EP2705129A1 - Photobioreacteur en milieu ferme pour la culture de micro-organismes photosynthetiques - Google Patents

Photobioreacteur en milieu ferme pour la culture de micro-organismes photosynthetiques

Info

Publication number
EP2705129A1
EP2705129A1 EP12718219.4A EP12718219A EP2705129A1 EP 2705129 A1 EP2705129 A1 EP 2705129A1 EP 12718219 A EP12718219 A EP 12718219A EP 2705129 A1 EP2705129 A1 EP 2705129A1
Authority
EP
European Patent Office
Prior art keywords
light
photobioreactor according
photobioreactor
light source
diffusing element
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Withdrawn
Application number
EP12718219.4A
Other languages
German (de)
English (en)
Inventor
Alain Friederich
Michel Conin
Gaël RUIZ
Mahmoud AFFI
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Acta Alga
Original Assignee
Acta Alga
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Acta Alga filed Critical Acta Alga
Publication of EP2705129A1 publication Critical patent/EP2705129A1/fr
Withdrawn legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M21/00Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses
    • C12M21/02Photobioreactors
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/12Unicellular algae; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/20Material Coatings
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/22Transparent or translucent parts
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M29/00Means for introduction, extraction or recirculation of materials, e.g. pumps
    • C12M29/02Percolation
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M29/00Means for introduction, extraction or recirculation of materials, e.g. pumps
    • C12M29/06Nozzles; Sprayers; Spargers; Diffusers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M3/00Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M31/00Means for providing, directing, scattering or concentrating light
    • C12M31/08Means for providing, directing, scattering or concentrating light by conducting or reflecting elements located inside the reactor or in its structure
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M31/00Means for providing, directing, scattering or concentrating light
    • C12M31/10Means for providing, directing, scattering or concentrating light by light emitting elements located inside the reactor, e.g. LED or OLED
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M41/00Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation
    • C12M41/12Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation of temperature

Definitions

  • the invention relates to the intensive and continuous cultivation of photosynthetic microorganisms.
  • Microalgae are plant photosynthetic organisms whose metabolism and growth require, among others, CO 2 , light and nutrients.
  • the microalgae can be cultivated to value and purify the carbon dioxide, NOx and / or SOx discharges of certain plants (WO 2008042919).
  • the oil extracted from microalgae can be used as biofuel (WO2008070281, WO2008055190, WO2008060571).
  • Microalgae can be grown for their production of omega-3 and polyunsaturated fatty acids.
  • Microalgae can also be grown to produce pigments.
  • microalgae uses the sun as a source of light.
  • microalgae are often placed in open basins ("raceways") with or without circulation (US2008178739).
  • Tubular or plate photobioreactors made of translucent materials, are also passage of light rays in the culture medium and in which the microalgae circulate (FR2621323).
  • Other three-dimensional transparent tube network systems improve the use of space (EP0874043).
  • closed photobioreactors To reduce congestion and improve yield, closed photobioreactors have been developed. They use the availability of artificial lighting 24 hours a day, 7 days a week, this lighting can be interrupted according to sequences specific to the biological cycles of the algae concerned.
  • microalgae the crucial factor in increasing the biomass of microalgae is light, both in terms of quantity and quality since, although absorbing all the photons of the visible spectrum, microalgae absorb particularly with minimal losses only certain wavelengths of white light.
  • a photobioreactor is defined as a closed system within which there is production of biological material under the action of light energy, this production is also optimizable by controlling the culture conditions: nutrients, hydrodynamics of the medium, transfers gaseous, speed of circulation of the liquid, etc.
  • the production depends directly on the quality of the lighting in the volume of the photobioreactor. It is necessary that all biological fluid is properly illuminated with optimum average energy. Therefore, the interface between the 'light sources' and the biological fluid must be as large as possible while maximizing the useful volume of the biological fluid.
  • the volume of biological fluid concerned will be only 1/200 m 3 .
  • the ideal reactor would be such that the illuminated volume is equal to the volume of the reactor.
  • a first artificial lighting solution to solve this problem is to bring the light of a light source into the culture medium near the micro-algae using optical fibers (U S61 56561 and EP0935991).
  • the optical fibers may be associated with other immersed light-guiding means within the enclosure (J P2001 1 78443 and DE29819259).
  • This solution only achieves low yields (light output) / (light efficient). Indeed, the intensity is reduced because of the interfaces between the light sources and the waveguide and it is difficult to couple more than one light source on the same fiber.
  • a problem arises when using several different wavelengths: Indeed, to get the light out of the optical fibers immersed in the culture medium, it is necessary to make a surface treatment (roughness), which will diffract or diffract a fraction of the guided light.
  • the most effective solution is to burn a network at the periphery of the fiber with a pitch that is of the order of the wavelength of the light conveyed. This solution has a narrow bandwidth and is totally unsuitable when using several wavelengths.
  • Another artificial lighting solution to solve this problem is to directly immerse light sources into the chamber of the photobioreactor, such as for example fluorescent lamps (US 5, 104,803) or LEDs (Light Emitting Diode) (DE202007013406 and WO2007047805). .
  • This solution improves the energy efficiency of the lighting process because the light sources are closer and better coupled to the culture medium.
  • the first is inherent to the emission geometry of the LEDs because their energy em ission diagram is directional and follows a Lambertian profile. Only the algae in the beam will be illuminated, the solid angle of the emission cone is typically 90 °, three quarters of the space around a LED will not be lit by the latter. Note that the situation will be substantially identical for lighting ends of submerged optical fibers.
  • the emission beam of an LED being lambertian
  • the algae passing through the emission beam will receive an inhomogeneous photon flux.
  • the inventors have discovered a new, particularly efficient way of guiding and diffusing in the photobioreactor the light produced by external LEDs.
  • the light sources no longer need to be placed inside the enclosure, which greatly facilitates thermal regulation.
  • the diffusing light guide used also allows a particularly uniform and uniform light distribution, and adapts to all the wavelengths of interest for the culture of microalgae.
  • the subject of the invention relates to a photobioreactor intended for the continuous cultivation, in particular, of photosynthetic microorganisms, preferably microalgae, comprising at least one less a culture chamber intended to contain the culture medium of the microorganisms, and at least one light source outside the culture chamber, characterized in that it further comprises at least one cylindrical or prismatic light diffusing element placed in the culture chamber, the light diffusing element being optically coupled to the light source so as to capture the photons emitted by the light source and restore them in the culture medium by its lateral surface.
  • the light diffusing element is a solid element made of a non-absorbing transparent material at the end of which the light source is placed;
  • the light diffusing element comprises inclusions made of a partially diffusing material
  • the light diffusing element is a hollow element made of a transparent material, at the end of which the light source is placed;
  • a semi-reflecting layer is disposed on the inner face of the light-diffusing element
  • a semi-reflecting layer is disposed on the outer face of the diffuser element
  • the one or more semi-reflective layers is made of a metallic material or a metal oxide, of optical index higher than the index of the material constituting the diffuser element, preferably aluminum;
  • the thickness of the dimming semi-reflecting layer or layers away from the light source is the thickness of the dimming semi-reflecting layer or layers away from the light source
  • the light diffusing element is made of polymethylmethacrylate
  • the light source is a quasi-point source, and the light diffusing element is a diffuser tube;
  • the light source is a linear source, and the light diffusing element is a diffuser parallelepiped;
  • the light source is a (or a) set of electro-luminescent diode (s) (LEDs) which is quasi-point (s) or in ribbon, preferably one (or a set of) electroluminescent diode (s) (s) power (HPLED);
  • LEDs electro-luminescent diode
  • HPLED electroluminescent diode
  • a convergent lens is placed at the interface between the LED and the light scattering element
  • the end of the light diffusing element opposite to the light source is provided with a mirror
  • the end of the light-canceling element opposite to the light source is cone-shaped or dome-shaped;
  • the outer surface of the light diffusing element has a suitable roughness improving the diffusion of light
  • the outer surface of the light diffusing element is encapsulated in a protective sheath
  • the light diffusing element comprises a cleaning wiper surrounding the sheath
  • the photobioreactor includes a cooling system of the light sources
  • the photobioreactor comprises a system for generating bubbles at the base of the culture medium.
  • the invention relates to the use of a photobioreactor according to the first aspect of the invention for cultivating photosynthetic micro-organisms, preferably microalgae.
  • a third object of the invention relates to the use of a cylindrical or prismatic light diffusing element optically coupled to a light source so as to capture the photons emitted by the light source. and restore them by its lateral surface to illuminate the culture medium of a photobioreactor.
  • FIGS. 1 a-d and 2 are diagrams of five embodiments of a light-diffusing element of the photobioreactor according to the invention.
  • FIG. 3 is a perspective view of a particularly advantageous embodiment of a light-diffusing element of the photobioreactor according to the invention.
  • FIG. 4 is a perspective view of a parallelepipedal embodiment of the photobioreactor according to the invention.
  • FIG. 5 is a perspective view of a cylindrical embodiment of the photobioreactor according to the invention.
  • FIG. 6 is a perspective view of another parallelepipedic embodiment of the photobioreactor according to the invention.
  • LEDs of high power that is to say more than 10W electric, and emitting around the wavelength of absorption of chlorophyll (650 nm - 680nm). They have in particular optical yields which exceed 25%, on industrial products. In laboratories, there are even yields exceeding 35% and in some cases 50%.
  • the applicant has developed light scattering elements, which can collect the light from a light source and in particular a quasi-point LED or bar, even placed outside of the culture chamber, and to diffuse it into a complete column of photobioreactor culture medium.
  • the fact that the light sources are placed outside the culture chamber has many advantages, in particular, a facilitated heat dissipation, the absence of shadows caused by the sources themselves, the maintenance of the connections electric out of the biological environment, etc.
  • Photobioreactor Architecture A simplified schema of a photobioreactor according to the invention is shown in Figure 1a.
  • This photobioreactor intended for the continuous cultivation of photosynthetic microorganisms, preferably of micro-algae, comprises, as can be seen, at least one culture chamber 1 intended to contain the culture medium 3 of the microorganisms, and minus a light source 2 outside the culture chamber 1.
  • the diffuser element 4 being optically coupled to the light source 2 so as to capture the photons emitted by the light source. 2 and return them to the culture medium 3 by its lateral surface.
  • the light source 2 is a quasi-point source, for example a single LED (or a set of simple LEDs), of the case where the light source 4 is a linear (or even surface) source. for example, there are LEDs called “bar” or “ribbon” (see patent application FR1050015).
  • LED quad-point or ribbon
  • power that is to say an LED power greater than 1 W , or more than 10W power.
  • HPLED quad-point or ribbon
  • the remainder of the present description will therefore essentially refer to LED light sources, but it will be understood that the invention is in no way limited to this type of source.
  • Those skilled in the art will be able to adapt the photobioreactor according to the invention to other known light sources 2, including laser sources, which have the advantage of being extremely directional, and whose price has dropped considerably.
  • the light sources 2 can be both monochromatic and polychromatic, either naturally or by juxtaposition of monochromatic light sources emitting at different wavelengths. It will be noted that it is possible to directly obtain multi-spectral LEDs by stacking semiconductors of different gaps (including quantum well diodes).
  • the emission symmetry of commercial quasi-point LEDs is a cylindrical symmetry (Lambertian emission), therefore the easiest coupling to achieve is with a tube, whether hollow or solid.
  • a tube does not necessarily have a circular section, in other words is not necessarily a cylinder of revolution.
  • the invention relates to any cylindrical or prismatic shape, in other words polyhedra having on the one hand a rectangular lateral surface, and on the other hand a constant section, this section advantageously having a central symmetry to respect the emitted Lambertian ission.
  • sections of diffuser tubes 4 in regular or star-shaped polygons, which would make it possible in particular to increase the lateral surface, that is to say the contact surface with the culture medium 3 of the microorganisms.
  • the invention is not limited to any geometry, and concerns any cylindrical or prismatic light diffuser element.
  • the diffuser tube 4 is a hollow tube made of a transparent material, preferably glass or plexiglass, at the end of which the LED 2 is placed, oriented towards the diffuser tube 4 so that the latter receives the emitted photons by the LED 2.
  • the propagation of light is here in the air, that is to say, there is no absorption.
  • the angles of attack on the inner face of the diffuser tube 4 are multiple, the light comes out according to a classical law (Descartes law) related to the index difference with respect to the 'air.
  • the index n of refraction of the air is indeed 1, and is well below the index n of glass or plexiglass which reaches 1, 5.
  • a convergent lens 5 can be placed between the LED 2 and the diffuser tube 4.
  • This lens 5 makes it possible to control the divergence of the beam coming from the LED 2.
  • the diode is in the focal plane of the lens
  • most of the lumen flux is guided. It is understood that by defocusing more or less the beam can modulate the light output from the diffuser tube 4.
  • the penetration length of the light energy in the diffuser tube 4 can be adjusted to the length of the diffuser tubes. We will see the importance further from this point.
  • the diffuser tube 4 is a solid tube made of a transparent material that does not absorb light, preferably polymethyl methacrylate (PMMA).
  • PMMA index (1, 49) being the similarly, that of water and glass, there will be no light guiding a priori if it is immersed in water, but no loss of Fresnel at the interface LED / tube (glass spherical encapsulation).
  • the LED 2 is introduced into a recess made in the diffuser tube 4 (of the size of the spherical encapsulation cap of the LED 2).
  • the density of inclusions 6 varies over the height of the diffuser tube 4, and increases away from the LED 2 so as to compensate for the gradual loss of light.
  • the invention is not limited to any diffuser tube size 4 in particular. These can be up to several meters long, there is no limit given, and have a diameter most often between a few millimeters and a few centimeters, The diameter is essentially determined by the choice of the concentration of microalgae in the reactor (continuous mode and / or chemostat) which conditions the penetration of the light, as well as the average power which one wants to apply to microalgae. These dimensions will be discussed later.
  • tubular diffuser elements 4 to diffuse the light is not the only possible configuration. It is indeed possible to use linear light sources 2 such as ribbon LEDs. It is noted as already stated above that the ribbon LEDs can be composite (several wavelengths) or by polychromatic construction.
  • the diffuser elements 4 are advantageously substantially parallelepipedal in order to take account of the emission geometry of an LED strip. We note that this is a special case of prismatic geometry.
  • Such a parallelepiped diffuser 4 light is shown in Figure 2. It can be full, hollow, and can be the subject of the same embodiments as the tubular elements. We will speak later of "light scattering tubes", but it will be understood that all the possibilities that have been described and will be described in the present description (structures, treatments, materials ...) can be applied as well whatever the geometry of the diffuser element 4, tube or parallelepiped.
  • another semi-reflecting layer 8 may be disposed on the outer face of the diffuser tube 4, including the hollow tubes replacing or in addition to an inner layer 7.
  • a metallic material or a metal oxide of higher optical index than the index of the material constituting the diffuser tube 4, preferably aluminum.
  • reflection is favored over transmission.
  • the quality of the coating is essentially related to its absorption, which must be minimal.
  • optical multilayers metal or oxides
  • the fact of putting a semi-reflecting layer 8 outside the finger for a hollow tube is not a necessity, but simplifies the technique of depositing the semi-reflective material. It is possible, however, to proceed with the deposit by dipping in a bath, both on the outer face and inside the tube.
  • the semi-reflecting layers 7, 8 may be deposited more generally by any chemical method (soaking), electrolytic, or sputtering (cathodic sputtering), CVD (vapor deposition), evaporation, etc.
  • the materials envisaged go as explained by metals (Al, Ag, etc.) which make it possible to form semi-transparent layers of small thicknesses (from nanometers to a few microns), to transparent oxides (of indium doped or not, rare earths, etc. ) to perform this function.
  • metals Al, Ag, etc.
  • transparent oxides of indium doped or not, rare earths, etc.
  • the intrinsic absorption of this layer should not exceed 10%.
  • the thickness of the semi-reflective layer or layers 7, 8 decreases away from the LED 2, so as to compensate for the gradual loss of light.
  • Those skilled in the art will be able to choose the variation profile of the thickness of the semi-reflecting layer (s) 7, 8 (as a function of the distance to the LED 2) to optimize (equalize) the energy This is the same concern that leads to having a variable density of inclusions 6 in the case of a diffuser tube 4 full (see above).
  • an aluminum oxide layer whose thickness varies from 20 to 100 nm is interesting.
  • the outer surface of the diffuser tube 4 has a high roughness 9 improving the diffusion of the light.
  • suitable roughness is meant in particular a roughness at scales comparable to or greater than the wavelength of the light used.
  • FIG. 1 shows a diffuser tube 4 in which roughness 9 and an internal semi-reflecting layer 7 are combined.
  • the level of roughness can increase when one moves away from the LED 2 to compensate for the loss of luminous flux when one moves away from the source.
  • the end of the diffuser tube 4 opposite the LED 2 is provided with a mirror 42.
  • this moiroir can advantageously be inclined at a predetermined angle or even shaped, for example taking the conical shape (as seen in Figure 1a).
  • Various examples of the mirror geometries 42 are also visible in FIGS. It is noted that the use of semi-reflective layers 7, 8 of variable thickness as a function of the distance to the LED 2 constitutes an additional degree of freedom to optimize the extraction of light.
  • the end of the diffuser tube 4 opposite the LED 2 is preferably cone-shaped or dome-shaped to facilitate the flow of water or bubbles (in areas to be sparger), as we will see later. If a double-walled tube is used, it is the end of the tube that must be cone-shaped or dome-shaped.
  • the outer surface of the diffuser tube 4 is encapsulated in a protective sheath 10.
  • the essential object of the encapsulation is to protect in particular the semi-reflecting layer 8 of the culture medium 3 which by nature is corrosive.
  • the outer surface of the diffuser tube 4 has an artificial roughness 9, it is noted that this promotes the attachment of the microalgae, which is why it is also desirable to encapsulate the diffuser tube 4.
  • the protective sheath 10 must be made of a non-rough and transparent material (for example plastics such as PMMA again, polycarbonate, crystal polystyrene ...), and on which the attachment of the algae is the lowest possible.
  • plastics such as PMMA again, polycarbonate, crystal polystyrene
  • the invention will not be limited to any particular embodiment, and may be the subject of all possible combinations of semi-reflecting layers, roughness, on the outer face and / or on the inner face s' There is one. It is also possible to combine several materials in particular with different indices, and to assemble these different materials in concentric multilayers. Those skilled in the art will be able to adopt all these options according to the production characteristics chosen for the photobioreactor (concentration of algae, density of the diffuser tubes 4, desired yield, desired cost, etc.)
  • sheath double tube or encapsulation
  • HPLEDs preferably used have as explained a yield of about 25%, that is to say that 75% of the power supplied is dissipated in heat.
  • the photobioreactor advantageously comprises a cooling system 12 of the LEDs 2.
  • the LEDs 2 are for example mounted on a metal support of a few square centimeters which will be put in direct contact with this system 12, called "heat pipe", consisting of two metal plates between which will be circulated a high thermal conductivity liquid, pulsed air, water or other. It is also possible to provide individual radiators cooled by air or water, as can be seen in FIG. 3.
  • the elements 1 21 and 1 22 respectively correspond to the inlet and the outlet of the heat transfer fluid. In case of individual radiators, it can be planned to mount them in series and / or in bypass. The flow rate of the coolant is controlled by measuring the em base temperature of the LEDs
  • the LED 2 is here mounted on a base at the top of the diffuser tube 4, and is in contact with its heat pipe 12, its spherical em issive face is in contact with the light diffuser tube 4 (a spherical hole is provided if the diffuser tube is full, the hole being advantageously filled with optical grease).
  • a lossless light guide (cylindrical mirror) a few centimeters long at the end of the diffuser tube 4.
  • This guide can be for example a truncated cone whose inside is lined with a mirror.
  • the diffuser tube 4 advantageously comprises a cleaning wiper 11 surrounding the sheath 10.
  • the cleaning wiper 11 also visible in Figure 3, consists for example of a rubber O-ring surrounding the diffuser tube 4 in its upper part.
  • the seal scrapes the algae deposits.
  • the size of a culture chamber 1 of the photobioreactor can be very variable, and go from a few liters to hundreds of cubic meters.
  • the general geometry of a culture chamber 1 is most often parallelepipedal (FIG. 4) or cylindrical (FIG. 5), but has little or no effect, except possibly with regard to edge effects and construction costs, resistance to pressure.
  • the photobioreactor may furthermore comprise a single culture chamber 1 as well as several embodiments. The invention is not limited to any size or geometry.
  • the culture chamber is preferably also parallelepipedic, as can be seen in FIG. 6.
  • the light sources 2 and therefore the heat pipes 1 2 are placed on the flanks of the photobioreactor, this symmetrical configuration increases the flow of light in the guides, but is not necessarily necessary. On the other hand, it makes it easy to illuminate at two different wavelengths.
  • a photobioreactor comprising a single cubic culture chamber 1 according to FIG. 4 with an overall volume of 1 m 3 (volume of the culture medium 3 plus volume of the diffuser tubes 4).
  • light diffusing tubes 4 previously described, approximately 1 m long, are chosen so as to illuminate over the entire height of the culture chamber 1, and optimized to emit a flux. constant over their entire height. Had the light sources been lateral, the width of the growing chamber would have been considered.
  • the arrangement of the diffuser tubes 4 in the volume of the culture chamber 1 is intended to optimize the overall homogenization of the light flux emitted in the culture medium 3.
  • the parameter dimensioning to have a "bath” of quasi-homogeneous light Intensity is the "effective penetration length" of light ( eff ).
  • the Calvin cycle is indeed a series of biochemical reactions that take place in the chloroplasts of organisms when they carry out photosynthesis.
  • This triggering threshold expressed in moles of photons per m 2 per second, corresponds to the minimum luminous flux level to initiate the production of biomass by the microorganisms. Typically, 50 mole.m- 2 .s- 1 " of" red “photons (wavelength around 650 nm) are present for microalgae (eg, of the genus Nannochloris).
  • X eff is defined as the distance beyond which the luminous flux falls below the threshold i eff .
  • X eff is inversely proportional to the concentration of microalgae, and at fixed concentration it is determined by the species of microalgae. It is considered that a point located at a distance from a light source beyond X eff does not receive enough photons to produce organic matter. In other words this means that each point of the culture medium 3 must be on average at a distance less than X eff of a tube 4. This means that two tubes are advantageously of the order of 2 rpm .
  • the dynamic operation of the photobioreactor also supposes that it is advantageously injected at its base with a gas under pressure (possibly with nutrients).
  • This injection in particular through a device called “sparger”, leads to the creation of a flow of bubbles that induces the rise of the biological fluid.
  • the photobioreactor therefore advantageously comprises a bubble generation system 13 disposed at the base of the culture medium 3.
  • FIGS. 4 and 5 show different geometries of a sparger bubble generation system 1 3 capable of injecting these bubbles in a controlled manner at the base of the culture medium 3.
  • Reactors operating according to this conventional principle are called "air-lift".
  • the main liquid flow although oriented in the direction of the rise (then in the direction of the descent) leads the microalgae to "diffuse" transversely between the diffuser tubes 4.
  • the microalgae moving thus capture a variable light, since in this direction the decay profile of the light is exponential when one deviates from the diffuser tubes 4.
  • the microalgae thus receive a mean power in the length A eff.
  • the effectiveness condition of this "averaging" of the quantity of light received by each microalgae is that the diffusion time of a microalga between two diffuser tubes 4 is very short compared to the life cycle of an alga, and preferably at the time of rise (or descent) of a microalga in the culture chamber 1.
  • Operation air-type ift generally assumes an upward flow of the culture medium 3 and obviously a downward flow.
  • the fluid injection is done at the base of the rising part.
  • Optimizing the configuration of the liquid flows can lead to other partitions of a culture chamber 1 of the photobioreactor in N upstanding blocks, M falling blocks, or to the use of nozzles arranged at the base of the enclosure of culture 1 and placed between the diffuser tubes 4.
  • the stacking of the culture chambers 1 is easier in the parallelepipedic case and makes it possible to optimize the space.
  • the hydrodynamics of the upstream and downstream flows, which are associated with concentric spargers 13 is more difficult to manage.
  • the extension of the interface between the flows and against flow does not exceed the interval between two planes of diffuser tubes 4. This interface is established naturally to the limit of sparger areas.
  • the photobioreactor operates in
  • the photobioreactor may in fact comprise various control systems.
  • the latter having to operate continuously for a given geometry, in particular related to the spacing of the diffusing elements, one must control the optimal density of algae in stationary regime. This measurement will be made by measuring the optical density of the biological medium.
  • the invention relates to the use of a photobioreactor according to the first aspect of the invention for cultivating photosynthetic micro-organisms, preferably microalgae.
  • Another aspect of the invention relates, as previously explained, to the use of a cylindrical or prismatic light diffusing element 4 optically coupled to a light source 2 so as to capture the photons emitted by the light source 2 and to restore them by its surface. lateral to illuminate the culture medium of a photobioreactor.
  • the light diffusing element 4 may be the subject of all the embodiments previously written.
  • Penetration length characteristic of light 1 3.8 mm (concentration of 10 8 cells / mL);
  • the square arrangement described above provides a gap of 2 rms between two successive diffuser tubes 4, so it is possible to place up to 1369 (37x37) diffuser tubes 4 in the cubic chamber 1.
  • the total illumination area is then 43m 2 , and the instantaneous power consumption of the LEDs 2 is then 13.7 kW, of which 10.28kWth to dissipate.
  • the volume of culture medium 3 in the culture chamber 1 corresponds to the total volume of 1 m 3 minus the volume of the 1369 diffuser tubes 4. It is 0.89 m 3 .

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Sustainable Development (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Clinical Laboratory Science (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Thermal Sciences (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

La présente invention concerne un photobioréacteur destiné à la culture notamment en continu de micro-organismes photosynthétiques, de préférence de microalgues, comprenant au moins une enceinte de culture (1) destinée à contenir le milieu de culture (3) des microorganismes, et au moins une source lumineuse (2) extérieure à l'enceinte de culture (1), caractérisé en ce qu'il com prend en outre au moins un élément diffuseur de lumière (4) cylindrique ou prismatique placé dans l'enceinte de culture (1), l'élément diffuseur de lumière (4) étant couplé optiquement à la source lumineuse (2) de façon à capter les photons émis par la source lumineuse (2) et les restituer dans le milieu de culture (3) par sa surface latérale. La présente invention concerne également l'utilisation d'un photobioréacteur pour cultiver des micro-organismes photosynthétiques et l'utilisation d'un élément diffuseur de lumière (4) pour éclairer le milieu de culture d'un photobioréacteur.

Description

Photobioréacteur en milieu fermé pour la culture de micro-organismes photosynthétiques
DOMAINE TECHNIQUE GENERAL
L'invention concerne la culture intensive et continue de micro-organismes photosynthétiques.
Plus précisément, elle concerne un photobioréacteur destiné à une telle culture.
ETAT DE L'ART
Les microalgues sont des organismes végétaux photosynthétiques dont le métabolisme et la croissance nécessitent entre autres du CO2, de la lumière et des nutriments.
La culture industrielle de microalgues connaît de nombreuses applications.
Les microalgues peuvent être cultivées pour valoriser et purifier les rejets en dioxyde de carbone, NOx et/ou SOx de certaines usines (WO 2008042919).
L'huile extraite des microalgues peut être utilisée comme biocarburant (WO2008070281, WO2008055190, WO2008060571).
Les microalgues peuvent être cultivées pour leur production d'oméga-3 et d'acides gras polyinsaturés.
Les microalgues peuvent également être cultivées pour produire des pigments.
Classiquement, la culture industrielle de microalgues à grande échelle utilise le soleil comme source de lumière. Pour ce faire, les microalgues sont souvent placées dans des bassins ouverts (« raceways ») avec ou sans circulation (US2008178739). On trouve également des photobioréacteurs tubulaires ou à plaques, constitués de matériaux translucides, permettant le passage des rayons lumineux dans le milieu de culture et dans lesquels les microalgues circulent (FR2621323). D'autres systèmes de réseaux de tubes transparents en trois dimensions permettent d'améliorer l'exploitation de l'espace (EP0874043).
Ces installations sont extrêmement volumineuses et les rendements de production sont faibles étant donné les aléas d'éclairement du soleil et les phases de nuit néfastes à la croissance des microalgues.
Afin de réduire l'encom brement et d'améliorer le rendement, des photobioréacteurs fermés ont été mis au point. Ils utilisent quant à eux la disponibilité d'un éclairage artificiel 24h/24 et 7 jours/7, cet éclairage pouvant être interrompu suivant des séquences propres aux cycles biologiques des algues concernées.
En effet, le facteur crucial de l'augmentation de la biomasse des microalgues est la lumière, aussi bien en termes de quantité que de qualité puisque bien qu'absorbant l'ensemble des photons du spectre visible, les micro-algues absorbent particulièrement avec des pertes minimales uniquement certaines longueurs d'ondes de la lumière blanche.
Un photobioréacteur est défini comme un système clos à l'intérieur duquel il y a production de matière biologique sous l'action de l'énergie lumineuse, cette production est par ailleurs optimisable en maîtrisant les conditions de culture : nutriments, hydrodynamique du milieu, transferts gazeux, vitesse de circulation du liquide, etc.
L'adaptation de la lumière, flux et longueur d'onde à l'espèce de microalgue est un facteur important de l'optimisation de la production.
D'une façon générale on comprend que la production dépende directement de la qualité de l'éclairage dans le volume du photobioréacteur. Il est nécessaire que l'ensemble du liquide biologique soit correctement éclairé avec une énergie moyenne optimale. Par conséquent il faut que l'interface entre les 'sources lumineuses' et le liquide biologique soit la plus grande possible tout en maximisant le volume utile du liquide biologique. Pour fixer les idées on notera qu'à des concentrations d de l'ordre du gramme par litre, la lumière est absorbée au bout de λ = 0.5cm . Pour un réacteur d' 1 m3, avec une surface de 1 m2 d'éclairement (source de lumière plane de 1 m2), le volume de liquide biologique concerné sera seulement de 1 /200 m3. Le réacteur idéal serait tel que le volume éclairé soit égal au volume du réacteur. Plus généralement le facteur de qualité d'un réacteur peut se définir par la relation : Q = SA/V0, où S est la surface éclairée (à la bonne puissance) dans le volume V0 du réacteur, et λ la profondeur de pénétration de la lumière.
Ve étant le volume des éléments éclairants dispersés dans le réacteur la production en Masse M peut s'exprimer par la relation : M= (V0- Ve) d
Ces deux relations doivent être maximisées simultanément.
D iverses tentatives technolog iq ues pour chercher cette doub le optimisation ont été proposées dans le passé, mais se sont heurtées à des difficultés décrites plus loin:
Une première solution d'éclairage artificiel pour résoudre ce problème consiste à amener la lumière d'une source lumineuse dans le milieu de culture à proximité des m icroalgues à l'aide de fibres optiques (U S61 56561 et EP0935991 ).
Les fi bres optiques peuvent être associées à d' autres m oyens immergés guidant la lum ière à l' intérieur de l'enceinte (J P2001 1 78443 et DE29819259).
L'inconvénient majeur est que cette solution ne permet d'atteindre que des rendements (lum ière produ ite)/(lum ière efficace) faibles. En effet, l'intensité est réduite du fait des interfaces entre les sources lumineuses et le guide d'onde et il est difficile de coupler plus d'une source lumineuse sur la même fibre. En outre, un problème se pose dès lors que l'on utilise plusieurs longueurs d'ondes différentes : En effet pour sortir la lum ière des fibres optiques immergées dans le milieu de culture, il est nécessaire de faire un traitement de surface (rugosité), qui diffusera ou diffractera une fraction de la lumière guidée. La solution la plus efficace consiste à graver un réseau à la périphérie de la fibre avec un pas qui est de l'ordre de la longueur d'onde de la lumière véhiculée. Cette solution a une bande passante étroite et est totalement inadaptée quand on utilise plusieurs longueurs d'ondes. Une autre solution d'éclairage artificiel pour résoudre ce problème consiste à immerger directement des sources lumineuses dans l'enceinte du photobioréacteur, comme par exemple des lampes fluorescentes (US 5, 104,803) ou des LEDs (Light Emitting Diode) (DE202007013406 et WO2007047805).
Cette solution permet d'améliorer le rendement énergétique du procédé d'éclairage car les sources lumineuses sont plus proches et mieux couplées au milieu de culture.
Toutefois, l'utilisation de sources lumineuses introduites au sein du réacteur, en particulier des LEDs, doit se faire en tenant compte de deux autres problèmes majeurs.
Le premier est inhérent à la géométrie d'émission des LEDs car leur diagramme d'ém ission énergétique est directif et suit un profil lambertien. Seules les algues se trouvant dans le faisceau seront éclairées, l'angle solide du cône d'émission étant typiquement de 90°, les trois quarts de l'espace autour d'une LEDs ne sera pas éclairé par cette dernière. On note que la situation sera sensiblement identique pour un éclairage par extrémités de fibres optiques immergées.
De surcroit, on notera que le faisceau d'émission d'une LED étant lambertien, les algues en passant dans le faisceau d'émission recevront un flux de photons inhomogène.
De même, quand on utilise des LEDs pour éclairer une paroi interne au réacteur (type caloduc) (voir brevet DE202007013406) on ne peut pas obtenir un flux photonique homogène dans le bain de culture.
Pour atténuer les zones d'ombres, on pourrait multiplier les sources lumineuses dans l'enceinte et les implanter suffisamment proches les unes des autres Ce faisant se pose alors un second problème critique lié à la gestion de la thermique du réacteur qui doit être contrôlée à quelques degrés près, et qui dépend de la nature de l'algue. En effet, et pour des composants usuels, tels qu'on les trouve sur le marché actuellement, les trois quarts de la puissance électrique injectée dans les LEDs se dissipent thermiquement. Cette gestion de la thermique constitue le deuxième problème majeur qu'il est nécessaire de résoudre. Il est inhérent à ces structures de réacteurs de première génération, indépendamment du type de sources lumineuses utilisées. La dispersion d'un grand nombre de sources de lum ière dans le volume du réacteur pose aussi très vite un problème de connectique électrique, auquel s'ajoute le problème du coût du photobioréacteur si les sources lumineuses doivent être multipliées en grand nombre.
En résumé, l'obtention d'un front d'éclairage homogène en intensité dans le volume de croissance du réacteur est un problème non résolu actuellement. La seule voie envisagée pour approximer un front homogène est de multiplier les sources à l'intérieur du réacteur, ce qui conduit à des problèmes inextricables de gestion de la thermique.
Afin de régler ces problèmes, les inventeurs ont découvert une nouvel le façon particul ièrement efficace de guider et diffuser dans le photobioréacteur la lumière produite par des LEDs externes.
Les sources lumineuses n'ont plus besoin d'être placées à l'intérieur de l'enceinte, ce qui facilite grandement la régulation thermique. Le guide de lumière diffusant utilisé permet en outre une diffusion particulièrement uniforme et homogène de la lum ière, et s'adapte à toutes les longueurs d'onde intéressantes pour la culture des microalgues.
PRESENTATION DE L'INVENTION
Par conséquent, l'objet de l'invention concerne selon un premier aspect un photobioréacteur destiné à la culture notamment en continu de microorganismes photosynthétiques, de préférence de microalgues, comprenant au moins une enceinte de culture destinée à contenir le milieu de culture des microorganismes, et au moins une source lumineuse extérieure à l'enceinte de culture, caractérisé en ce qu'il comprend en outre au moins un élément diffuseur de lumière cylindrique ou prismatique placé dans l'enceinte de culture, l'élément diffuseur de lumière étant couplé optiquement à la source lumineuse de façon à capter les photons émis par la source lumineuse et les restituer dans le milieu de culture par sa surface latérale.
Selon d'autres caractéristiques avantageuses et non limitatives :
· l'élément diffuseur de lumière est un élément plein en un matériau transparent n'absorbant pas la lumière, à l'extrémité duquel la source lumineuse est placée ;
• l'élément diffuseur de lumière comprend des inclusions constituées d'un matériau partiellement diffusant ;
· l'interface entre la source lumineuse et l'élément diffuseur de lumière est traitée avec une graisse optique favorisant la transmission des photons ;
• l'élément diffuseur de lum ière est un élément creux en un matériau transparent, à l'extrémité duquel la source lumineuse est placée ;
• une couche semi-réfléchissante est disposée sur la face interne de l'élément diffuseur de lumière ;
• une couche semi-réfléchissante est disposée sur la face externe de l'élément diffuseur ;
• la ou les couches semi-réfléchissantes est en un matériau métallique ou un oxyde métallique, d'indice optique plus élevé que l'indice du matériau constituant l'élément diffuseur, préférentiellement de l'aluminium ;
• l'épaisseur de la ou les couches semi-réfléchissantes dim inue en s'éloignant de la source lumineuse ;
• l'élément diffuseur de lumière est en polyméthacrylate de méthyle ;
• la source lum ineuse est une source quasi-ponctuelle, et l'élément diffuseur de lumière est un tube diffuseur ; • la source lumineuse est une source linéaire, et l'élément diffuseur de lumière est un parallélépipède diffuseur ;
• la source l um i neuse est une (ou un ensemble de) diode(s) électroluminescente(s) (LED) quasi-ponctuelle(s) ou en ruban, de préférence une (ou un ensemble de) diode(s) électroluminescente(s) de puissance (HPLED) ;
• une lentille convergente est placée à l'interface entre la LED et l'élément diffuseur de lumière ;
• un système optique dont la face intérieure est réfléchissante entoure la LED ;
• l'extrém ité de l'élément diffuseur de lum ière opposée à la source lumineuse est pourvue d'un miroir ;
• l'extrém ité de l'élément d iffuseur de lum ière opposée à la source lumineuse est en forme de cône ou de dôme ;
· la surface externe de l'élément diffuseur de lumière présente une rugosité adaptée améliorant la diffusion de la lumière ;
• la surface externe de l'élément diffuseur de lumière est encapsulée dans une gaine protectrice ;
• l'élément diffuseur de lumière comprend un racleur de nettoyage entourant la gaine ;
• le photobioréacteur comprend un système de refroidissement des sources lumineuses ;
• le photobioréacteur comprend un système de génération de bulles à la base du milieu de culture.
U n d e ux i è m e a s p ect d e l' invention concerne l'utilisation d'un photobioréacteur selon le premier aspect de l'invention, pour cultiver des micro-organismes photosynthétiques, de préférence des microalgues.
Un troisième objet de l'invention concerne l'utilisation d'un élément diffuseur de lumière cylindrique ou prismatique couplé optiquement à une source lumineuse de façon à capter les photons émis par la source lumineuse et les restituer par sa surface latérale pour éclairer le milieu de culture d'un photobioréacteur.
PRESENTATION DES FIGURES
D'autres caractéristiques et avantages de la présente invention apparaîtront à la lecture de la description qui va suivre d'un mode de réalisation préférentiel. Cette description sera donnée en référence aux dessins annexés dans lesquels :
- les figures 1 a-d et 2 sont des schémas de cinq modes de réalisation d'un élément diffuseur de lumière du photobioréacteur selon l'invention;
- la figure 3 est une vue en perspective d'un mode de réalisation particulièrement avantageux d'un élément diffuseur de lumière du photobioréacteur selon l'invention ;
- la figure 4 est une vue en perspective d'un mode de réalisation parallélépipédique du photobioréacteur selon l'invention;
- la figure 5 est une vue en perspective d'un mode de réalisation cylindrique du photobioréacteur selon l'invention.
- la figure 6 est une vue en perspective d'un autre mode de réalisation parallélépipédique du photobioréacteur selon l'invention.
DESCRIPTION DETAILLEE Principe de l'invention
Récemment les performances des composants LEDs ont largement progressé. Il existe maintenant des LEDs de forte puissance, c'est-à-dire plus de 10W électriques, et émettant aux environs de la longueur d'onde d'absorption de la chlorophylle (650 nm - 680nm). Elles ont en particulier des rendements optiques qui dépassent 25%, sur des produits industriels. En laboratoires, on note même des rendements dépassants couramment 35% et dans quelques cas 50%.
Cette percée technologique permet d'envisager qu'une seule LED soit suffisante pour fournir de la lumière à un volume de m ilieu de culture de l'ordre du litre, à condition de disposer d'un instrument de couplage optique qui permettrait de diffuser cette lumière.
Suite à des recherches, la demanderesse a mis au point des éléments diffuseurs de lumière, qui permettent de collecter la lum ière issue d'une source lumineuse et en particulier d'une LED quasi-ponctuelle ou en barrette, même placée à l'extérieur de l'enceinte de culture, et de la diffuser dans une colonne complète de milieu de culture du photobioréacteur.
Le fait que les sources lum ineuses soient placées à l'extérieur de l'enceinte de culture a de nombreux avantages, en particulier, une dissipation thermique facilitée, l'absence d'ombres causées par les sources elles-mêmes, le maintien des connections électriques hors du milieu biologique, etc.
Architecture de photobioréacteur Un schéma sim plifié d' un photobioréacteur selon l' invention est représenté sur la figure 1 a.
Ce photobioréacteur, destiné à la culture notamment en continu de micro-organism es photosynthétiques, de préférence de m icroalgues, comprend comme on le voit au moins une enceinte de culture 1 destinée à contenir le milieu de culture 3 des micro-organismes, et au moins une source lumineuse 2 extérieure à l'enceinte de culture 1 .
Il comprend en outre comme expliqué au moins un élément diffuseur de lumière 4 cylindrique ou prismatique placé dans l'enceinte de culture 1 , l'élément diffuseur 4 étant couplé optiquement à la source lumineuse 2 de façon à capter les photons émis par la source lumineuse 2 et les restituer dans le milieu de culture 3 par sa surface latérale. On distinguera par la suite le cas où la source lum ineuse 2 est une source quasi-ponctuelle, par exemple une LED simple (ou un ensemble de LEDs simples), du cas où la source lumineuse 4 est une source linéaire (voire surfacique), on dispose en effet par exemple de LEDs dites « en barrette » ou « en ruban » (voir la demande de brevet FR1050015).
Dans l'un comme l'autre de ces cas, on choisit en particulier une LED (quasi-ponctuelle ou en ruban) dite « de puissance » (HPLED), c'est-à-dire une LED de puissance supérieure à 1 W, voire de puissance supérieure à 10W. La suite de la présente description fera par conséquent essentiellement référence à des sources lumineuses de type LED, mais on comprendra que l'invention n'est en aucune manière limitée à ce type de source. L'homme du métier saura adapter le photobioréacteur selon l'invention à d'autres sources lumineuses 2 connues, y compris des sources laser, qui présentent l'intérêt d'être extrêmement directionnelles, et dont le prix à considérablement baissé.
Dans tous les cas, les sources lumineuses 2 peuvent aussi bien être monochromatiques que polychromatiques, que ce soit naturellement ou par juxtaposition de sources lum ineuses monochromatiques émettant à des longueurs d'onde différentes. On notera qu' i l est possi ble d' obten ir directement des LEDs multi-spectrales par empilement de semi-conducteurs de gaps différents (incluant les diodes à puits quantiques).
Géométrie de l'élément diffuseur de lumière - Cas des sources quasi- ponctuelles
En premier lieu, on remarquera que la symétrie d'émission des diodes LEDs quasi-ponctuelles commerciales est une symétrie cylindrique (émission Lambertienne), par conséquent le couplage le plus facile à réaliser est avec un tube, qu'il soit creux ou plein.
On parle donc dans ce cas de « tube » diffuseur de lumière, ou encore de « doigt ». Il est toutefois utile de préciser qu'un tube n'a pas forcément une section circulaire, en d'autres termes n'est pas forcément un cylindre de révolution. L'invention concerne toute forme cylindrique ou prismatique, en d'autres termes des polyèdres présentant d'une part une surface latérale rectangulaire, et d'autre part une section constante, cette section présentant avantageusem ent une sym étrie centrale pour respecter l' ém ission Lambertienne. En effet, on peut tout à fait envisager des sections de tubes diffuseurs 4 en polygone régulier ou étoilées, qui permettraient en particulier d'augmenter la surface latérale, c'est-à-dire la surface de contact avec le milieu de culture 3 des micro-organismes.
Un cylindre de révolution semble néanmoins la solution la plus réaliste, pour des raisons de symétrie (lobe des diodes), et pour éviter les points anguleux qui rendraient inhomogène le front lumineux.
De façon générale, on répète que l'invention n'est limitée à aucune géométrie, et concerne tout élément diffuseur de lumière cylindrique ou prismatique.
Deux possibilités de tubes diffuseur 4 sont à envisager. Selon la première possibilité, le tube diffuseur 4 est un tube creux en un matériau transparent, préférentiellement du verre ou du plexiglas, à l'extrémité duquel la LED 2 est placée, orientée vers le tube diffuseur 4 pour que ce dernier reçoive les photons émis par la LED 2.
Dans cette configuration la lumière est guidée dans le tube comme il est décrit dans la publication de V. Gerchikov et al (leukos vol 1 N°4 2005).
La propagation de la lumière se fait ici dans l'air, c'est-à-dire qu'il n'y a pas d'absorption. Etant donné la divergence des diodes (Lambertienne), les angles d'attaque sur la face interne du tube diffuseur 4 sont multiples, la lumière sort en suivant une loi classique (loi de Descartes) liée à la différence d'indice par rapport à l'air. L'indice n de réfraction de l'air vaut en effet 1 , et est bien inférieur à l'indice n du verre ou du plexiglas qui atteint 1 ,5. Ainsi, quand un rayon lumineux incident touche la surface interne du tube diffuseur 4, suivant son angle d'incidence Θ par rapport à la surface du tube le coefficient de transm ission à travers le tube passe de quasiment 1 pour un angle d'attaque de θ=0° (pas de propagation) à 0 en cas d'incidence rasante (guidage propagatif dans le tube). A l'interface entre le milieu de culture 3 et le tube diffuseur 4 au niveau de la surface latérale, la quasi-totalité du flux lumineux traverse également, car l'indice de l'eau (1 ,33) est à peine plus faible que celui du tube 4. Le cas décrit ne concerne évidemment pas le cas d'un tube avec enveloppe et vide d'air. Les trajectoires de deux rayons sont représentées sur la figure 1 a. On suppose que l'indice du tube diffuseur 4 est proche de 1 ,5.
Avantageusement, comme l'on voit également sur la figure 1 a, une lentille convergente 5 peut être placée entre la LED 2 et le tube diffuseur 4. Cette lentille 5 permet de contrôler la divergence du faisceau issu de la LED 2. Dans le cas simple d'un faisceau injectant à faible ouverture (la diode est au plan focal de la lentille), l'essentiel du flux lum ineux est guidé. On comprend qu'en défocalisant plus ou moins le faisceau on peut moduler le flux lumineux sortant du tube diffuseur 4. Corrélativement la longueur de pénétration de l'énergie lumineuse dans le tube diffuseur 4 peut être ajustée à la longueur des tubes diffuseurs. On verra l'importance plus loin de ce point.
On peut aussi améliorer l'injection de lumière dans le tube diffuseur 4 creux en entourant la LED 2 d'un dispositif optique 41 permettant de récupérer les rayons de grands angles par rapport à l'axe de l'émission pour les renvoyer dans l'axe du tube. Il existe des composants commerciaux réalisant cette fonction, mais non adaptés à notre application compte tenu de l'espace disponible. Dans notre cas une solution non parfaite, mais facilement réal isable est d' uti l iser un cône tronqué dont la face intérieure est réfléchissante, le sommet du cône entourant la LED 2. Plusieurs exemples de géométrie d'un tel système optique 41 sont visibles sur les figures 1 a-c.
Selon une deuxième possibilité, le tube diffuseur 4 est un tube plein en un matériau transparent n'absorbant pas la lumière, préférentiellement du polyméthacrylate de méthyle (PMMA). L'indice du PMMA (1 ,49) étant le même, à peu de choses près, que ceux de l'eau et du verre, il n'y aura pas de lum ière guidée à priori s'il est plongé dans l'eau, mais pas de pertes de Fresnel à l'interface LED/tube (encapsulation sphérique en verre).
On introduit la LED 2 dans un embrèvement fait dans le tube diffuseur 4 (de la taille de la calotte sphérique d'encapsulation de la LED 2).
On peut également avantageusement utiliser une lentille 5 qui grâce au faisceau quasi-cylindrique qu'elle permet d'obtenir, permet à la lumière de pénétrer dans le tube 4 plein (aux pertes de Fresnel près). Le faisceau pénétrant ainsi dans le tube 4 plein est de façon particulièrement avantageuse diffusé par des inclusions 6 introduites dans le tube. Ce mode de réalisation est représenté sur la figure 1 b.
Il existe en effet des réalisations industrielles fondées sur l'insertion dans la masse de PMMA d'inclusions diffusantes 6, c'est-à-dire des «objets» non absorbants qui assurent la diffusion de la lum ière par le biais des multiples interfaces d'orientations aléatoires en particulier des grains d'un matériau d'indice différent de celui du tube 4, ou encore des bulles d'air.
De façon encore plus avantageuse, la densité d'inclusions 6 varie sur la hauteur du tube diffuseur 4, et croit en s'éloignant de la LED 2 de façon à compenser la perte de lumière progressive.
L'invention n'est limitée à aucune taille de tube diffuseur 4 en particulier. Ceux-ci peuvent faire jusqu'à plusieurs mètres de long, il n'y a pas de limite donnée, et présentent un diamètre le plus souvent entre quelques millimètres et quelques centimètres, Le diamètre est essentiellement déterminé par le choix de la concentration des microalgues dans le réacteur (mode continu et/ou chemostat) qui conditionne la pénétration de la lumière, ainsi que la puissance moyenne qu'on veut appliquer aux microalgues. Ces dimensions seront discutées plus loin.
Géométrie de l'élément diffuseur de lumière - Cas des sources linéaires Comme expliqué précédemment, L'usage d'éléments diffuseurs 4 tubulaires pour diffuser la lumière n'est pas la seule configuration possible. On peut en effet utiliser des sources lumineuses 2 linéaires comme des LEDs en ruban. On note comme déjà précisé plus haut que les LED en ruban peuvent être composites (plusieurs longueurs d'ondes) ou par construction polychromatiques.
Dans ce cas, les éléments diffuseurs 4 sont avantageusement sensiblement parallélépipédiques afin de tenir compte de la géométrie d'émission d'un ruban de LEDs. On remarque qu'il s'agit d'un cas particulier de géométrie prismatique.
Un tel parallélépipède diffuseur 4 de lum ière est représenté sur la figure 2. Il peut être plein, creux, et peut faire l'objet des mêmes modes de réalisation que les éléments tubulaires. On parlera par la suite de « tubes diffuseurs de lumière », mais on comprendra bien que toutes les possibilités qui ont été décrites et seront décrites dans la présente description (structures, traitements, matériaux... ) peuvent s'appliquer aussi bien quelque soit la géométrie de l'élément diffuseur 4, tube ou parallélépipède.
Traitements de surface - Traitements semi-réfléchissants
Pour éclairer le milieu de culture 3 de façon la plus homogène possible, il faut faire en sorte que la lumière sorte du tube diffuseur 4 avec une intensité constante le long du guide de lumière, en particulier en empêchant la lumière de sortir trop précocement du tube diffuseur 4.
Dans le cas d'un tube diffuseur 4 creux, on peut avantageusement augmenter cet effet de confinement de la lumière, en disposant une couche semi-réfléchissante 7 sur la face interne du tube diffuseur 4, laquelle est assimilable à un semi-miroir
Dans tous les tubes diffusants, une autre couche semi-réfléchissante 8 peut être disposée sur la face externe du tube diffuseur 4, y compris les tubes creux en remplacement ou en complément d'une couche interne 7. Ces traitements de surface interne/externe, dont on voit un exemple sur la figure 1 c, permettent de mieux guider la lumière.
Il s'agit ici d'un traitement semi réfléchissant qu'on peut classiquement obtenir avec un matériau métallique ou un oxyde métallique, d'indice optique plus élevé que l'indice du matériau constituant le tube diffuseur 4, préférentiellement de l'aluminium. En augmentant l' indice, on favorise la réflexion par rapport à la transmission. La qualité du revêtement est essentiellement liée à son absorption qui doit être minimale. Il existe dans l'arsenal des couches optiques semi transparentes, des multicouches optiques (métaux ou oxydes) permettant de réaliser cette fonction d'augmentation de l'effet miroir, qui peut être adaptée à la longueur d'onde de la lumière utilisée.
Le fait de mettre une couche semi-réfléchissante 8 à l'extérieur du doigt pour un tube creux, n'est pas une nécessité, mais simplifie la technique de dépôt du matériau semi-réfléchissant. On peut toutefois envisager de procéder au dépôt par trempage dans un bain, aussi bien sur la face externe que dans l'intérieur du tube. Les couches semi-réfléchissantes 7, 8 peuvent être déposé plus généralement par toute méthode chimique (trempage), électrolytique, ou de type sputtering (pulvérisation cathodique), CVD (dépôt en phase vapeur), évaporation, etc.
Les matériaux envisagés vont comme expliqué des métaux (Al, Ag, etc) qui permettent de constituer des couches semi transparentes de faibles épaisseurs (du nanomètre à quelques microns), aux oxydes transparents (d'Indium dopés ou non, de terres rares, etc) pour réaliser cette fonction. Dans les gam mes de transparences qui sont ici nécessaires, l'absorption intrinsèque de cette couche ne devrait pas dépasser 10%.
De façon encore plus avantageuse, l'épaisseur de la ou les couches semi-réfléchissantes 7, 8 diminue en s'éloignant de la LED 2, de façon à compenser la perte de lumière progressive. L'homme de l'art saura choisir le profil de variation de l'épaisseur de la ou les couches semi-réflechissantes 7, 8 (en fonction de la distance à la LED 2) pour optimiser (égaliser) l'énergie lumineuse sortant du tube 4. Il s'agit ici de la même préoccupation qui conduit à avoir une densité variable d'inclusions 6 dans le cas d'un tube diffuseur 4 plein (voir plus haut). A titre d'exemple, une couche d'alum inium dont l'épaisseur varier de 20 à 100 nm est intéressante.
Traitements de surface - Traitements diffusants
On a vu que certains traitements de surface amplifiaient l'effet miroir à l' intérieur du tube d iffuseur 4, mais d'autres traitements permettent spécifiquement d'améliorer la diffusion de la lumière.
Ainsi, avantageusement la surface externe du tube diffuseur 4 présente une rugosité élevée 9 améliorant la diffusion de la lum ière. Par rugosité adaptée, on entend notamment une rugosité à des échelles comparables ou supérieures à la longueur d'onde de la lumière utilisée.
II s'agit par exemple de rugosités obtenues par abrasion, par attaques chimiques, par moulage au voisinage de la température de ramollissement du PMMA, ou par gravure laser, etc . Le premier traitement (semi-réfléchissant) et ce second traitement peuvent utilisés séparément ou simultanément, par exemple en déposant une couche semi-réfléchissante 8 sur un tube diffuseur 4 rendu rugueux, permettant d'optimiser le flux de lumière issue du tube diffuseur 4. Il est représenté sur la figure 1 d un tube diffuseur 4 dans lequel sont combinées de la rugosité 9 et une couche semi-réfléchissante interne 7.
A l'instar de l'autre traitement, le niveau de rugosité peut croître quand on s'éloigne de la LED 2 pour compenser la perte de flux lumineux quand on s'éloigne de la source. L'optimisation de cette perte de flux progressive dans le tube diffuseur 4 de lumière, ainsi que l'optimisation de la constance du flux de sortie quand on parcourt le tube diffuseur 4 conduit à viser une atténuation quasi-totale de la lumière sur un parcours du double de la longueur du tube diffuseur 4 (pas de puissance lumineuse retournant sur la source). Ainsi, avantageusement, l'extrémité du tube diffuseur 4 opposée à la LED 2 est pourvue d'un miroir 42. A mi distance (longueur du tube diffuseur 4, puisque le parcours complet est un aller-retour), on renvoie la lumière, ce qui permet de compenser la perte de lumière extraite du tube quand on s'éloigne de la LED 2 dans le parcours « aller », ce m iroir peut être avantageusement incliné suivant un angle prédéterminé on même conformé, par exemple en le prenant de forme conique (comme l'on voit sur la figure 1 a). Divers exemples des géométries de miroir 42 sont également visibles sur les figures 1 a-d. On note que l'usage de couches semi-réfléchissantes 7, 8 d'épaisseur variable en fonction de la distance à la LED 2 constitue un degré de l iberté supplémentaire pour optimiser l'extraction de la lumière.
On notera par ailleurs, que pour tenir compte de l'hydrodynamique (flux d'eau, et de bulles) dans le réacteur, l'extrémité du tube diffuseur 4 opposée à la LED 2 est avantageusement en forme de cône ou de dôme pour faciliter le flux de l'eau ou des bulles (dans les zones à sparger), comme l'on verra plus loin. Si on utilise un tube à double enveloppe c'est l'extrémité de celle-ci qui doit être conformée en cône ou en dôme.
Autres améliorations des tubes diffuseurs De façon préférée, la surface externe du tube diffuseur 4 est encapsulée dans une gaine protectrice 10. L'encapsulation a pour objet essentiel de protéger en particulier la couche semi-réfléchissante 8 du milieu de culture 3 qui par nature est corrosif.
Si la surface externe du tube diffuseur 4 présente une rugosité artificielle 9, on note que celle-ci favorise l'accrochage des microalgues, c'est pourquoi il est également souhaitable d'encapsuler le tube diffuseur 4.
La gaine protectrice 10 doit être réalisée avec un matériau non rugueux et transparent (par exemple des plastiques comme le PMMA à nouveau, le polycarbonate, du polystyrène cristal... ), et sur lequel l'accrochage des algues est le plus faible possible. Dans le cas d'une rugosité 9, on remarque qu'il est nécessaire de créer une rupture d'indice sur le passage de la lumière pour obtenir l'effet de diffusion des rugosités. Donc il faut soit choisir pour la gaine 10 un matériau présentant un faible indice comme le polytétrafluoroéthylene, soit prévoir de façon préférée un vide d'air entre la gaine 10 et le tube diffuseur 4 à rugosité élevée 9, la distance à parcourir par la lumière dans l'air devant être avantageusement bien supérieure à la taille des rugosités 9 (au moins un facteur 10). De façon générale, l' invention ne sera lim itée à aucun mode de réalisation particulier, et pourra faire l'objet de toutes les combinaisons possibles de couches semi-réfléchissantes, rugosités, sur la face externe et/ou sur la face interne s'il y en a une. Il est également possible de combiner plusieurs matériaux en particulier présentant des indices différents, et assembler ces différents matériaux en multicouches concentriques. L'homme de l'art saura adopter toutes ces options en fonction des caractéristiques de production choisies pour le photobioréacteur (concentration des algues, densité des tubes diffuseurs 4, rendement souhaité, coût souhaité, etc.)
On verra plus loin que la gaine (double tube ou encapsulation), permet d'envisager un système de nettoyage externe des tubes de lumière.
Système de refroidissement
Les HPLEDs préférentiellement utilisées présentent comme expliqué un rendement d'environ 25%, c'est-à-dire que 75% de la puissance fournie est dissipée en chaleur.
En d'autre termes, l'utilisation des LED 2 nécessite l'évacuation d'une chaleur i m portante, c' est pourquoi le photobioréacteur comprend avantageusement un système de refroidissement 12 des LEDs 2.
Les LEDs 2 sont par exemple montées sur un support métallique de quelques centimètres carrés qui sera mis en contact direct avec ce système de refroidissement 12, appelé « caloduc », constitué de deux plaques métalliques entre lesquelles on fera circuler un liquide de grande conductibilité thermique, de l'air puisé, de l'eau ou autre. On peut aussi prévoir des radiateurs individuels refroidis par air ou à eau, comme l'on voit sur la figure 3. Les éléments 1 21 et 1 22 correspondent respectivement à l'entrée et à la sortie du fluide caloporteur. En cas de radiateurs individuels, on peut prévoir de les monter en série et/ou en dérivation. Le débit du liquide de refroidissement est asservi à la mesure de la tem pérature d'em base des LEDs
La LED 2 est ici montée sur un socle au sommet du tube diffuseur 4, et est au contact avec son caloduc 12, sa face ém issive sphérique est au contact avec le tube diffuseur de lumière 4 (un trou sphérique est ménagé si le tube diffuseur est plein, le trou étant avantageusement rempli de graisse optique).
Alternativement, si l'on souhaite écarter de quelques centimètres les
LEDs et leurs connections électriques du milieu de culture, on peut utiliser un guide de lumière sans pertes (miroir cylindrique) de quelques centimètres de long à l'extrémité du tube diffuseur 4. Ce guide peut être par exemple un cône tronqué dont l'intérieur est tapissé d'un miroir.
Racleur de nettoyage
Même en prévoyant une gaine protectrice 10, il est vraisemblable que des algues y adhéreront. Il est donc intéressant de prévoir un système de nettoyage, c'est pourquoi le tube diffuseur 4 comprend avantageusement un racleur de nettoyage 1 1 entourant la gaine 10.
Le racleur de nettoyage 1 1 , visible également sur la figure 3, consiste par exemple en un joint torique en caoutchouc entourant le tube diffuseur 4 dans sa partie haute. Quand on retire le tube diffuseur 4 (en le tirant par le haut) le joint racle les dépôts d'algues. Géométrie du photobioréacteur
La taille d'une enceinte de culture 1 du photobioréacteur peut être très variable, et aller de quelques litres à des centaines de mètres cubes. La géométrie générale d'une enceinte de culture 1 est le plus souvent parallélépipédique (figure 4) ou cylindrique (figure 5), mais n'a pas ou peu d'incidence, à part éventuellement en ce qui concerne les effets de bord et les coûts de construction, la résistance à la pression. Le photobioréacteur peut en outre aussi bien comprendre une seule enceinte de culture 1 que plusieurs L'invention n'est limitée à aucune taille ni géométrie.
Dans le cas des parallélépipèdes diffuseurs de lumière 4, l'enceinte de culture est préférentiellement également parallélépipédique, comme l'on voit sur la figure 6. On remarque que dans cet exemple les sources lumineuses 2 (et donc les caloducs 1 2) sont placées sur les flancs du photobioréacteur, cette configuration symétrique permet d'augmenter le flux de lumière dans les guides, mais n'est pas forcément nécessaire. Elle permet par contre d'éclairer facilement à deux longueurs d'ondes différentes.
On prendra dans la su ite de la description , à titre d'exemple, u n photobioréacteur comprenant une unique enceinte de culture 1 cubique conforme à la figure 4, d'un volume global de 1 m3 (volume du m ilieu de culture 3 plus volume des tubes diffuseurs 4).
Comme l'on voit sur la figure 4, on choisit des tubes diffuseurs 4 de lumière précédemment décrits, d'environ 1 m de longueur de façon à éclairer sur toute la hauteur de l'enceinte de culture 1 , et optimisés pour émettre un flux constant sur toute leur hauteur. Si les sources lumineuses avaient été latérales, on aurait considéré la largeur de l'enceinte de culture.
L'arrangement des tubes diffuseurs 4 dans le volume de l'enceinte de culture 1 vise à optimiser l'homogénéisation globale du flux de lumière émis dans le milieu de culture 3. Le paramètre dimensionnant pour avoir un « bain » de lumière quasi-homogène en intensité est la « longueur de pénétration efficace » de la lumière ( eff ). Ce paramètre est défini à partir de la « longueur de pénétration caractéristique »x, mentionné dans l'introduction, qui est la longueur de milieu de culture au bout de laquelle un flux incident lumineux est divisé par e=2.71828, et d'un seuil d'intensité lumineuse ieff dit « seu i l de déclenchement du cycle de production », qui inclut l'activation du cycle de Calvin. Le cycle de Calvin est en effet une série de réactions biochimiques qui se tiennent dans les chloroplastes des organismes quand ils réalisent la photosynthèse. Ce seuil de déclenchement, exprimé en moles de photons par m2 par seconde, correspond au niveau de flux lumineux minimum pour amorcer la production de biomasse par les micro-organismes. I l vaut typiquement 50 moles.m"2.s"1 de photons « rouges » (longueur d'onde autour de 650 nm) pour les microalgues (par exemple du genre Nannochloris).
A titre d'information, on trouve également un seuil de saturation de la photosynthèse, au dessus duquel la vitesse de production de biomasse n'augmente plus et même décroit aux fortes intensités par destruction des microalgues.
Xeff est défini comme la distance au-delà de laquelle le flux lumineux tombe en-dessous du seuil ieff .
La loi de Beer-Lambert nous permet d'exprimer le flux lumineux à une distance x d'une source lumineuse produisant un flux lumineux incident l0 : l(x) = l0e-x ,
D'OÙ Ieff = I,e λ , Θί λ^ λΙη -) .
Xeff est inversement proportionnel à la concentration en microalgues, et à concentration fixée il est déterminé par l'espèce de microalgue. On considère qu'un point situé à une distance d'une source lumineuse au-delà de Xeff ne reçoit pas suffisamment de photons pour produire de la matière organique. En d'autres termes ceci signifie que chaque point du milieu de culture 3 doit être en moyenne à une distance inférieure à Xeff d'un tube diffuseur 4. L a d i s t a n ce m oy e n n e e n t re d e u x t u b e s e s t d o n c avantageusement de l'ordre de 2 eff .
En prenant cette hypothèse, une première configuration possible consiste à créer un réseau carré de tubes diffuseurs 4. En supposant à titre d'exemple que le diamètre des tubes est de d= / e =10mm, on remplit alors une enceinte de culture 1 cubique de 1 m3 avec 1089 (33x33) tubes diffuseurs 4 de lumière.
En réalité cet empilement n'est pas forcément optimal du point de vue du volume éclairé, des simulations montrent qu'il est préférable de décaler une rangée sur deux de eff + 612. Dans cette configuration (il s'agit d'un réseau hexagonal) l'enceinte de culture 1 est alors remplie avec 1270 tubes diffuseurs 4.
D'une manière plus précise, l'optimisation du «bain» de lumière (dynamique de l'intensité, et intensité), doit faire l'objet d'une optimisation par calcul. En imposant l'intensité moyenne lumineuse dans le bain et les variations locales de l'intensité lumineuse, on peut déterminer la surface optimale des tubes diffuseurs 4 pour une puissance lumineuse injectée par chaque LED 2 donnée, d'où le diamètre optimal. Système de mise en circulation du milieu de culture: générateur de bulles
Le fonctionnement dynamique du photobioréacteur suppose par ailleurs qu'on injecte avantageusement à sa base un gaz sous pression (avec éventuellement des nutriments). Cette injection notamment au travers d'un dispositif appelé « sparger » conduit à la création d'un flux de bulles qui induit la montée du liquide biologique. Le photobioréacteur comprend donc avantageusement un système de génération de bulles 13 disposé à la base du milieu de culture 3.
Les figures 4 et 5 représentent différentes géométries de système générateur de bulles 1 3 à sparger aptes à injecter ces bulles de façon contrôlée à la base du milieu de culture 3. Les réacteurs fonctionnant suivant ce principe classique sont dénommés «air-lift». Le flux principal liquide bien qu'orienté dans le sens de la montée (puis dans le sens de la descente) conduit les microalgues à « diffuser » transversalement entre les tubes diffuseurs 4. Les microalgues en se déplaçant ainsi captent une lumière variable, puisque dans cette direction le profil de décroissance de la lumière est exponentiel quand on s'écarte des tubes diffuseurs 4. Les microalgues reçoivent ainsi une puissance moyenne dans la longueur Aeff. La condition d'efficacité de ce « moyennage » de la quantité de lumière reçue par chaque microalgue est que le tem ps de diffusion d'une microalgue entre deux tubes diffuseurs 4 soit très court par rapport au cycle de vie d'une algue, et de préférence au temps de montée (ou de descente) d'une microalgue dans l'enceinte de culture 1 .
Un fonctionnement de type air-l ift suppose en général un flux ascendant du milieu de culture 3 et évidemment un flux descendant. L'injection du fluide se fait à la base de la partie montante. Pour schématiser on pourrait séparer l'enceinte de culture 1 en deux parties distinctes équivalentes : une montante et une descendante, le flux et le contre flux étant éclairés par le même procédé de doigts lumineux. L'optimisation de la configuration des flux liquides peut conduire à d'autres partitions d'une enceinte de culture 1 du photobioréacteur en N blocs montants, M blocs descendants, ou à l'usage de buses disposées à la base de l'enceinte de culture 1 et placées entre les tubes diffuseurs 4.
On notera que la technologie des éléments diffuseurs de lumière 4 quelque soit leur géométrie peut en principe autoriser n'importe quelle forme d'enceinte de culture 1 et pas seulement parallélépipédique ou cylindrique.
L'empilement des enceintes de culture 1 est toutefois plus facile dans le cas parallélépipédique et permet d'optimiser la place. Dans le cas d'une enceinte cylindrique, l'hydrodynamique des flux montants et descendants, qui sont associées à des spargers 13 concentriques (voir figure 5) est plus délicate à gérer. Dans le photobioréacteur selon l'invention, on montre que l'extension de l'interface entre les flux et contre flux (montée et descente) ne dépasse pas l'intervalle entre deux plans de tubes diffuseurs 4. Cette interface s'établit naturellement à la limite des zones de sparger.
En outre, comme expliqué, le photobioréacteur fonctionne en mode
« continu ». En effet, il est essentiel que la densité de microalgues reste constante, pour conserver la même longueur de pénétration de la lum ière, donc on stabilise la concentration par prélèvement continu du liquide, et injection en contre partie d'une même quantité d'eau, éventuellement enrichie de nutriments. Ce procédé est décrit en particulier dans la demande de brevet FR1050015.
Le photobioréacteur peut comprendre en effet divers systèmes de régulation. Ce dernier devant fonctionner en continu pour une géométrie donnée, en particulier liée à l'espacement des éléments diffuseurs, on doit contrôler la densité d'algues optimale en régime stationnaire. Cette mesure sera faite par mesure de la densité optique du milieu biologique.
D'autres paramètres critiques pour l'optimisation de la croissance des microalgues peuvent faire l'objet de mesures faites en continu : pH, température, etc.
D' u ne façon générale ces param ètres seront régu lés autour de consignes garantissant un fonctionnement optimal.
Utilisation du photobioréacteur Selon un deuxième aspect, l'invention concerne l'utilisation d'un photobioréacteur selon le premier aspect de l'invention pour cultiver des micro-organismes photosynthétiques, de préférence des microalgues.
Cette uti l isati on peut être pou r des app l ications énergétiq ues (production de biocarburants), industrielles (production de pigments), agroalimentaires (production d'oméga-3 et d'acides gras polyinsaturés), de dépollution (purification de rejets en dioxyde de carbone, NOx et/ou SOx) voire même pharmaceutique de masse.
Un autre aspect de l'invention concerne comme expliqué précédemment l'utilisation d'un élément diffuseur de lumière 4 cylindrique ou prismatique couplé optiquement à une source lumineuse 2 de façon à capter les photons émis par la source lumineuse 2 et les restituer par sa surface latérale pour éclairer le milieu de culture d'un photobioréacteur. L'élément diffuseur de lumière 4 peut faire l'objet de tous les modes de réalisation écrits précédemment.
Exemple numérique Paramètres :
· Tubes diffuseurs de 10 mm de diamètre ;
• Enceinte cubique 1 de 1 m de côté ;
• LEDs 2 de puissance 10 W électrique soit 2.5 W optique (longueur d'onde 650 nm) ;
• Longueur de pénétration caractéristique de la lumière 1=3.8 mm (concentration de 108 cellules/mL) ;
• Algues du genre Nannochloris de masse unitaire 10"11 g (masse biologique de 1 g/L par conséquent), seuil d'efficacité ieff= 50 moles.m"2.s"1 ;
• Arrangement « carré » des tubes lumineux. En considérant que les tubes diffuseurs 4 présentent une longueur de
1 m égale au coté de l'enceinte de culture 1 , on calcule une surface latérale de 314 cm2 par tube diffuseur 4. La puissance optique injectée étant de 2,5 W, en considérant comme expliqué précédemment que le tube diffuseur 4 diffuse cette puissance de manière homogène, le flux lumineux, c'est-à-dire la puissance optique transmise au milieu par unité de surface, vaut 79,62 W/m2 (à la surface des tubes), soit 432 μηιοΐβ. m"2 s"1. Il faut à présent convertir cette valeur en moles de photons par m2 par seconde. L'énergie d'un photon est en effet liée à sa fréquence v (l'inverse de sa longueur d'onde multiplié par la vitesse de la lumière) par la constante de Planck h : E = hv . 1 mole de photons (soit 6.02.1023 photons, d'après la constante d'Avogadro) de longueur d'onde 650 nm possède donc une énergie de 173,9 kJ.
On en déduit que le flux lumineux incident vaut 432 moles.m"2.s"1. En utilisant la formule mentionnée plus haut dans la description, on obtient une longueur efficace eff =8,5 mm.
L'arrangement carré décrit plus haut prévoit un écart de 2 eff entre deux tubes diffuseurs 4 successifs, il est donc possible de placer jusqu'à 1369 (37x37) tubes diffuseurs 4 dans l'enceinte cubique 1 .
La surface d'éclairement totale est alors de 43m2, et la consommation électrique instantanée des LEDs 2 est alors 13,7 kW, dont 10,28kWth à dissiper.
Le volume de milieu de culture 3 dans l'enceinte de culture 1 correspond au volume total de 1 m3 moins le volume des 1369 tubes diffuseurs 4. Il vaut 0,89 m3. Le volume quand à lui éclairé « efficacement », c'est-à-dire dans la couronne de largeur eff autour de chaque tube diffuseur
4 peut être calculé à 0,67m3.
En partant du principe qu'en fonctionnement continu, la masse de micro-algues « efficacement éclairées » double toutes les 12h, on obtient une production de 0,94 Kg/jour de microalgues pour un photobioréacteur présentant une enceinte de culture d'1 m3, en consommant 329 kWh/j d'électricité.
On note que par rapport à un éclairage d'une face de 1 m2 et un volume de 1 m3 , on a gagné un facteur 43 dans l'efficacité brute du réacteur, chiffre qui compte tenu de l'hydrodynam ique du réacteur est à multiplier par un facteur 2, puisqu' ici on considère que le volume éclairé est à multiplier par le facteur Aeff/A.

Claims

REVENDICATIONS
1 . Photobioréacteur destiné à la culture notamment en continu de micro-organismes photosynthétiques, de préférence de microalgues, comprenant au moins une enceinte de culture (1 ) destinée à contenir le milieu de culture (3) des microorganismes, et au moins une source lumineuse (2) extérieure à l'enceinte de culture (1 ),
caractérisé en ce qu'il comprend en outre au moins un élément diffuseur de lumière (4) cylindrique ou prismatique placé dans l'enceinte de culture (1 ), l'élément diffuseur de lumière (4) étant couplé optiquement à la source lumineuse (2) de façon à capter les photons émis par la source lumineuse (2) et les restituer dans le milieu de culture (3) par sa surface latérale.
2. Photobioréacteur selon la revendication 1 , caractérisé en ce que l'élément diffuseur de lumière (4) est un élément plein en un matériau transparent n'absorbant pas la lumière, à l'extrémité duquel la source lumineuse (2) est placée.
3. Photobioréacteur selon la revendication 2, caractérisé en ce que l'élément diffuseur de lumière (4) comprend des inclusions (6) constituées d'un matériau partiellement diffusant.
4. Photobioréacteur selon l'une des revendications 2 ou 3, caractérisé en ce que l'interface entre la source lumineuse (2) et l'élément diffuseur de lumière (4) est traitée avec une graisse optique favorisant la transmission des photons.
5. Photobioréacteur selon la revendication 1 , caractérisé en ce que l'élément diffuseur de lumière (4) est un élément creux en un matériau transparent, à l'extrémité duquel la source lumineuse (2) est placée.
6. Photobioréacteur selon la revendication 5, caractérisé en ce qu'une couche semi-réfléchissante (7) est disposée sur la face interne de l'élément diffuseur de lumière (4).
7. Photobioréacteur selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'une couche semi-réfléchissante (8) est disposée sur la face externe de l'élément diffuseur (4).
8. Photobioréacteur selon l'une des revendications 6 ou 7, caractérisé en ce que la ou les couches semi-réfléchissantes (7, 8) est en un matériau métallique ou un oxyde métallique, d'indice optique plus élevé que l'indice du matériau constituant l'élément diffuseur (4), préférentiellement de l'aluminium.
9. Photobioréacteur selon l'une des revendications 6 à 8, caractérisé en ce que l'épaisseur de la ou les couches semi-réfléchissantes (7, 8) diminue en s'éloignant de la source lumineuse (2).
10. Photobioréacteur selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que l'élément diffuseur de lumière (4) est en polyméthacrylate de méthyle.
1 1 . Photobioréacteur selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que la source lumineuse (2) est une source quasi- ponctuelle, et l'élément diffuseur de lumière (4) est un tube diffuseur.
12. Photobioréacteur selon l'une des revendications 1 à 10, caractérisé en ce que la source lumineuse (2) est une source linéaire, et l'élément diffuseur de lumière (4) est un parallélépipède diffuseur.
13. Photobioréacteur selon l'une des revendications 10 ou 1 1 , caractérisé en ce que la source lumineuse (2) est une (ou un ensemble de) diode(s) électroluminescente(s) (LED) quasi-ponctuelle(s) ou en ruban, de préférence une (ou un ensemble de) diode(s) électroluminescente(s) de puissance (HPLED).
14. Photobioréacteur selon la revendication 13, caractérisé en ce qu'une lentille convergente (5) est placée entre la LED (2) et l'élément diffuseur de lumière (4).
15. Photobioréacteur selon l'une des revend ications 1 3 ou 1 4 caractérisé en ce qu'un système optique (41 ) dont la face intérieure est réfléchissante entoure la LED (2).
16. Photobioréacteur selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce l'extrémité de l'élément diffuseur de lumière (4) opposée à la source lumineuse (2) est pourvue d'un miroir (42).
17. Photobioréacteur selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que l'extrémité de l'élément diffuseur de lumière (4) opposée à la source lumineuse (2) est en forme de cône ou de dôme.
18. Photobioréacteur selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que la surface externe de l'élément diffuseur de lumière (4) présente une rugosité adaptée (9) améliorant la diffusion de la lumière.
19. Photobioréacteur selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que la surface externe de l'élément diffuseur de lumière (4) est encapsulée dans une gaine protectrice (10).
20. Photobioréacteur selon la revendication précédente, caractérisé en ce que l'élément diffuseur de lumière (4) comprend un racleur de nettoyage (1 1 ) entourant la gaine (10).
21 . Photobioréacteur selon l'une quelconque des revend ications précédentes, comprenant un système de refroidissement (12) des sources lumineuses (2).
22. Photobioréacteur selon l'une quelconque des revend ications précédentes, comprenant un système de génération de bulles (13) à la base du milieu de culture (3).
23. Utilisation d'un photobioréacteur selon l' une quelconque des revendications précédentes, pour cultiver des micro-organismes photosynthétiques, de préférence des microalgues.
24. Utilisation d'un élément diffuseur de lumière (4) cylindrique ou prismatique couplé optiquement à une source lumineuse (2) de façon à capter les photons émis par la source lumineuse (2) et les restituer par sa surface latérale pour éclairer le milieu de culture d'un photobioréacteur.
EP12718219.4A 2011-05-06 2012-05-03 Photobioreacteur en milieu ferme pour la culture de micro-organismes photosynthetiques Withdrawn EP2705129A1 (fr)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR1153924A FR2974814B1 (fr) 2011-05-06 2011-05-06 Photobioreacteur en milieu ferme pour la culture de micro-organismes photosynthetiques
PCT/EP2012/058072 WO2012152637A1 (fr) 2011-05-06 2012-05-03 Photobioreacteur en milieu ferme pour la culture de micro-organismes photosynthetiques

Publications (1)

Publication Number Publication Date
EP2705129A1 true EP2705129A1 (fr) 2014-03-12

Family

ID=46025718

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
EP12718219.4A Withdrawn EP2705129A1 (fr) 2011-05-06 2012-05-03 Photobioreacteur en milieu ferme pour la culture de micro-organismes photosynthetiques

Country Status (15)

Country Link
US (2) US20140073035A1 (fr)
EP (1) EP2705129A1 (fr)
JP (1) JP5961251B2 (fr)
KR (1) KR20140042812A (fr)
CN (1) CN103517978B (fr)
AR (1) AR086276A1 (fr)
AU (1) AU2012252597B2 (fr)
BR (1) BR112013028481A2 (fr)
CA (1) CA2834929A1 (fr)
EA (1) EA201391620A1 (fr)
FR (1) FR2974814B1 (fr)
HK (1) HK1191668A1 (fr)
IL (1) IL229263A0 (fr)
TW (1) TWI553119B (fr)
WO (1) WO2012152637A1 (fr)

Families Citing this family (29)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20170161802A9 (en) * 2013-03-18 2017-06-08 Intellectual Property Management Pty Ltd A wip management system
KR101500443B1 (ko) * 2013-08-05 2015-03-09 (주)해늘 미세조류의 배양을 위한 광생물 배양기
CN104611221A (zh) * 2014-07-14 2015-05-13 安徽省农业科学院水产研究所 一种封闭跑道池式光生物反应器
KR101663108B1 (ko) * 2014-07-30 2016-10-14 에스케이이노베이션 주식회사 광합성 자기영양 생물 배양을 위한 광생물 반응기용 광튜브
SG11201703676XA (en) 2014-11-07 2017-06-29 Tristan Victor Wilson Bioreactor using macroalgae
FR3028917A1 (fr) * 2014-11-26 2016-05-27 Friederich Alain Louis Andre Element injecteur de lumiere
FR3028918A1 (fr) * 2014-11-26 2016-05-27 Friederich Alain Louis Andre Element injecteur de lumiere a energie repartie
FR3029209B1 (fr) * 2014-12-02 2018-02-09 Sunoleo Dispositif de production d'une culture photosynthetique au moyen d'un photo-bioreacteur et d'au moins un distributeur de lumiere.
KR101663109B1 (ko) * 2015-02-23 2016-10-06 에스케이이노베이션 주식회사 다양한 형상의 집광부를 구비하는 광생물 반응기용 광튜브
KR101660963B1 (ko) * 2015-02-23 2016-09-28 에스케이이노베이션 주식회사 플레넬 렌즈를 구비하는 광생물 반응기용 광튜브
JP7102339B2 (ja) 2015-07-29 2022-07-19 アベスパ コーポレーション 発光ダイオード光バイオリアクタ及び使用方法
US10272857B2 (en) 2015-08-17 2019-04-30 Magna Electronics Inc. Vehicle camera assembly
WO2017087790A1 (fr) * 2015-11-20 2017-05-26 Corning Incorporated Récipient éclairé pour la croissance d'entités biologiques
CN105462816B (zh) * 2015-12-09 2018-08-17 重庆大学 利用纳米导光板实现太阳光分频均布的跑道池微藻反应器
IT201600081222A1 (it) * 2016-08-02 2018-02-02 Biosyntex S R L Impianto e metodo per la produzione di alghe
CN107164217A (zh) * 2017-07-07 2017-09-15 苏州富园生物科技有限公司 一种高效微藻光反应装置
DE102017214122A1 (de) * 2017-08-14 2019-02-14 Osram Gmbh Kammer für einen Photobioreaktor
FR3075815B1 (fr) * 2017-12-22 2020-08-07 Suez Groupe Photobioreacteur
DE102018108323B4 (de) 2018-04-09 2020-07-09 Schott Ag Vorrichtung zur Halterung einer bilderfassenden Einrichtung an einem Bioreaktor, Bioreaktor mit Vorrichtung zur Halterung einer bilderfassenden Einrichtung sowie Verfahren zur Vermehrung oder Kultivierung biologischen Materials
DE102018108327A1 (de) * 2018-04-09 2019-10-10 Schott Ag Photobioreaktor mit Vorrichtung zur Abgabe elektromagnetischer Strahlung, Vorrichtung zur Abgabe elektromagnetischer Strahlung sowie Verfahren zur Vermehrung oder Kultivierung biologischen Materials, Verfahren zum Präparieren von biologischem Material und/oder Herstellen von Pharmazeutika, insbesondere Biopharmazeutika
IT201800010479A1 (it) 2018-11-21 2020-05-21 Torino Politecnico Apparecchiatura e metodo per l’accrescimento di microrganismi fotosintetici e la biofissazione di biossido di carbonio mediante diffusore ottico ad alta efficienza a spettro e intensità variabile
GB201904561D0 (en) * 2019-04-01 2019-05-15 Walker Nicholas Simon Remote ligh source algae lighting tube for volume cultivation medium illumination
US20210079335A1 (en) * 2019-09-16 2021-03-18 Homebiotic, Inc. Apparatus and method for enhancing sporulation of bacteria
FR3103497A1 (fr) * 2019-11-22 2021-05-28 Ifremer Systeme et methode de culture de souches de phytoplancton
CN111394225B (zh) * 2020-03-27 2021-03-26 上海天智绿色食品有限公司 一种微生物连续发酵系统以及连接发酵方法
JP2023526680A (ja) * 2020-05-22 2023-06-22 ブライトウェーブ・パートナーズ・リミテッド・ライアビリティ・カンパニー 内部照射型バイオリアクタ
CN113735267A (zh) * 2020-05-29 2021-12-03 中国石油化工股份有限公司 含硝酸根离子废水的处理方法
CN113735266A (zh) * 2020-05-29 2021-12-03 中国石油化工股份有限公司 含硝酸根离子废水的处理方法
CN112920952A (zh) * 2021-03-25 2021-06-08 广东轻工职业技术学院 光合生物培养装置

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6278827B1 (en) * 1998-04-20 2001-08-21 Bridgestone Corporation Light transmission tubes

Family Cites Families (31)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR1050015A (fr) 1952-01-30 1954-01-05 Labinal Ets Perfectionnements apportés aux appareils du genre des rêgulateurs de tension pour machines électriques
DE3278766D1 (en) * 1981-12-03 1988-08-18 Kei Mori Apparatus for photosynthesis
JPS58101683A (ja) * 1981-12-10 1983-06-16 Takashi Mori 光合成装置
EP0112556B1 (fr) * 1982-12-24 1988-04-06 Kei Mori Dispositif de photosynthèse
JPS59125890A (ja) * 1982-12-24 1984-07-20 Takashi Mori 光合成反応装置
DE3600634A1 (de) * 1985-09-04 1987-03-12 Lutz Dr Schimmelpfeng Verfahren zur durchfuehrung lichtabhaengiger produktionsprozesse und vorrichtung zur durchfuehrung des verfahrens
GB8525497D0 (en) * 1985-10-16 1985-11-20 Scient Applied Research Sar Cloche
FR2621323B1 (fr) 1987-10-02 1990-06-15 Commissariat Energie Atomique Dispositif de production intensive et controlee de micro-organismes par photosynthese
US5104803A (en) 1988-03-03 1992-04-14 Martek Corporation Photobioreactor
JPH0779677B2 (ja) * 1991-10-08 1995-08-30 株式会社荏原製作所 培養装置
JPH07176A (ja) * 1993-06-18 1995-01-06 Ebara Corp 光合成微生物培養装置
JPH07308185A (ja) * 1994-05-17 1995-11-28 Ebara Corp 微生物付着防止方法及びそれを用いた微生物培養装置
JP2977182B2 (ja) * 1995-03-28 1999-11-10 財団法人地球環境産業技術研究機構 発光担体
EP0874043A1 (fr) 1997-04-10 1998-10-28 Preussag AG Procédé d'obtention d'une biomasse par photosynthèse
JP3112439B2 (ja) 1997-09-16 2000-11-27 株式会社スピルリナ研究所 藻の製造方法及びその製造装置
JPH11226351A (ja) 1998-02-12 1999-08-24 Spirulina Kenkyusho:Kk 清浄化空気の製造方法及び空気清浄化装置
DE29819259U1 (de) 1998-10-29 1999-11-25 Csoegoer Zsuzsa Neuartiger Lichteintrag in Photo-(Bio-)Reaktoren
JP2000228973A (ja) * 1999-02-10 2000-08-22 Research Institute Of Innovative Technology For The Earth 藻類培養装置
JP3480706B2 (ja) 1999-12-24 2003-12-22 財団法人地球環境産業技術研究機構 軽量発光担体
US20070092962A1 (en) 2005-10-20 2007-04-26 Saudi Arabian Oil Company Carbon Neutralization System (CNS) for CO2 sequestering
US8110395B2 (en) 2006-07-10 2012-02-07 Algae Systems, LLC Photobioreactor systems and methods for treating CO2-enriched gas and producing biomass
RU2009116621A (ru) 2006-10-02 2010-11-10 ГЛОБАЛ РИСЕРЧ ТЕКНОЛОДЖИЗ, ЭлЭлСи (US) Способ и аппарат для извлечения диоксида углерода из воздуха
US7662616B2 (en) 2006-10-13 2010-02-16 General Atomics Photosynthetic oil production with high carbon dioxide utilization
US7682821B2 (en) 2006-11-02 2010-03-23 Algenol Biofuels Switzerland GmbH Closed photobioreactor system for continued daily in situ production, separation, collection, and removal of ethanol from genetically enhanced photosynthetic organisms
WO2008060571A2 (fr) 2006-11-13 2008-05-22 Aurora Biofuels, Inc. Procédés et compositions pour produire et purifier un biocarburant à partir de végétaux et de micro-algues
WO2009018498A2 (fr) * 2007-08-01 2009-02-05 Bionavitas, Inc. Systèmes, dispositifs d'éclairage et procédés de production de biomasse
DE202007013406U1 (de) 2007-09-25 2007-11-22 Lehr, Florian, Dipl.-Ing. Beleuchtungseinrichtung für Bioreaktoren
DE102007000815A1 (de) * 2007-10-04 2009-04-09 Wacker Chemie Ag Freiluftphotobioreaktor
JP2010004868A (ja) * 2008-05-30 2010-01-14 Ccs Inc 水生光合成生物培養装置
US8183032B2 (en) * 2008-08-28 2012-05-22 Innovative American Technology Inc. Semi-closed loop alga-diesel fuel photobioreactor using waste water
US20110107664A1 (en) * 2009-11-10 2011-05-12 Biovantage Resources, Inc. Nutrient System and Methods

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6278827B1 (en) * 1998-04-20 2001-08-21 Bridgestone Corporation Light transmission tubes

Also Published As

Publication number Publication date
EA201391620A1 (ru) 2014-04-30
FR2974814A1 (fr) 2012-11-09
AR086276A1 (es) 2013-12-04
KR20140042812A (ko) 2014-04-07
JP2014512832A (ja) 2014-05-29
US20170101611A1 (en) 2017-04-13
CA2834929A1 (fr) 2012-11-15
HK1191668A1 (zh) 2014-08-01
CN103517978A (zh) 2014-01-15
FR2974814B1 (fr) 2017-06-02
AU2012252597B2 (en) 2016-11-10
JP5961251B2 (ja) 2016-08-02
IL229263A0 (en) 2014-01-30
US20140073035A1 (en) 2014-03-13
BR112013028481A2 (pt) 2016-09-20
CN103517978B (zh) 2015-12-09
WO2012152637A1 (fr) 2012-11-15
TW201249984A (en) 2012-12-16
TWI553119B (zh) 2016-10-11
AU2012252597A1 (en) 2013-12-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2012152637A1 (fr) Photobioreacteur en milieu ferme pour la culture de micro-organismes photosynthetiques
EP2521767B1 (fr) Photobioreacteur en milieu ferme pour la culture de micro-organismes photosynthetiques
FR2944291A1 (fr) Photobioreacteur en milieu ferme pour la culture de micro-organismes photosynthetiques
EP1121414B1 (fr) Procede pour ameliorer le rendement d'un photobioreacteur
US20130045531A1 (en) Immersible Bioreactor Illumination System
WO2021160776A1 (fr) Reacteur a dispositif d'eclairage optimise
WO2010086310A2 (fr) Procede et dispositif pour la culture d'algues
CA2907823A1 (fr) Reacteur a eclairage integre
WO2010142870A2 (fr) Photobioreacteur, notamment pour la croissance et le developpement de microorganismes photosynthetiques et heterotrophes
EP2643448B1 (fr) Photobioréacteur solaire à dilution contrôlée du flux en volume
Xu et al. Micro-cone arrays enhance outcoupling efficiency in horticulture luminescent solar concentrators
CA2968177A1 (fr) Element injecteur de lumiere
JPH089809A (ja) 集光プラグ及びそれを用いた藻類培養装置
OA20824A (fr) Réacteur à dispositif d'éclairage optimisé.
WO2024133896A1 (fr) Reacteur a diodes electroluminescentes organiques
FR3014113A1 (fr) Systeme de culture de micro-organismes photosynthetiques a rendement ameliore
WO2024156966A1 (fr) Reacteur a diodes lumineuses
CA2965766A1 (fr) Element injecteur de lumiere a energie repartie

Legal Events

Date Code Title Description
PUAI Public reference made under article 153(3) epc to a published international application that has entered the european phase

Free format text: ORIGINAL CODE: 0009012

17P Request for examination filed

Effective date: 20131108

AK Designated contracting states

Kind code of ref document: A1

Designated state(s): AL AT BE BG CH CY CZ DE DK EE ES FI FR GB GR HR HU IE IS IT LI LT LU LV MC MK MT NL NO PL PT RO RS SE SI SK SM TR

DAX Request for extension of the european patent (deleted)
17Q First examination report despatched

Effective date: 20160906

STAA Information on the status of an ep patent application or granted ep patent

Free format text: STATUS: THE APPLICATION IS DEEMED TO BE WITHDRAWN

18D Application deemed to be withdrawn

Effective date: 20190618