EA039395B1 - СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ГЕННОЙ КОНСТРУКЦИИ И ПЛАЗМИДНАЯ ДНК С УВЕЛИЧЕННЫМ ВРЕМЕНЕМ ЖИЗНИ мРНК ТРАНСГЕНА VEGF В КЛЕТКЕ МЛЕКОПИТАЮЩЕГО, ПЛАЗМИДНАЯ ДНК ГЕНА VEGF165, мРНК, ФАРМАЦЕВТИЧЕСКАЯ КОМПОЗИЦИЯ И ПРИМЕНЕНИЕ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК - Google Patents

СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ГЕННОЙ КОНСТРУКЦИИ И ПЛАЗМИДНАЯ ДНК С УВЕЛИЧЕННЫМ ВРЕМЕНЕМ ЖИЗНИ мРНК ТРАНСГЕНА VEGF В КЛЕТКЕ МЛЕКОПИТАЮЩЕГО, ПЛАЗМИДНАЯ ДНК ГЕНА VEGF165, мРНК, ФАРМАЦЕВТИЧЕСКАЯ КОМПОЗИЦИЯ И ПРИМЕНЕНИЕ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК Download PDF

Info

Publication number
EA039395B1
EA039395B1 EA201700456A EA201700456A EA039395B1 EA 039395 B1 EA039395 B1 EA 039395B1 EA 201700456 A EA201700456 A EA 201700456A EA 201700456 A EA201700456 A EA 201700456A EA 039395 B1 EA039395 B1 EA 039395B1
Authority
EA
Eurasian Patent Office
Prior art keywords
mrna
gene
plasmid dna
vegf
deletion
Prior art date
Application number
EA201700456A
Other languages
English (en)
Other versions
EA201700456A1 (ru
Inventor
Сергей Львович КИСЕЛЕВ
Original Assignee
Общество с ограниченной ответственностью "НекстГен"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Общество с ограниченной ответственностью "НекстГен" filed Critical Общество с ограниченной ответственностью "НекстГен"
Publication of EA201700456A1 publication Critical patent/EA201700456A1/ru
Publication of EA039395B1 publication Critical patent/EA039395B1/ru

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/475Growth factors; Growth regulators
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K48/00Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy
    • A61K48/005Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy characterised by an aspect of the 'active' part of the composition delivered, i.e. the nucleic acid delivered
    • A61K48/0066Manipulation of the nucleic acid to modify its expression pattern, e.g. enhance its duration of expression, achieved by the presence of particular introns in the delivered nucleic acid
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P19/00Drugs for skeletal disorders
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P21/00Drugs for disorders of the muscular or neuromuscular system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/475Growth factors; Growth regulators
    • C07K14/515Angiogenesic factors; Angiogenin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/67General methods for enhancing the expression
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2830/00Vector systems having a special element relevant for transcription
    • C12N2830/50Vector systems having a special element relevant for transcription regulating RNA stability, not being an intron, e.g. poly A signal

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Physical Education & Sports Medicine (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Neurology (AREA)
  • Orthopedic Medicine & Surgery (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Выявлены точечные изменения нуклеотидной последовательности 3'UTR гена vegf, которые существенно увеличивают время жизни продукта его транскрипции - мРНК в клетках млекопитающих. Экспериментальным путем выбрана генная конструкция с оптимальным перечнем выявленных мутаций, характеризующаяся наибольшим временем жизни мРНК. Подтвержден биологический эффект разработанной генной конструкции и фармацевтической композиции на ее основе in vitro и in vivo.

Description

Область техники
Изобретение относится к биотехнологии, а именно к разработке оптимизированных геннотерапевтических препаратов с высокой стабильностью и пролонгированной экспрессией трансгена vegf.
Современный уровень техники
Геннотерапевтические препараты.
Все большее значение в современной медицине приобретают геннотерапевтичекие препараты группа лекарственных средств, действующим веществом которых являются генные конструкции нуклеиновые кислоты, содержащие один или несколько генов, кодирующих терапевтические белки.
К настоящему времени в мире уже зарегистрированы и внедрены в клиническую практику 5 таких препаратов, а несколько сотен находятся на стадиях экспериментальных и клинических исследований. Общее количество клинических исследований в рамках генной терапии с 1989 г. превысило 1900 [1]. Один из 5 зарегистрированных геннотерапевтических препаратов - Неоваскулген (ОАО Институт стволовых клеток человека) - разработан нами и внедрен в клиническую практику на территории России (РУ № ЛП-000671 от 28.09.11) и Украины (РУ № 899/13300200000 от 25.01.2013).
Таким образом, в условиях развития биотехнологии сформировался принципиально новый класс фармацевтических препаратов - геннотерапевтические лекарственные средства.
К наиболее безопасным вариантам генных конструкций, несущих трансген, относится плазмидная ДНК. Именно плазмидная ДНК с геном vegf является действующим веществом упомянутого выше геннотерапевтического препарата Неоваскулген. Главной проблемой плазмидной ДНК как вектора для доставки трансгена в клетки-мишени абсолютным большинством исследователей признается низкая эффективность трансфекции: лишь 1-2% от общего количества молекул генных конструкций поступает в клетки и/или экспрессируется ими [2]. При этом количество молекул поступившей в клетку плазмидной ДНК и общее число трансфицированных клеток являются одними из основных факторов, напрямую определяющих уровень продукции терапевтического белка и, соответственно, биологический эффект лекарственного средства. В этой связи в условиях развития геннотерапевтических препаратов как нового фармакологического класса высоко актуальной является разработка методов, направленных на увеличение продукции терапевтического белка, кодируемого генной конструкцией при снижении количества вводимого в организм препарата или повышении эффективности действия. Это особенно важно для плазмидной ДНК, эффективность трансфекции которой крайне низкая.
Повышение общей концентрации терапевтического белка может быть обеспечено посредством двух основных подходов. Первый - наиболее очевидный - состоит в увеличении уровня трансфекции генных конструкций. Иными словами, чем большее количество плазмидной ДНК поступит в клетки-мишени, тем большая концентрация кодируемого ей белка будет продуцирована. В рамках данного подхода предложен целый ряд физических и химических методов. Однако физические методы увеличения уровня трансфекции требуют применения специального оборудования и не всегда безопасны и выполнимы в клинической практике. Химические же методы требуют изменения состава геннотерапевтического препарата, что требует дополнительных ресурсов для производства, а также может быть сопряжено с негативными эффектами добавленных компонентов.
Второй - альтернативный подход - заключается в продлении времени жизни продукта транскрипции введенной генетической конструкции - мРНК, что приводит к увеличению количества циклов трансляции и, соответственно, повышению результирующего количества терапевтического белка за счет его пролонгированной продукции. Фундаментальные основы данного подхода были сформированы за счет накопления сведений о регуляции времени жизни мРНК. Так, описан целый ряд регуляторных молекул, вовлеченных в модуляцию стабильности мРНК, такие как РНК-связывающие протеины и регуляторные РНК (микроРНК, длинные некодирующие РНК). Важно, что воздействие указанных веществ на мРНК опосредуется через связывание с ее З'-нетранслируемой областью (3'UTR), содержащей специальные последовательности - дестабиизирующие элементы, в частности аденин-уридинобогащенный элемент (AU-rich element). Ряд веществ, такие как AU-rich element RNA-binding protein 1 (AUF1), tristetraprolin (TTP), KH-type splicing regulatory protein (KSRP), связываясь со специфическими сайтами 3'UTR, индуцируют деградацию мРНК, тогда как другие, например polyadenylate-binding protein-interacting protein 2 (PAIP2), наоборот, обеспечивают стабилизацию мРНК [3, 4].
Координация процессов деградации и стабилизации мРНК имеет важное значение для нормального функционирования клеток, а некоторые патологические состояния воспалительного или онкологического генеза, по мнению ряда авторов, могут быть связаны с посттранскрипционной дисрегуляцией, приводящей либо к недостаточной, либо к избыточной продукции факторов роста, онкогенов и других биологически активных веществ [4]. В этой связи последовательность нуклеотидов 3'UTR имеет принципиальное значение для трансдукции регуляторных влияний, эффектором которых является мРНК, и детерминации времени жизни мРНК в целом.
Анализируя данные современного уровня техники, становится очевидным, что изменение последовательности нуклеотидов 3'UTR, особенно дестабилизирующих элементов, может обеспечить продление жизни мРНК. Более того, разработаны методы сайт-направленного мутагенеза, позволяющие технически выполнить необходимые изменения в генной конструкции и, соответственно, мРНК как продукта ее
- 1 039395 транскрипции. Однако до сих пор нет точных, исчерпывающих и систематизированных данных о том, какие варианты последовательности 3'UTR, какие ее минорные сайты или их комбинации за какие аспекты функционирования мРНК отвечают [3]. Отчасти это связано с тем, что количество изоформ мРНК, отличающихся последовательностью нуклеотидов 3'UTR, варьирует в широких пределах, в том числе изза альтернативных сплайсинга и полиаденилирования. При этом качественный и количественный состав дестабилизирующих элементов 3'UTR определяется также и кодирующей областью нуклеиновой кислоты. Все это в сочетании с тем фактом, что 3'UTR определяет не только время жизни мРНК, но и другие составляющие ее физиологии, как транспорт из ядра клетки, цитоплазматическая локализация, эффективность трансляции и т.д., предопределяет сложности и во многом непредсказуемость моделирования времени жизни мРНК через изменение последовательности 3'UTR, что может выражаться как в увеличении времени жизни транскрипта, так и в снижении.
Несмотря на все трудности и недостаточную изученность вопроса детерминации, или программирования, времени жизни мРНК через изменение последовательности 3'UTR, предпринимаются попытки эмпирически подобрать такие варианты изменений в соответствующей области конкретных вариантов генных конструкций, которые увеличили бы стабильность мРНК без негативного влияния на ее функционирование.
В частности, описан способ увеличения продукции трансгена за счет замены последовательности AU-rich элемента, представленной AUUUA, на другие варианты и их комбинации, ограниченные следующими: AUGUA, AUAUA, GUGUG, AGGGA, GAGAG [5]. Однако указанная последовательность дестабилизирующего элемента в 3'UTR характерна далеко не для всех генов (описана большинством исследователей для G-CSF), а, с другой стороны, ею не исчерпывается перечень дестабилизирующих элементов, в связи с чем продление жизни мРНК может быль нивелировано.
Другими авторами разработана специальная последовательность 3'UTR гена эритропоэтина, обеспечивающая пролонгированную продукцию трансгена, входящего в состав плазмидной ДНК. Последовательность строго конкретизирована и имеет длину 100 нуклеотидов [6].
Описаны также способы элиминации специфических последовательностей 3'UTR, ответственных за связывание с различными микроРНК, индуцирующими деградацию мРНК [7].
Однако большинство предлагаемых изменений последовательности 3'UTR относятся к протяженным делециям или заменам, что неизбежно сопряжено с риском возникновения негативных эффектов на метаболизм мРНК. Кроме того, предлагаемые решения крайне зависимы от кодирующей области гена, поэтому одни неприменимы, другие недостаточно эффективны для гена vegf и продления жизни продукта его транскрипции.
Стоящие же перед нами задачи сводились к необходимости увеличить продукцию VEGF таргетными клетками (на примере клеток человека линии HEK293, мультипотентных мезенхимных стромальных клеток, фибробластов человека и пр.), в которые проникла плазмидная ДНК, за счет увеличения продолжительности жизни специфической мРНК указанного гена с помощью оптимизиции его 3'UTR.
VEGF и его биологическая роль.
VEGF - семейство биологически активных белков, впервые выделенных J. Folkman с соавт. в 1971 [8], которые считаются одними из основных ауто- и паракринных факторов регуляции васкуло-, ангио(VEGF-А, В; PIGF) и лимфогенеза (VEGF-C, D); вырабатываются клетками всех тканей организма, включая эпителиальные.
В постнатальном периоде развития человека наибольшее влияние на формирование кровеносных сосудов оказывает VEGF-A (изоформы 121, 145, 148, 165, 183, 189, 206) [9]. Обнаружены три типа рецепторов VEGF. 1 и 2 тип вовлечены в ангиогенез, 3 - в образование лимфатических сосудов. При этом рецептор 1 типа обладает большей афинностью к VEGF, однако его тиразинкиназная активность гораздо ниже, чем у рецептора 2 типа, что расценивается как один из регуляторных механизмов, предотвращающих избыточную активность VEGF. Соответственно, именно через рецептор 2 типа в норме реализуются эффекты VEGF [10, 11]. После взаимодействия VEGF со специфическим рецептором 2 типа происходит аутофосфорилирование его внутриклеточных тирозиновых сайтов (Y951, 1054, 1059, 1175, 1214) киназных и карбокситерминального доменов [11], которые, в свою очередь, активируют ряд внутриклеточных белков, таких как фосфолипазы Су, Св3, адаптерные белки SRK, NCK, SHB, SCK и др., являющиеся первыми звеньями сложных каскадов трансдукции сигналов, изменяющих морфофункциональное состояние клеток-мишеней (главным образом, эндотелиальных). В частности, фосфолипаза Су гидролизирует мембранный фосфолипид PIP2 с образованием диацилглицерола и инозитол-1,4,5-трифосфата, увеличивающего внутриклеточное содержание кальция, которые вместе активируют протеинкиназу С, которая, в свою очередь, запускает последовательную активацию сигнального пути RAS-ERK, приводящего к индукции митоза. В результате повышается пролиферативная активность эндотелиальных клеток [10]. Фосфолипаза Св3 участвует в полимеризации актина и формировании стресс-фибрилл, обеспечивающих миграцию и двигательную активность клеток, в целом [12]. Через активацию сигнального пути фосфоинозитид-3-киназа - протеинкиназа В (PI3K/AKT) VEGF блокирует апоптоз, ингибируя каспазы 3, 7 и 9, тем самым повышая выживаемость клеток. Кроме того, ось PI3K/AKT с помощью ионов кальция моду
- 2 039395 лирует работу эндотелиальной NO-синтазы, что сопровождается увеличением продукции NO и повышением проницаемости сосудов, что является необходимым звеном в ангиогенезе (фиг. 3) [13, 14]. Таким образом, VEGF через специфический рецептор 2 типа индуцирует активацию, миграцию, пролиферацию и дифференцировку эндотелиоцитов и их клеток-предшественниц, повышение выживаемости клеток, что в сочетании с модуляцией межклеточных взаимодействий и повышением проницаемости сосудов служит необходимыми условиями формирования капилляроподобных структур с последующим ремоделированием в зрелые сосуды [10-16].
Учитывая роль VEGF как ключевого ангиогенного фактора, различные варианты кодирующего его гена используются для создания генных конструкций, показанных для лечения пациентов с заболеваниями сердечно-сосудистой системы ишемического генеза [17, 18]. Кроме того, неспецифический ангиогенный эффект таких геннотерапевтических препаратов может оказать положительное влияние при других патологических состояниях, требующих активации репаративного процесса: травмы периферических нервов [19], синдром диабетической стопы [20], боковой амиотрофический склероз [21], повреждения костей скелета [22, 23] и др.
Что касается костной ткани, то как в случае первичного, так и вторичного остеогистогенеза именно сосуды, прорастающие в рыхлую волокнистую соединительную или хрящевую ткани, создают необходимые условия для дифференцировки резидентных клеток в остеобластическом направлении, а также для миграции камбиальных резервов (периваскулярно и с кровотоком). Помимо опосредованного через ангиогенез влияния VEGF оказывает и прямое стимулирующее действие на клетки остеобластического дифферона, которые не только продуцируют VEGF [24], но и экспрессируют его рецепторы 1 и 2 типов как в эмбриогенезе [25], так и в постнатальном периоде развития [26]. Показано, что под воздействием VEGF пролиферация камбиальных клеток костной ткани значительно увеличивается (до 70%), а также активируется миграция остеогенных клеток по градиенту концентрации VEGF [27-29].
В последние годы помимо канонического - рецепторного - механизма действия VEGF появились данные о принципиально ином механизме, который обозначают как интракринный. Подтверждением этому стали результаты исследований, продемонстрировавших, что прогениторные клетки, коммитированные в остеобластическом направлении (экспрессирующие Osx), синтезируют VEGF не только на экспорт, но и для обеспечения собственной дифференцировки в остеобластическом направлении [30].
Таким образом, VEGF обладает широким спектром действия на клетки эндотелиальной и мезенхимальных клеточных линий. Основной его биологический эффект связан с индукцией формирования кровеносных и лимфатических сосудов, однако, по всей видимости, для VEGF характерны и другие механизмы прямого действия на клетки различных дифферонов через рецепторные и интракринные механизмы.
В этой связи генная конструкция ДНК с геном vegf, характеризующаяся увеличенным временем жизни мРНК трансгена vegf в клетке млекопитающего, стала бы эффективным инструментом в разработке лекарственных препаратов и ген-активированных медицинских изделий, предназначенных не только для лечения пациентов с заболеваниями сердечно-сосудистой системы, но и другой патологией, при которой локальное повышение уровня VEGF в affected. area обеспечило бы усиление репаративного процесса.
Перечень чертежей
Фиг. 1 - динамика продукции (накопления) мРНК культурами клеток, трансфицированными различными вариантами генных конструкций: 1 - Seq#1 (исходная генная конструкция), 2 - Seq#2, 3 - Seq#3, 4 - Seq#4, 5 - Seq#5, 6 - Seq#6, 7 - Seq#7, 8 - Seq#8, 9 - Seq#9, 10 - Seq#10, 11 - Seq#11.
Фиг. 2 - динамика продукции (накопления) мРНК гена vegf трансфицированной культурой клеток: А - исходная генная конструкция (Seq#1); В - оптимизированная генная конструкция Seq#11. Результаты представлены как кратное увеличение по сравнению с уровнем продукции мРНК эндогенного VEGF.
Фиг. 3 - динамика продукции мРНК гена vegf трансфицированной культурой клеток: А - эндогенная продукция (культура нетрансфицированных клеток); В - исходная генная конструкция (Seq#1); С - оптимизированная генная конструкция Seq#11.
Фиг. 4 - белок VEGF, выделенный из клеточных культур, трансфицированных генными конструкциями, 4 сут. после трансфекции: А - оптимизированной генной конструкцией Seq#11; В - исходной генной конструкцией (Seq#11); С - контроль, культура нетрансфицированных клеток. Вестерн-блоттинг, нормализация по β-актину.
Фиг. 5 - изменение уровня кровотока в ишемизированной конечности на разных сроках наблюдения: - Non ChLI control, - ChLI non treated, - Water for injection, -Seq#11 (200 мкг x 1 и 14 д), - Seq#11 (100 мкг x 14 д).
Фиг. 6 - ишемизированная мышца через 35 сут. после операции и введения: А - воды для инъекций, В - Seq#11 (200 мкг x 1 и 14 д).
Фиг. 7 - CD34+-cells/muscle fibers ratio. 1 - non ChLI control; 2 - ChLI non treated; 3 - water for injection; 4 - Seq#11 (100 мкг x 14 д).
Фиг. 8 - дефекты теменных костей кроликов, 30 сут. после имплантации остеопластических мате- 3 039395 риалов: А - кальциевый фосфат с плазмидной ДНК Seq#11, В - кальциевый фосфат без плазмидной ДНК.
Фиг. 9 - карта оптимизированной последовательности Seq#11.
Краткое описание настоящего изобретения
С использованием методов сайт-направленного мутагенеза и количественного ПЦР анализа молекул РНК в клетке нами были проанализированы конструкции, несущие различные изменения последовательности нуклеотидов 3'UTR терапевтического гена vegf, по сравнению с исходной генной конструкцией (Seq#1, разработана нами ранее). Примеры влияния некоторых изменений приведены в табл. 1. Как видно из приведенных данных, некоторые изменения нуклеотидной последовательности (делеции или замены) сказывались на продолжительности жизни положительным образом (например делеция С 1079), другие не оказывали никакого влияния (например, делеция С 1100) или приводили к уменьшению жизни мРНК (например, делеция С 1090). При этом разница в продолжительности жизни мРНК гена vegf в клетке в крайних случаях (делеция С 1079 - увеличение; делеция С 1090 - уменьшение) составляла в среднем более 6 ч при средней жизни мРНК 6 ч.
На втором этапе исследования все изменения, оказывающие положительное влияние, были использованы для создания ряда вариантов генных конструкций, несущих от четырех до десяти положительных мутаций в различных комбинациях, т.е. отличающихся последовательностью нуклеотидов на отрезке 1070-1600 (Seq#2-11).
На основании полученных данных нами была выбрана и синтезирована оригинальная 3'UTR концевая часть гена vegf, которая в совокупности с кодирующей частью гена обеспечивала увеличение продолжительности жизни транскипта гена на 70% (Seq#11), в которую были сведены некоторые мутации, оказавшие в совокупности наибольшее положительное влияние, а именно делеция С 1079, делеция Т 1111, замена А на С 1144, делеция А 1148, делеция С 1155, делеция А 1173, делеция С 1185, замена G на С 1536.
Полученный вариант генетической конструкции характеризуется максимальным временем жизни мРНК и, соответственно, наибольшей общей продукцией белка VEGF, превышающей таковую, характерную для исходной генных конструкций (Seq#1).
На основе разработанной оптимизированной генной конструкции и адъювантов, обеспечивающих криопротекцию, стабилизацию рН и получение изотонического раствора для инъекций, были созданы фармацевтические композиции, обладающие выраженной ангиогенной активностью.
Разработанные фармацевтические композиции предназначены для применения в случае заболеваний и патологических состояний, в лечении которых требуется стимуляция ангиогенеза (ишемия тканей) или репаративной регенерации тканей, которая может быть осуществлена через активацию ангиогенеза (восстановление целостности периферических нервов, костей скелета и др.).
Для производства разработанных фармацевтических композиций создан бактериальный (Е.colli) штамм-продуцент генной конструкции Seq#11, депонированный во Всероссийской коллекции микроорганизмов в соответствии с Будапештским Договором по международному депонированию микроорганизмов с целью патентования. Номер депонирования штамма VKM B-2967D. Справку о Международном депонировании штамма прилагаем.
Подробное описание настоящего изобретения
Сайт-направленный мутагенез 3'UTR гена vegf был выполнен с использованием QuikChange Lightning Site-Directed Mutagenesis Kit (Agilent Technologies, США), согласно инструкции производителя.
В результате сайт-направленного мутагенеза исходной плазмидной ДНК (Seq#1) нами были получены различные варианты изменений в 3'UTR гена vegf. Полученные варианты плазмидной ДНК с геном vegf, отличающиеся последовательностью 3'UTR, были использованы для трансфекции клеток линии HEK293 с последующим определением динамики накопления продукта экспрессии генной конструкции мРНК гена vegf.
- 4 039395
Таблица 1
Примеры некоторых проведенных изменений нуклеотидной последовательности и их влияние на продолжительность жизни мРНК
Позиция* Изменение Исходный нуклеотид Скорректированный нуклеотид Влияние на время жизни мРНК
1071 делеция С - увеличение
1079 делеция С - увеличение
1090 делеция С - уменьшение
1100 делеция с - нет влияния
1111 делеция т - увеличение
1113 замена G с нет влияния
1144 замена А с увеличение
1146 делеция G - уменьшение
1148 делеция А - увеличение
1150 делеция С - нет влияния
1155 делеция С - увеличение
1158 делеция С - уменьшение
1173 делеция А - увеличение
1175 делеция С - уменьшение
1183 делеция G - увеличение
1184 делеция С - уменьшение
1185 делеция С - увеличение
1187 замена А С нет влияния
1536 замена G С увеличение
* Примечание: нумерация нуклеотидов приведена по исходной эталонной последовательности генной конструкции Seq#1.
Для этого клетки HEK293 в количестве 2х105 помещали в лунки 6-луночного планшета с культуральной средой DMEM/F-12 с добавлением 10% FBS. После прикрепления клеток в культуральную среду вносили 10 мкг одного из полученных вариантов плазмидной ДНК (в 100 мкл воды для инъекций). В качестве негативного контроля использовали 100 мкл воды для инъекций без плазмидной ДНК, что позволяло оценить уровень продукции мРНК эндогенного vegf. Для определения уровня экспрессии гена vegf методом РТ-ПЦР из клеток через 6, 12, 24, 36 и 48 ч после трансфекции выделяли общую РНК на колонках с помощью набора PureLink RNA Mini Kit (Invitrogen, США), согласно инструкции производителя. Кратко, осажденные клетки тщательно лизировали в объеме 350 мкл лизирующего буфера в присутствии 1% β-меркаптоэтанола. Добавляли равный объем 70% этанола, вортексировали и переносили на колонки. Центрифугировали 1 мин при 12,4 тыс. об/мин. Сливали отцентрифугированную жидкость. Добавляли на мембрану 600 мкл промывочного раствора 1, центрифугировали 15 с при 12,4 тыс. об/мин, убирали жидкость. Добавляли на мембрану 500 мкл промывочного раствора 2, центрифугировали при тех же условиях, убирали жидкость. Повторяли отмывку с промывочным раствором 2. Переносили колонки в новые пробирки и центрифугировали 1 мин при 12,4 тыс. об/мин. Переносили колонки в пробирки для сбора РНК. Непосредственно на мембрану вносили 15 мкл воды, без РНКаз, инкубировали 1 мин при комнатной температуре, центрифугировали 90 с при 12,4 тыс. об/мин. До дальнейшего применения пробы хранились при температуре -80°С. Далее проводили синтез первой цепи кДНК с помощью реактивов компании Promega (США). Уровень экспрессии таргетных генов (в моль) определяли по сравнению с экспрессией гена домашнего хозяйства β-актина с помощью набора для проведения ПЦР в реальном времени в присутствии SYBR Green I и референсного красителя ROX (Синтол, Россия) На фиг. 1 приведен пример одной из нуклеотидных замен, обеспечивающих увеличение жизни мРНК.
Постановка реакции обратной транскрипции:
1) на льду к 10 мкл РНК добавляли 2,5 мкл Random Hexamer, инкубировали 5 мин при 70°С;
2) убирали лед;
3) осаждали капли;
4) приготавливали смесь для каждого образца:
мкл буфера для обратной транскриптазы MMLV 5X 1,25 дНТП,
1, 25 RNase Inhibitor, мкл MMLV транскриптазы, мкл Н2О;
5) добавляли по 12,5 мкл смеси в каждую пробирку, инкубировали 1 ч при 37°С;
6) останавливали реакции инкубацией при 75° С в течение 5 мин.
- 5 039395
Все образцы кДНК хранились при температуре -80°С.
Для выполнении ПЦР в реальном времени использовали прямые и обратные праймеры к vegf и βactin (табл. 2). Реакционную смесь для ПЦР в реальном времени в присутствии SYBR Green I применяли согласно инструкции производителя. Измерения проводили на приборе CFX90 Touch Real-time PCR Detection System.
Таблица 2
Праймеры для выполнения ПЦР
Ген Прямой праймер Обратный праймер
VEGF ACATTGTTGGAAGAAGCAGCC С AGGAAGGTCAACCACTCACACA
β-actin CGCCCCAGGCACCAGGGC GGCTGGGGTGTTGAAGGT
В результате проведенных исследований были выявлены мутации, положительно влияющие на время жизни мРНК (делеция С 1071, делеция С 1079, делеция Т 1111, замена А на С 1144, делеция А 1148, делеция С 1155, делеция А 1173, делеция G 1183, делеция С 1185, замена G на С 1536 и др.). Указанные изменения в различных комбинациях из 4-10 мутаций были сведены в синтетические конструкты, включающие кодирующую часть гена vegf и 3'UTR, оптимизированные по отношению к гену vegf. Основные из полученных вариантов представлены Seq#2-11. Чтобы выбрать наиболее оптимальный вариант из разработанных генных конструкций, было выполнено сравнительное исследование, в ходе которого определяли динамику накопления мРНК трансфицированными клетками с помощью ПЦР-РТ, как указано выше. Результаты основных десяти генных конструкций в виде кратности увеличения концентрации мРНК на сроках 24 и 48 ч после трансфекции представлены на фиг. 1.
Как следует из графика, в некоторых случаях комбинации нескольких мутаций, каждая из которых в отдельности оказывала положительное влияние на время жизни мРНК, не сопровождались значимым увеличением накопления мРНК, по сравнению с исходной генной конструкцией (Seq#1). Среди генных конструкций, характеризовавшихся увеличением времени жизни мРНК, отсутствие снижения концентрации определялось только в случае Seq#11, тогда как в остальных случаях уровень мРНК снижался через 48 ч после трансфекции по сравнению с показателем на сроке 24 ч. В этой связи именно данная генная конструкция была выбрана как наиболее оптимальная и подвергнута дальнейшим сравнительным исследованиям.
На фиг. 2 приведен результат ПЦР-РТ конструкции Seq#11 в сравнении с неоптимизированной последовательностью Seq#1. На приведенном графике видно, что уже через 12 ч уровень мРНК гена VEGF оптимизированной конструкции превышал значение параметра в контроле, где для трансфекции была использована исходная плазмидная ДНК. Важно, что динамика прироста концентрации мРНК в обеих группах совпадала с пиком на отметке в 24 ч после трансфекции. Однако только в случае исходной генной конструкции наблюдалось постепенное снижение уровня мРНК, обусловленное быстрой биодеградацией молекул, тогда как в случае оптимизированной конструкции (Seq#11) определялась фаза плато длительностью не менее 6 ч с последующим плавным снижением концентрации мРНК. При этом на крайней временной точке разница между группами по данному показателю составила 190%.
Разработанная плазмидная ДНК, несущая ген vegf, была исследована in vitro для количественной оценки продукции белка VEGF клетками HEK273. При этом концентрация терапевтического белка определялась в культуральной среде с помощью ELISA через 6, 12, 24, 48, 72 и 96 ч после трансфекции клеток. Оказалось, что накопленная концентрация терапевтического белка в культуральной среде клеток, трансфицированных генной конструкцией, значительно превышала значение параметра в контроле, в том числе в группах с альтернативными вариантами разработанных генных конструкций, характеризовавшихся неоптимальной последовательностью 3'UTR гена vegf и стандартным временем жизни мРНК трансгена (фиг. 3). Важно, что максимальный прирост концентрации VEGF в культуральной среде обеих групп трансфицированных клеток (увеличение в 2,3-2,4 раза) наблюдался через 36 ч после начала эксперимента, что соответствовало данным ПЦР-РТ с пиковой концентрацией мРНК генных конструкций на временной точке 24 ч. В дальнейшем, если концентрация белка VEGF в среде трансфицированных оптимизированной генной конструкцией клеток продолжала нарастать высокими темпами, то в группе с исходной плазмидной ДНК прирост существенно замедлялся, незначительно превышая прирост в контрольной группе (культура без трансфекции).
Определение накопленной концентрации белка VEGF в культуральной среде позволяет судить о динамике его продукции клетками и количественном приросте на каждом контрольном сроке, однако не позволяет оценить внутриклеточную концентрацию белка на каждой из временных точек. При этом особенно важным в комплексной оценке времени жизни мРНК генных конструкций является определение уровня белка VEGF в клетках на крайних сроках наблюдения. В этой связи клетки после 4 сут. культивирования были подвергнуты Вестерн-блоттинг анализу по стандартной методике с использованием антител к белку VEGF. Концентрация белка оказалась наибольшей в лизате клеток, трансфицированных оптимизированной генной конструкцией Seq#11 (фиг. 4). При этом уровень белка в случае клеток, трансфицированных исходной конструкцией, на данном сроке наблюдения незначительно превышал эндогенную концентрацию (контроль).
- 6 039395
Более того, кондиционированная среда клеток, трансфицированных оптимизированными генными конструкциями, характеризовалась статистически значимо большей ангиогеннной активностью, определенной в стандартном тесте HUVEC tube formation assay.
Сопоставляя результаты проведенных исследований, можно заключить, что мРНК оптимизированной генной конструкции (Seq#11) характеризовалась большим временем жизни, что привело к более длительной продукции высоких концентраций терапевтического белка VEGF вплоть до крайних сроков наблюдения. Исходная же генная конструкция характеризовалась меньшей стабильностью мРНК, коротким и менее выраженным биологическим эффектом.
Таким образом, основной технический результат настоящего изобретения состоит в увеличении общей продукции терапевтического белка за счет увеличения времени жизни мРНК, достигнутой посредством выявления оптимальных изменений последовательности 3'UTR гена vegf. Неожиданным стал тот факт, что замена всего одного нуклеотида в целевой области оказала столь выраженный эффект на продолжительность жизни мРНК и, соответственно, продукцию терапевтического белка. Во всех известных работах в данной области исследователи выполняли другие изменения, с вовлечением гораздо большего количества нуклеотидов. Учитывая недостаточную изученность функционального предназначения каждого сайта в 3'UTR мРНК, наиболее благоприятными с точки зрения безопасности и нивелирования влияния на другие аспекты метаболизма мРНК являются именно минимальные, точечные изменения, в случае, если они позволяют добиться нужного эффекта. Важно отметить, что длина последовательности 3'UTR гена vegf составляет не менее 250 нуклеотидов, следовательно, общее количество только единичных, точечных мутаций в виде замены одного нуклеотида на другой составляет не менее 750. Принимая во внимание другие возможные варианты изменений (делеции, дупликации, инсерции), а также с учетом задействования более одного сайта, количество вариантов генных конструкций, отличающихся 3'UTR гена vegf, составляет сотни тысяч. Таким образом, выявление нескольких вариантов изменений последовательности, приводящих к увеличению продолжительности жизним мРНК без негативного влияния на другие аспекты ее функционирования равносильно выигрышу в лотерею.
Учитывая опыт в разработке геннотерапевтических препаратов нами были созданы фармацевтические композиции на основе разработанных оптимизированных генных конструкций и фармакологически приемлемых вспомогательных веществ, представленных по меньшей мере одним криопротектантом, обладающим свойствами наполнителя, и стабилизатором рН, в эффективных количествах обеспечивающих получение изотонического раствора плазмидной ДНК для инъекций.
Состав фармацевтической композиции, обеспечивающий сохранение свойств оптимизированной плазмидной ДНК, представляет собой:
плазмидная ДНК от 0,1 до 10 мг/мл, предпочтительно от 0,5 до 4 мг/мл, наболее предпочтительно от 0,8 до 1,2 мг/мл, глюкоза (декстроза) от 200 до 400 мМ, предпочтительно от 250 до 350 мМ, наболее предпочтительно от 280 до з2о мМ, фосфат натрия (смесь тризамещенного, двузамещенного и однозамещенного фосфатов натрия) в концентрации от 3 до 30 мМ, предпочтительно от 5 до 20 мМ, наболее предпочтительно от 8 до 12 мМ, рН раствора от 7,0 до 9,0, предпочтительно от 7,2 до 8,5, наиболее предпочтительно от 7,4 до 8,2.
Состав одного из вариантов фармацевтической композиции следующий:
плазмидная ДНК по Seq#11 - 1,2 мг;
декстрозы моногидрат - 60 мг;
натрия гидрофосфата додекагидрат - 3,94 мг;
натрия дигидрофосфата дигидрат - 0,16 мг.
Данный вариант были использован в исследованиях, описанных в примерах.
Разработанные генные конструкции и фармацевтические композиции на их основе были исследованы in vivo в экспериментальных моделях, воспроизводящих основные патофизиологические и патоморфологические симптомы, характерные для заболеваний, являющихся известными показаниями к применению плазмидной ДНК с геном vegf.
Пример 1. Модель хронической ишемии нижних конечностей.
Исследование было выполнено на иммунодефицитных мышах (n=90), которым для моделирования хронической ишемии нижней конечности (ХИНК) выполнялось пересечение правой бедренной артерии в паховой области. Введение фармацевтической композиции на основе плазмидной ДНК по Seq#11 выполнялось в двух вариантах: 100 мкг однократно на 14-е сут. и по 200 мкг двукратно на 1-е и 14-е сут. - в проксимальный и дистальный участок послеоперационной раны. Контролем служили три группы животных: здоровые, оперированные но без введения каких-либо веществ; оперированные с введением воды для инъекций. Животных выводили из эксперимента через 7, 21, 35 сут. после операции, конечности подвергали гистологическому исследованию с определением количества сосудов и отношения числа эндотелиоцитов к мышечным волокнам. На сроках 1, 7, 14, 21, 28 и 35 сут. выполняли лазерную сканирующую доплерометрию для определения уровня кровотока (blood flow perfusion rate) в ишемизированной и здоровой конечности.
Оказалось, что независимо от дозы и режима введения уровень кровотока в ишемизированной ко- 7 039395 нечности увеличивался только в экспериментальных группах через 7 сут. после введения разработанного геннотерапевтического препарата. Уровень кровотока увеличивался, достигая к крайнему сроку наблюдения значений, близких к параметру здоровых животных. В контрольных группах оперированных животных уровень кровотока оставался на низком уровне без положительной динамики (фиг. 5).
Функциональные результаты были подтверждены данными гистологического исследования. В экспериментальных группах было выявлено большее количество сосудов (фиг. 6), а также большее отношение CD34+-клеток (эндотелиоцитов) к мышечным волокнам (фиг. 7).
Пример 2. Модель костного дефекта критического размера.
Разработанная генная конструкция по Seq#11 была объединена с матриксом из кальциевого фосфата по ранее разработанному протоколу.
1. Подготовка носителя:
а) отмывка (инкубирование в 0,5М фосфатного буфера в объеме 1 мл при температуре 37°С при постоянном встряхивании в течение 12 ч);
б) уравновешивание (обработка 10 мМ фосфатного буфера в объеме 1 мл при температуре 37°С при постоянном встряхивании, 3 раза по 10 мин);
в) высушивание (инкубирование при температуре 37°С до полного высыхания - 3 ч).
2. Нанесение нуклеиновой кислоты (инкубирование с раствором плазмидной ДНК по Seq#11 в 10 мМ фосфатном буфере в концентрации 1 мкг/мкл при температуре 37°С и постоянном встряхивании в течение 12 ч).
3. Обработка полученного комплекса носитель-генная конструкция:
а) отмывка (обработка 5 мМ раствором фосфата в объеме 1 мл 3 раза);
б) высушивание (инкубирование при температуре 37°С до полного высыхания - 3 ч).
Полученный ген-активированный костный графт был исследован в ортотопических условиях. Исследование было выполнено на кроликах породы Шиншилла (n=15). Каждому животному выполнялись два одинаковых симметричных полнослойных дефекта обеих теменных костей, диаметром по 10 мм, которые являются критическими для кроликов, так как естественный восстановительный процесс, без каких-либо оптимизирующих влияний не завершается полной консолидацией. В дефекты правых теменных костей имплантировали ген-активированный остеопластический материал (экспериментальная группа), состоящий из кальциевого фосфата и плазмидной ДНК Seq#11, в дефекты левых теменных костей - носитель без плазмидной ДНК (контрольная группа). Животных выводили из эксперимента через 30, 60 и 90 сут., результаты оценивали с использованием компьютерной томографии и гистологических методов.
В связи с исходно высокой плотностью выбранного носителя (около 1800 HU) и длительностью его биорезорбции (более 6 мес.) объективно оценить признаки репаративного остеогенеза в сравнительном аспекте не удалось. Однако по данным гистологического исследования только в случае применения генактивированного остеопластического материала признаки остеогенеза наблюдались уже через 30 сут. после операции в центральной части дефекта (фиг. 8).
Как видно на фиг. 8, гранулы материла, расположенные в центральной части дефекта, выполненного рыхлой волокнистой соединительной тканью, являлись источником репаративного остеогенеза, тогда как в контроле кальциевый фосфат без плазмидной ДНК был окружен только рыхлой волокнистой соединительной тканью без признаков образования костной ткани. Полученные данные свидетельствуют о том, что введение плазмидной ДНК Seq#11 в область костного дефекта критических размеров привело к выраженной индукции репаративного остеогенеза, что может быть обусловлено как опосредованным через ангиогенез действием, так и прямым влиянием VEGF на клетки мезенхимальной линии.
Таким образом, представленные выше примеры иллюстрируют тот факт, что разработанная оптимизированная генная конструкция и фармацевтическая композиция на ее основе обладают выраженной ангиогенной активностью, что позволяет рассчитывать на эффективность ее использования в лечении ишемических заболеваний сердечно-сосудистой системы. Кроме того, оптимизированная генная конструкция с геном vegf может оказаться эффективной в лечении других патологических состояний, требующих активации репаративного процесса, таких как повреждения кожи и опорно-двигательного аппарата, травмы периферических нервов, синдром диабетической стопы, боковой амиотрофический склероз.
- 8 039395
Литература.
. Gene therapy clinical trials worldwide, http://www.abedia.com/wiley/years.php.
. Grigorian A.S., Schevchenko K.G. Some possible molecular mechanisms of VEGF encoding plasmids functioning. Cell. Tanspl. Tiss. Engin. 2011. VI (3): 24-8.
. Baboo S., Cook P.R. Dark matter worlds of unstable RNA and protein. Nucleus 2014; 5(4): 281-6.
. Vislovukh A., Vargas T.R., Polesskaya A. et al. Role of 3'-untranslated region translational control in cancer development, diagnostics and treatment. World J. Biol. Chem. 2014; 5(1): 40-57.
. Malter J. Method to increase regulatory molecule production. US patent №5,587,300; 24.12.1996.
. Sytkowski A.J., Grodberg J. Erythropoietin DNA having modified 5’ and 3’ sequences and its use to prepare EPO therapeutics. US patent №6,153,407; 28.11.2000 . Mauro V.P., Chappell S.A., Zhou W. et al. Reengineering mRNA primary structure for enhanced protein production. US patent application №2012/0053333 Al; 01.03.2012.
. Folkman J., Merler E., Abernathy C. et al. Isolation of a tumor factor responsible for angiogenesis. J. Exp. Med. 1971; 133(2): 275-88.
. Goel H.L., Mercurio A.M. VEGF targets the tumour cell. Nat. Rev. Cancer. 2013; 13(12): 871-82.
lO .Koch S., Claesson-Welsh L. Signal transduction by vascular endothelial growth factor receptors. Cold Spring Harb. Perspect. Med. 2012; 2(7): a006502.
.Matsumoto T., Bohman S., Dixelius J. et al. VEGF receptor-2 Y951 signaling and a role for the adapter molecule TSAd in tumor angiogenesis. EMBO J. 2005; 24(13): 2342-53.
.Bhattacharya R., Kwon J., Li X. et al. Distinct role of PLCbeta3 in VEGF-mediated directional migration and vascular sprouting. J. Cell Sci. 2009; 122(Pt 7): 1025-34.
.Coultas L., Chawengsaksophak K., Rossant J. Endothelial cells and VEGF in vascular development. Nature 2005; 438(7070): 937-45.
.Olsson A.K., Dimberg A., Kreuger J. et al. VEGF receptor signalling - in control of vascular function. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2006; 7(5): 359-71.
.Ma X.N., Li Q.P., Feng Z.C. Research progress in cytokines and signaling pathways for promoting pulmonary angiogenesis and vascular development. Zhongguo Dang Dai Er KeZaZhi. 2013; 15(9): 800-5.
.Арутюнян И.В., Кананыхина Е.Ю., Макаров A.B. Роль рецепторов VEGF-A165 в ангиогенезе. Клеточная трансплантология и тканевая инженерия 2013; VIII(l): 128.
.Cherviakov lu.A., Staroverov I.N., Nersesian E.G. et al. The opportunities for genic therapy of chronic obliterating diseases of lower limbs arteries. Khirurgiia (Mosk). 2014; (4): 40-5.
.Willyard C. Limb-saving medicines sought to prevent amputation. Nature Medicine 2012; 18(3): 328.
.Hillenbrand M., Holzbach T., Matiasek K. et al. Vascular endothelial growth factor gene therapy improves nerve regeneration in a model of obstetric brachial plexus palsy. Neurol Res. 2015; 37(3): 197-203.
.Kessler JA. Vascular endothelial growth factor gene transfer for diabetic polyneuropathy.Ann Neurol. 2009; 65(4): 362-4.
.Zavalishin LA., Bochkov N.P., Suslina Z.A. et al. Gene therapy of amyotrophic lateral sclerosis.Bynn Exp Biol Med. 2008; 145(4): 483-6.
.Zhao D.M., Yang J.F., Wu S.Q. et al. Effect of vascular endothelial growth factor 165 gene transfection on repair of bone defect: experiment with rabbits. Zhonghua Yi Xue Za Zhi. 2007; 87(25): 1778-82.
.Geiger F., Bertram H., Berger I. et al. Vascular endothelial growth factor gene-activated matrix (VEGF165-GAM) enhances osteogenesis and angiogenesis in large segmental bone defects. J. Bone Miner. Res. 2005; 20(11): 2028-35.
.Neve A., Cantatore F.P., Corrado A. et al. In vitro and in vivo angiogenic activity of osteoarthritic and osteoporotic osteoblasts is modulated by VEGF and vitamin D3 treatment. Regul. Pept. 2013; 184: 81-4.
.Marini M., Sarchielli E., Тосе M. et al. Expression and localization of VEGF receptors in human fetal skeletal tissues. Histol. Histopathol. 2012; 27(12): 1579-87.
.Tombran-Tink J., Barnstable C.J. Osteoblasts and osteoclasts express PEDF, VEGF-A
- 9 039395 isoforms, and VEGF receptors: possible mediators of angiogenesis and matrix remodeling in the bone. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2004; 316(2): 573-9.
.Mayr-Wohlfart U., Waltenberger J., Hausser H. et al. Vascular endothelial growth factor stimulates chemotactic migration of primary human osteoblasts. Bone 2002; 30(3): 4727.
.D' Alimonte I., Nargi E., Mastrangelo F. et al. Vascular endothelial growth factor enhances in vitro proliferation and osteogenic differentiation of human dental pulp stem cells. J. Biol. Regul. Homeost. Agents. 2011; 25(1): 57-69.
.Yang Y.Q., Tan Y.Y, Wong R. et al. The role of vascular endothelial growth factor in ossification. Int. J. Oral Sci. 2012; 4(2): 64-8.
3O .Berendsen A.D., Olsen B.R. How vascular endothelial growth factor-A (VEGF) regulates differentiation of mesenchymal stem cells. J. Histochem. Cytochem. 2014; 62(2): 103-8.

Claims (7)

1. Способ получения генной конструкции, характеризующейся увеличенным временем жизни мРНК трансгена vegf в клетке млекопитающего, согласно которому указанную клетку трансфицируют генной конструкцией, в которой 3'-некодирующая область гена vegf модифицирована посредством одной или нескольких точечных делеций гуанина либо аденина и/или замен гуанина либо аденина на цитозин, затем определяют время жизни мРНК для каждой совокупности точечных модификаций, данные анализируют и выбирают генную конструкцию, содержащую 3'-некодирующую область с совокупностью точечных модификаций, показавшую наилучший результат по увеличению жизни мРНК.
2. Способ по п.1, где 3'-некодирующая область мРНК является некодирующей областью гена, выбранного из vegf121, vegf145, vegf165, vegf185.
3. Плазмидная ДНК, полученная способом по п.1, в которой 3'-некодирующая область гена vegf, выбранного из изоформ 121, 145, 165, 185, модифицирована посредством одной или нескольких точечных делеций гуанина либо аденина и/или замен гуанина либо аденина на цитозин.
4. Плазмидная ДНК гена vegf165, представленная последовательностью Seq#11, полученная способом по п.1, отличающаяся тем, что содержит следующие модификации относительно Seq#1: делецию С1079, делецию Т1111, замену А1144С, делецию А1148, делецию С1155, делецию А1173, делецию А1185, замену G1536C.
5. мРНК, содержащая 3'-некодирующую область, соответствующую плазмидной ДНК по п.4.
6. Фармацевтическая композиция для регенерации соединительной, мышечной, нервной тканей, включающая плазмидную ДНК по п.4 или 5 и по меньшей мере один криопротектор и стабилизатор рН.
7. Применение плазмидной ДНК по п.5 в регенерации соединительной, нервной, мышечной, костной тканей.
EA201700456A 2015-05-26 2015-12-07 СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ГЕННОЙ КОНСТРУКЦИИ И ПЛАЗМИДНАЯ ДНК С УВЕЛИЧЕННЫМ ВРЕМЕНЕМ ЖИЗНИ мРНК ТРАНСГЕНА VEGF В КЛЕТКЕ МЛЕКОПИТАЮЩЕГО, ПЛАЗМИДНАЯ ДНК ГЕНА VEGF165, мРНК, ФАРМАЦЕВТИЧЕСКАЯ КОМПОЗИЦИЯ И ПРИМЕНЕНИЕ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК EA039395B1 (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015119768A RU2612497C2 (ru) 2015-05-26 2015-05-26 Оптимизированная нуклеотидная последовательность и фармацевтическая композиция на ее основе с пролонгированной экспрессией трансгена vegf
PCT/RU2015/000852 WO2016190774A1 (ru) 2015-05-26 2015-12-07 Оптимизированная нуклеотидная последовательность и фармацевтическая композиция на ее основе с пролонгированной экспрессией трансгена vegf

Publications (2)

Publication Number Publication Date
EA201700456A1 EA201700456A1 (ru) 2018-06-29
EA039395B1 true EA039395B1 (ru) 2022-01-21

Family

ID=57392933

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
EA201700456A EA039395B1 (ru) 2015-05-26 2015-12-07 СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ГЕННОЙ КОНСТРУКЦИИ И ПЛАЗМИДНАЯ ДНК С УВЕЛИЧЕННЫМ ВРЕМЕНЕМ ЖИЗНИ мРНК ТРАНСГЕНА VEGF В КЛЕТКЕ МЛЕКОПИТАЮЩЕГО, ПЛАЗМИДНАЯ ДНК ГЕНА VEGF165, мРНК, ФАРМАЦЕВТИЧЕСКАЯ КОМПОЗИЦИЯ И ПРИМЕНЕНИЕ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК

Country Status (10)

Country Link
US (2) US9896493B2 (ru)
EP (1) EP3305901B1 (ru)
CN (1) CN107614687B (ru)
AU (1) AU2015396177B2 (ru)
BR (1) BR112017023058B1 (ru)
CA (1) CA2985608C (ru)
EA (1) EA039395B1 (ru)
MX (1) MX2017013206A (ru)
RU (1) RU2612497C2 (ru)
WO (1) WO2016190774A1 (ru)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114908089B (zh) * 2021-02-08 2024-03-15 上海细胞治疗集团有限公司 3’utr的构建方法和应用

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5587300A (en) * 1994-04-26 1996-12-24 Wisconsin Ulumni Research Foundation Method to increase regulatory molecule production

Family Cites Families (20)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6153407A (en) 1992-07-28 2000-11-28 Beth Israel Deaconess Medical Center Erythropoietin DNA having modified 5' and 3' sequences and its use to prepare EPO therapeutics
AU742365B2 (en) 1997-03-14 2002-01-03 Selective Genetics, Inc. Adenoviral vectors with modified tropism
US6627436B2 (en) 1997-10-31 2003-09-30 Stratagene Vector for gene expression in prokaryotic and eukaryotic systems
BR9908754A (pt) 1998-03-13 2000-11-28 American Home Prod Composições liofilizada e lìquida de polinucleotìdeo e farmacêutica, processos para tratar um paciente mamìfero e para preparar uma composição liofilizada de polinucleotìdeo, produto liofilizado de polinucleotìdeo, e, processo para liofilizar uma composição de polinucleotìdeo
US7598079B2 (en) * 1998-12-24 2009-10-06 Novation Pharmaceuticals, Inc. Assay for identifying compounds which affect stability of mRNA
AU5646300A (en) 1999-02-10 2000-08-29 Government Of The United States Of America, As Represented By The Secretary Of The Department Of Health And Human Services, The Methods of stimulating angiogenesis
US7087411B2 (en) 1999-06-08 2006-08-08 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Fusion protein capable of binding VEGF
US7288521B2 (en) 2000-04-06 2007-10-30 Franco Wayne P Growth factor therapy mobilization of stem cells into the peripheral blood
CN1351055A (zh) 2000-10-26 2002-05-29 上海博德基因开发有限公司 一种新的多肽——人的血管内皮生长因子165受体(vegf-165r)10.67和编码这种多肽的多核苷酸
CA2451311A1 (en) * 2001-06-20 2003-01-03 Ludwig Institute For Cancer Research Stimulation of vascularization with vegf-b
US7981863B2 (en) 2001-09-19 2011-07-19 Neuronova Ab Treatment of Parkinson's disease with PDGF
CN100431611C (zh) 2002-07-04 2008-11-12 朱静亚 多肽-脂质体与人血管内皮生长因子基因重组质粒复合物及用途
WO2004050126A2 (en) 2002-12-02 2004-06-17 Anges Mg, Inc. Compositions for treating or preventing angiogenesis-dependent symptoms
EP1791945A1 (en) 2004-09-17 2007-06-06 Centelion Stable liquid formulations of plasmid dna
RU2297848C2 (ru) 2005-05-11 2007-04-27 Александр Веньяминович Иткес Генно-инженерная конструкция vegf-ибмед (vegf-ibmed)
ES2338400B1 (es) 2008-05-06 2011-09-14 David Benet Ferrus Conjunto de moleculas antiangiogenicas y su uso.
JP5735927B2 (ja) 2009-02-24 2015-06-17 ザ スクリプス リサーチ インスティテュート タンパク質生産の増強のためのmRNAの一次構造の再操作
US8367350B2 (en) 2009-04-29 2013-02-05 Morehouse School Of Medicine Compositions and methods for diagnosis, prognosis and management of malaria
RU2431669C2 (ru) * 2009-06-23 2011-10-20 Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Казанский государственный университет им. В.И. Ульянова-Ленина" Способ получения лекарственного препарата генетически модифицированных клеток
RU2542385C2 (ru) * 2012-08-31 2015-02-20 Общество с ограниченной ответственностью "НекстГен" Способ получения фармацевтической композиции для индукции развития кровеносных сосудов в тканях, фармацевтическая композиция, полученная этим способом, и способ лечения ишемии тканей и/или органов человека

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5587300A (en) * 1994-04-26 1996-12-24 Wisconsin Ulumni Research Foundation Method to increase regulatory molecule production

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
SHVALB P.G. et al. "Effektivnost i bezopasnost primeneniya preparata "Neovaskulgen" v kompleksnoi terapii patsientov s khronicheskoi ishemiei nizhnikh konechnostei (IIb-III faza klinicheskikh ispytanii), Kletochnaya transplantologiya i tkanevaya inzheneriya, 2011, Vol. VI, № 3, p. 76-83 *

Also Published As

Publication number Publication date
EP3305901A1 (en) 2018-04-11
RU2015119768A (ru) 2016-12-20
EA201700456A1 (ru) 2018-06-29
CN107614687B (zh) 2021-05-28
CA2985608A1 (en) 2016-12-01
CN107614687A (zh) 2018-01-19
CA2985608C (en) 2021-06-15
EP3305901B1 (en) 2020-09-30
US20180086800A1 (en) 2018-03-29
MX2017013206A (es) 2018-02-15
BR112017023058A2 (pt) 2018-10-16
RU2612497C2 (ru) 2017-03-09
US20160347803A1 (en) 2016-12-01
US10040837B2 (en) 2018-08-07
EP3305901A4 (en) 2018-10-24
AU2015396177B2 (en) 2019-02-28
AU2015396177A1 (en) 2017-11-02
US9896493B2 (en) 2018-02-20
WO2016190774A1 (ru) 2016-12-01
BR112017023058B1 (pt) 2024-03-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Kim et al. Osteogenesis induced by a bone forming peptide from the prodomain region of BMP-7
Wang et al. MiR-206 regulates neural cells proliferation and apoptosis via Otx2
Chen et al. miR‐136‐3p targets PTEN to regulate vascularization and bone formation and ameliorates alcohol‐induced osteopenia
Carnac et al. Myostatin: biology and clinical relevance
KR20090089462A (ko) 병적 혈관형성 및 혈관 투과성을 치료하기 위한 조성물 및 방법
Liu et al. A novel transgenic murine model with persistently brittle bones simulating osteogenesis imperfecta type I
Lal et al. Troponin I-Interacting Protein Kinase–A Novel Cardiac-Specific Kinase, Emerging as a Molecular Target for the Treatment of Cardiac Disease–
Yang et al. Collagen type V a2 (COL5A2) is decreased in steroid-induced necrosis of the femoral head
JPWO2011111824A1 (ja) マイクロrnaを用いた心筋細胞の増殖方法
US8153589B2 (en) JNK3 as a target for the treatment of angiogenesis-related diseases
JP5794559B2 (ja) 間葉系細胞の分化を調節するための薬剤及びその利用
US20090233854A1 (en) Novel application of apelin
RU2612497C2 (ru) Оптимизированная нуклеотидная последовательность и фармацевтическая композиция на ее основе с пролонгированной экспрессией трансгена vegf
Sagnol et al. Epithelial Splicing Regulatory Protein 1 (ESRP1) is a new regulator of stomach smooth muscle development and plasticity
US20030220249A1 (en) Factors for angiogenesis, vasculogenesis, cartilage formation, bone formation, and methods of use thereof
Liu et al. Osteochondrogenesis by TGF-β3, BMP-2 and noggin growth factor combinations in an ex vivo muscle tissue model: Temporal function changes affecting tissue morphogenesis
Nagamine et al. XRASGRP2 expression during early development of Xenopus embryos
Lung et al. Global wnt inhibition with a porcupine inhibitor decreases established trabecular bone in a mouse model of fibrous dysplasia
KR101671100B1 (ko) 대사성 질환 예방 또는 치료용 조성물
Joshi et al. RGS4 controls airway hyperresponsiveness through GAP-independent mechanisms
JP2024046128A (ja) 骨形成促進剤
JP2024055041A (ja) Soce異常症を治療又は予防するための医薬組成物
KR20240072367A (ko) Pdgf 유래 신규 펩타이드 및 이의 용도
KR20120004097A (ko) Vegfr―3을 포함하는 허혈질환의 예방 또는 치료용 조성물
CN111701021A (zh) Nipa2作为药物靶点在制备治疗2型糖尿病性骨质疏松的药物中的应用