EP0847528A1 - Nanoparticules magnetiques couplees a de l'annexine et leur utilisation - Google Patents

Nanoparticules magnetiques couplees a de l'annexine et leur utilisation

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EP0847528A1
EP0847528A1 EP96922967A EP96922967A EP0847528A1 EP 0847528 A1 EP0847528 A1 EP 0847528A1 EP 96922967 A EP96922967 A EP 96922967A EP 96922967 A EP96922967 A EP 96922967A EP 0847528 A1 EP0847528 A1 EP 0847528A1
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EP
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effector
ffsh
annexin
particles
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Withdrawn
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EP96922967A
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Avraham Halbreich
Domagoj Sabolovic
Claude Sestier
Danielle Geldwerth
Jean-Noel Pons
Jacky Roger
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Universite Pierre et Marie Curie Paris 6
Original Assignee
Universite Pierre et Marie Curie Paris 6
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    • Y10T428/2991—Coated

Definitions

  • Anx FF particles of the invention can be used in the manufacture of a medicament intended to treat the immune deficiencies induced by viruses or parasites.
  • Figure 4 Retention rate of erythrocytes by Anx FF as a function of the number of cells used in the test.

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Abstract

L'invention concerne un procédé pour l'obtention de particules magnétiques formant des ferrofluides substitués par l'ADMS (FFSH), lesdits ferrofluides étant susceptibles d'être couplés directement ou indirectement par liaison covalente à un effecteur, ledit procédé étant caractérisé en ce qu'il comprend les étapes additionnelles suivantes: a) les FFSS sont centrifugés avant peptidisation, en milieu basique, du floculat formé lors de l'addition d'ADMS; b) les FFSS sont ensuite réduits par addition de dithiothréitol (DTT) à pH basique pour former un mélange FFSH; c) l'excès de DTT est éliminé après floculation du FFSH à pH2, les FFSH retenus par un aimant étant ensuite lavés et resuspendus dans un tampon PBS.

Description

NANOPARTICULES MAGNETIQUES COUPLEES A DE L'ANNEXINE ET LEUR UTILISATION.
La présente invention est relative à un nouveau moyen permettant de différencier et/ou séparer des éléments d'un mélange complexe, notamment des cellules, plus particulièrement encore des globules rouges, et présentant à leur surface un récepteur spécifique d'un effecteur couplé à des particules magnétiques. La complexation en surface des particules par l'acide dimercaptosuccinique (ADMS) de formule HOOC-CHSH-CHSH- COOH permet l'obtention d'un ferrofluide stable en milieu aqueux. L'invention porte également sur un perfectionnement du procédé de préparation de ces ferrofluides traités par l'ADMS, rendant ces derniers susceptibles d'être utilisés dans un procédé de différenciation ou de séparation de cellules ou de molécules. Dans ce qui suit, le terme « effecteur », ou « ligand » signifie toute molécule ou macromolécule libre ou liée à une structure qui le contient ou qui le porte, et capable de former un complexe d'affinité avec une autre molécule ou macromolécule, directement ou indirectement.
Dans ce qui suit également, les numéros entre parenthèse renvoient aux références bibliographiques en fin de description.
Les applications biomédicales des solutions colloïdales de particules magnétiques, ou ferrofluides, se sont développées essentiellement dans trois directions :
- l'imagerie (IRM) en tant qu'agents de contraste (1 , 2, 3), - la séparation magnétique de cellules, organites ou molécules biologiques variées (4, 5, 6, 7, 8, 9)
- la destruction de cellules cibles par création d'une hyperthermie locale sous champ magnétique puisé (10).
Les particules magnétiques les plus utilisées sont les ferrites MFe2O4 (dont la magnétite Fe3O4 )et la maghémite γ Fe2O3. Pour obtenir des solutions colloïdales stables en milieu physiologique, il est nécessaire de conditionner la surface des particules. Le plus souvent, les particules sont enrobées de macromolécules telles que des carbohydrates comme le dextran (10, 12, 1), des protéines comme l'albumine (5,8) ou des polymères de synthèse comme les méthacrylates et les organosilanes (7, 9, 13). Cependant, comme l'indique Groman, le recouvrement des particules par des macromolécules de grande masse moléculaire ne permet pas l'obtention de sols stables à long terme. Les macromolécules se séparent des particules qui s'aggrègent alors progressivement. D'autres modes de conditionnement de la surface des particules ont été proposés tels que l'utilisation de molécules de faible masse moléculaire contenant des groupements complexants tels que des phosphates, phosponates et carboxylates (2). Tout particulièrement, les acides polycarboxyliques hydroxyles tels que les acides citriques et tartriques et les acides polycarboxyliques possédant des groupements thiols comme l'acide dimercaptosuccinique (ADMS), se complexent avec les atomes superficiels de fer (III) (14). Chacune de ces molécules complexantes est liée à un ou plusieurs sites superficiels des particules. Les sols aqueux ainsi obtenus sont très stables dans des conditions physiologiques.
Dans beaucoup d'applications biomédicales des particules magnétiques, il est nécessaire de coupler ces dernières à une protéine spécifique. Ainsi, dans le cas du tri cellulaire sous champ magnétique, les particules doivent pouvoir se lier spécifiquement aux cellules cibles. Cette reconnaissance est souvent assurée par la formation d'un complexe antigène-anticorps entre un antigène de surface de ia cellule cible et un anticorps lié aux particules. La protéine peut être soit adsorbee directement à la surface des particules (4) soit liée par covalence (5,7, 13). L'utilisation de composés intermédiaires bifonctionnels tels que le N- Succinimidyl 3-(2-pyhdyldithio)-propionate (SPDP) (8, 14) permet de lier fortement un anticorps à une particule par une liaison peptidique et un pont disulfure, sans altération de la protéine ni de ses propriétés antigéniques (15). Le brevet français n° 2 662 539 (14) décrivait un procédé d'obtention de supports magnétiques finement divisés par modification contrôlée de particules chargées de ferrofluide précurseur, comprenant une étape de traitement avec un agent capable de modifier la nature de la surface desdites particules, et de manière à les rendre stables dans des solvants polaires ou non polaires, dans des gammes de pH étendues et à leur conférer une réactivité chimique ou biologique. Un exemple d'une telle modification est un ferrofluide à base d'ADMS permettant de rendre disponibles et réactifs à la surface de ces dits ferrofluides substitués des groupes thiols ; cependant dans les conditions de pH et de force ionique habituelles, ces groupes thiols ont tendance à s'oxyder et à former des ponts disulfures rendant ces ferrofluides mal adaptés à une utilisation comme constituants d'un effecteur magnétique.
Une utilisation, notamment pour différencier et/ou séparer des cellules présentant à leur surface un récepteur d'un ligand signal d'une propriété ou d'un état physiologique particulier, rendait nécessaire le perfectionnement des ferrofluides du brevet 2 662 539 (14) de telle façon que des ponts disulfure ne limitent pas le couplage ; Un tel perfectionnement permettant alors de produire des complexes ferrofluides ADMS couplés de façon covalente aux dits effecteurs puis de les utiliser comme moyen de différenciation et de séparation des complexes ou cellules portant le cas échéant le récepteur dudit effecteur.
Les couples d'affinités effecteurs/récepteurs sont multiples et l'invention telle que décrite ci-dessous pourra être par l'homme du métier aisément appliquée aux couples de récepteurs qui l'intéresseront, mais également aux autres paires d'affinité tels les couples anticorps/antigènes, lectines/polysaccharides, biotine/avidine, acides nucléiques (brins + et -), etc...à partir du moment où l'effecteur peut être couplé aux particules par l'intermédiaire d'un réactif bifonctionnel comportant ou non des résidus thiols dont l'une des fonctions permet la liaison à l'effecteur et dont l'autre fonction est capable de former des liaisons S-S, C-S, C-C ou C-N avec l'ADMS.
Une application particulière de l'utilisation du ferrofluide couplé à un effecteur est l'utilisation comme effecteur d'une annexine, comme l'annexine V, qui présente une affinité particulière, en présence d'ions calcium, pour les phospholipides anioniques, comme la phosphatidylserine (PS) et dans, une moindre mesure, la phosphatidylethanolamine (PE). Ces composés des membranes plasmiques sont essentiellement localisés dans le feuillet interne des membranes contrairement à d'autres composés type phosphatidyl choline et sphingomyeline qui sont au contraire majoritairement localisés dans le feuillet externe des membranes plasmiques. Les membranes cellulaires présentent une asymétrie telle que quand la membrane est saine, les phosphatidyl serines et une partie des phosphatidylethalnolamines résidant sur le feuillet interne sont inaccessibles alors que quand les membranes sont perturbées, il y a une une localisation aléatoire de ces mêmes phospholipides. Par voie de conséquence ceux qui sont localisés dans le feuillet interne des membranes deviennent accessibles sur les cellules entières et en particulier la phosphatidyl serine devient accessible à un couplage par une annexine comme l'annexine V ou attaquable par une phospholipase extérieure. Cette perturbation peut être due à une inflammation, à une apoptose (16), à des réactions autoimmunes (17), à une anémie falciforme (18, 19) , ou à un état pathologique ou infectieux de l'individu (19, 22), ou simplement à un vieillissement excessif des cellules et notamment des cellules sanguines pendant leur conservation in vitro (23). On croit que la présence de phosphatidylserine dans le feuillet externe de la membrane plasmatique constitue un signal pour l'élimination de la cellule par le système immunitaire (24, 25).
La demande de brevet WO 91/09628 est relative à l'utilisation de polypeptides anticoagulants de la famille des annexines munis d'un marqueur et ces annexines ou VAC (vascular anticoagulant protein) marquées sont utilisées comme moyen de différencier les phosphatidyl serines des phosphatidyl cholines et de diagnostiquer ainsi un état préthrombotique par la présence d'un couplage de l'annexine aux cellules présentant un phosphatidyl serine de manière accessible. Les annexines sont un groupe de protéines homologues, de 35 à 45 k daltons, qui sont trouvées dans tous les mammifères à différents stades de développement ainsi que dans d'autres vertébrés tels les arthropodes, les slime moulds (26), les levures, les éponges, les champignons, protozoaires, plantes et bactéries (27, 28). Toutes les cellules de mammifères, hormis les erythrocytes, produisent un annexine comme l'annexine V. La structure des annexines et leurs propriétés sont décrites dans des revues (28, 29). Ces protéines ont été séquencées et certaines d'entre elles sont disponibles comme protéines recombinantes (27). Comme exposé plus haut, les membranes cellulaires qui ont été endommagées par un quelconque mécanisme présentent une capacité accrue à lier les annexines ; cela peut être observé par exemple en comparant des erythrocytes frais aux erythrocytes qui ont subi un temps de stockage relativement long. Dans ia mesure où cette augmentation de capacité de liaison à l'annexine est le reflet d'une anomalie, la mesure de la capacité de couplage à l'annexine par les erythrocytes s'avère être un outil important pour le contrôle de qualité du sang à utiliser dans les transfusions sanguines.
La sélection du sang pour la transfusion est faite essentiellement par trois critères : la compatibilité immunologique du donneur et du receveur, l'absence de contamination virale ou parasitaire et l'absence de pathologie chez le donneur. Des tests adéquats ont été développés pour vérifier les groupes sanguins et les contaminations virales ou parasitaires éventuelles ; l'état sanitaire du donneur est évalué par simple interrogatoire. Il est intéressant cependant de noter que rien n'existe pour contrôler la dégradation du sang pendant sa conservation sachant que des sangs individuels peuvent vieillir à des vitesses différentes. Un autre problème potentiel qui peut se poser dans la sélection du sang transfusionnel est celui de son contrôle quand nombre de virus ou d'agents pathogènes sont encore inconnus et donc indétectables.
Un moyen, tel que proposé dans la présente invention, qui a l'avantage d'être simple d'utilisation, permet de discriminer les cellules susceptibles de se coupler aux annexines, en particulier à l'annexine V, en présence de calcium et présentant un état membranaire perturbé, des cellules normales du mélange et d'en déterminer leur importance.
La présente invention est un procédé perfectionné pour l'obtention de particules magnétiques complexées par l'ADMS, formant des ferrofluides apppelés FFSH, lesdits ferrofluides étant susceptibles d'être couplés directement ou indirectement par liaisons covalentes à un effecteur permettant de former des complexes covalents FFSH-effecteurs, ledit procédé comprenant les étapes additionnelles suivantes par rapport au procédé décrit dans le brevet français 2 662 539 : a) les FFSS, qui sont constitués de particules associées aux produits d'oxydation de l'ADMS, sont centrifugés avant peptidisation du floculat formé lors de l'addition du ligand, b) les FFSS sont ensuite réduits par addition de dithiothreitol (DTT), qui coupe les ponts disulfure et régénère l'ADMS, à pH basique, pour former
FFSH , c) l'excès de DTT est éliminé par floculation des FFSH à pH 2, les FFSH retenus sur un aimant étant ensuite lavés et resuspendus dans un tampon neutre, par exemple un tampon PBS. L'invention porte également sur le procédé pour l'obtention des particules magnétiques substituées à l'ADMS (FFD) couplées de façon covalente à un effecteur et qui comprend les étapes suivantes : a) Obtention d'effecteurs présentant des groupements thiols accessibles : Pour que l'effecteur puisse former des liaisons covalentes avec les groupements thiols des FFSS ou des FFSH, il doit lui-même comporter des groupements thiols. Soit ia macromolécule elle-même comporte ces dits résidus, soit ils sont générés de façon covalente par couplage à un réactif bifonctionnel, lequel réactif doit lui-même posséder ces résidus aptes à réagir avec les groupements SH de l'ADMS et une deuxième fonction réactive apte à former des liaisons covalentes avec l'effecteur lui-même. Un réactif bifonctionnel qui pourrait être utilisé dans ce cadre est SPDP, qui outre une liaison avec un groupement thiol est capable de former une liaison avec des aminés primaires ; mais on peut citer également le N- Succinimidyl S-Acétylthioacétate (SATA), le succinimidyl bromo acétate ou le carboxydiimide, les maléimides, et les dérivés chlorés des alkyl ou aryl sulfonyl (tresyl, tosyl, etc.). Le réactif bifonctionnel, par exemple le SPDP est ajouté à l'effecteur dans un solvant anhydre (par exemple le 1 -méthyl 2-pyrrolidone) et incubé pendant 2 heures à température ambiante. L'excès de SPDP est éliminé par filtration sur gel ou par dialyse, b) Couplage de l'effecteur à FFSH : L'effecteur présentant des groupements pouvant agir avec des thiols soit directement soit indirectement par couplage avec le réactif bifonctionnel dans les conditions décrites ci-dessus est incubé en présence de ferrofluides traités par l'ADMS et réduit par le DTT (FFSH) selon le procédé décrit plus haut, formant ainsi un complexe covalent effecteur- FFSH ; par complexe covalent on entend que la covalence réside dans la liaison au niveau des groupes thiols, par formation de ponts S-S entre les résidus SH de l'ADMS et les résidus SH ou ester sulfonique de l'effecteur natif ou substitué par le réactif bifonctionnel ; il peut arriver que des groupements thiols ou autres des FFSH n'aient pas réagi dans les étapes précédentes, et le cas échéant ces groupements sont masqués par un traitement à saturation par de la sérum albumine qui les rend, après formation du complexe effecteur-FFSH (ou ceux liant l'effecteur aux particules à travers un autre agent bifonctionnel) inaptes à réagir avec un autre réactif. Les complexes covalents obtenus effecteurs-FFSH (ou ceux liant l'effecteur aux particules à travers un autre agent bifonctionnel) sont ainsi capables de former des complexes d'affinités avec des récepteurs ou des moitiés de paires d'affinités susceptibles de se coupler à l'effecteur, et la propriété magnétique de ces complexes peut être utilisée pour discriminer, mesurer et/ou séparer les effecteurs-FFSH ayant réagi, de ceux n'ayant pas réagi.
Une telle séparation est particulièrement intéressante lorsque l'on souhaite séparer des catégories de cellules qui diffèrent par la nature d'un récepteur à la surface de ces dernières ; en effet les méthodes de séparation existantes sont souvent traumatisantes pour les cellules et les séparations que l'on peut appliquer aux macromolecules, notamment les chromatographies d'affinités, sont peu pratiques pour les séparations de cellules. L'homme du métier sait dans quel cas il est particulièrement intéressant de séparer une catégorie particulière de cellules dans un mélange complexe ; on peut citer à titre d'exemples les plus illustratifs les cellules souches de la moelle osseuse pour traiter ex vivo et les réinjecter à des patients pour les traiter par thérapie génique, ou encore certaines catégories de lymphocytes, récolter les plaquettes n'ayant pas été activées, et de façon plus générale toutes cellules que l'on souhaite séparer ou éliminer par exemple suite à une infection virale pour réinjecter ensuite le « pool » cellulaire de manière homologue ou autologue à des individus.
Dans cet esprit, il existe une catégorie de cellules qu'il est extrêmement difficile de discriminer : ce sont les erythrocytes ou globules rouges qui proviennent d'individus malades ou infectés ou encore qui se sont dégradés suite à un temps de conservation in vitro trop important. Le contrôle de qualité des globules rouges, ou des concentrés globulaires reste aujourd'hui un problème majeur de ia thérapeutique transfusionnelle, un doute subsistant toujours quant à la qualité sanitaire des globules rouges qui sont injectés aux patients dans la mesure où une infection trop récente n'est pas détectable par les moyens de diagnostics classiques, que l'on est incapable de détecter des infections par des pathogènes inconnus, et que l'on ne peut se permettre de prolonger le stockage des poches de sang sous peine de détériorer un certain nombre de cellules sanguines.
Il a été dit plus haut que les membranes cellulaires et notamment les membranes cellulaires des globules rouges sont endommagées ou perturbées suite à différentes pathologies ou à leur vieillissement, voire l'interruption de la chaîne du froid, une telle perturbation conférant aux cellules une capacité de liaison aux annexines.
L'invention porte également sur un procédé pour l'obtention des particules magnétiques formant des ferrofluides, complexés par l'ADMS de façon à pouvoir être couplés à une annexine. Des groupements thiols peuvent être générés par couplage covalent des annexines au SPDP. Dans le procédé de l'invention et pour former des complexes FFSH- annexines, appelés AnxFF, le rapport entre les FFDTT et l'aπnexine-SPDP est compris entre 30 et 120μg et de préférence entre 30 et 60 μg pour 1 ml de FFSH.
L'invention porte également sur des particules de ferrofluides complexées par l'ADMS et traitées par le DTT par un procédé tel que décrit plus haut, ainsi que sur des particules de ferrofluides couplées de façon covalente par l'intermédiaire de ponts disulfures entre l'ADMS et les effecteurs, lesquels complexes sont obtenus par le procédé décrit ci- dessus. Un mode de réalisation préféré de ces complexes sont des particules de ferrofluides couplées à une annexine.
Dans ce qui précède et ce qui suit, nous parlerons indifféremment de particules effecteur-FF, effecteur-FFSH, de complexes FF ou FFD- effecteur et quand l'effecteur est une annexine ou un peptide actif dérivé de l'annexine comme par exemple le peptide N-acétyl-lipocortine i dérivé de l'annexine I (30), d'Anx FF; et dans tous les cas ils sont complexés par l'ADMS puis traités par le DTT selon le perfectionnement de l'invention et couplés par un agent bifonctionnel. La présente invention porte également sur l'utilisation des complexes effecteurs-FFSH obtenus par le procédé décrit ci-dessus, à ia différenciation et/ou à la séparation des composés portant un récepteur du dit effecteur de ceux ne portant pas ledit récepteur. Le récepteur ici est entendu comme une molécule ou une macromoiécule pouvant former un complexe d'affinité avec l'effecteur, que cette molécule ou macromolécule soit libre dans un milieu ou intégrée dans une structure complexe par exemple une membrane.
Dans une utilisation préférée selon l'invention, le ligand est une annexine, et le récepteur du ligand est la phosphatidyl serine (PS) ou la phosphatidyiéthanolamine (PE), phospholipides susceptibles, en présence de Ca2+, de se lier au complexe Anx FF après perturbation des structures membranaires ; dans ce cas l'utilisation selon l'invention permet de différencier et/ou de séparer les cellules présentant un état anormal - et donc capable de se lier au Anx FF en présence d'ions calcium- des cellules saines incapables de lier ces particules.
Dans l'utilisation de l'invention, les particules des Anx FF ont une taille comprise entre 3 et 30 nm et de préférence entre 5 et 15 nm.
Comme il a été dit plus haut, le contrôle des erythrocytes avant une transfusion sanguine ou une injection d'un culot globulaire continue de poser un problème de sécurité sanitaire desdites cellules. Une utilisation des particules selon l'invention permet de pallier la carence qui existait jusqu'alors : sur un sang total ou sur un concentré globulaire, il est possible aujourd'hui d'envisager de détecter la présence d'érythrocytes présentant un état physiologique anormal dû à un vieillissement excessif ou étant le reflet d'un état pathologique de l'homme et, selon ce que l'on souhaite, séparer ces cellules anormales des cellules saines ou simplement contrôler un prélèvement avant une éventuelle transfusion ; les particules de l'invention peuvent enfin être utilisées dans un processus d'identification d'un éventuel état pathologique, comme étape préliminaire avant une identification plus poussée par d'autres moyens connus de l'homme du métier ; il peut s'agir par exemple de la présence d'une réaction inflammatoire, de réactions auto-immunes ou d'une perturbation dans la cascade de la coagulation. Les complexes annexines-ferrofluides (Anx FF) peuvent également être utilisés pour un contrôle de qualité des lymphocytes et des plaquettes avant une utilisation de ces cellules à des fins thérapeutiques par exemple.
Des observations récentes (22) ont montré que l'oxyde nitrique synthétase est inhibée par les phosphatidyl serines sécrétées ou exposées à ia surface des cellules ; dans ce contexte, les particules Anx FF de l'invention peuvent être utilisées à la fabrication d'un médicament destiné à traiter les déficiences immunitaires induites par les virus ou les parasites.
L'invention porte également sur une méthode pour différencier et/ou séparer des cellules présentant un état physiologique ou pathologique anormal et se manifestant par la présence d'un récepteur à l'annexine, notamment la phosphatidyl serine, à leur surface, ladite méthode comprenant : a) un couplage des particules Anx FF obtenu par un procédé décrit ci- dessus et explicité dans les exemples ci-après, aux cellules en présence d'ions calcium ; b) la séparation des cellules couplées aux Anx FF des cellules non couplées par l'utilisation d'un champ magnétique, c) le comptage ou l'évaluation des cellules s'étant couplées aux Anx FF, d) l'évaluation de la proportion des cellules saines étant réalisée par la mesure du rapport entre les cellules n'ayant pas réagi avec les Anx FF au nombre total de cellules.
Cette méthode de l'invention est appliquée de façon préférée aux erythrocytes ; dans cette méthode, les ions calcium sont apportés par le CaCI∑ à une concentration comprise entre 0,5 et 5 mM.
Le coeur de ce dispositif de différenciation et/ou de séparation est la propriété magnétique des particules Anx FF ; l'invention porte également sur un dispositif permettant cette différenciation et/ou cette séparation qui utiliserait cette propriété ; le dispositif selon l'invention comprend au moins : a) un électroaimant, b) une pompe, c) un moyen d'amener l'échantillon, d) un moyen d'amener le tampon contenant les ions Ca**, e) un moyen d'amener le tampon de lavage, f) des valves permettant de contrôler les passages des différents fluides cités en c), d) et e). Les exemples ci-dessous ainsi que les différentes figures illustrent l'invention sans pour autant lui conférer aucun caractère limitatif. Légende des figures
Figure 1 : dispositif automatique de triage des globules rouges ou une autre cible retenue par Anx FF. Figure 2 : influence des cations Ca2* sur le couplage de l'Anx FF avec les erythrocytes.
Figure 3 : Evolution du couplage des erythrocytes avec Anx FF au cours du stockage in vitro.
Figure 4 : Taux de rétention des erythrocytes par Anx FF en fonction du nombre de cellules utilisées dans le test.
Figure 5 : Taux de rétention des érytrhocytes en fonction de la quantité d'Anx FF utilisée dans le test.
Exemple 1 : préparation des ferrofluides ADMS (FFSH)
Le ferrofluide de départ est un ferrofluide nitrique synthétisé selon ia méthode du brevet Français 2 662 539. Il est consitué de nanoparticules de maghémite γFe203 d'un diamètre compris entre 3 et 30 nm (diamètre moyen : 9nm) chargées positivement en surface en milieu acide (pH <6) ou négativement en milieu basique (pH >10).
L'obtention d'un sol stable vers pH 7-8 pour réaliser un couplage en phase liquide homogène dans des conditions non dénaturantes pour les protéines (ici l'annexine) ou autres molécules biologiques se fait par complexation des fer de surface par l'ADMS. Les groupements thiols libres permettent la formation de liaison S-S avec le SPDP préalablement fixé à la protéine par liaison peptidique.
1ère étape : 5cm3 de ferrofluide nitrique ([Fe] = 1 mol.l'1) sont ajoutés à 250 cm3 d'une solution d'ADMS 10'3 mol.l"1 dans l'eau distillée dégazée. Le rapport [ADMS] /[Fe] est de 0,05. Il y a floculation et après 30 minutes le pH est voisin de 4,5.
2ème étape : l'excès d'ADMS est éliminé par centrifugation : 10 minutes à 3000 t/mn. 3ème étape : le floculat est peptisé par une solution de soude 0,1 mol.l'1 jusqu'à pH 11. Il se forme un sol stable entre pH 3 et 11. Le volume est ajusté à 50 cm3 et le pH à 7 par une solution diluée de HCl. Ce ferrofluide- ADMS ([Fe] = 10"1 mol.l"1) est stable dans le temps et sert de solution mère pour ses applications ultérieures. 4ème étape : Avant couplage à la protéine-SPDP, 1 cm3 du ferrofluide précédent est additionné de 1cm3 d'une solution aqueuse de DTT à 10'2 mol.l'1 vers pH9. On laisse incuber 1 heure, puis le mélange est floculé par addition de HCl 0, 1 mol.l'1 jusqu'à pH=2. Après centrifugation 10 minutes à 5000 t/mn le floculat est peptisé par une solution de PBS (0,1 mol.l*1) et le pH est ajusté à 7,4. Cette séquence précipitation-peptisation est recommencée deux fois pour éliminer totalement l'excès de DTT et l'ADMS éventuellement libéré lors de ia coupure des ponts disulfure. Lors de ia dernière peptisation le volume de PBS est adapté à la concentration désirée pour le ferrofluide avant son couplage par incubation directe avec la protéine-SPDP.
Exemple 2 : préparation du complexe ferrofluide-annexine 1 ) Le ferrofluide est traité à l'acide dimercaptosuccinique (ADMS) et réduit par le dithiothreitol à pH 9.2 et à température ordinaire (FFSH). Après floculation de FFSH à pH2 et centrifugation, le surnageant, contenant l'excès de DTT est éliminé, le floculat retenu par un aimant est lavé puis dispersé dans un tampon phosphate (PBS). Les groupements thiol du FFSH sont dosés par le réactif d'Ellman (acide 5,5'-dithio-bis(2- nitrobenzoïque) (31), avec des modifications mineures pour éliminer l'interférence des particules de ferrofluides dans la lecture au spectrophotomètre. 2) On fait réagir une annexine, ici l'annexine recombinante V, avec du SPDP en milieu PBS, le SPDP étant en excès par rapport à l'annexine (2,5 moles de SPDP par mole d'annexine). Le SPDP est dissous dans un solvant anhydre, 1-methyl-2-pyrrolidone, puis ajouté à l'annexine en milieu acqueux; On laisse le mélange incuber à la température ambiante. L'annexine-SPDP est obtenue, et le SPDP en excès est hydrolyse spontanément.
3) Différentes quantités d'annexine SPDP sont incubées avec les FFSH pendant 2 heures à température ambiante, le rapport optimal entre les deux composants étant déterminé expérimentalement par exemple par la mesure du changement de la mobilité electrophoretique des particules en solution en utilisant l'effet Doppler. Dans ce cas la mobilité electrophoretique du complexe Anx FF est comparée à celle des FFSH ; une autre méthode est la détermination de l'activité enzymatique ou d'une autre propriété fonctionnelle de l'effecteur, telle que son affinité pour un anticorps, ou la capacité de former un complexe d'affinité avec des anticorps d'un complexe peroxydase/protéine A immobilisé sur les particules, et la détermination de l'activité peroxydase. Une activité optimale est obtenue par la fixation de 1,5 à 2 μg d'annexine sur 1 ml de FFSH comme l'a montré l'utilisation des méthodes précitées. 4) L'ADMS qui n'a pas réagi avec l'effecteur ainsi que d'autres sites potentiellement réactifs sur les particules de ferrofluides sont masqués par saturation avec 1 % de BSA (pour bovine sérum albumine) dans 50 mM de tampon NaHC03 et pH 9.6 pour donner les Anx FF. Dans certains cas d'autres protéines telle la sérum albumine humaine peuvent être plus appropriées. Une attention particulière est apportée afin d'éviter une floculation résultant d'un excès de saturation. Exemple 3 : couplage des Anx FF aux cellules Un mode de réalisation du couplage de Anx FF aux erythrocytes est de mélanger :
- 30μl d'une suspension d'érythrocytes à 30%, - 30μl d'Anx FF,
- 6 μl de CaCI2 à 125 mM,
- 7,5 μi de BSA à 4%,
- 256 μl de tampon.
Le mélange réactionnel est incubé pendant 30mn à 37C° puis dilué avec 6ml de tampon TRIS additionné de BSA à 0,1% et de 5mM de DTT.
Exemple 4 : Séparation des cellules retenues par Anx FF des cellules non retenues Cette séparation est réalisée par un appareil automatique dont un exemple donné dans la figure 1 est le suivant : un tube en tygon est placé dans un champ magnétique et connecté à différents réservoirs via des électrovannes. Le champ électromagnétique est activé et le mélange réactionnel décrit dans l'exemple 3 ci-dessus est, après une incubation à 37°C, introduit dans le tube par l'activation de la vanne appropriée et traverse le champ magnétique avec un débit de 120 ml par heure, et l'effluant est collecté.
Une vanne contrôlant un réservoir de lavage est activée et 15 ml de tampon traversent le tube. Le tampon de lavage est récolté au même niveau que l'effluant constitué de cellules non retenues par les Anx FF.
Les cellules retenues par les Anx FF sont éluées du tube en coupant le champ magnétique et en récoltant les cellules retenues dans 8 ml de tampon. Les cellules retenues et non retenues sont concentrées par une centrifugation à 3000 g pendant 7 mn et à 4°C puis comptées avant tout traitement ultérieur éventuel ou caractérisation. Une quantification des récepteurs à l'annexine dans une population cellulaire peut être faite en utilisant de l'annexine marquée à l'iode 125. Si on se référé à la figure 1, lors de la première étape de lavage avec l'eau physiologique les vannes 1 et 4 sont ouvertes, et les vannes 2, 3, 5 et 6 sont fermées ; la pompe est à son maximum pendant 2 à 10 minutes puis arrêtée. Le tampon est ensuite introduit par le même tube (vannes 2 et 4 ouvertes). L'échantillon du culot est introduit avec un débit de 160 ml/heure, les vannes 3 et 5 étant ouvertes (1, 2 ,4 ,6 fermées). La pompe fonctionne entre 3 et 60 secondes puis arrêtée. La fraction non retenue en présence de tampon CaCI2 est ensuite collectée en faisant passer le tampon à un débit de 160 ml par heure, les vannes 2 et 5 étant ouvertes (1 , 3, 4, 6 fermées). La pompe est actionnée pendant 2 à 10 minutes puis fermée.
La fraction retenue est obtenue après lavage avec l'eau physiologique, les vannes 1 et 6 étant ouvertes (2, 3, 4, 5 fermées), l'électroaimant étant éteint et la pompe actionnée pendant 2 à 10 minutes.
Un dernier lavage avec de l'eau physiologique est effectué en ouvrant les vannes 1 et 4 (2, 3, 5, 6 fermées) pendant 2 à 10 minutes. Résultats comparatifs a) Effets de ions calcium. La figure 2 représente le pourcentage de cellules retenues sur les particules Anx FF en fonction de la présence ou de l'absence de CaCI2. On voit que 44% des cellules sont retenues en présence d'ions calcium alors que 8% seulement sont retenues en absence d'ions calcium. b) Effet de l'âoe des erythrocytes. La figure 3 représente le pourcentage d'érythrocytes liés aux Anx FF en fonction du temps de conservation in vitro des globules rouges. Il est clair que ce pourcentage augmente de façon logarithmique en fonction du temps de stockage indiquant une détérioration croissante des membranes desdits globules rouges. Une semaine de stockage conduit à 22% de couplage, un mois à 30% et trois mois à 42%. Chez la souris un stockage de 24 heures entraîne déjà un couplage de 13% alors que aucune liaison n'est observée avec du sang fraîchement collecté. c) Effet de la concentration en erythrocytes sur la séparation des complexes erythrocytes - Anx FF.
Cet effet est représenté sur la figure 4, qui montre que le résultat obtenu est indépendant de la concentration en globules rouges dans la solution : dans les conditions utilisées, entre 20 et 24% des cellules sont retenues quelle que soit la concentration utilisée. d) Effet des différentes doses de FFSH-annexine sur la rétention des erythrocytes.
La figure 5 représente le pourcentage de globules rouges retenu sur les Anx FF en présence de 20 μl ou 30 μl de FFSH-annexine. On voit que 20 μl d'Anx FF sont suffisants pour obtenir une rétention maximale à partir d'une population érythrocytaire jeune, tandis que 30μl sont nécessaires pour des erythrocytes âgés. f) Relation entre le couplage Anx FF des erythrocytes et l'état physiologioue ou pathologigue de ces même globules rouges. Le tableau ci-dessous indique les résultats obtenus individuellement sur des prélèvements contrôles effectués par l'Agence Française du Sang.
(*) Moyenne
La moyenne de rétention des globules rouges aux Anx FFest de 10,7 plus ou moins 5.9. Les résultats portés dans les quatre dernières colonnes concernent des prélèvements sanguins de sujets s'étant présenté dans des laboratoires d'analyse médicale. Les échantillons nous ont été attribués en préservant l'anonymat des sujets. Seule ia vitesse de sédimentation (VS) nous était connue. Les résultats portés dans la deuxième colonne montrent un taux de rétention moyennement élevée chez des sujets à VS normale dont la pathologie nous est restée inconnue. Les résultats portés dans la cinquième colonne concernent des sujets à VS également normale, mais présentant un taux de rétention nettement plus élevé, pour lesquels la pathologie a pu être identifiée après enquête : un cas de carcinome (le sujet étant sous chimiothérapie), un cas de rhumatisme déformant et un cas de début de rhinopharingite. Les résultats portés dans les troisième et quatrième colonnes concernent des échantillons sanguins à VS élevée de sujets présentant une pathologie connue (troisième colonne) ou inconnue (quatrième colonne). Ces résultats indiquent bien qu'un pourcentage de rétention anormalement élevé au Anx FF est le reflet d'un état physiologique ou pathologique qui doit conduire le transfuseur à rejeter le lot de globules rouges à des fins transfusionnelles.
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Claims

REVENDICATIONS
1. Procédé pour l'obtention de particules magnétiques formant des ferrofluides substitués par l'ADMS (FFSH), lesdits ferrofluides étant susceptibles d'être couplés directement ou indirectement par liaison covalente à un effecteur, ledit procédé étant caractérisé en ce qu'il comprend les étapes additionnelles suivantes : a) les FFSS sont centrifugés avant peptidisation, en milieu basique, du floculat formé lors de l'addition d'ADMS, b) les FFSS sont ensuite réduits par addition de dithiothreitol (DTT) à pH basique pour former un mélange FFSH, c) l'excès de DTT est éliminé après floculation du FFSH à pH2, les FFSH retenus par un aimant étant ensuite lavés et resuspendus dans un tampon
PBS.
2. Procédé pour l'obtention de particules magnétiques formant des ferrofluides, couplées à un effecteur, caractérisé en ce qu'il comprend au moins les étapes suivantes : a) l'effecteur est le cas échéant couplé de façon covalente à un réactif bifonctionnel ayant des fonctions capables, après couplage du réactif à l'effecteur, de former une liaison S-S, C-S, C-C ou C-N. b) l'effecteur présentant des groupements thiols soit directement soit après couplage par un réactif bifonctionnel comme décrit en a) est incubé en présence de ferrofluides traités par l'ADMS et par le DTT (FFSH) selon un procédé selon la revendication 1, formant ainsi un complexe covalent effecteur-FFSH, c) le cas échéant, les groupements des FFSH n'ayant pas réagi dans les étapes précédentes sont masqués par un traitement à saturation par de la Sérum albumine. 53
3. Procédé selon la revendication 2 caractérisé en ce que le ligand est une Annexine.
4. Procédé selon l'une des revendications 2 ou 3 caractérisé en ce que le réactif bifonctionnel est le SPDP.
5. Procédé selon l'une des revendications 2 à 4 caractérisé en ce que le rapport molaire entre les FFSH et l'effecteur lié au réactif bifonctionnel est compris entre 1 et 3.
6. Particules de ferrofluides traitées par l'ADMS et le DTT et réduites par le DTT par un procédé selon ia revendication 1.
7. Particules de ferrofluides couplées à un effecteur obtenu par un procédé selon l'une des revendications 2 à 5.
8. Particules selon la revendication 7 caractérisées en ce que l'effecteur est une annexine.
9. Utilisation des particules selon l'une des revendications 7 ou 8 à la différenciation et/ou à la séparation des composés portant un récepteur de l'effecteur de ceux ne portant pas ledit récepteur.
10. Utilisation selon la revendication 9 caractérisée en ce que l'effecteur est une annexine, de préférence l'annexine V, le récepteur est un phosphoiipide anionique tel la phosphatidylserine (PS), et la différenciation et/ou la séparation concerne les cellules présentant un état anormal, lui-même reflet d'un état pathologique ou physiologique de l'individu porteur desdites cellules capables de se lier aux AnxFF en présence d'ions calcium.
11. Utilisation selon l'une des revendications 9 ou 10 caractérisée en ce que les particules de l'Anx FF ont un diamètre compris entre 3 et 30 mn.
12. Utilisation selon l'une des revendications 9 à 11 caractérisée en ce que les cellules sont des erythrocytes et que la différenciation permet : a) de détecter la présence d'érythrocytes présentant un état physiologique anormal et/ou de les séparer, et/ou b) de contrôler l'état sanitaire d'un concentré globulaire avant transfusion, et/ou c) d'identifier un éventuel processus pathologique.
13. Méthode pour différencier et/ou séparer des cellules présentant un état physiologique ou pathologique anormal et se manifestant par la présence d'un récepteur à l'annexine, notamment ia phosphatidyl serine (PS) à leur surface, caractérisé en ce qu'elle comprend : a) une complexation des particules de ferrofluides à une annexine par un procédé selon l'une des revendications 2 à 6 aux cellules en présence d'ions calcium, b) ia séparation des cellules couplées aux Anx FF des cellules non couplées par un champ magnétique, c) le comptage des cellules ayant lié les Anx FF, d) l'évaluation de la proportion des cellules saines étant réalisée par la mesure du rapport entre les cellules n'ayant pas réagi avec l'Anx FF au nombre total des cellules.
14. Méthode selon la revendication 13 caractérisée en ce que les cellules sont des erythrocytes.
15. Méthode selon la revendication 13 ou 14 caractérisée en ce que les ions calcium sont apportés par le CaCI2 à une concentration comprise entre 0,5 et 5 mM.
16. Dispositif permettant ia différenciation et/ou la séparation des composés portant un récepteur du ligand couplé aux FFSH caractérisé en ce qu'il comprend au moins : a) un électroaimant, b) une pompe, c) un moyen d'amener l'échantillon, d) un moyen d'amener le tampon contenant ies ions calcium, e) un moyen d'amener les tampons de lavage, f) des valves permettant de contrôler les passages de fluides.
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