EA041652B1 - Способ получения каллусной культуры клеток artemisia vulgaris l. - Google Patents

Способ получения каллусной культуры клеток artemisia vulgaris l. Download PDF

Info

Publication number
EA041652B1
EA041652B1 EA202092144 EA041652B1 EA 041652 B1 EA041652 B1 EA 041652B1 EA 202092144 EA202092144 EA 202092144 EA 041652 B1 EA041652 B1 EA 041652B1
Authority
EA
Eurasian Patent Office
Prior art keywords
callus
acid
nutrient medium
agar
sucrose
Prior art date
Application number
EA202092144
Other languages
English (en)
Inventor
Елена Евгеньевна Антонова
Елена Валериевна Кучарова
Жанна Михайловна Охлопкова
Original Assignee
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Северо-Восточный федеральный университет имени М.К. Аммосова"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Северо-Восточный федеральный университет имени М.К. Аммосова" filed Critical Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Северо-Восточный федеральный университет имени М.К. Аммосова"
Publication of EA041652B1 publication Critical patent/EA041652B1/ru

Links

Description

Изобретение относится к области биотехнологии растений и может быть использовано для пищевой и фармацевтической промышленности как источник сырья для пищевой добавки и биологически активных веществ.
Полынь обыкновенная, чернобыльник, Artemisia vulgaris L. относится к семейству сложноцветных. Строение корневища крепкое, немного ветвистое. Стебли прямостоячие, красно-бурые, наверху разветвленные, до 1,0-1,5 м высотой. Листья сверху голые или слегка пушистые, темно-зеленые, снизу сероватые, паутинисто-войлочные, перисто-рассеченные на удлиненные зубчатые доли. Цветки очень мелкие, собраны в яйцевидные корзинки 2-4 мм шириной, составляющие широкое, несколько поникающее, метельчатое соцветие; обертка каждой корзинки покрыта густым войлочком; цветки красноватые, реже желтые. Цветет в июле-августе. Места произрастания пустыри, огороды, сорные места, возле жилья, реже луга и берега рек.
Используемые органы полыни обыкновенной: верхушки цветущих растений. Для заготовки сырья собирают лиственные цветоносные верхушки в период цветения. Установлено, что в траве содержится эфирное масло (до 0,61%), аскорбиновая кислота (175 мг%), каротин, немного дубильных веществ. В состав эфирного масла входят туйон, цинеол, борнеол. Известно, что в условиях произрастания в Якутии листья полыни обыкновенной содержат на сырой вес до 130 мг% аскорбиновой кислоты и 11 мг% каротина, при этом в траве содержится 0,04-0,05% эфирного масла (см. Макаров А.А. Лекарственные растения Якутии и перспективы их освоения. Новосибирск: Издательство СО РАН, 2002. - 264 с). Масло характеризуется как жидкое, светло-желтое, со слабым запахом. Анализы образцов различного сбора на алкалоиды дали противоречивые показатели.
Растение широко применяется в народной медицине многих стран при различных заболеваниях женской половой сферы (аменорея, дисменорея), как обезболивающее и ускоряющее роды средство, а также в качестве успокаивающего, противосудорожного средства при эпилепсии, неврастении и других нервных заболеваниях. Помимо этого, отвар всего растения применяют при гастритах, как мочегонное; порошком из сухих веток засыпают раны. В китайской медицине листья применяют в качестве кровоостанавливающего, жаропонижающего, общеукрепляющего, а также антитоксического средства. Назначают при токсикозах, пиодермии, невралгиях. При бронхиальной астме назначают вдыхание дыма, получаемого от сжигания сухих стеблей и листьев. Наружно применяют ванны из отвара надземных частей растения при почечнокаменной болезни, при кожных заболеваниях. В якутской народной медицине отвар рекомендуют пить при головной боли, боли под лопаткой, при глистах, параличах и проказе. Известно, что трава входит в состав микстуры М.Н. Здренко (см. SU №115587, кл. А61К 35/78, опубл. 1958). Кроме того, растение употребляется в пищу: в дореволюционное время служило в иные периоды основным источником поддержания жизни.
Известны способы культивирования Artemisia annua L., например, по патенту CN №102487823 (кл. G01D 3/043, опубл 23.07.2008) молодые стебли растения дезинфицируют и поперечно режут на сегменты и культивируют в среде для укоренения. Далее пересаживают для укоренения в почву.
Ближайшим аналогом заявленного решения является разработка состава питательной среды для культивирования каллусной ткани Artemisia annua L. для ускорения роста каллусной ткани и высокого выхода биомассы (см. RU №2393217, кл. C12N 5/04, опубл. 27.06.2010), при этом питательная среда содержит агаризованную среду с макро- и микросолями по Мурасиге и Скугу, фитогормоны, витамины, сахарозу, а в качестве гормона - бензиламинопурин (6-БАП).
При этом используется гормональный состав питательной среды, содержащий в качестве гормона роста только фитогормон 6-бензиламинопурин, что недостаточно для ускорения роста каллусной ткани и высокого выхода биомассы.
Задачей настоящего изобретения является получение каллусной культуры полыни обыкновенной (Artemisia vulgaris L.) для использования в качестве источника биомассы для пищевой добавки и для получения биологически активных веществ.
Для решения поставленной задачи способ получения каллусной культуры полыни обыкновенной (Artemisia vulgaris L.) включает стерилизацию семян интактных растений полыни раствором перекиси водорода (3% раствор) в течение 10 мин и этилового спирта (70% раствор) в течение 1 мин, ополаскивание, трехкратное отмывание в течение 5 мин в стерильной дистиллированной воде, помещение стерильных семян на твердую питательную среду без гормонов, следующего состава, мг: NH4NO3 - 33000, KNO3 - 38000, CaCl2x2H2O - 8800, MgSO4x7H2O - 7400, KH2PO4 -3400, KI - 166, H3BO3 - 1240, MnSO4x4H2O 4460, ZnSO4x7H2O - 1720, Na2MoO4x2H2O - 50, CuSO4x5H2O - 5, CoCkx6H2O - 5, FeSO4x7H2O - 5560, NaЭДТА - 7460, мезоинозит - 100, тиамин - 100, пиридоксин - 100, никотиновая кислота - 100, сахароза 2500, вода - 1000 мл, агар - 7000, дальнейшее помещение листовых эксплантов растений, полученных в лабораторных условиях, в питательную среду следующего состава, мг: NH4NO3 - 33000, KNO3 - 38000, CaCl2x2H2O - 8800, MgSO4x7H2O - 7400, KH2PO4 - 3400, KI - 166, H2BO3 - 1240, MnSO4x4H2O - 4460, ZnSO4x7H2O -1720, Na2MoO4x2H2O - 50, CuSO4x5H2O - 5, CoCl2x6H2O - 5, FeSO4x7H2O -5560, Na-ЭДТА - 7460, мезоинозит - 100, гидролизат казеина - 500, тиамин - 100, пиридоксин - 100, никотиновая кислота - 100, сахароза - 30000, 2,4 дихлорфеноксиуксусная кислота - 1, цитокинин (6-бензиламинопурин) - 1,
- 1 041652 нафтилуксусная кислота - 1, вода - 1000 мл, агар - 12000, при этом культивирование растений проводят в темноте, при температуре 26±1°С, влажности помещения 70±5%, цикл субкультивирования составляет 3 недели, при пересеве используют 1/4 живых каллусных биомасс, полученные каллусные культуры сохраняют пересадкой каждые 21 суток.
Анализ признаков заявленного решения свидетельствует о соответствии заявленного решения критерию новизна.
Совокупность существенных признаков обеспечивает решение заявленной технической задачи, а именно, получение каллусной культуры полыни обыкновенной (Artemisia vulgaris L.).
Предлагаемое решение состоит в том, что за основу взяты стерильные свежие проростки, культивируемые в контролируемых условиях климатической камеры из семян интактного растения, фитомасса которого собрана на территории Амгинского района (с. Болугур) Республики Саха (Якутия) в фенофазах конец цветения, начало плодоношения.
При этом семена стерилизовали раствором 3% перекиси водорода в течение 10 мин, затем 70% спиртовым раствором в течение 1 мин. После стерилизации материал трехкратно ополаскивали стерильной дистиллированной водой. Стерильные семена помещали на твердую питательную среду без гормонов. Культивирование проростков проводили до третьего-пятого настоящих листьев в течение трех недель.
Питательная среда Мурасиге-Скуга для культивирования свежих проростков растения содержит компоненты в количественном соотношении, представленном в табл. 1.
Из полученного проростка получают листовые экспланты, которые помещали в питательную среду с дополнительным добавлением гидролизата казеина, 6-бензиламинопурина, нафтилуксусной кислоты. Наиболее интенсивное каллусообразование получили при концентрации фитогормонов 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты в 1 мг/л, 6-бензиламинопурина - 1 мг/л, α-нафтилуксусной кислоты - 1 мг/л. После образования каллусной ткани проводили его отделение и рассадку в культуральные сосуды (чашки Петри, конические колбы на 100 и 250 мл) со свежей питательной средой, того же состава.
Питательная среда Мурасиге-Скуга для получения каллусной ткани содержит компоненты в количественном соотношении, представленном в табл. 2.
Культивирование проводят в темноте при 26±1°С, влажности помещения 70±5%, в чашках Петри с диаметром 90 мм. Цикл субкультивирования составляет 3 недели. При пересеве используют 1/4 живой каллусной культуры. Полученные каллусные культуры пересаживали каждые 21 день, таким образом, сохраняя полученную ткань. В процессе культивирования определяют морфологические, цитологические характеристики, также отбирали для молекулярных исследований и химических анализов.
Технический результат - получение каллусной культуры полыни обыкновенной (Artemisia vulgaris L.).
Полученный каллус характеризуется следующими признаками.
Культуральные признаки: каллусные культуры плотные, оформленные, имеют светло-серую окраску. Для определения веса сырой биомассы каллусные культуры отделяют от среды культивирования на бумажные фильтры и взвешивают. При анализе представленных кривых роста следует отметить замедление роста на 18-ые сутки культивирования, что позволяет использовать 3 недельный цикл выращивания. Ростовые параметры рассчитывали по сырому весу биомассы. Результаты представлены в табл. 3 и свидетельствуют о наличии стабильных ростовых характеристик.
Таким образом, выявлен способ получения каллусных культур полыни обыкновенной (Artemisia vulgaris L.) из листовых эксплантов проростков, полученных в лабораторных условиях.
Таблица 1. Состав питательной среды Мурасиге-Скуга для культивирования проростков к получению стерильных эксплантов, мг/л
Компоненты: Содержание
NH4NO3 33000
KNO3 38000
СаС12х2Н2О 8800
MgSO4x7H2O 7400
КН2РО4 3400
KI 166
Н3ВО3 1240
MnSO4x4H2O 4460
ZnSO4x7H2O 1720
Na2MoO4x2H2O 50
CuSO4x5H2O 5
CoC12x6H2O 5
FeSO4x7H2O 5560
Na-ЭДТА 7460
Мезоинозит 100
Тиамин 100
Пиридоксин 100
Никотиновая кислота 100
Сахароза 2500
Вода 1000
Агар 7000
-

Claims (6)

  1. Таблица 2. Состав питательной среды Мурасиге-Скуга для получения каллусной культуры, мг/л
    Компоненты: Содержание
    NH4NO3 33000
    KNO3 38000
    СаС12х2Н2О 8800
    MgSO4x7H2O 7400
    КН2РО4 3400
    KI 166
    Н3ВО3 1240
    MnSO4x4H2O 4460
    ZnSO4x7H2O 1720
    Na2MoO4x2H2O 50
    CuSO4x5H2O 5
    СоС12х6Н2О 5
    FeSO4x7H2O 5560
    Na-ЭДТА 7460
    Мезоинозит 100
    Г идролизат казеина 500
    Тиамин 100
    Пиридоксин 100
    Никотиновая кислота 100
    Сахароза 30000
  2. 2,4-дихлорфеноксиуксусная кислота 1
    6- бензиламинопурин 1
    Нафтилуксусная кислота 1
    Вода 1000 мл
    Агар 12000
    Таблица
  3. 3 Ростовые параметры каллусных культур полыни обыкновенной
    Показатели Значения, в г
    Индексы роста по весу сырой биомассы 0,1678
    Удельный рост по весу сырой биомассы, сут -1 0,0084
    ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ
    Способ получения каллусной культуры клеток Artemisia vulgaris L., включающий стерилизацию семян интактных растений Artemisia vulgaris L. растворами перекиси водорода в течение 10 мин и этилового спирта в течение 1 мин, ополаскивание, отмывание в течение 5 мин в стерильной дистиллированной воде, помещение стерильных семян на твердую питательную среду без гормонов следующего состава:
    NH
  4. 4NO3 - 33000 мг;
    KNO3 - 38000 мг;
    CaCl2x2H2O - 8800 мг;
    MgSO4x7H2O - 7400 мг;
    KH2PO4 - 3400 мг;
    KI - 166 мг;
    H3BO3 - 1240 мг;
    MnSO4x4H2O - 4460 мг;
    ZnSO4x7H2O - 1720 мг;
    Na2MoO4x2H2O - 50 мг;
    CuSO4x
  5. 5H2O - 5 мг;
    CoCl2x6H2O - 5 мг;
    FeSO4x7H2O - 5560 мг;
    Na-ЭДТА - 7460 мг;
    мезоинозит - 100 мг;
    тиамин - 100 мг;
    пиридоксин - 100 мг;
    никотиновая кислота - 100 мг;
    сахароза - 2500 мг;
    вода - 1000 мл;
    агар - 7000 мг;
    дальнейшее помещение эксплантов растений, полученных в лабораторных условиях, в питательную среду следующего состава:
    NH4NO3 - 33000 мг;
    KNO3 - 38000 мг;
    CaCl2x2H2O - 8800 мг;
    MgSO4x7H2O - 7400 мг;
    - 3 041652
    KH2PO4 - 3400 мг;
    KI - 166 мг;
    Н2ВО3 - 1240 мг;
    MnSO4x4H2O - 4460 мг;
    ZnSO4x7H2O - 1720 мг;
    Na2MoO4x2H2O - 50 мг;
    CuSO4x5H2O - 5 мг;
    СоС12х6Н2О - 5 мг;
    FeSO4x7H2O - 5560 мг;
    Na-ЭДТА - 7460 мг;
    мезоинозит -100 мг;
    гидролизат казеина - 500 мг;
    тиамин - 100 мг;
    пиридоксин - 100 мг;
    никотиновая кислота - 100 мг;
    сахароза - 30000 мг;
    2,4- дихлорфеноксиуксусная кислота -1 мг;
  6. 6-бензиламинопурин - 1 мг;
    нафтилуксусная кислота -1 мг;
    вода - 1000 мл;
    агар - 12000 мг;
    при этом культивирование растений проводят в темноте при температуре 26±1°С, влажности помещения 70±5%, цикл субкультивирования составляет 3 недели, при пересеве используют 1/4 живых каллусных биомасс, полученные каллусные культуры сохраняют пересадкой каждые 21 сутки.
    ^8j) Евразийская патентная организация, ЕАПВ
    Россия, 109012, Москва, Малый Черкасский пер., 2
EA202092144 2019-10-09 2020-10-08 Способ получения каллусной культуры клеток artemisia vulgaris l. EA041652B1 (ru)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019131750 2019-10-09

Publications (1)

Publication Number Publication Date
EA041652B1 true EA041652B1 (ru) 2022-11-18

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Sreekumar et al. Micropropagation of Hemidesmus indicus for cultivation and production of 2-hydroxy 4-methoxy benzaldehyde
Ibrahim et al. Plant growth regulators affecting in vitro cultivation of Stevia rebaudiana
CN113785832B (zh) 2-氨基-3-甲基己酸在促进植物生长和增产上的应用
CN101103701B (zh) 温郁金脱毒及快速繁殖方法
Naeem et al. Standardization of tissue culture conditions and estimation of free scavenging activity in Viola odorata L
Aghaei et al. Effect of different plant growth regulators on callus induction of stem explants in'Pistacia atlantica'subsp. kurdica
Widiyastuti et al. Photoperiod effect on the growth and artemisinin content of Artemisia Annua grown in tropical region
RU2718254C1 (ru) Способ культивирования каллусной культуры полыни обыкновенной (Artemisia vulgaris L.)
KR102624679B1 (ko) 박편배양을 통한 천궁 클론묘의 대량생산 방법
CN108812165A (zh) 一种石斛的高产种植方法
RU2718253C1 (ru) Способ получения каллусной культуры змееголовника дланевидного (Dracocephalum palmatum Steph.) в условиях in vitro
EA041652B1 (ru) Способ получения каллусной культуры клеток artemisia vulgaris l.
CN108812327B (zh) 一种绵毛金腰的水培繁殖的培养液及培养方法
KR100533793B1 (ko) 생물반응기를 이용한 섬오갈피의 부정근의 대량생산방법및 섬오갈피나무 묘목의 대량생산방법
Al-Maameri et al. Effect of putrescine and type of light in callus of Gardenia Jasminoides L. content from some effective medical compounds
Ahmed et al. In vitro regeneration and improving kaempferol accumulation in blackberry (Rubus fruticosus L.) callus and suspension cultures
KR100775080B1 (ko) 노랑무늬붓꽃의 생장점 배양을 통한 체세포배 형성과식물체 대량생산방법
CS244688B2 (en) New variety of amomile cultivating method
Sulava et al. In vitro micropropagation of Asparagus racemosus by using of nodal explants
KR101386261B1 (ko) 참나무겨우살이 조직배양에 의한 배양세포 및 줄기의 대량생산방법
KR0140787B1 (ko) 맥클레야 속 식물의 세포 배양에 의한 쌍귀나린과 그 유도체의 생산 방법
Jung et al. Plant regeneration from callus and adventitious root segments of Pulsatilla koreana Nakai
Riva In Vitro regeneration and rapid multiplication of two orchid varieties of Dendrobium bensoniae and Dendrobium aphyllum
JP2545359B2 (ja) 植物培養細胞
Murthy et al. Micropropagation of Stemona tuberosa Lour. A Review