DE3816063A1 - Verfahren zur herstellung von l-aminosaeuren und aminosaeure-amiden - Google Patents

Verfahren zur herstellung von l-aminosaeuren und aminosaeure-amiden

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Description

Die Erfindung betrifft das in den Patentansprüchen gekennzeichnete Verfahren zur Herstellung von L-Aminosäuren und Aminosäure-amiden.
Verfahren zur fermentativen Herstellung von L-Aminosäuren aus D,L-α-Aminonitrilen sind vorbekannt. (Europäische Patentanmeldung 23 214). Bei diesen vorbekannten Verfahren wird die L-Form des α-Aminonitrils zur L-Amino­ säure hydrolysiert, während die D-Form des α-Aminonitrils nicht hydrolysiert oder nur zum D-Aminosäure-amid hydrolysiert wird. Dies bedingt, daß mittels der vorbekannten Verfahren theoretisch nur Ausbeuten von 50% erzielt werden können.
Es wurde nun gefunden, daß gewisse Mikroorganismen nicht nur L-Aminosäureamid- Amidasen besitzen, sondern darüber hinaus auch Aminosäureamid-Racemasen haben, die die D-Aminosäure-amide zu D,L-Aminosäureamiden razemisieren. Diese Mikro­ organismen haben somit die Fähigkeit auch die D-Form der D,L-Aminosäure-amide in L-Aminosäuren umzuwandeln. Die Auffindung derartiger Mikroorganismen bereitet dem Fachmann keine Schwierigkeiten. Mittels der üblichen Screening Methoden werden unterschiedliche Mikroorganismen getestet, ob diese die Fähigkeit besitzen D-Aminosäureamide in L-Aminosäuren umzuwandeln. Vorbekannte Mikroorganismen, die diese Fähigkeit in hervorragendem Maße besitzen sind nach eigenen Untersuchungen Arthrobacter sp. ATCC 31 652 und Corynebacterium sp. ATCC 31 662.
Es wurde ferner gefunden, daß es Mikroorganismen gibt, die die Fähigkeit besitzen, α-Aminonitrile in Aminosäure-amide zu überführen, ohne diese weiter zu hydrolysieren. Aus Bodenproben wurde ein Mikroorganismus isoliert, der, die Fähigkeit besitzt, D,L-α-Amino-β-phenylpropionitril zu Phenylalanin zu spalten.
Dieser Mikroorganismus hat folgende taxonomische Eigenschaften:
Koloniemorphologie: rund, glattrandig, durchscheinend, schleimig
Zellmorphologie: unbewegliche Kurzstäbchen 1,5-2,5 µm lang, 1 µm breit
Gram-Färbung: gram-negativ
Endosporen: negativ
Katalase: positiv
Cytochrom-C-Oxidasen: negativ
Citrat-Verwertung: positiv
Nitrit aus Nitrat: negativ
Voges-Proskauer: negativ
Methylrot: negativ
Indol-Bildung: negativ
Urease: positiv
H₂S-Bildung: negativ
Zucker-Verwertung: Säure aus Glukose, keine Säure aus Saccharose, Fructose, Lactose, Maltose, Mannit, Glycerin, keine Gasbildung
Aufgrund seiner morphologischen und physiologischen Eigenschaften wurde der Mikroorganismus nach den Kriterien von "Bergey′s Manual of Determinative Bacteriology" als Acinetobacter calcoaceticus bestimmt.
Dieser Mikroorganismus wurde mittels N-Methyl-N′-nitro-N-nitroso-guanidin (MNNG) mutiert und eine amidasefreie Mutante isoliert, die die Fähigkeit be­ sitzt, D,L-α-Aminonitrile nur noch bis zur Stufe der D,L-Aminosäureamiden zu hydrolysieren. Diese Mutante wurde bei der "Deutschen Sammlung von Mikroorga­ nismen" unter der Nummer DSM 3875 deponiert.
Mit Hilfe des neuen Mikroorganismus Acinetobacter calcoaceticus DSM 3875 sowie der vorbekannten Mikroorganismen Arthrobacter sp. ATCC 31 652 oder Corynebacterium sp. ATCC 31 662 ist es nun möglich, D,L-α-Aminonitrile zu L-Aminosäuren zu hydrolysieren, ohne daß als Nebenprodukte D-Aminosäureamide zurückbleiben.
Aminosäuren die mittels des erfindungsgemäßen Verfahrens synthetisiert werden können sind beispielsweise die in Hoppe-Seyler′s Z. Physiol. Chem. 348, 1967, 256-261 aufgeführten Aminosäuren sowie deren Derivate, bei denen gegebenenfalls im Rest A gemäß Formel I vorhandene Hydroxygruppen, Thiolgruppen, Aminogruppen und Carboxylgruppen durch geeignete Schutzgruppen blockiert sind.
In Hinblick auf ihre gewerbliche Verwertbarkeit sind solche Aminosäuren bevor­ zugte Verfahrensprodukte der erfindungsgemäßen Synthese, deren Reste A die in Patentanspruch 4 genannte Bedeutung besitzen.
Als geeignete Alkylreste A seien beispielsweise die Methylgruppe, die Ethylgruppe, die Propylgruppe, die 1-Methylethylgruppe, die Butylgruppe, die 1-Methylpropylgruppe, die 2-Methylpropylgruppe, die 1,1-Dimethylethylgruppe, die Pentylgruppe, die 1-Methylbutylgruppe, die 3-Methylbutylgruppe oder die Hexylgruppe tragen. Besonders bevorzugte Alkylgruppen A sind solche mit maximal 6 Kohlenstoffatomen, wie die Methylgruppe des Verfahrensprodukts Alanin, die 1-Methylethylgruppe des Valins, die 2-Methylpropylgruppe des Leucins, die 1-Methylpropylgruppe des Isoleucins oder die Ethylgruppe der α-Aminobutter­ säure.
Die Alkylgruppen A können gegebenenfalls durch Hydroxygruppen, Mercaptogruppen, Aminogruppen oder Carbonylgruppen substituiert sein, wobei einfach substi­ tuierte Alkylgruppen bevorzugt sind, oder durch Sauerstoffatome (vorzugsweise eins), Stickstoffatome (vorzugsweise eins oder zwei) oder Schwefelatome (vor­ zugsweise eins) unterbrochen sein. Als Alkylgruppen, die durch Hydroxygruppen oder Mercaptogruppen substituiert sind, seien besonders hervorgehoben die Hy­ droxymethylgruppe des Serins, die 1-Hydroxyethylgruppe des Thereonins, die Mercaptomethylgruppe des Cysteins, die 2-Mercaptoethylgruppe des Homocysteins und die 1-Mercapto-1-methyl-ethylgruppe des β-Thiovalins. Als eine durch ein Schwefelatom unterbrochene Alkylgruppe A sei die 2-Methylthioethylgruppe des Methionins hervorgehoben. Alkylgruppen A, die als Substituenten eine Amino­ gruppe tragen sind beispielsweise die 2-Aminoethylgruppe der α,γ-Diaminobutter­ säure, die 3-Aminopropylgruppe des Ornithins und die 4-Aminobutylgruppe des Lysins. Durch Carboxylgruppen substituierte Alkylgruppen A ist beispielsweise die 2-Carboxyethylgruppe der Glutaminsäure.
Als durch Hydroxygruppen substituierte Phenylreste, Benzylreste oder 3-Indolyl­ methylreste A seien beispielsweise genannt, der 4-Hydroxyphenylrest, der 4-Hy­ droxyphenylmethylrest und der 5-Hydroxy-3-indolylmethylrest.
Die Erfindung betrifft sowohl das in dem Patentanspruch 1 gekennzeichnete Ver­ fahren zur Herstellung von L-Aminosäuren der allgemeinen Formel I aus den α-Amino-nitrilen der allgemeinen Formel II, als auch das in dem Patentanspruch 2 gekennzeichnete Verfahren zur Herstellung von Aminosäureamiden der allge­ meinen Formel III und das in dem Patentanspruch 3 gekennzeichnete Verfahren zur Herstellung von L-Aminosäuren aus diesen Amiden.
Zur Durchführung dieser Verfahren wird der verwendete Mikroorganismus unter den üblicherweise verwendeten Kulturbedingungen in einem geeigneten Nährmedium unter Belüften, Submerskulturen angezüchtet. Dann setzt man der Kultur das Substrat (vorzugsweise in einem geeigneten Lösungsmittel gelöst) zu und fermentiert, bis eine maximale Substratumwandlung erreicht ist.
Geeignete Substratlösungsmittel sind beispielsweise Wasser, Methanol, Ethanol, Glykolmonomethylether, Dimethylformamid oder Dimethylsulfoxyd.
Die optimale Substratkonzentration, Substratzugabezeit und Fermentationsdauer ist von der Struktur des verwendeten Substrates und der Art der verwendeten Fermentationsbedingungen abhängig. Diese Größen müssen, wie dies bei mikrobiologischen Fermentationen allgemein erforderlich ist, im Einzelfall durch Vorversuche, wie sie dem Fachmann geläufig sind, ermittelt werden. Während der Fermentation wird der pH-Wert der Fermentationsbrühe vorzugsweise auf einen pH-Wert von 7,5-10 eingestellt.
Andererseits ist es aber auch möglich und wegen der starken Polarität der Verfahrensprodukte oft vorteilhaft, den angezüchteten Mikroorganismus bei­ spielsweise durch Filtration oder Zentrifugieren vom Kulturmedium abzutrennen und die Fermentation der Substrate mit der isolierten Zellmasse im resting cell Verfahren durchzuführen.
Ferner ist zu erwarten, daß das erfindungsgemäße Verfahren auch sehr gut mittels immobilisierter Mikroorganismen durchgeführt werden kann.
Die Immobilisierung der Mikroorganismen durch Einbetten in ein die Mikroorga­ nismen nicht denaturierendes Polymeres erfolgt nach Methoden, die dem Fachmann wohlbekannt sind. (I. Chibata Immobilized Enzymes; Research and Development; 1978; S.P. Colowick und N.O. Kaplan, Methods in Enzymology, Academic Press, New York, et al. Vol 44, 1976 und Bo Matthiasson Immobilised Cells and Organells, CRC Press Inc., Boca Raton, Florida Vol. 1 und 2.)
Geeignete Immobilisate sind wahrscheinlich:
Mikroorganismen-Immobilisate auf Alginat-Basis.
Diese lassen sich herstellen, indem man die Mikroorganismen in einer wäßrigen Vorpolymeren-Lösung enthaltend 0,5 bis 5 Gewichtsprozent Natriumalginat suspendiert und diese Suspension bei einer Temperatur von 5 bis 40°C unter Rühren in eine 0,01 bis 0,4 molare wäßrige Lösung eines Aluminium oder vorzugsweise Calziumsalzes (beispielsweise Calziumchlorid) einträgt.
Mikroorganismen-Immobilisate auf Carragenan-Basis.
Diese lassen sich beispielsweise herstellen, indem man die Mikroorganismen in einer auf 25 bis 50°C erwärmten 0,1 bis 1,0 gewichtsprozentigen wäßrigen Carra­ genan-Lösung suspendiert, die Lösung erkalten läßt bis sie gelartig wird, das Gel mechanisch zerkleinert und dann in einer 0,2 bis 2,0 gewichtsprozentigen wäßrigen Lösung eines Kaliumsalzes (beispielsweise Kaliumchlorid) härtet.
Mikroorganismen-Immobilisate auf Chitosan-Basis.
Diese können beispielsweise hergestellt werden, indem man die Mikroorganismen in einer auf 20°C bis 40°C erwärmten 0,5 bis 13%igen protonierten (einge­ stellt auf pH 4,5 bis 5,5) Chitosan-Lösung suspendiert und in diese eine Gegen­ ionenlösung von beispielsweise Kaliumhexacyanoferat(II) (mit einer Konzentra­ tion von 0,01 bis 1 mol/Liter) eintropft.
Das erfindungsgemäße Verfahren gemäß Patentanspruch 1 kann in der Weise durch­ geführt werden, daß man die Mikroorganismen nacheinander oder gleichzeitig auf die α-Amino-nitrile der Formel II einwirken läßt. Läßt man die unterschied­ lichen Mikroorganismen gleichzeitig auf die Substrate einwirken, so ist es zweckmäßig die Zellen von Acinetobacter calcoanticus und Arthrobacter sp. bzw. Corynebacterium sp. in einem Verhältnis von 1:2 bis 1:20 miteinander zu mischen.
Beispiel 1
  • a) Ein 500-ml-Erlenmeyerkolben mit 100 ml sterilem Nährmedium, enthaltend
    0,05 g Trinatriumcitrat
    0,35 g Dikaliumhydrogenphosphat
    0,01 g Magnesiumsulfat-Heptahydrat
    0,1 g Popionsäureamid
    wird mit einer Kultur von Acinetobacter calcoaceticus DSM 3875 beimpft und 20 Stunden lang bei 30°C mit 180 Umdrehungen pro Minute geschüttelt.
  • Dann zentrifugiert man die Zellen ab und resuspendiert sie in 20 ml eines 0,1 molaren Kaliumphosphat-Puffer von pH 7,0.
  • b) Ein 500-ml-Erlenmeyerkolben mit 100 ml steriler Nährlösung enthaltend
    0,05 g Trinatriumcitrat
    0,35 g Dikaliumhydrogenphosphat
    0,15 g Kaliumdihydrogenphosphat
    0,01 g Magnesiumsulfat-Heptahydrat
    0,1 g Ammoniumsulfat wird mit Arthrobacter spec. ATCC 31 652 beimpft und 20 Stunden lang bei 30°C mit 180 Umdrehungen pro Minute geschüttelt. Dann werden die Zellen abzentrifugiert und in 20 ml 0,1 molarem Kaliumphosphat-Puffer von pH 7 resuspendiert.
  • c) 0,5 ml Zellsuspension von Acinetobacter calcoaceticus DSM 3875 - hergestellt nach Beispiel a) - werden mit 1,5 ml Zellsuspension von Arthrobacter spec. ATCC 31 652 - hergestellt nach Beispiel b) - gemischt und mit 2 mg D,L-α-Amino-β-phenylpropionitril versetzt und 4 Stunden lang bei 30°C gerührt. Die erhaltene Reaktionsmischung wird dünnschichtchromatographisch und durch Umsetzung mit L- und D-Aminosäureoxydase auf ihren Gehalt an Aminosäuren bestimmt. Sie enthält 1,2 mg L-Phenylalanin aber kein D-Phenyl­ alanin.
Beispiel 2
Unter den Bedingungen des Beispiels 1, aber unter Verwendung von Coryne­ bacterium sp. ATCC 31 662 anstelle von Arthrobacter sp. ATCC 31 652 werden 2 mg D,L-α-Amino-β-phenylpropionitril umgesetzt und es sind analytisch 1,3 mg L-Phenyalanin aber kein D-Phenylalanin in der Reaktionsmischung nachweisbar.
Beispiel 3
  • a) Unter den Bedingungen des Beispiels 1b werden 100 ml einer Kultur von Arthrobacter sp. ATCC 31 652 angezüchtet. Die erhaltenen Zellen werden ab­ zentrifugiert und in 100 ml 0,1 molaren Kaliumphosphat-Puffer resuspendiert.
  • b) 5 ml der Bakterien-Suspension werden mit 5 mg D-Phenylalaninamid versetzt und 4 Stunden lang bei 30°C gerührt. In der Reaktionsmischung sind analytisch 2,1 mg L-Phenylalanin aber kein D-Phenylalanin nachweisbar.
Beispiel 4
  • a) Unter den Bedingungen des Beispiels 1b werden 100 ml einer Kultur von Corynebacterium sp. ATCC 31 662 angezüchtet. Die erhaltenen Zellen werden ab­ zentrifugiert und in 100 ml 0,1 molaren Kaliumphosphat-Puffer resuspendiert.
  • b) 5 ml der Bakterien-Suspension werden mit 5 mg D-Phenylalaninamid versetzt und 4 Stunden lang bei 30°C gerührt. In der Reaktionsmischung sind 1,8 mg L-Phenylalanin aber kein D-Phenylalanin nachweisbar.
Beispiel 5
Unter den Bedingungen des Beispiels 3 werden 5 mg DL-Tryptophanamid umgesetzt und es bilden sich 1,5 mg L-Tryptophan aber kein D-Tryptophan.
Beispiel 6
Unter den Bedingungen des Beispiels 4 werden 5 mg D,L-Tryptophanamid umgesetzt und es bildet sich 1,3 mg L-Tryptophan aber kein D-Tryptophan.
Beispiel 7
Unter den Bedingungen des Beispiels 3 werden 5 mg D,L-Leucinamid umgesetzt und es bilden sich 2,2 mg L-Leucin aber kein D-Leucin.
Beispiel 8
Unter den Bedingungen des Beispiels 4 werden 5 mg D,L-Leucinamid umgesetzt und es bilden sich 2,4 mg L-Leucin aber kein D-Leucin.
Beispiel 9
Unter den Bedingungen des Beispiels 3 wird D,L-Alaninamid umgesetzt und es bildet sich L-Alanin aber kein D-Alanin.
Beispiel 10
Unter den Bedingungen des Beispiels 4 wird D,L-Alaninamid umgesetzt und es bildet sich L-Alanin aber kein D-Alanin.
Beispiel 11
Unter den Bedingungen des Beispiels 3 wird D,L-Valinamid umgesetzt und es bildet sich L-Valin aber kein D-Valin.
Beispiel 12
Unter den Bedingungen des Beispiels 4 wird D,L-Valinamid umgesetzt und es bildet sich L-Valin aber kein D-Valin.
Beispiel 13
Unter den Bedingungen des Beispiels 3 wird D,L-Methioninamid umgesetzt und es bildet sich L-Methionin aber kein D-Methionin.
Beispiel 14
Unter den Bedingungen des Beispiels 4 wird D,L-Methioninamid umgesetzt und es bildet sich L-Methionin aber kein D-Methionin.
Beispiel 15
5 mg D,L-α-Amino-β-phenyl-propionitril werden mit 5 ml Zellsuspension von Acinetobacter calcoaceticus DSM 3875 - hergestellt nach Beispiel 1a - umgesetzt und es bilden sich nach dünnschichtchromatographischer Analyse - 4 mg D,L-Phenylalaninamid.
Beispiel 16
Unter den Bedingungen des Beispiels 15 wird das D,L-Aminophenylacetonitril umgesetzt und es bildet sich das D,L-Phenylglycinamid.
Beispiel 17
Unter den Bedingungen des Beispiels 15 wird das D,L-α-Aminopropionitril umge­ setzt und es bildet sich das D,L-Alaninamid.
Beispiel 18
Unter den Bedingungen des Beispiels 15 wird das D,L-α-Aminovaleriansäurenitril umgesetzt und es bildet sich das D,L-Valinamid.
Beispiel 19
Unter den Bedingungen des Beispiels 15 wird das D,L-α-Amino-β-methyl-valerian­ säurenitril umgesetzt und man erhält das D,L-Isoleucinamid.
Beispiel 20
Unter den Bedingungen des Beispiels 15 wird das Aminoacetonitril umgesezt und man erhält das Glycinamid.

Claims (5)

1. Verfahren zur Herstellung von L-Aminosäuren der allgemeinen Formel I worin A den Rest eines Aminosäuremoleküls darstellt, aus D,L-α-Amino-nitrilen der allgemeinen Formel II worin A die oben genannte Bedeutung besitzt, dadurch gekennzeichnet, daß man die α-Amino-nitrile mit einer Kultur von Acinetobacter calcoaceticus DSM 3875 fermentiert und die erhaltenen D,L-Aminosäure-amide der allgemeinen Formel III worin A die oben genannte Bedeutung besitzt mit einer Kultur eines Mikroorganismus der Aminosäure-amid-Racemasen und L-Aminosäure-amid-Amidasen besitzt, um­ setzt.
2. Verfahren zur Herstellung von Aminosäure-amiden der allgemeinen Formel III worin
A die oben genannte Bedeutung besitzt, dadurch gekennzeichnet, daß man ein a-Amino-nitril der allgemeinen Formel II worin A die oben genannte Bedeutung besitzt, mit einer Kultur von Acinetobacter calcoaceticus DSM 3875 fermentiert.
3. Verfahren zur Herstellung von L-Aminosäuren der allgemeinen Formel I worin A die oben genannte Bedeutung besitzt, dadurch gekennzeichnet, daß man ein D,L-Aminosäureamid oder ein D-Aminosäure-amid der allgemeinen Formel III worin A die oben genannte Bedeutung besitzt, mit einer Kultur eines Mikroorganis­ mus, der Aminosäure-amid-Racemasen und L-Aminosäure-amid-Amidasen besitzt, umsetzt.
4. Verfahren zur Herstellung von L-Aminosäuren oder D,L-Aminosäure-amiden gemäß Patentanspruch 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß der Rest des Aminosäure­ moleküls A einen gegebenenfalls durch Hydroxygruppen, Merkaptogruppen, Halogenatome, Aminogruppen oder Carboxylgruppen und/oder durch Sauerstoffatome, Stickstoffatome oder Schwefelatome unterbrochenen Alkylrest mit maximal 12 Kohlenstoffatomen, einen 4-Imidazolylmethylrest, oder einen gegebenenfalls durch Hydroxygruppen substituierten Phenylrest, Benzylrest oder 3-Indolylmethylrest darstellt.
5. Verfahren zur Herstellung von L-Aminosäuren gemäß Anspruch 1, 3 und 4, dadurch gekennzeichnet, daß man als Aminosäure-amid-Racemase und L-Amino­ säure-amid-Amidase haltigen Mikroorganismus einen solchen der Spezies Arthrobacter sp. ATCC 31 652 oder Corynebacterium sp. ATCC 31 662 verwendet.
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HU892244A HU209707B (en) 1988-05-06 1989-04-13 Process for producing l-amino acids and amino acid amides
JP1504067A JPH03500484A (ja) 1988-05-06 1989-04-13 Ｌ‐アミノ酸およびアミノ酸アミドの製造方法
DE58909067T DE58909067D1 (de) 1988-05-06 1989-04-13 Verfahren zur herstellung von l-aminosäuren und aminosäure-amiden.
PCT/DE1989/000232 WO1989010969A1 (en) 1988-05-06 1989-04-13 Process for producing l-amino acids and amino acid amides
AT89904010T ATE119202T1 (de) 1988-05-06 1989-04-13 Verfahren zur herstellung von l-aminosäuren und aminosäure-amiden.
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Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5196326A (en) * 1990-02-15 1993-03-23 Ajinomoto Co., Inc. Method for concurrent fermentation of basic amino acid and acidic amino acid
US5478733A (en) * 1993-07-16 1995-12-26 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. Process for producing L-alanine by fermentation with arthrobacter
DE4422045A1 (de) * 1994-06-26 1996-01-04 Hoechst Schering Agrevo Gmbh Verfahren zur enzymatischen Spaltung von 2-Amino-4-methylphosphinobutansäureamid-Derivaten
US6060265A (en) * 1996-12-18 2000-05-09 Cytec Technology Corporation Methods for the detoxification of nitrile and/or amide compounds
US5863750A (en) * 1996-12-18 1999-01-26 Cytec Tech Corp Methods for the detoxification of nitrile and/or amide compounds
ATE362544T1 (de) * 2002-06-14 2007-06-15 Dsm Ip Assets Bv Polypeptide mit alpha-h alpha amino acid amide racemase aktivitität und nukleinsäuren kodierend dafür
AU2003257434A1 (en) * 2002-07-09 2004-01-23 Degussa Ag L-amidase from rhizobium huautlense
US20100105111A1 (en) * 2007-02-28 2010-04-29 Mitsubishi Gas Chemical Company, Inc. Method for production of optically active amino acid

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
LU74142A1 (de) * 1976-01-08 1977-07-22
FR2447359A1 (fr) * 1979-01-24 1980-08-22 Anvar Procede de preparation d'acides a-amines optiquement actifs par hydrolyse biologique de nitriles ou d'amides a-amines
US4276380A (en) * 1979-02-13 1981-06-30 Mitsubishi Petrochemical Co., Ltd. Production of L-amino acids
US4366250A (en) * 1980-09-24 1982-12-28 Anvar Preparation process of optically active α-aminated acids by biological hydrolysis of nitriles
JPS57155996A (en) * 1981-03-23 1982-09-27 Mitsubishi Petrochem Co Ltd Preparation of l-threonine
NL8400312A (nl) * 1984-02-02 1985-09-02 Stamicarbon Optisch aktief gesubstitueerd boterzuuramide alsmede werkwijze voor de optische scheiding van gesubstitueerd boterzuuramide.
NL8403093A (nl) * 1984-10-11 1986-05-01 Stamicarbon Werkwijze voor de enzymatische hydrolyse van d-alfa-aminozuuramiden.
NL8403487A (nl) * 1984-11-15 1986-06-02 Stamicarbon Werkwijze voor de enzymatische scheiding van dl-alfa-aminozuuramides.
DE3683512D1 (de) * 1985-02-25 1992-03-05 Mitsubishi Gas Chemical Co Verfahren zur optischen isomerisierung von optisch aktiver aminosaeure und verfahren zur herstellung von optisch aktiver aminosaeure.
NL8501093A (nl) * 1985-04-12 1986-11-03 Stamicarbon Werkwijze voor het racemiseren van een optisch aktief n- benzylideenaminozuuramide.
DK261685A (da) * 1985-06-11 1986-12-12 Novo Industri As Fremgangsmaade til fremstilling af optisk aktive, organiske forbindelser

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