-operativas, la
espuma adhesiva según la invención se puede usar en solitario o
fijarse bien a una película basada en colágeno, para formar un
material bicompuesto.
Puede ser una película de colágeno tal como se ha
descrito en la patente WO 98/34656.
El colágeno usado para formar la película
corresponde al mencionado anteriormente para producir la espuma. El
colágeno calentado se prefiere.
La película de colágeno también puede comprender
un aditivo hidrofílico, preferiblemente químicamente no reactivo
respecto al colágeno, es decir, que no sea capaz de reaccionar con
el colágeno presente, en particular que no forma uniones covalentes
con el mismo durante la reticulación.
El aditivo hidrofílico preferiblemente consiste
en polietileno glicol.
La preparación del propio material biocompuesto
se realiza uniendo la capa que forma la película y la espuma
adhesiva en el procedimiento de formación o una vez formado, es
decir, después de mezclar los constituyentes requeridos.
La unión comprende el vertido de la solución de
colágeno, pensada para producir la película, sobre un soporte
adecuado substancialmente plano, distribuyéndola de manera
uniforme.
El soporte es inerte porque no reacciona con los
componentes citados anteriormente y no está implicado en el proceso
de reticulación. Es preferiblemente hidrofóbico, por ejemplo hecho
de PVC o poliestireno.
Sin embargo, este soporte también puede consistir
en un material desgarrable que permanecerá ligeramente adherido, y
que se puede separar a continuación en el momento de su uso
quirúrgico.
Este soporte puede consistir por sí mismo en una
película, por ejemplo de colágeno seco, sobre la que se vierte la
solución, o una capa de gel de material de colágeno en un estado de
cuajado más avanzado de manera diferente.
La densidad de la fina capa aplicada está
comprendida preferiblemente entre 0,1 y 0,3 g/cm^{2}.
Esta solución de colágeno se vierte a una
temperatura ventajosamente de entre 4 y 30ºC, preferiblemente entre
18 y 25ºC.
Esta solución se deja que cuaje y la espuma
preparada tal como se ha mencionado anteriormente se aplica a dicha
solución en el proceso de cuajado. En otras palabras, la capa de
espuma porosa se deposita sobre el gel, con la aplicación continua
mediante simple gravedad u, opcionalmente, mediante una ligera
compresión que es insuficiente para provocar cualquier compactación
apreciable de la espuma.
El momento en el que la espuma porosa se aplica a
la solución en el proceso de cuajado es tal que el gel está todavía
blando y permite que la espuma porosa penetre sobre una distancia
que es ventajosamente del orden de 0,05 a 2 mm, preferiblemente del
orden de 0,1 a 0,5 mm.
En general, cuando la solución que está cuajando
está a una temperatura de entre 4ºC y 30ºC, la capa de espuma porosa
se aplica entre 5 y 30 minutos después de que la solución se haya
distribuido sobre la superficie que la soporta.
Esta se deja secar o se liofiliza para obtener el
material biocompuesto según la invención.
La polimerización/reticulación de la matriz
adhesiva se puede realizar o se puede acabar, si es apropiado,
durante el secado del material bicompuesto.
Este secado se puede obtener a una temperatura de
entre 4ºC y 30ºC, preferiblemente entre 18ºC y 25ºC.
El secado del material se puede realizar en una
corriente de aire estéril, si es necesario.
Después del secado, el material bicompuesto según
la invención se puede separar de su soporte. En una variante, puede
comprender o incorporar una película o una capa de material de
colágeno sobre la que se ha vertido la solución de colágeno.
El material bicompuesto según la invención es
estable a temperatura ambiente y permanece estable lo suficiente
para manipularse a temperaturas que posiblemente aumentan a
37-40ºC.
El espesor de la película de colágeno es
preferiblemente menor de 100 \mum, y más preferiblemente entre 30
y 75 \mum.
El espesor de la espuma es preferiblemente entre
0,2 cm y 1,5 cm, incluso más preferiblemente entre 0,3 cm y 1,2
cm.
Este material de dos capas presenta una serie de
cualidades particularmente sorprendentes hemostáticas, de adhesión
antipost-operativa y de biodegradabilidad.
El material de colágeno bicompuesto según la
invención es particularmente adecuado para evitar adhesiones
post-operativas, en particular en heridas
hemorrágicas, porque la película evita adhesiones, el material
compuesto se adhiere bien a estas heridas y no hay sangrado en la
interfaz.
Además de sus propiedades de hemostasis y de
prevención de las adhesiones post-operativas, el
material de colágeno de la presente invención facilita la
cicatrización debido a su estructura compuesta, que combina una capa
muy porosa de espuma con una película de colágeno.
La parte porosa del material se puede colonizar
fácilmente mediante las células de los alrededores. La película
protege la cicatrización en curso durante unos pocos días debido a
sus propiedades de formación de una barrera a las bacterias y los
microorganismos.
La potencia de la película de material para
evitar adhesiones también se refuerza mediante la capa de espuma del
material que acelera la cicatrización de la herida.
Según la invención, el material de colágeno
bicompuesto es de esta manera útil para hemostasis y evita las
adhesiones post-operativas a las heridas que
sangran, mientras que al mismo tiempo facilita la curación.
Además, el aditivo hidrofílico macromolecular se
elimina mediante difusión a través del material de colágeno, en
pocos días, promoviendo el hinchado de este material la degradación
de la película de colágeno en menos de un mes.
El material bicompuesto según la invención
también se puede usar para promover la cicatrización. Su estructura
muy porosa permite una rápida colonización celular. Respecto a la
película, hace posible aislar la parte porosa para hacerla accesible
a células específicas.
A modo de ejemplo, se pueden cultivar
fibroblastos en la parte porosa del material, in Vitro, y se
pueden cultivar células epiteliales sobre la película, mediante la
creación de dos compartimientos separados temporalmente.
La invención se describirá en mayor detalle con
la ayuda de los ejemplos datos a partir de ahora a modo de
indicación no limitativa.
Se prepara una solución de almidón soluble, con
una concentración del 20% y a una temperatura de 75ºC, hasta que se
obtiene una solución totalmente homogénea, y a continuación se
diluye por dos veces. A continuación se filtra previamente y se
filtra a través de una membrana con una porosidad de 0,22
\mum.
El pH del almidón se ajusta a continuación a un
pH de 3,0-3,2 y la concentración del almidón es del
6%. A continuación, se añade sodio meta-periodato
con la concentración final de 0,36 M a la solución de almidón
oxidado a temperatura ambiente. Después de 2 horas de tratamiento,
la solución se dializa, con una membrana que tiene un límite de
corte entre 5 y 10 kDa, contra agua desmineralizada ultrafiltrada.
La diálisis continúa hasta la eliminación total de los productos
dializables de la reacción de oxidación y de los reagentes, así como
de los derivados desionizados, formados durante la reacción.
A continuación, se ajusta la concentración de la
solución del almidón oxidado al valor deseado, entre el 1 y el 3%.
Se prefiltra y se filtra de manera estéril a través de una membrana
que tiene una porosidad de 0,22 \mum.
El producto es estable durante por lo menos un
año, a una temperatura de +4ºC a +25ºC, en ausencia de aire.
Para la preparación de una espuma adhesiva, la
solución de almidón oxidado se puede empaquetar en jeringuillas.
La solución de almidón oxidado, empaquetada en
jeringuillas o en botellas, también se puede liofilizar bajo
condiciones estériles y conservar a una temperatura de +4ºC a +25ºC,
en ausencia de aire.
La disolución posterior del almidón oxidado
liofilizado hace posible la preparación, si es necesario, de
soluciones más concentradas de almidón oxidado que pueden alcanzar
del 3 al 30%.
El colágeno usado es a partir de una fuente
conocida por los técnicos en la materia. Si es colágeno bovino de
tipo I, puede ser soluble en ácido o solubilizado mediante digestión
con pepsina. Si es colágeno de placenta humana, se puede preparar
mediante extracción con pepsina, según el procedimiento descrito en
la patente EP-A-0 214 035.
Por ejemplo, se obtiene una mezcla de tipos I y
III. Esto se puede usar opcionalmente entonces para separar el tipo
I y/o el tipo III. El colágeno también se puede preparar mediante
técnicas de recombinación genéticas.
Una solución ácida de colágeno con una
concentración del 4 al 16% se prepara añadiendo gradualmente un
polvo de colágeno ácido al agua, a una temperatura de 42ºC. Muy
rápidamente, después de 2 a 5 minutos de agitación, tan pronto como
permite la fluidez, la solución se neutraliza con una solución molar
de hidróxido de sodio, a un pH que varía entre 6,5 y 7,5.
Después de la neutralización, la temperatura de
la solución de colágeno se ajusta a +60ºC, para permitir su
esterilización mediante filtración a través de una membrana que
tiene una porosidad de 0,22 \mum, posterior a la
prefiltración.
Para su uso en un equipo, en particular como se
describe en la solicitud de patente WO 98/15299, el colágeno se
distribuye a continuación de manera estéril en jeringuillas y se
conserva a una temperatura de entre +4ºC y +25ºC, y es estable
durante un año por lo menos.
En una variante, la solución de colágeno
calentado se suplementa con almidón al 1% u otros agentes que se
filtraron a una temperatura de 42ºC a través de una membrana que
tiene una porosidad de 0,22 micrones y distribuida en jeringuillas
que se pueden esterilizar mediante irradiación gamma, finalmente en
una dosis de 5 a 30 kilogreys.
Se prepara una jeringuilla de calentamiento de 5
ml, llena con 2 ml de colágeno calentado a una concentración del 16%
y envuelta con una película resistente equipada con un termostato
que permite que la temperatura del colágeno se mantenga entre +44ºC
y +50ºC. También se prepara una jeringuilla de 5 ml que contiene 2,5
ml de aire y 0,5 ml de almidón oxidado.
A continuación, el contenido de estas dos
jeringuillas vinculadas mediante un único conector se mezcla
vaciando totalmente de manera alterna el contenido entre sí, 10 a 20
veces hasta que se produce una espuma adhesiva completamente
homogénea.
Según otra variante de preparación de la espuma
adhesiva, se prepara una jeringuilla de calentamiento de 2,5 ml,
llena con 2 ml de colágeno calentado con una concentración del 16% y
envuelta con una película resistente equipada con un termostato que
permite mantener la temperatura del colágeno entre +44ºC y +50ºC.
Además, se prepara una jeringuilla que contiene 0,5 ml de almidón
oxidado. Estas dos jeringuillas se unen en un equipo tal como se
describe en la solicitud de patente WO 98/15299. Se montan juntas a
través de una configuración de conector/mezclador, cuya función es
producir un gel adhesivo perfectamente homogéneo. El contenido del
equipo se transfiere a una jeringuilla vacía de 5 ml con la ayuda
del único conector. En paralelo, se prepara una jeringuilla de 5 ml
que contiene 2,5 ml de aire.
A continuación, el contenido de estas dos
jeringuillas se mezcla tal como ha descrito anteriormente.
Según otra variante, es posible preparar una
espuma adhesiva de densidad media a la anterior. Para esto, se monta
un equipo para "cola" biológica usando una jeringuilla de 2,5
ml llena con 2 ml de colágeno calentado con una concentración del
16% y una jeringuilla que contiene 0,5 ml de almidón oxidado. El
contenido de este equipo se descarga en una jeringuilla de 10 ml. Se
prepara además una jeringuilla de 10 ml que contiene 7,5 ml de
aire.
A continuación, el contenido de las dos
jeringuillas se mezcla según el procedimiento descrito
anteriormente.
Se preparó una solución al 3% en agua
ultrafiltrada desmineralizada. A continuación, se añadió una
solución de fosfato de disodio 0,22 M para obtener una concentración
final de 20 mM. La suspensión de colágeno se homogeniza con un
mezclador de palas desfloculante, y a continuación se ajusta su pH a
7,4-7,5 con una solución concentrada de ácido
hidroclórico.
La suspensión de colágeno neutralizada se diluye
a continuación con agua desmineralizada ultrafiltrada para conseguir
una concentración de colágeno del 1,8% y una concentración de
fosfato de 13 mM. Se deja de un día para el otro para obtener la
fibrilación completa del colágeno.
Al día siguiente, la suspensión de colágeno se
centrifuga a 10.000-15.000 G para concentrar el
precipitado de colágeno, que se homogeniza a continuación con un
mezclador de palas desfloculante. Dos gramos de precipitado de
colágeno al 2% en peso se distribuyen en jeringuillas de 5 ml que se
liofilizan bajo las condiciones conocidas por los técnicos en la
materia.
Después de la liofilización, el émbolo es
introduce en las jeringuillas de colágeno, sin comprimir el
colágeno. Estas jeringuillas, que están esterilizadas mediante
irradiación gamma con una dosis de 25 a 35 Kgy, se empaquetan en una
doble envoltura estanca al aire.
Se pueden usar dos variantes principales
diferentes para la preparación de dicho polvo de colágeno nativo
estéril.
a) La suspensión del 2% de precipitado de
colágeno se suplementa con un 1% de almidón antes de la
liofilización, lo que hace posible disminuir los efectos
hidrolíticos de la irradiación de esterilización final sobre la
molécula de colágeno.
b) La suspensión de colágeno se preparar de
manera estéril en todo el proceso para evitar la irradiación final
de esterilización.
Otras variantes de este proceso son introducir
mayores o menores cantidades y concentraciones de colágeno.
Los elementos de la cola GAO se preparan tal como
se describe en el Ejemplo 1 y comprenden una jeringuilla de colágeno
calentado con una concentración del 8% y una jeringuilla de almidón
oxidado con una concentración del 1,5%.
Tal como se describe en el ejemplo anterior, se
prepara primero la mezcla del colágeno calentado y del almidón
oxidado (cola GAO), con las respectivas concentraciones del 8 y el
1,5%. Para esto, es posible usar un equipo tal como se describe en
la solicitud de patente WO 98/15299 y transferir 2,5 ml de gel a una
jeringuilla de 5 ml. También es posible usar dos jeringuillas de 5
ml enlazadas mediante un único conector, una conteniendo 2 ml de
colágeno calentado al 8% y la otra conteniendo 0,5 ml de almidón
oxidado al 1,5%. La mezcla de los dos productos se realiza vaciando
totalmente de manera alternativa el contenido de una de las dos
jeringuillas en la otra, 5 a 10 veces hasta que se forma un gel
completamente homogéneo.
El colágeno usado para este ejemplo es colágeno
bovino de tipo I extraído de dermis de ternero, opcionalmente
solubilizado mediante digestión con pepsina y purificado mediante
precipitaciones salinas, según las técnicas ya descritas. De una
manera similar, es posible usar colágenos de tipo I o tipo III de
otras especies animales o de origen humano, o colágeno de origen
recombinante u otros tipos de colágeno, o una mezcla de los mismos
en cualquier proporción.
La jeringuilla de colágeno liofilizado se conecta
a continuación a la jeringuilla de cola GAO mezclada. La cola GAO se
pone en la jeringuilla que contiene el colágeno lifilizado, y a
continuación se transfiere el contenido de una jeringuilla a la otra
empujando sus émbolos hacia delante y atrás 10 a 20 veces hasta que
se forma una espuma homogénea.
Una vez está preparada la cola GAO, la espuma se
ha de polimerizar completamente, para poderse adherir a los
tejidos.
La cola GAO se prepara tal como se describe en el
ejemplo anterior, a partir de 2 ml de colágeno calentado al 8% y 0,5
ml de almidón oxidado al 1,5%. Se transfiere a una jeringuilla de 5
ml.
Se añaden 100 a 250 \mum de una solución de FGF
recombinante humano a la jeringuilla de colágeno nativo.
A continuación, esta jeringuilla de colágeno
nativo se mezcla con la cola GAO, tal como se ha descrito
previamente, hasta que se produce una espuma de GOS/colágeno
nativo-FGF homogénea.
Según otra variante, el FGF se permite que se
absorba al colágeno nativo durante un periodo de tiempo, entre 50 y
120 minutos, antes de mezclar la preparación de colágeno/FGF con la
cola GAO.
Otra variante de este ejemplo consiste en
liofilizar el FGF con el colágeno nativo según el procedimiento
anterior. El precipitado de colágeno se mezcla con una solución de
FGF y se homogeniza, distribuido en jeringuillas de 5 ml, en una
proporción de 2g esterilizados mediante irradiación gamma. Esta
jeringuilla de colágeno liofilizado y FGF se mezcla con 2,5 ml de
cola GAO, tal como se describe en el ejemplo 2, hasta que se produce
una espuma homogénea.
La composición de esta espuma adhesiva se usa
particularmente para llenar lesiones de nervios, siendo el FGF un
factor que facilita la regeneración de los nervios.
En este ejemplo, el FGF se puede reemplazar con
otros factores de crecimiento, o mezclas de los mismos, que tienen
actividades equivalentes al FGF.
Se repite el ejemplo 3, reemplazando el FGF o
factores equivalentes con IL-2.
Esta espuma adhesiva GAO/colágeno nativo
IL-2 es particularmente interesante para controlar
la cancerogénesis y la inhibición del desarrollo de tumores. También
se puede preparar con otros productos, en solitario o mezclada, que
inhiben el desarrollo de cánceres y de tumores.
Se pueden repetir los ejemplos 3 y 4 con colágeno
nativo mezclado con cualquier factor de crecimiento celular o de
regeneración de tejido, para preparar espumas adhesivas que sean
activas sobre heridas de la piel, los huesos, los cartílagos,
etc.
Se prepara una solución ácida de colágeno con una
concentración del 2% añadiendo gradualmente un polvo de colágeno
ácido al agua, a una temperatura de 20-25ºC. Tan
pronto como la solución está completamente homogénea, el colágeno se
neutraliza añadiendo fosfato de sodio, con la concentración final de
10 mM, para conseguir un pH de 6,5-8. La solución de
colágeno se deja a continuación de un día al otro a
20-25ºC, y a continuación el colágeno precipitado se
recupera mediante centrifugación. Se desalifica y se deshidrata con
una serie de lavados de acetona: en el orden, 1 baño de 90/10, m/m,
acetona/agua; 3 baños de 80/20, m/m, acetona/agua y 3 baños de 100%
de acetona.
A continuación se distribuye el colágeno, en un
volumen de 2,5 ml, en jeringuillas de 5 ml, en una proporción de
80-400 mg de colágeno seco por jeringuilla. El
colágeno usado es de una fuente conocida por los técnicos en la
materia que incluye colágenos recombinantes. Si es colágeno bovino
de tipo I, puede ser soluble en ácido o solubilizado mediante
digestión con pepsina. Si es colágeno de placenta humana, se puede
preparar por extracción de la pepsina, según el procedimiento
descrito en la solicitud de patente
EP-A-0 214 035.
El colágeno, después de una filtración de
esterilización inicial, se puede preparar de manera estéril a lo
largo de todo el procedimiento con los equipos conocidos por los
técnicos en la materia.
En una variante, el colágeno distribuido en una
jeringuilla Becton-Dickinson ref: "STERIFILL"
se puede esterilizar mediante irradiación gamma a la dosis de 5 a 35
kilogreys, preferiblemente en presencia de un agente que protege
contra los efectos hidrofílicos de irradiación, tal como almidón. Se
incorpora un volumen adicional de aire en la jeringuilla, si es
necesario, para aumentar el futuro volumen de la espuma.
Preparación de una jeringuilla de agua destilada
estéril o tampón fisiológico, según procedimientos convencionales,
usando la misma jeringuilla Becton-Dickinson. Esta
jeringuilla también puede contener un volumen suplementario de aire.
Ventajosamente, una de las dos jeringuillas está equipada o asociada
con un sistema de calentamiento que permite regular la temperatura
entre 30ºC y 50ºC.
Después de calentar una de las dos jeringuillas,
se conecta a la otra jeringuilla con la ayuda de un conector con un
diámetro interior cercano a 2 mm, lo suficientemente grande para
evitar el taponado mediante las partículas y los grumos iniciales de
colágeno.
El contenido de la jeringuilla líquida se envía
al interior de la jeringuilla que contiene el polvo, y la mezcla se
realiza mediante sucesivas transferencias, 10 a 20 veces, a una
temperatura inferior a 37ºC cuando el propósito se conservar la
estructura helicoidal del colágeno, y de 37ºC a 50ºC cuando el
propósito es producir una disminución o una eliminación de la
estructura helicoidal.
Cuando se homogeniza la espuma, se conserva en
una de las dos jeringuillas (en caliente o a temperatura ambiente
dependiendo de la jeringuilla usada), antes de mezclarse con una
jeringuilla estéril que contiene almidón oxidado, a temperatura
ambiente, preparada como en el ejemplo anterior.
Después de la incorporación del almidón oxidado
en la espuma anterior, se usa la espuma final a una temperatura
inferior a 40ºC, más comúnmente cercana a 37ºC, y se ha de usar
dentro de los siguientes cinco minutos mientras está suficientemente
fluida.
El índice de reticulación se puede controlar
fácilmente ajustando el pH del colágeno usado y su
concentración.
En variantes, se pueden añadir uno o más
productos biológicos antibióticos, agentes
anti-inflamatorios, factores de crecimiento, etc. a
la jeringuilla de polvo de colágeno o a la jeringuilla que contiene
la solución acuosa para aceptarla.
Se prepara una solución de almidón oxidado del 10
al 25% como se describe en el ejemplo 1.
La albúmina usada es a partir de una fuente
conocida. Es de origen humano o animal o derivada de técnicas de
recombinación genética.
La albúmina se toma con una concentración de
hasta el 50%, neutralizada en un pH de 6,5-7,5 con
soluciones de concentración de hidróxido de sodio y de ácido
hidroclórico, y filtrada de manera estéril a través de una membrana
que tiene un empaquetado en jeringuillas de 5 ml.
La jeringuilla de albúmina y una jeringuilla que
contiene 0,5 ml de almidón oxidado del 10 al 25% se montan en un
equipo, según el proceso descrito en el ejemplo 1. El equipo se
llama AAO.
Tal como se ha descrito en los ejemplos
anteriores, se puede preparar primero la mezcla de la albúmina y del
almidón oxidado, con las concentraciones respectivas del
20-50% y del 10 al 25%, sin introducir aire. Para
esto, es posible usar un equipo similar al usado para preparar la
cola GAO en el ejemplo 2, y para transferir 2,5 ml de gel a una
jeringuilla de 5 ml.
La jeringuilla de cola AAO se conecta a
continuación a una jeringuilla de 5 ml que contiene 2,5 ml de aire.
Los dos productos se homogenizan, empezando por el paso de aire al
interior de la jeringuilla que contiene la cola AAO, y a
continuación transfiriendo el contenido de una jeringuilla a la otra
empujando sus émbolos hacia delante y atrás 10 a 20 veces hasta que
se produce una espuma homogénea con un volumen de 5 ml.
También es posible usar dos jeringuillas de 5 ml
enlazadas mediante un único conector, una conteniendo 2 ml de
albúmina al 20-50% y la otra conteniendo 0,5 ml de
almidón oxidado del 10 al 25% y 2,5 ml de aire. La mezcla de los dos
productos se realiza vaciando totalmente de manera alterna el
contenido de una de las dos jeringuillas en la otra 5 a 10 veces
hasta que se produce una espuma completamente homogénea.
Una vez se prepara la cola AAO, la espuma se la
polimerizar en su totalidad, para poder adherirse a los tejidos.
0,4 a 1,25 g de albúmina en polvo se empaquetan
de manera estéril en una jeringuilla
Becton-Dickinson de 5 ml, ref: "STERFILL".
Preparación de una jeringuilla de 2 ml de agua
destilada o solución fisiológica, PBS, asociada con un sistema de
calentamiento que hace posible llevar la temperatura del líquido
entre 37 y 45ºC.
Las dos jeringuillas se conectan a continuación
un extremo con el otro con la ayuda de un conector con un diámetro
de 1 a 2 mm.
El contenido de las dos jeringuillas se mezcla a
continuación mediante sucesivas transferencias de una a la otra.
Después de 10 a 20 transferencias, la espuma de albúmina homogénea
se recoge en una de las dos jeringuillas.
Esta se conecta a continuación a una jeringuilla
que contiene 0,5 ml de almidón oxidado al 6% y, después de mezclarlo
mediante sucesivas transferencias desde una de las jeringuillas a la
otra, se puede aplicar la espuma de proteína adhesiva a la herida
que se ha de tratar.
La albúmina se toma con una concentración del 50%
y se neutraliza a un pH de 6,5-9 tal como se
describe en el ejemplo 7 u 8. 2 ml de esta solución se empaquetan a
continuación en jeringuillas de 5 ml.
Entre los PEGs electrofílicos activados, se
pueden usar igualmente, en solitario o mezclados en cualquier
proporción, SPA-PEG (PEG succinimidil propionato),
SCM-PEG (succinimidil éster de PEG carboximetilado)
y BTC-PEG (benzotriazol carbonato de PEG), de peso
molecular mayor de 1000 Da, derivados de PEG, productos vendidos por
Shearwater Polymers. También se puede usar PEG-SS2
(PEG disuccinimidil succionato), sintetizado tal como se describe en
la solicitud de patente WO 96/03159 (Minnesota Mining and
Manufacturing Company). 40 a 500 mg de PEG activado en forma
deshidratada se empaquetan por jeringuilla de 5 ml.
La mezcla de la albúmina y los PEGs activados se
realiza transfiriendo todo el contenido de la jeringuilla de
albúmina en la jeringuilla de PEG, y a continuación vaciando
totalmente el contenido de una de las dos jeringuillas en la otra 5
a 10 veces hasta que se produce un gel totalmente homogéneo de 5
ml.
Una vez se prepara la cola que combina la
albúmina y los derivados electrofílicos de PEG activados, la espuma
se ha de preparar y usar antes de que la cola se polimerice
completamente, para poder adherirse a los tejidos.
El índice de polimerización, y por lo tanto el
tiempo disponible para usar el producto, se regula mediante el pH de
la mezcla. Cuanto más ácido sea el pH, más lenta es la reacción y
más tiempo hay disponible.
La albúmina se toma a una concentración del 20 al
50% y se neutraliza con un pH de 6,5-9, tal como se
describe en los ejemplos anteriores. 2 ml de esta solución se
empaquetan a continuación en jeringuillas de 5 ml.
Entre los PEGs activados que son reactivos
respecto a los sulfhudrilos, se pueden usar igualmente, por separado
o mezclados en cualquier proporción, VS-PEG
(vinilsulfona PEG), MAL-PEG (maleimida PEG) y
OPSS-PEG (ortopiridil bisulfato PEG), de peso
molecular mayor de 1000 Da, derivados de PEG, productos vendidos por
Shearwater Polymers. 40 a 500 mg de PEG activado y deshidratado se
empaquetan por jeringuilla de 2 ml.
La espuma adhesiva se prepara a continuación tal
como se describe en el ejemplo 9.
\global\parskip0.900000\baselineskip
Se repite el ejemplo 9, reemplazando la albúmina
con el colágeno calentado preparado como se describe en el ejemplo 1
con una concentración del 10-20%, y se empaqueta PEG
activado y deshidratado dos veces menos por jeringuilla de 5 ml, es
decir, 20-250 mg de PEG.
Se repite el ejemplo 10, reemplazando la albúmina
con el colágeno calentado preparado según se describe en el ejemplo
1 con una concentración del 10-20%, con un pH de
6,5-9, por jeringuilla de 5 ml, es decir,
20-250 mg
\hbox{de PEG.}
Se toma la azarosa en solución en agua
apirogénica desmineralizada, con la concentración final del
0,5-5% y a una temperatura de entre 75ºC y 100ºC, y
a continuación se ajusta el pH de esta solución a un pH de
7,5-9 con un tampón de fosfato concentrado para
producir una concentración final de transferencia por jeringuilla de
5 ml. Esta solución se liofiliza a continuación bajo condiciones
conocidas por los técnicos en la materia.
En otra variante, la solución de agarosa es con
10-20 mM de bórax con un pH de 7,5-9
o con un 1:1, mezcla mol/mol de bórax y de fosfato, con una
concentración final de 10-20 mM.
Después de la liofilización, el émbolo se
introduce en las jeringuillas sin comprimir la agarosa. Estas
jeringuillas, que se esterilizan mediante irradiación gamma con una
dosis de 25 a 35 KGy, se empaquetan en una doble envoltura estanca
al aire.
Otra variante de este procedimiento es filtrar la
solución de agarosa de manera estéril, mientras está caliente, es
decir, tan pronto como la viscosidad de la solución es
suficientemente baja para permitir esterilizarla mediante
filtración, después de ajustar su pH a 7,5-9, tal
como se ha mencionado anteriormente, a través de membranas que
tienen una porosidad de 0,22 a 0,45 \mum. Esta solución se
distribuye a continuación de manera estéril en jeringuillas de 5 ml,
en una proporción de 2 ml por jeringuilla, y se liofiliza. Después
de la liofilización, el émbolo se introduce en las jeringuillas sin
comprimir la agarosa. Las jeringuillas se empaquetan en una doble
envoltura estanca al aire. Todas las operaciones realizadas después
de la filtración de esterilización se realizan bajo condiciones
estériles conocidas por los técnicos en la materia.
La cola de fibrina se prepara primero de manera
extemporánea. Todas las colas de fibrina comercialmente disponibles
pueden ser adecuadas. Puede ser, por ejemplo, una solución de
TISSUCOL® que contiene fibrinógeno. 2 ml de solución de cola de
fibrina preparada de manera extemporánea se transfieren a una
jeringuilla de 5 ml y se calientan a 40ºC.
La jeringuilla de agarosa liofilizada se conecta
a continuación a la jeringuilla de cola de fibrina. Las dos colas de
fibrina en la jeringuilla que contiene la agarosa liofilizada, y a
continuación se transfiere el contenido de una jeringuilla a la otra
empujando sus émbolos hacia delante y atrás 10 a 20 veces hasta que
se forma una espuma homogénea.
Una vez se prepara la cola de fibrina, la espuma
se ha de preparar y usar antes de que el fibrinógeno se transforme
completamente en fibrina.
Se repite el ejemplo 11, añadiendo
0,25-2,5 mg de vancomicina, un antibiótico que es
efectivo contra la bacteria Gram positiva, en particular
Staphylococcus aureus y Staphylococcus epidermidis,
los dos agentes principales de infección de injertos en cirugía
vascular, a una solución de 2 ml de agarosa antes de que se
liofilice.
Esta formulación se usa para sellar suturas de
anastomosis vasculares.
Una variante de este ejemplo es incluir otros
antibióticos, en solitario o mezclas de los mismos en cualquier
proporción, en lugar de la vancomicina.
Claims (40)
1. Procedimiento para obtener una espuma de
proteína adhesiva fluida que es biocompatible, bioreabsorbible y no
tóxica, para uso quirúrgico y/o terapéutico, especialmente para
proteger/cicatrizar heridas de tejidos y para fijar tejidos
biológicos entre sí o a un biomaterial implantado,
caracterizado por el hecho de que incluye el hecho de mezclar
de manera extemporánea, de una manera homogénea:
- un compuesto de proteína potencialmente
adhesivo que se puede polimerizar/reticular, contenido en una
primera jeringuilla,
con
- un agente de polimerización/reticulación
contenido en una segunda jeringuilla para formar un material de
matriz de proteína adhesiva fluida que es biocompatible,
bioreabsorbible y no tóxico, y
- un gas o una mezcla de gas biocompatibles y no
tóxicos seleccionados entre aire, nitrógeno, oxígeno o dióxido de
carbono o la mezcla de uno o más de estos gases, contenidos en la
primera y/o en la segunda jeringuilla y/o una tercera jeringuilla,
con este material de matriz de proteína adhesiva fluida, o con uno
de los constituyentes básicos de este material solubilizado en medio
acuoso,
mediante la transferencia recíproca de la mezcla
entre dos jeringuillas.
2. Procedimiento según la reivindicación 1,
caracterizado por el hecho de que el compuesto de proteína en
forma sólida, especialmente en forma de fibras o polvo seco, se
mezcla de manera extemporánea con una solución acuosa tamponada con
la ayuda de medios de calentamiento y por el hecho de que el agente
de polimerización/reticulación se suministra a la mezcla.
3. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 y 2, caracterizado por el hecho de que el
compuesto de proteína consiste en, o incluye, una proteína o una
mezcla de proteínas seleccionadas entre colágeno, gelatina,
albúmina, elastina y fibrinógeno, preferiblemente a partir de
colágeno y albúmina.
4. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, caracterizado por el hecho de que el
compuesto de proteína consiste en, o incluye, colágeno.
5. Procedimiento según la reivindicación 4,
caracterizado por el hecho de que el compuesto de proteína
consiste en, o incluye, colágeno nativo, colágeno nativo que se ha
modificado químicamente especialmente mediante metilación, mediante
succinilación, mediante corte oxidativo especialmente con la ayuda
de ácido periódico o una de sus sales, colágeno nativo sin
telopéptidos, colágeno que ha perdido al menos parcialmente su
estructura helicoidal, formado principalmente por cadenas \alpha y
cuyo peso molecular está cercano a 100 kDa, no hidrolizado (colágeno
calentado).
6. Procedimiento según la reivindicación 4,
caracterizado por el hecho de que el compuesto de proteína
consiste en, o incluye, colágeno calentado.
7. Procedimiento según la reivindicación 1,
caracterizado por el hecho de que el compuesto de proteína
consiste en, o incluye, colágeno calentado en forma de una solución
acuosa en una concentración de entre el 1 y el 5%, preferiblemente
entre el 2,5 y el 4% en peso.
8. Procedimiento según la reivindicación 1,
caracterizado por el hecho de que el compuesto de proteína
consiste en, o incluye, colágeno calentado solubilizado en medio
acuoso en una concentración de entre el 4 y el 20%, preferiblemente
entre el 5 y el 18% en peso.
9. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 y 3, caracterizado por el hecho de que el
compuesto de proteína consiste en, o incluye, albúmina, solubilizada
en medio acuoso en una concentración de entre el 20 y el 50%,
preferiblemente entre el 40 y el 50%.
10. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 9, caracterizado por el hecho de que el
agente de polimerización/reticulación es un polímero reactivo que
tiene un peso molecular mayor de 1000, preferiblemente seleccionado
entre los polialdehídos macromoleculares y los polímeros
hidrofílicos capaces de reaccionar con el compuesto de proteína,
especialmente respecto a funciones amino o sulfhidrilo.
11. Procedimiento según la reivindicación 10,
caracterizado por el hecho de que el polialdehído
macromolecular se selecciona entre polisacáridos o mucopolisacáridos
oxidados, preferiblemente entre almidón, dextrano, agarosa,
celulosa, chitita, chitosán, ácido algínico,
glicosamino-glicanos, ácido hialurónico y sulfato de
condroitina, y sus derivados o mezclas, con particular preferencia
entre almidón, dextrano y ácido hialurónico.
\newpage
12. Procedimiento según la reivindicación 11,
caracterizado por el hecho de que el polialdehído
macromolecular comprende almidón oxidado.
13. Procedimiento según la reivindicación 10,
caracterizado por el hecho de que el polímero hidrofílico se
selecciona entre los derivados de poli(etileno) glicol (PEG),
poli(oxietileno), poli(metileno glicol),
poli(trimetileno glicol), poli(vinil pirrolidona),
siendo los más preferidos los derivados de PEG.
14. Procedimiento según la reivindicación 10,
caracterizado por el hecho de que el agente de
polimerización/reti-
culación es un polialdehído macromolecular solubilizado en medio acuoso en una concentración entre el 0,5 y el 10% en peso, preferiblemente entre el 1 y el 3% en peso.
culación es un polialdehído macromolecular solubilizado en medio acuoso en una concentración entre el 0,5 y el 10% en peso, preferiblemente entre el 1 y el 3% en peso.
15. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 8 y 10 a 14, caracterizado por el hecho
de que el compuesto de proteína consiste en, o incluye, colágeno
nativo o colágeno calentado y el agente de
polimerización/reticulación es almidón oxidado.
16. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, 8 y 14, 15, caracterizado por el
hecho de que la proporción de polialdehído macromolecular y colágeno
calentado es entre 1/10 y 1/160, preferiblemente entre 1/15 y 1/50,
estando la temperatura de mezcla entre 35ºC y 41ºC.
17. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 4 y 10 a 15, caracterizado por el hecho
de que la proporción de polialdehído macromolecular y colágeno
nativo está entre 1/10 y 1/50, preferiblemente entre 1/10 y 1/30 y
la temperatura de mezcla está comprendida entre 18ºC y 37ºC.
18. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, caracterizado por el hecho de que el
compuesto de proteína se ha modificado previamente, químicamente o
mediante corte oxidativo, especialmente mediante tratamiento con
ácido periódico o una de sus sales, y por el hecho de que el agente
de polimerización está formado a partir de un tampón con un pH
ligeramente alcalino para permitir la polimerización/reticulación
del compuesto de proteína en un pH substancialmente neutro.
19. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, caracterizado por el hecho de que
incluye el hecho de mezclar fibrinógeno con trombina en solución
acuosa.
20. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 19, caracterizado por el hecho de que el
gas se selecciona entre aire, nitrógeno, oxígeno y dióxido de
carbono o la mezcla de uno o más de estos gases, preferiblemente
entre aire, dióxido de carbono y nitrógeno, prefiriéndose
particularmente aire.
21. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 20, caracterizado por el hecho de que el
gas está asociado con uno o más de los constituyentes para la matriz
de proteína adhesiva.
22. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 21, caracterizado por el hecho de que el
gas está asociado con un vehículo biocompatible y no tóxico,
preferiblemente formado a partir de un compuesto de proteína según
la reivindicación 3.
23. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 21, caracterizado por el hecho de que el
gas se suministra con la ayuda del agente de
polimerización/reticulación y/o el vehículo en forma pulverulenta o
liofilizada.
24. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 21, caracterizado por el hecho de que el
gas se suministra con la ayuda del compuesto de proteína en forma
pulverulenta o liofilizada.
25. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 24, caracterizado por el hecho de que el
volumen de gas introducido representa del 25 y 90% del volumen total
de la espuma adhesiva, preferiblemente del 40 al 75%.
26. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 25, caracterizado por el hecho de que
incluye el hecho de introducir una o más sustancias biológicamente
activas en el material de la matriz de proteína adhesiva.
27. Procedimiento según la reivindicación 26,
caracterizado por el hecho de que la sustancia o sustancias
biológicamente activas están asociadas con un vehículo biocompatible
y no tóxico, que es posiblemente el vehículo para el gas o la mezcla
de gases.
28. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 27, caracterizado por el hecho de que el
gas se introduce en el material de matriz adhesiva (matriz en el
proceso de formación).
29. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 27, caracterizado por el hecho de que el
gas se introduce en el momento de la mezcla de los constituyentes
para formar la matriz adhesiva.
30. Procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 29, caracterizado por el hecho de que el
gas se mezcla con el material de la matriz adhesiva para dar una
temperatura de entre 18ºC y 41ºC.
31. Equipo para la preparación de una espuma de
proteína adhesiva fluida que es biocompatible, bioreabsorbible y no
tóxica, para uso quirúrgico y/o terapéutico, especialmente para
proteger/cicatrizar heridas de tejidos y para fijar tejidos
biológicos entre sí o a un biomaterial implantado,
caracterizado por el hecho de que incluye el hecho de mezclar
de manera extemporánea, de una manera homogénea:
- un compuesto de proteína potencialmente
adhesivo que se puede polimerizar/reticular, contenido en una
primera jeringuilla,
con
- un agente de polimerización/reticulación
contenido en una segunda jeringuilla para formar un material de
matriz de proteína adhesiva fluida que es biocompatible,
bioreabsorbible y no tóxico, y
- un gas o una mezcla de gas biocompatibles y no
tóxicos seleccionados entre aire, nitrógeno, oxígeno o dióxido de
carbono o la mezcla de uno o más de estos gases, contenidos en la
primera y/o en la segunda jeringuilla y/o una tercera jeringuilla,
con este material de matriz de proteína adhesiva fluida, o con uno
de los constituyentes básicos de este material solubilizado en medio
acuoso,
mediante la transferencia recíproca de la mezcla
entre dos jeringuillas.
32. Equipo según la reivindicación 31,
caracterizado por el hecho de que incluye un primer
receptáculo que contiene compuesto de proteína potencialmente
adhesivo en forma pulverulenta, deshidratado y posiblemente
esterilizado, conteniendo un segundo receptáculo una solución acuosa
tamponada posiblemente esterilizada, medios para suministrar un
agente de polimerización/reticulación al compuesto de proteína
solubilizado y medios para mezclar los contenidos del primer y
segundo receptáculos, y medios para usar un gas en dicha mezcla y
obtener la espuma.
33. Equipo según una cualquiera de las
reivindicaciones 31 y 32, caracterizado por el hecho de que
el compuesto de proteína, el agente de polimerización/reticulación y
el gas se definen según una cualquiera de las reivindicaciones 3 a
27.
34. Equipo según la reivindicación 31,
caracterizado por el hecho de que es en forma de dos
jeringuillas equipadas con medios de mezcla, una de las cuales
contiene el compuesto de proteína en solución acuosa y el otro
contiene el agente de polimerización/reticulación.
35. Equipo según una cualquiera de las
reivindicaciones 31 a 34, caracterizado por el hecho de que
el gas está asociado con el compuesto de proteína y/o con el agente
de polimerización/reticulación.
36. Equipo según la reivindicación 32,
caracterizado por el hecho de que dichos medios de mezcla
hacen posible pasar la mezcla una pluralidad de veces desde una
jeringuilla a la otra para asegurar la formación de la espuma desde
el gas incluido en la jeringuilla que contiene el compuesto de
proteína pulverulento.
37. Equipo según una cualquiera de las
reivindicaciones 31 a 35, caracterizado por el hecho de que
el gas está asociado con un vehículo biocompatible y no tóxico,
preferiblemente formado a partir de un compuesto de proteína según
la reivindicación 3.
38. Equipo según una cualquiera de las
reivindicaciones 31 a 35, caracterizado por el hecho de que
comprende una tercera jeringuilla que contiene el gas posiblemente
asociado con un vehículo.
39. Equipo según la reivindicación 38,
caracterizado por el hecho de que el vehículo contiene además
una o más sustancias biológicamente activas.
40. Equipo según una cualquiera de las
reivindicaciones 31 a 39, caracterizado por el hecho de que
el agente de polimerización/reticulación y/o el vehículo son en
forma liofilizada.
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