EA043501B1 - ЛЕКАРСТВЕННОЕ СРЕДСТВО, ОБЛАДАЮЩЕЕ ПРОТИВОВИРУСНЫМ ЭФФЕКТОМ ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ ЗАРАЖЕНИЯ SARS-CoV-2 - Google Patents

ЛЕКАРСТВЕННОЕ СРЕДСТВО, ОБЛАДАЮЩЕЕ ПРОТИВОВИРУСНЫМ ЭФФЕКТОМ ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ ЗАРАЖЕНИЯ SARS-CoV-2 Download PDF

Info

Publication number
EA043501B1
EA043501B1 EA202293069 EA043501B1 EA 043501 B1 EA043501 B1 EA 043501B1 EA 202293069 EA202293069 EA 202293069 EA 043501 B1 EA043501 B1 EA 043501B1
Authority
EA
Eurasian Patent Office
Prior art keywords
cov
sars
rnase
liposomes
composition
Prior art date
Application number
EA202293069
Other languages
English (en)
Inventor
Шахноз Садыковна Азимова
Талат Саатович Саатов
Баходир Равилович Зайнутдинов
Ойбек Норбой Аширов
Собирджан Анарматович Сасмаков
Елена Лысова
Артем Александрович Махнев
Мукаддас Рустамовна Умарова
Умида Бахриддин Кизи Хамидова
Галина Александровна Пиякина
Джалолиддин Мирджамилович Абдурахманов
Шухрат Шавкатович Хасанов
Фарход Бакир Эшбоев
Original Assignee
Мусаханова Ойгуль Мирзаюсуфовна
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Мусаханова Ойгуль Мирзаюсуфовна filed Critical Мусаханова Ойгуль Мирзаюсуфовна
Publication of EA043501B1 publication Critical patent/EA043501B1/ru

Links

Description

Область техники
Изобретение относится к медицине, фармацевтике и биотехнологии. Представлено применение нового лекарственного средства (фармацевтической композиции), обладающего противовирусным эффектом в отношении коронавируса SARS-CoV-2 и родственных вирусов, таких как SARS-CoV, MERS и др., геном которых представлен РНК, а вирионы снабжены липидной оболочкой, композиция за счет разрушения генома короновируса ферментом РНКазой А. Предложенная композиция может применяться амбулаторно для подавления репликации вируса SARS-CoV-2, снижения вирусной нагрузки, снижения риска передачи инфекции воздушно-капельным путем.
Уровень техники
В мире разработан целый ряд профилактических вакцин, а также средств терапии для лечения коронавирусной инфекции. Имеется патент RU 2746362 (заявка 2021/106335 от 11.03.2021) - Комбинированное лекарственное средство, обладающее противовирусным эффектом в отношении нового коронавируса SARS-CoV-2 [1], в котором описано блокирование передачи инфекции и уменьшение риска развития клинических осложнений за счет применения малых интерферирующих РНК (миРНК). Основой вышеуказанного патента является получение комбинированного лекарственного средства с созданными молекулами РНК, способными опосредовать мишень-специфические подавления репликации вируса SARS-CoV-2.
Однако не предложено препаратов, способных уничтожать коронавирусы путем прямого разрушения их генома - одноцепочечную (+)РНК. Очевидно, что прямое разрушения генома вируса может быть осуществлено путем воздействия фермента рибонуклеазы (РНКазы) [2], способного расщеплять РНК коронавирусов.
Раскрытие изобретения
Лекарственное средство предназначено для ингаляционного или интраназального введения.
Внедрение в практику препаратов на основе РНКазы (РНКазы А) ограничивается рядом факторов, к которым относятся недостаточная эффективность и безопасность доставки РНКазы А в вирусные частица-мишени. Применение липосом [3] для доставки вышеуказанного препарата (РНКазы А) решает эту проблему, так как SARS-CoV-2, а также родственные ему вирусы MERS, SARS-CoV имеют липидную оболочку, позволяющую трансфицировать (проникать) липосомам и внедрять РНКазу А непосредственно внутрь вируса.
Таким образом, в настоящее время существует необходимость в разработке нового противовирусного средства, способного разрушать РНК коронавируса.
В состав лекарственного средства по настоящему изобретению входит композиция - липосомы, осуществляющие доставку эффективного количество РНКазы А. Эта фармацевтическая композиция обеспечивает расщепление РНК SARS-CoV-2.
Лекарственное средство можно применять (употреблять) в виде назальных капель или спрея, а также в виде ингаляции.
Технический результат заключается в применении эффективного и безопасного противовирусного средства, обеспечивающего разрушение РНК SARS-CoV-2. Указанный технический результат поясняется следующими примерами.
Для достижения вышеуказанного технического результата предложено применение лекарственного средства, содержащего эффективное количество молекул РНКазы А в липосомах на основе фосфолипидов из соевого лецитина или фосфолипидов животного происхождения, для профилактики или лечения коронавирусной инфекции, вызываемой SARS-CoV-2.
Согласно настоящему изобретению вышеуказанное лекарственное средство может быть предназначено для интраназального или ингаляционного введения.
Краткое описание чертежей
На фиг. 1 приведены результаты эксперимента по примеру 4.
На фиг. 2 приведены результаты эксперимента по примеру 5 (метод гель-электрофореза).
Осуществление изобретения
Указанный выше технический результат поясняется следующими примерами.
Пример 1. Получение липосом с РНКазой.
Для получения липосом использовали фосфолипиды как растительного (соевый лецитин), так и животного происхождения (из мозга крупного рогатого скота). В качестве рибонуклеазы использовали коммерческий препарат-фермент РНКаза А с ММ-13.7 кД, pH оптимум - 5,0-6,0; 50U/мг фирмы Mol BIO HIMEDIA, полученный из поджелудочной железы крупного рогатого скота, или рибонуклеазу из поджелудочной железы крупного рогатого скота (РНКаза А) фирмы СамсонМед (Россия).
В качестве фосфолипидов использовали экстракт из соевого лецитина, применяемого в пищевой промышленности или фосфолипиды животного происхождения (из мозга крупного рогатого скота).
Для получения липосом 1 г коммерческого (VEROLEC FLS, China) соевого лецитина растворяли в 20 мл хлороформ-метанольной смеси при соотношении 2:1. Смесь выдерживали в течение 10 ч при температуре 2-4°C. Затем смесь центрифугировали при 4500 об/мин в течение 5 мин. Отбирали 1 мл надосадочной жидкости и растворяли в 6 мл хлороформа. Далее растворитель отгоняли в вакууме
- 1 043501 (4±2 мм рт. Ст.) при температуре 40°C. После полного удаления растворителя добавляли 50 мкл рибонуклеазы А (IU/мкл) и 5 мл физиологического раствора. Полученную смесь замораживали при
-20°C в течение 20 мин, затем смесь размораживали при перемешивании при 23°C в течение 30 мин.
(процесс замораживания и оттаивания повторяли четырежды). Затем полученную смесь обрабатывали ультразвуком при 22 кГц, 30 с в 4 повторах.
Аналогичным образом получали липосомы на основе фосфолипидов из мозга крупного рогатого скота, которые были выделены по методу [8].
Лекарственные формы фармацевтической композиции, приведенные в настоящем документе, могут быть получены любым известным способом и содержать другие вспомогательные вещества, способные увеличивать стабильность композиций (i) и (ii), и трансфекцию РНКазы.
Пример 2. Получение липосом с никлозамидом и РНКазой.
Использовали никлозамид (кристаллическое вещество, температура плавления 227-232°C). ИК-спектр тестируемого образца соответствовал ИК-спектру безводного никлозамида - стандарта.
Для получения липосом, содержащих РНКазу (композиция i), и липосом, содержащих РНКазу А и никлозамид (композиция ii), 1 мл раствора лецитина (1,075 мМ) смешивали с 6 мл хлороформа. Далее растворитель отгоняли в вакууме (4±2 мм рт. ст.) при температуре 40°C. После удаления хлороформа в колбу добавляли 50 мкл рибонуклеазы А, 30 мкл раствора никлозамида (10% раствор в ДМСО) и 5 мл физиологического раствора. Полученную смесь замораживали при -20°C в течение 20 мин, затем смесь размораживали при 23°C в течение 30 мин при перемешивании (процесс замораживания и оттаивания повторяли четырежды). Затем полученную смесь обрабатывали ультразвуком при 22 кГц, 30 с.
Аналогичным образом получали липосомы на основе фосфолипидов из мозга крупного рогатого скота, которые были выделены по методу [4].
Лекарственные формы фармацевтических композиций, приведенных в настоящем документе, могут быть получены любым известным способом и содержать другие вспомогательные вещества, способные увеличивать стабильность композиций (i) и (ii) и трансфекцию РНКазы и никлозамида.
Пример 3. Синтез праймеров на N ген SARS-CoV-2.
Для определения возможности расщепления РНК SARS-CoV-2 использовали ПЦР метод. В качестве мишени для определения возможности расщепления РНКазой генома коронавируса SARS-CoV-2 был выбран N ген как наиболее стабильный для таких типов коронавирусов, как SARS и MERS, кодирующий нуклеокапсид [5-7]. На N ген были синтезированы праймеры и флуоресцентный зонд, используя открытые международные данные CDC (Центр по контролю и профилактике заболеваний США) [8].
Синтез праймеров проводили на приборе ДНК-синтезаторе ASM-2000 фосфорамидитным твердофазным методом [9]. После синтеза олигонуклеотиды снимали с твёрдой фазы концентрированным 30% водным аммиаком в течение 2 ч при температуре 60°С. Раствор олигонуклеотидов выпаривали для удаления аммиака и осаждали в 70% этаноле в присутствии 0,3 М ацетата натрия и 50 мМ хлорида магния. Для осаждения олигонуклеотидов центрифугировали при 14000 об/мин в течение 20 мин. Осадок промывали дважды 70% этанолом и высушивали при комнатной температуре в течение 30 мин.
После синтеза олигонуклеотиды очищали от коротких неполностью синтезированных молекул. Для этого в конце синтеза не проводили последний этап снятия ДМТ группы, в результате только полностью синтезированные олигонуклеотиды на 5'-конце содержат ДМТ группу для очистки на картриджах методом обратно-фазовой хроматографии. Обратно-фазовую хроматографию проводили в следующих условиях: промывку олигонуклеотидов проводили с помощью 5% ацетонитрила с хлоридом натрия в концентрации 100 мг/мл. Для удаления ДМТ группы с олигонуклеотидов использовали 3% раствор дихлоруксусной кислоты. После удаления ДМТ группы для элюирования очищенных олигонуклеотидов с картриджа использовали 50% ацетонитрил в 100 мМ трис-буфере pH 8,5. Очищенные олигонуклеотиды осаждали 70% этанолом в присутствии 50 мМ хлорид магния, центрифугированием при 14000 об/мин в течение 20 мин. Полученный осадок олигонуклеотидов растворяли в ТЕ буфере pH 8,0 до концентрации 20 мкМ. Полученный раствор праймеров использовали для проведения ПЦР реакции.
Таблица 1
Последовательность праймеров и флуоресцентного зонда на N ген SARS-CoV-2
Наименование Последовательность нуклеотидов 5’ - 3’ Размер фрагмента амплификации
N1-F GACCCCAAAATCAGCGAAAT 466 и.и
N3-R TGTAGCACGATTGCAGCATTG
N1-P FAM-ACCCCGCATTACGTTTGGTGGACC-BHQ1
С помощью данных праймеров и зонда, специфичных к участку N гена РНК SARS-CoV-2, методом ПЦР определяли содержание вируса в биологических образцах и проводили гель-электрофорез образцов, как описано в примерах 4 и 5.
Пример 4. Изучение действия липосом с РНКазой на SARS-CoV-2 методом RT-ПЦР in vitro.
Выделение РНК и выявление вируса SARS-CoV-2 проводили по стандартному методу с помощью
- 2 043501 сертифицированных наборов реагентов ДНК-Технология [10, 11], а также с помощью синтезированных праймеров и зонда. Эффективность действия липосом определяли по смещению порогового цикла (AACt) в ПЦР анализе. Пороговый цикл показывает, какое количество РНК содержится в пробах, и он обратно пропорционален логарифму начального количества копий.
Для выделения РНК использовали как набор реагентов ДНК-Технология, так и разработанный заявителями сертифицированный набор ЭНКОР. Детекцию РНК в образцах проводили с синтезированными праймерами и зондом, описанными в примере 3. Для проведения ПЦР анализа использовали как набор реагентов ДНК-Технология SARS-CoV-2/SARS-CoV, так и разработанный ПЦР набор в следующих условиях: объём смеси 25 мкл, 1х ПЦР буфер (20 мМ трис-HCl pH 8,5, 20 мМ сульфат аммония, 20 мМ хлорид калия, 0,1 мкг/мл БСА), 3 мМ хлорид магния, 0,8 мМ дНТФ, 400 нм каждого праймера, 200 нМ зонда, 1 ед. полимеразы, 25 ед. ревертазы. Программа ПЦР: 50°С - 15 мин; 95°С - 15 мин; 40 циклов (95°С - 10 с; 60°С - 40 с, считывание сигнала по каналу FAM). Для ПЦР анализа использовали по 5 мкл РНК образца.
Образцы биологического материала человека (по 80 мкл мазка из носоглотки), содержащие коронавирус SARS-CoV-2, инкубировали с 20 мкл композиции (i) и (ii) (полученных, как описано в примерах 1 и 2), в течение 1 ч при 36°С. Параллельно проводили инкубирование тех же образцов с 20 мкл свободной РНКазы (1 ед./мкл), а также с пустыми липосомами, не содержащими РНКазу. Результаты экспериментов представлены в табл. 2.
Как видно из приведенных данных (табл. 2), под действием пустых липосом пороговый цикл (Ct.) реакции RT-ПЦР практически не меняется, что свидетельствует о том, что липосомы сами по себе не могут разрушать РНК SARS-CoV-2. В то же время наибольшее воздействие и сдвиг Ct происходит под действием липосом, содержащих РНКазу - на 9 циклов, и липосом, содержащих РНКазу и никлозамид на 10 циклов, что свидетельствует о том, что липосомы, содержащие РНКазу, расщепляют РНК коронавируса и снижают концентрацию РНК примерно в 10 раз. При этом сама РНКаза в проводимых экспериментах сдвигает Ct на 3 цикла, по-видимому, за счет расщепления свободных РНК COVID-19. Следует отметить, что липосомы, содержащие РНКазу с никлозамидом, проявляли практически такое же действие, что и липосомы, содержащие только РНКазу, что и следовало ожидать из биологической активности никлозамида.
Действие композиции (i) и (ii) исследовалось также методом гель-электрофореза [12], используя синтезированные праймеры на N ген (466 п.н.).
Результаты эксперимента приведены на фиг. 1.
Фиг. 1. Гель-электрофорез в 3% агарозном геле [12].
Образцы - амплификатов N гена:
А - исходный образец, положительный по COVID-19;
В - образец после инкубации с пустыми липосомами;
С - образец после инкубации с РНКазой;
D - образец после инкубации с липосомами, содержащими РНКазу (композиция i);
F - образец после инкубации с липосомами, содержащими РНКазу и никлозамид (композиция ii);
K - отрицательный контроль - образец, не содержащий вирус SARS-CoV-2.
Гель-электрофорез (фиг. 1) ПЦР анализа выявил, что после инкубации позитивных SARS-CoV-2 образцов с композициями (i) и (ii) приводит к разложению N гена, так как продукт амплификации на гель-электрофорезе отсутствует, это свидетельствует о том, что произошло расщепление N гена SARS-CoV-2.
Пример 5. Изучение действия липосом с РНКазой на SARS-CoV-2 in vivo.
Исследования проводили на 5 группах кроликов породы Великан, весом 1,6-1,8 кг, возраста
- 3 043501
3-4 месяца, по 5 животных в каждой группе:
группа 1 - отрицательный контроль (физиологический раствор);
группа 2 - положительный контроль, образец мазка содержащий SARS-CoV-2;
группа 3 - композиция (i);
группа 4 - композиция (ii);
группа 5 - РНКаза (1ед./мкл).
В носовую полость животным в группе 1 закапывали 20 мкл физиологического раствора, животным группы 3 и 4 вводили по 20 мкл композиций (i) и (ii), соответственно животным группы 5 вводили по 20 мкл РНКазы (1 ед./мкл). Через 1 ч всем животным (кроме группы 1) вводили по 20 мкл биологического материала, позитивного по SARS-CoV-2 с вирусной нагрузкой - Ct 20. Далее через 1 ч у всех животных был сделан забор образцов из носовой полости, как описано в [10]. Все полученные образцы анализировали методом ПЦР с набором реагентов ДНК-Технология SARS-CoV-2/SARS-CoV [11]. Результаты экспериментов представлены в табл. 3.
Таблица 3
Изучение действия in vivo композиции (i) и (ii) на ингибирование РНК SARS-CoV-2 количественным ПЦР методом с помощью гибридизационно-флуоресцентной детекции
Группа 1 отрицательн ый контроль Группа 2 положительный контроль Группа 3 композиция б) Группа 4 композиц ия (и) Группа 5 РНКаза
Пороговы й цикл Кролик 1 25 26
Кролик 2 27 26
(Ct) Кролик 3 24 24
Кролик 4 28 28
Кролик 5 27 30
Среднее значение Ct. - 26 - - 27
Как видно из табл. 3, при введении животным композиций (i) - группа 3 и композиций (ii) группа 4 РНК SARS-CoV-2 не обнаруживается. В то же время в группе 2 и группе 5 среднее значение Ct 26-27 практически не меняется.
Результаты свидетельствуют о том, что под действием композиций (i) и (ii) происходит расщепление РНК вируса SARS-CoV-2, тогда как свободная РНКаза практически не действует в условиях in vivo.
Действие композиций (i) и (ii) in vivo исследовалось также методом гель-электрофореза (фиг. 2) [12].
Фиг. 2. Гель-электрофорез в 3% агарозном геле [12].
Группа 1 - отрицательный контроль (физиологический раствор).
Группа 2- положительный контроль, образец мазка, содержащий SARS-CoV-2.
Группа 3 - композиция (i).
Группа 4 - композиция (ii).
Группа 5 - РНКаза (1 ед./мкл).
Как видно из фиг. 2, в контрольных образцах (исходный K+ - группа 2) имеется фрагмент N гена COVID-19, тогда как под действием композиций (i) и (ii) (группа 3 и группа 4) происходит разрушение N ген вируса SARS-CoV-2.
Свободная РНКаза (группа 5) не расщепляет РНК коронавируса in vivo (табл. 3 и группа 5).
Пример 6. Стабильность липосом с РНКазой (композиция (i)).
Для определения стабильности композицию (i) инкубировали при 36°С в течение различных интервалов времени от 1 до 6 ч (табл. 4). Затем к каждому образцу композиции (i) добавляли биологический материл с коронавирусной инфекцией SARS-CoV-2 и вновь инкубировали при 36°С в течение 1 ч. Эксперимент проводили, как описано в примере 4. Выделение РНК и выявление вируса SARS-CoV-2 проводили по стандартному методу с помощью сертифицированных наборов реагентов ДНК-Технология [11]. Эксперимент проводили в пяти повторах.
В табл. 4, приведены данные по изучению стабильности липосом с РНКазой - композиция (i) методом RT-ПЦР.
- 4 043501
Таблица 4
Исследование стабильности липосом с РНКазой - композиция (i) __________________методом RT-ПЦР_______________________
Положительный контроль(+) COVID-19 Композиция (i)
1 ч 2 ч 3 ч 6 ч
Пороговый цикл (Ct) 20 30 25 27 25
20 30 28 27 28
18 23 31 28 26
19 24 22 27 27
Среднее значение Ct. 19 27 26.5 27 26.5
Из приведённой таблицы видно, что под действием композиции (i) пороговый цикл (Ct) смещается на 8 циклов, это свидетельствует о том, что вирусная нагрузка уменьшается примерно в 103 раз. При этом установлено, что среднее значение порогового цикла (Ct) при ПЦР с липосомами, содержащими РНКазу (композиция (i)), практически не меняется в интервале времени от 1 до 6 ч, что свидетельствует о стабильности липосом, содержащих РНКазу (композиция (i)) в течение 6 ч.
Пример 7. Стабильность липосом с РНКазой и никлозамидом (композиция (ii)).
Для определения стабильности композицию (ii) инкубировали при 36°С в течение различных интервалов времени от 1 до 6 ч (табл. 5). Затем к каждому образцу композиции (ii) добавляли биологический материл с коронавирусной инфекцией SARS-CoV-2 и вновь инкубировали при 36°С в течение 1 ч. Эксперимент проводили, как описано в примере 4. Выделение РНК и выявление вируса SARS-CoV-2 проводили по стандартному методу с помощью сертифицированных наборов реагентов ДНК-Технология [11].
Таблица 5
Исследование стабильности липосом с РНКазой и никлозамидом __________ (композиция (ii)) методом RT-ПЦР_____________
Положительный контроль (+) Композиция (й)
1 ч 2 ч 3 ч 6 ч
Пороговый цикл (Ct) 21 26 25 27 25
18 27 26 25 30
18 30 30 26 27
19 25 24 27 27
Средний Ct. 19 27 26 26 26.5
Как видно из табл. 5, под действием композиции (ii) пороговый цикл (Ct) смещается на 8 циклов, это свидетельствует о том, что вирусная нагрузка уменьшается примерно в 10 раз. При этом установлено, что среднее значение порогового цикла (Ct) при ПЦР практически не меняется в интервале времени от 1 до 6 ч, что свидетельствует о стабильности липосом, содержащих РНКазу и никлозамид (композиция (ii)), в течение 6 ч.
Пример 8. Исследование безопасности и токсичности композиций (i) и (ii) на животных in vivo (кролики и мыши), а также на культурах клеток (фибробласты и гепатоциты) in vitro.
Клетки фибробластов были получены по методу [13]. Гепатоциты печени крысы получены по методу [14].
Цитотоксические свойства композиций (i) и (ii) определяли методом МТТ in vitro [15]. Данные, представлены в виде среднего значения (из трех экспериментов). Цитотоксический эффект каждого из исследуемых образцов композиций сравнивали с контролем цитостатиком Цисплатин (Teva Pharmaceutical Industries, Ltd., Израиль).
- 5 043501
Таблица 6
Цитотоксичность композиций на клеточной культуре фибробластов
Образцы Концентрация, Подавление роста клеток (%)
10 мкг/мл 100 мкг/мл 1 мг/мл 10 мг/мл
Липосомы с РНКазой (композиция (i)) 0,0±0,0 0,0±0,0 2,3±0,4 5,4±0,6
Липосомы с РНКаза с никлозамидом (композиция (»)) 0,0±0,0 0,0±0,0 3,2±0,5 8,6±0,3
РНКаза в физиологическим растворе 0,0±0,0 0,0±0,0 0,5±0,1 1,2±0,1
Цисплатин 10+2,1 51,2+1,5 100.0+0,0 100,0+0,0
Таблица 7
Цитотоксичность композиций на гепатоцитах
Образцы Концентрация, Подавление роста клеток (%)
10 мкг/мл 100 мкг/мл 1 мг/мл 10 мг/мл
Липосомы с РНКазой (композиция i) 0,0±0,0 0,0±0,0 1,3±0,3 3,4±0,6
Липосомы с РНКаза с никлозамидом (композиция ii) 0,0±0,0 0,0±0,0 1,7±0,4 4,2±0,3
РНКаза в физиологическим растворе 0,0±0,0 0,0±0,0 0,3±0,1 0,8±0,2
Цисплатин 14,1+0,7 18,3+1,6 33,3+0,6 37,8+0,3
Как видно из полученных данных (табл. 6 и 7), в диапазоне концентраций 10-100 мкг/мл образцы не подавляли рост нормальных клеток по сравнению с препаратом сравнения (цисплатин). Таким образом, композиции (i) и (ii) не обладают цитотоксическим эффектом для нормальных клеток.
Пример 9. Изучение общей токсичности композиций на кроликах и мышах in vivo
Исследования проводили in vivo на 4 группах животных по 5 кроликов (породы Великан, массой 1,6-1,8 кг) и беспородных мышей (массой 18-20 г) по 10 мышей в группе. Исследуемые композиции закапывали в глаза животных 2 раза в день (утром и вечером) по 50 мкл физиологического раствора в правый глаз - контроль, а в левый глаз 50 мкл - композиции (i) и (ii) в течение 5 дней.
Первая группа - контроль (физиологический раствор).
Вторая группа - липосомы из соевого лецитина.
Третья группа - липосомы из соевого лецитина с РНКазой (композиция (i)).
Четвертая группа - липосомы из соевого лецитина с РНКазой и с никлозамидом (композиция (ii)).
Параллельно в каждой группе кроликам вводили интраназально по 20 мкл испытуемых образцов в каждую ноздрю.
Через 5 дней введения вышеперечисленных растворов определяли визуальные изменения, происходящие в глазах кроликов, и общее состояние животных, а также снимали биохимические показатели крови животных (мышей и кроликов) по методу [16]. Визуальное наблюдение показало, что самочувствие экспериментальных и контрольной групп животных было одинаковым.
В табл. 8 и 9 приведены биохимические показатели исследованных животных.
Таблица 8
Биохимические показатели крови экспериментальных животных (кролики)
Образцы Bil LDG ALT T-Prot AST Choi TG Glu СК
мг/дл МЕ/л МЕ/л г/л МЕ/л мг/дл мг/дл мг/дл МЕ/л
Липосома из соевого лецитина 0,42 ± 0,09 156,8 ± 1,2 28,2 ±2,4 58,0 ±3,1 15,0 ±0,4 37,5 ± 0,2 125,7 ± 1,6 115,7 ± 6,6 152,5 ±5,3
Липосомы с РНКазой (композиция (i)) 0,34 ±0,05 143,7 ±4,0 40,3 ±3,0 58,6 ± 1,9 16,7 ±0,9 36,2 ± 0,8 132,6 ±2,9 127,9 ±8,1 165,3 ± 1,7
Липосомы с РНКаза с никлозамидом (композиция (ii)) 0,41 ± 0,03 148,9 ±2,5 37,8 ±3,6 60,5 ± 1,8 15,7 ±0,6 41,7 ±0,6 128,2 ±5,4 202,2 ± 0,4 180,7 ±3,4
РНКаза в физиологическом растворе 0,37± 0,02 154,1 ± 1,5 39,9 ±7,2 62,0 ± 0,9 18,2 ± 1,1 41,6 ± 1,4 124,4 ± 7,8 118,3 ±0,8 186,5 ±4,1
Контроль 0,40 ± 0,00 155,7 ±3,6 30,5 ± 1,4 60,3 ±4,1 20,1 ± 1,7 37,2 ± 0,6 128,8 ±7,9 160±3,3 151,6± 1,5
- 6 043501
Таблица 9
Биохимические показатели крови экспериментальных животных (мыши)
Образцы Tbil Dbil ALT ALP AST Choi ТР Glu Urea
мкМ/л ед/л мг/дл г/дл мМ/л
Липосома из соевого лецитина Липосомы с РНКазой 28,6±0,5 14,6±0,2 58,2±0,4 440,0±0,1 295,0±0,4 62,5±0,2 117,7±0,6 4,1±0,6 38,5±0,3
(композиция (i)) Липосомы с РНКаза 30,0±0,4 13,0±0,4 61,7±0,6 438,7±0,4 298,0±0,1 60,5±0,1 106,7±0,4 4,5± 0,3 38,5±0,2
с никлозамидом (композиция (и)) РНКаза в 31,2±0,1 14,1=1=0,1 59,3±0,1 427,6±0,3 300,7±0,2 66,2±0,0 109,6±0,2 4,3±0,4 39,8±0,3
физиологическом растворе 29,9±0,2 14,1±0,5 62,9±0,2 442,0±0,2 299,2±0,3 63,6±0,4 114,8=1=0,1 3,9±0,3 36,5±0,1
Контроль 31,8±0,1 15,7±0,3 62,5±0,4 443,3±0,1 301.7±0,1 65,3±0,1 118,8±0,2 4,5±0,3 39,6±0,1
Как видно из полученных данных (табл. 8 и 9), значения основных показателей крови практически не отличаются от контрольных, что свидетельствует о нетоксичности композиций (i) и (ii) на животных.
Пример 10. Биомикроскопическое исследование слизистых глаз экспериментальных животных (кролики).
Действие липосом, содержащих композиции (i) и (ii) на слизистые было изучено путем исследования динамического контроля глаз кроликов.
В ходе эксперимента проводился динамический контроль состояния глаз (офтальмологический статус) кроликов методом биомикроскопии. Биомикроскопическое исследование осуществляли при помощи офтальмологического биомикроскопа - щелевой лампы SL 115 фирмы Carl Zeiss (Германия) при увеличении в 10 и 16 раз ежедневно в течение всего срока наблюдения. Оценивали состояние конъюнктивы, склеры, роговицы, передней камеры, радужки и рефлекс с глазного дна. Различные степени увеличения (х 10, х 16) при биомикроскопии позволяли более детально изучить состояние структур переднего сегмента глаза.
Перед проведением биомикроскопических исследований всех кроликов туго пеленали, голову плотно фиксировали за щелевой лампой.
В ходе проведения биомикроскопических исследований парные глаза кроликов были приняты за норму и использовались в качестве контроля в ходе экспериментов.
Первая проверка проводилась через сутки после закапывания композиций (i) и (ii) и липосом из соевого лецитина.
При осмотре методом биомикроскопии отмечалось, что глаза были спокойны без отделяемого, роговица прозрачная и гладкая, конъюнктива век бледно-розовая и блестящая, склера белая без инъекции сосудов. Влага передней камеры также была прозрачной без примеси каких-либо элементов. Радужка рельефна, зрачок круглый, реакция на свет живая. Оптические среды на всех глазах оставались прозрачными, рефлекс с глазного дна был розовый. Признаков воспаления и токсико-аллергической реакции выявлено не было.
За весь период наблюдения у всех кроликов офтальмологический статус обоих глаз был идентичным без клинических признаков воспалительных и аллергических реакций.
Эти данные свидетельствуют о том, что композиции (i) и (ii) не токсичны для глаз кроликов.
-
EA202293069 2021-07-02 2021-12-15 ЛЕКАРСТВЕННОЕ СРЕДСТВО, ОБЛАДАЮЩЕЕ ПРОТИВОВИРУСНЫМ ЭФФЕКТОМ ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ ЗАРАЖЕНИЯ SARS-CoV-2 EA043501B1 (ru)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2021119487 2021-07-02

Publications (1)

Publication Number Publication Date
EA043501B1 true EA043501B1 (ru) 2023-05-29

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US10195145B2 (en) Method for treating fibrosis using siRNA and a retinoid-lipid drug carrier
AU2019255370B2 (en) Synthetic RIG-I-like receptor agonists
JP7001599B2 (ja) 急性骨髄性白血病の処置のためのダクチノマイシン組成物および方法
KR20060063788A (ko) 올리고 핵산 담지 복합체, 이 복합체를 함유하는 의약조성물
US20060241066A1 (en) Decoy composition for treating and preventing inflammatory disease
WO2021188915A1 (en) Methods and compositions for treatment of coronavirus infection
CN110564842B (zh) 细胞色素酶cyp26a1在制备治疗神经病理性疼痛的药物中的应用
CN102625707A (zh) Hip/pap或其衍生物的新应用
EA043501B1 (ru) ЛЕКАРСТВЕННОЕ СРЕДСТВО, ОБЛАДАЮЩЕЕ ПРОТИВОВИРУСНЫМ ЭФФЕКТОМ ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ ЗАРАЖЕНИЯ SARS-CoV-2
EA042253B1 (ru) Комбинированное лекарственное средство, обладающее противовирусным эффектом для профилактики заражения sars-cov-2
WO2023277730A1 (ru) Лекарственное средство для профилактики заражения sars-cov-2
US8173616B2 (en) RNA-induced translational silencing and cellular apoptosis
US20070219150A1 (en) Nerve Cell Differentiation Inducer
CN112569338B (zh) Tdfa在制备预防和/或治疗眼表炎症疾病的药物中的应用
WO2018027149A1 (en) Methods of treating alport syndrome
RU2001917C1 (ru) Способ лечени патологических состо ний, сопровождающихс нехваткой GT РНК
RU2245137C1 (ru) Фармацевтическая композиция для лечения воспалительных процессов вирусной этиологии в глазном яблоке
CN115869302A (zh) 包含gsdme激动剂和gsdmd激动剂的组合物在制备胰腺肿瘤细胞焦亡药物中的应用
JP2023538109A (ja) 骨髄由来間葉系幹細胞からの微小胞を使用する処置の組成物及び方法
CN116763921A (zh) 电压门控钾离子通道Kv1.3的选择性抑制剂及其应用
CN116212029A (zh) 降低rcan1含量或活性的物质在预防和治疗衰老以及骨关节炎中的应用
CN116459270A (zh) 一种药物组合物及其在制备防治眼部新生血管性疾病药物中的应用