ES2211662T3 - Procedimiento para la produccion de cianohidrinas activas opticamente utilizando r-oxinitrilasa. - Google Patents
Procedimiento para la produccion de cianohidrinas activas opticamente utilizando r-oxinitrilasa.Info
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Abstract
Procedimiento para la producción de los (R)-enantiómeros de cianohidrinas ópticamente activas a través de reacción de un aldehído o de una cetona con un donador de grupos cianuro en presencia de (R)-oxinitrilasa, caracterizado porque se agita una mezcla de reacción compuesta por: a) un aldehído o cetona disueltos en un diluyente orgánico, no miscible o insignificantemente miscible con agua, b) una solución acuosa de (R)-oxinitrilasa y c) un donador de grupos cianuro con una energía de agitación sobre 500 W/m3, de manera que se obtiene una emulsión, que se mantiene hasta el final de la reacción enzimática, después de lo cual al término de la reacción enzimática se aísla la (R)-cianohidrina correspondiente a partir de la mezcla de reacción.
Description
Procedimiento para la producción de cianohidrinas
activas ópticamente utilizando R-oxinitrilasa.
Las cianohidrinas son importantes, por ejemplo,
para la síntesis de alfa-hidroxiácidos,
alfa-hidroxicetonas,
beta-aminoalcoholes, que encuentran aplicación para
la obtención de substancias biológicamente activas, por ejemplo
substancias farmacéuticas, vitaminas o también compuestos
piretroides.
La producción de cianohidrinas se puede llevarse
a cabo por adición de ácido prúsico (HCN) al grupo carbonilo de un
aldehído o de una cetona asimétrica, resultando mezclas de
enantiómeros de cianohidrinas asimétricas.
Puesto que, normalmente, en una mezcla de
enantiómeros biológicamente activa solo es biológicamente activo
uno de los dos enantiómeros, no han faltado ensayos para encontrar
un procedimiento para la producción de los
(R)-enantiómeros de una cianohidrina ópticamente
activa con una pureza óptica lo más alta posible. Muchos
procedimientos se basan en la adición de HCN al grupo carbonilo en
presencia de un catalizador quiral, por ejemplo una
oxinitrilasa.
La pureza de los enantiómeros de la cianohidrina
a producir depende, en este caso, en gran medida de la medida en
que se puedan suprimir la reacción de concurrencia química y la
racemizado.
Como se conoce a partir de J. Am. Chem. Soc.
1991, 113, páginas 6992-6996, especialmente en
procedimientos que trabajan en el sistema acuoso es particularmente
difícil conseguir una enantioselectividad y una enantiopureza altas
en virtud de esta reacción de concurrencia.
Se indica en el documento
EP-A-0 326 063 una vía para suprimir
la reacción de concurrencia química y la racemizado, según el cual
se obtienen (R)-cianohidrinas ópticamente activas a
través de reacción de aldehídos alifáticos, aromáticos o
heteroaromáticos o cetonas en medio acuoso con ácido prúsico en
presencia de (R)-oxinitrilasa (EC 4.1.2.10) a partir
de Prunus amygdalus, trabajando en condiciones tan ácidas,
especialmente a pH \leq 4,5 y a temperaturas tales que sean
insignificantes la reacción de concurrencia química y la racemizado
con respecto a la síntesis enzimática. A este respecto se hace
referencia a las elevadas pérdidas de actividad en estas
condiciones del biocatalizador y los ejemplos permiten reconocer una
preferencia de las temperaturas bajas en el intervalo de 5 a
8ºC.
Puesto que los enzimas son proteínas acuosas y
los substratos son, en cambio, compuestos sólo mal solubles en
agua, se ha propuesto la utilización de disolventes orgánicos
miscibles con agua para la mejora de la solubilidad del substrato y
del producto.
Así, por ejemplo, se ha investigado por
Effenberger y col. (Angew. Chem. 99 (1987), páginas
491-492) la formación de cianohidrina enzimática en
sistemas acuoso-alcohólicos variante el valor pH,
la temperatura y la concentración con respecto a una supresión
óptima de las reacciones de concurrencia. Sin embargo, la pureza
estereoquímica de los productos finales deseados no era en este caso
con frecuencia satisfactoria. Como mejora se ha propuesto realizar
la reacción enzimática de compuestos oxo con ácido prúsico en
disolventes orgánicos no miscibles con agua para suprimir la
reacción química. En este caso se ha trabajado con preferencia con
acetato de etilo y utilizando (R)-oxinitrilasa
fijada en soporte. De esta manera se han obtenido productos con alta
pureza óptica, pero se ha observado una pérdida considerable de
actividad enzimática a través de la inmovilización del enzima.
Además, se ha comprobado que la reacción no enzimática, que conduce
en la fase acuosa a través de adición del ácido prúsico al
compuesto de partida a cianohidrinas racémicas, provoca una
disminución no deseada de la pureza de enantiómeros del
producto.
En la publicación J. Am. Chem. Soc. 1991, 113,
páginas 6992-6996 se abordan los problemas que
están relacionados con la utilización de ácido prúsico libre, a
través de un transcianurado por medio de hidroxinitrilasa utilizando
acetonacianohidrina en una mezcla de reacción bifásico, que consta
de una solución tampón acuosa y un disolvente no miscible con agua.
El inconveniente en este caso es que el volumen de disolvente
orgánico y, por lo tanto, de toda la mezcla de reacción es bastante
grande con respecto a la cantidad de aldehído empleada. Además, se
necesita un tiempo de reacción extremadamente largo y una cantidad
grande de enzima. Por último, tampoco la pureza óptica de la
cianohidrina es la mayoría de las veces suficiente para la síntesis
enantioespecífica de los productos objetivo.
Como mejora se propone, en el documento
EP-A1-0 547 655, un procedimiento
en el que se producen cianohidrinas ópticamente activas a partir de
aldehídos o cetonas y ácido prúsico en un sistema bifásico, que
consta de una solución acuosa homogénea de la hidroxinitrilasa y un
disolvente orgánico adecuado, que no es miscible al menos
esencialmente con agua, siendo tamponada la solución acuosa con un
tampón de acetato en una concentración de 0,005 a 0,1 mol por litro
y estando la relación entre fase orgánica y fase acuosa entre 5:1 y
1:5. El sistema de reacción se agita durante la reacción
enzimática, manteniendo el sistema bifásico.
A pesar de la reacción en un valor pH de
aproximadamente 4,5, sin embargo, no se puede suprimir tampoco
completamente la reacción química en este sistema bifásico que
consta de la solución de substrato orgánico y la solución de enzima
acuosa. En este procedimiento, es un inconveniente que los valores
ee de la cianohidrina solamente se han podido mejorar a través del
empleo de grandes cantidades de enzima.
En el documento EP 0 927 766 Se describe un
procedimiento para la producción de
(S)-cianohidrinas. En este caso, se hacen reaccionar
aldehídos o cetonas utilizando una
(S)-hidroxinitrilliasa en una emulsión para obtener
las
(S)-cianohidrinas correspondientes. La (S)-hidroxinitrilliasa y las (R)-hidroxinitrilliasas se diferencian, como se describe en Angew. Chem. 1994, 106, página 1612, de una manera significativa tanto en su estructura como también en sus propiedades catalizadoras.
(S)-cianohidrinas correspondientes. La (S)-hidroxinitrilliasa y las (R)-hidroxinitrilliasas se diferencian, como se describe en Angew. Chem. 1994, 106, página 1612, de una manera significativa tanto en su estructura como también en sus propiedades catalizadoras.
El objeto de la invención era encontrar un
procedimiento mejorado para la producción de cianohidrinas
ópticamente activas, que garantiza una pureza de enantiómeros alta
con una necesidad de enzima y de tiempo al mismo tiempo bajas.
Se ha encontrado ahora, de una manera inesperada,
que la reacción de una pluralidad de compuestos carbonilo, como por
ejemplo aldehídos alifáticos, alicíclicos, insaturados, alifáticos
substituidos aromáticamente, aromáticos así como heteroaromáticos y
cetonas para formar las cianohidrinas correspondientes es posible
con alto rendimiento y alta pureza óptica en modo de funcionamiento
más concentrado frente al estado de la técnica, con empleo reducido
de enzima y en tiempos de reacción más cortos, cuando se realiza la
reacción en una emulsión. De manera inesperada, la actividad
enzimática se mantiene estable en las condiciones de una emulsión
que, en muchas proteínas, conduce a desactivación, como por ejemplo
con alta energía de agitación.
Por lo tanto, el objeto de la presente invención
es un procedimiento para la producción de los
(R)-enantiómeros de cianohidrinas ópticamente
activas a través de reacción de un aldehído o de una cetona con un
donador de grupos cianuro en presencia de
(R)-oxinitrilasa, que se caracteriza porque se agita
una mezcla de reacción compuesta por
- a)
- un aldehído o cetona disueltos en un diluyente orgánico, no miscible o insignificantemente miscible con agua,
- b)
- una solución acuosa de (R)-oxinitrilasa y
- c)
- un donador de grupos cianuro
con una energía de agitación sobre 500 W/m^{3},
de manera que se obtiene una emulsión, que se mantiene hasta el
final de la reacción enzimática, después de lo cual al término de
la reacción enzimática se aísla la (R)-cianohidrina
correspondiente a partir de la mezcla de reacción.
Como materiales de partida en el procedimiento
según la invención se emplean un aldehído o una cetona, un donador
de grupos cianuro, una solución acuosa de una
(R)-oxinitrilasa y un diluyente orgánico no miscible
o insignificantemente miscible con agua.
Por aldehídos se entienden en este caso aldehídos
alifáticos, aromáticos o heteroaromáticos. Por aldehídos alifáticos
se entienden en este caso aldehídos saturados o insaturados,
alifáticos, lineales, ramificados o cíclicos. Los aldehídos
alifáticos preferidos son aldehídos lineales especialmente con 2 a
30 átomos de carbono, con preferencia de 2 a 18 átomos de carbono,
que están saturados o una o varias veces insaturados. El aldehído
puede presentar en este caso tanto enlaces dobles
C-C como también enlaces triples
C-C. Los aldehídos alifáticos, aromáticos o
heteroaromáticos pueden estar, además, no substituidos o
substituidos por grupos inertes en las condiciones de reacción, por
ejemplo por grupos arilo o grupos heteroarilo en caso dado
substituidos, como grupos fenilo, fenoxi o indolilo, por grupos
halógeno, hidroxi,
hidroxi-C_{1}-C_{5} alquilo,
alcoxi de C_{1}-C_{5}, alquiltio de
C_{1}-C_{5}, éteres, alcohol, ésteres del ácido
carboxílico, nitro o azido. Ejemplos de aldehídos aromáticos o
heteroaromáticos son benzaldehído o diferentes benzaldehídos
substituidos, como por ejemplo
3,4-difluorobenzaldehído,
3-fenoxibenzaldehído,
4-fluoro-3-fenoxibenzaldehído,
hidroxibenzaldehído, metoxibenzaldehído, además de furfural,
metilfurfural,
antracen-9-carbaldehído,
furan-3-carbaldehído,
indol-3-carbaldehído,
naftalin-1-carbaldehído,
ftaldialdehído,
pirazol-3-carbaldehído,
pirrol-2-carbaldehído,
tiofen-2-carbaldehído,
isoftalaldehído piridinaldehídos, tienilaldehídos, etc.
Las cetonas son cetonas alifáticas, aromáticas o
heteroaromáticas, en las que el átomo de carbono del carbonilo está
substituido de forma irregular. Por cetonas alifáticas se entienden
cetonas saturadas insaturadas, lineales, ramificadas o cíclicas.
Las cetonas pueden estar saturadas o una o varias veces insaturadas.
Pueden estar no substituida, o substituidas por grupos inertes en
condiciones de reacción, por ejemplo por grupos arilo o heteroarilo
en caso dado substituidos, como grupos fenilo o inolilo, por grupos
halógeno, éter, alcohol, éster del ácido carboxílico, nitro o
azido.
Ejemplos de cetonas aromáticas o heteroaromáticas
son acetofenona, indolilacetona, etc.
Los aldehídos o cetonas, que son adecuados para
el procedimiento según la invención, son conocidos o se pueden
producir como es habitual.
Como donador de grupos cianuro se añade ácido
prúsico. El ácido prúsico se pueden liberar en este caso también
poco antes de la reacción a partir de una de sus sales como por
ejemplo NaCN o KCN y se puede añadir en substancia o en forma
disuelta a la mezcla de reacción.
Como oxinitrilasa se contemplan
(R)-oxinitrilasas, por ejemplo de Prunus
amygdalus, Prunus laurocerasus o Prunus serotina. Con
preferencia se emplea como oxinitrilasa
(R)-oxinitrilasa de Prunus amygdalus.
La enzima se caracteriza por una alta estabilidad
frente a disolventes. Por lo tanto, existe la posibilidad de
emplear diferentes disolventes orgánicos para la reacción
enzimática, que permiten la formación de una emulsión, lo que
repercute de una manera favorable sobre la productividad del proceso
respectivo. La oxinitrilasa se puede emplear purificada o no
purificada, como tal o inmovilizada.
Como disolvente orgánico se pueden emplear
hidrocarburos alifáticos o aromáticos no miscibles o
insignificantemente miscibles con agua, que en caso dado están
halogenados, alcoholes, éteres o ésteres o mezclas de ellos.
Ejemplos de ellos son dietiléter, diisopropiléter, dibutiléter,
metil-terc. butiléter, acetato de etilo, acetato de
propilo, tolueno, xileno, ciclohexano, tricloretano, clorobenceno,
etc.
Con preferencia se emplean
metil-terc.-bituléter (MTBE), diisopropiléter,
dibutiléter y acetato de etilo o una mezcla de MTBE y tolueno.
Se emplean por gramo de aldehído o cetona
aproximadamente de 0,2 a 20 g de diluyente y de 10 a 2000 IU de
actividad de oxinitrilasa, con preferencia de aproximadamente 50 a
100 IU.
Una IU (Unidad Internacional) designa aquella
cantidad de un preparado de enzima que cataliza la formación de un
micromol de producto por minuto. La cantidad necesaria de la
oxinitrilasa respectiva se determina de una manera óptima en un
ensayo de actividad, por ejemplo según el ensayo de actividad de la
Fa. Sigma, de una manera similar a Jorns y col. J. Biolog. Chem.
254, páginas 12145-12152, 1979.
Se añade por mol de grupo aldehído o de grupo
ceto empleado, al menos 1 mol, con preferencia de 1 a 5 moles, de
manera especialmente preferida de 1 a 2 moles, de donador de grupos
cianuro. En el procedimiento según la invención, el aldehído o la
cetona están presentes disueltos en el diluyente orgánico. A esta
solución se añade el enzima en forma de una solución tampón acuosa.
El vapor pH de esta solución debe ser menor que 7, con preferencia
entre 3 y 6,5.
La mezcla de reacción obtenida de esta manera se
agita a temperaturas de 0ºC a aproximadamente 30ºC, con preferencia
de 5ºC a 25ºC, de tal manera que se obtiene una emulsión. El número
de revoluciones (N) del agitador necesario para ello depende en
este caso del llamado índice de capacidad del agitador (Po)
empleado, de cuyo diámetro (d), del volumen de reacción (V) así como
de la densidad (\rho) del medio de reacción. A partir de estos
factores se puede derivar la energía de agitación (P/V), es decir,
la potencia del agitador por volumen de reacción (volumen de la
mezcla de reacción, no del aparato).
P/V=\frac{P_{o}\cdot\rho\cdot
N^{3}\cdot
d^{5}}{V}
Con preferencia, la energía de agitación en el
procedimiento según la invención es mayor que 500 W/m^{3}, de
manera especialmente preferida mayor que 1000 W/m^{3}.
Comparativamente en los procedimientos conocidos hasta ahora, que
trabajan en el sistema acuoso, orgánico o bifásico, por ejemplo
según el documento EP-A1-0 547 655,
solamente se consiguen energías de agitació9n de aproximadamente
100 W/m^{3}.
Si la mezcla de reacción está presente como
emulsión, entonces se añade el donador de grupos cianuro. La
emulsión se mantiene hasta el final de la reacción. La curva de la
reacción se puede seguir en este caso, por ejemplo,
fotométricamente a través de la reducción del contenido de aldehído
o de cetona.
Según el educto, se mide en la longitud de onda
en la que el educto absorbe y no la cianohidrina resultante. La
absorción de la mezcla de reacción se reduce, por lo tanto,
proporcionalmente con el incremento de la conversión.
No obstante, también se pueden mezclar juntos en
primer lugar todos los componentes y a continuación se puede agitar
la mezcla de reacción obtenida de esta manera para que se obtenga
una emulsión.
En el caso de utilización de una sal del ácido
prúsico, se puede liberar en primer lugar el ácido prúsico de la
solución de la sal a través de la adición, por ejemplo, de
H_{2}SO_{4} o H_{3}PO_{4}. El vapor pH de esta solución de
ácido prúsico debería ser menor que 7, con preferencia entre 4 y
6,5.
A continuación se añaden a la solución de ácido
prúsico la solución acuosa de enzima, el diluyente orgánico y el
aldehído o la cetona, se inicia la reacción y, en caso dado, se
reajusta el valor pH. También aquí hay que procurar de nuevo que la
mezcla de reacción sea agitada de tal forma que se obtenga una
emulsión, que se mantiene de nuevo hasta el final de la
reacción.
Para la elaboración de la mezcla de reacción y
para el aislamiento de la cianohidrina formada se emplean técnicas
habituales, que rompen en primer lugar la emulsión, como por
ejemplo filtración, centrifugación o coalescencia. A continuación
se separan las fases que se forman, en caso dado, con la adición de
desemulsionantes, y se elabora la fase que contiene producto.
Para la obtención de la cianohidrina
correspondiente se aplican en este caso, según el producto final,
técnicas conocidas como filtración, destilación, extracción o
cristalización. Las cianohidrinas obtenidas de esta manera se
pueden estabilizar, en caso dado, a través de la adición de un ácido
antes del procesamiento posterior.
Se diluyeron de 0,25 a 1 ml de solución de
R-oxinitrilasa (E. C. 4.1.2.10, 877 unidades / ml)
con 50 mM tampón de citrato/fosfato (pH 4) en 4 ml y se ajustó el
valor pH de la solución de enzima, en caso dado, con algunas gotas
de solución de ácido nítrico a pH 4. A esta solución se añadió una
solución de 3 ml de t.-butilmetiléter y 0,8 g (5,69 mmol) de
2-clorobenzaldehído y a continuación se añadieron
445 \mul (11,38 mmol) de ácido prúsico. La mezcla de reacción se
agitó a temperatura ambiente con 500 y con 900 rpm. Cuando se agitó
con 500 rpm (ensayos comparativos) se obtuvo un sistema bifásico
similar al del documento EP-A1-0
547 655, mientras que a través de la agitación con 900 rpm se obtuvo
una emulsión.
El rendimiento y la pureza de enantiómeros de la
(R)-cianohidrina formada fue analizada por medio de
GC. A tal fin se centrifugó una muestra de la solución de reacción
y se diluyeron 50 \mul de la fase orgánica con diclorometano.
Después de una derivación con cloruro de acetilo, se analizó por
cromatografía de gas en una columna de ciclodextrina.
El rendimiento y la pureza de enantiómeros en
función de la cantidad de enzima y del número de revoluciones del
agitador (sistema bifásico o bien emulsión) se deducen a partir de
las Tablas 1 y 2.
Se diluyó 1 ml de solución de
R-oxinitrilasa (E. C. 4.1.2.10, 877 unidades/ml)
con 50 mM tampón de citrato / fosfato (pH 4) en 4 ml y se ajustó el
valor pH de la solución de enzima, en caso dado, con algunas gotas
de solución de ácido prúsico a pH 4. A esta solución se añadió una
solución de 3 ml de t-butilmetiléter y 0,8 g (11
mmol) de
n-butiraldehído y a continuación se añadieron 860 \mul (2 mmol) de ácido prúsico. La mezcla de reacción fue agitada por medio de agitador magnético a temperatura ambiente con 900 rpm, con lo que se obtuvo una emulsión.
n-butiraldehído y a continuación se añadieron 860 \mul (2 mmol) de ácido prúsico. La mezcla de reacción fue agitada por medio de agitador magnético a temperatura ambiente con 900 rpm, con lo que se obtuvo una emulsión.
El rendimiento y la pureza de enantiómeros de la
cianohidrina formada se analizó por medio de GC. A tal fin se
centrifugó una muestra de la solución de reacción y se diluyeron 50
\mul de la fase orgánica con diclorometano. Después de una
derivación con cloruro de acetilo, se analizó por cromatografía de
gas en una columna de ciclodextrina. Al cabo de 5 minutos, el
aldehído había reaccionado totalmente en la
(R)-cianohidrina correspondiente con una pureza de
enantiómeros del 98%.
Claims (9)
1. Procedimiento para la producción de los
(R)-enantiómeros de cianohidrinas ópticamente
activas a través de reacción de un aldehído o de una cetona con un
donador de grupos cianuro en presencia de
(R)-oxinitrilasa, caracterizado porque se
agita una mezcla de reacción compuesta por
- a)
- un aldehído o cetona disueltos en un diluyente orgánico, no miscible o insignificantemente miscible con agua,
- b)
- una solución acuosa de (R)-oxinitrilasa y
- c)
- un donador de grupos cianuro
con una energía de agitación sobre 500 W/m^{3},
de manera que se obtiene una emulsión, que se mantiene hasta el
final de la reacción enzimática, después de lo cual al término de
la reacción enzimática se aísla la (R)-cianohidrina
correspondiente a partir de la mezcla de reacción.
2. Procedimiento según la reivindicación 1,
caracterizado porque se hace reaccionar un aldehído
alifático, aromático o heteroaromático o una cetona asimétrica.
3. Procedimiento según la reivindicación 1,
caracterizado porque se emplea ácido prúsico como donador de
grupos cianuro.
4. Procedimiento según la reivindicación 1,
caracterizado porque como oxinitrilasa se emplea una
(R)-oxinitrilasa de Prunus amygdalus.
5. Procedimiento según la reivindicación 1,
caracterizado porque como diluyente se emplean hidrocarburos
alifáticos o aromáticos no miscibles o insignificantemente
miscibles con agua que, en caso dado, están halogenados, alcoholes,
éteres o ésteres o mezclas.
6. Procedimiento según la reivindicación 1,
caracterizado porque como diluyente se emplean
metil-terc-butiléter,
diisopropiléter, dibutiléter, acetato de etilo o una mezcla de
metil-terc. butiléter y tolueno.
7. Procedimiento según la reivindicación 1,
caracterizado porque la temperatura de reacción es de 0ºC a
30ºC.
8. Procedimiento según la reivindicación 1,
caracterizado porque al término de la reacción enzimática
para el aislamiento de la (R)-cianohidrina
correspondiente a partir de la mezcla de reacción, se interrumpe en
primer lugar la emulsión a través de filtración, centrifugación o
coalescencia y a continuación se separan las fases que se forman,
en caso dado con la adición de desemulsionantes, y se prepara la
fase que contiene el producto.
9. Procedimiento según la reivindicación 8,
caracterizado porque la elaboración de la fase que contiene
el producto se realiza, según el producto final, a través de
filtración, destilación, extracción o cristalización.
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