DE29803712U1 - Vorrichtung zur Behandlung von Biomolekülen - Google Patents
Vorrichtung zur Behandlung von BiomolekülenInfo
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Description
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Macherey. Nagel GmbH & Co. Handelsgesellschaft,
Valencienner Str. 11. D-52355 Puren
Die Erfindung betrifft eine Vorrichtung zur Behandlung von
Biomolekülen, insbesondere zur Isolierung von Nucleinsäuren, mit einer Trennsäule, die einen obenseitigen Einlaß und einen
untenseitigen Auslaß aufweist und in der eine Trenneinrichtung angeordnet ist, und mit einem Auffanggefäß zum Auffangen
der aus dem Auslaß austretenden Flüssigkeit.
Der Nachweis von viralen Nucleinsäuren wird auf vielen Gebieten der molekularen Medizin bzw. Diagnostik immer wichtiger.
Verbesserte Therapiestrategien machen es notwendig, den Virustiter (z.B. bei HIV) bis hin zu kleinsten Werten zu
verfolgen. Blutproben und -spenden müssen hinsichtlich ihrer viralen Belastung untersucht werden, was dazu führt, daß ein
sehr hohes Probenaufkommen entsteht. Um Aufwand und Probenanzahl zu reduzieren, werden Proben vereinigt, um zum Beispiel
zehn Proben zusammen zu untersuchen. Dies macht es unter anderem notwendig, Vorrichtungen und Verfahren zu entwickeln,
mit denen größere Probenvolumina bearbeitet und trotzdem auch kleine Virusbelastungen erfaßt werden können.
Ein ähnliches Problem stellt sich bei der Isolierung von DNA-Mengen aus biologischen Flüssigkeiten, beispielsweise
Urin, Liquor etc. Weitere mögliche Anwendungen sind die spezifische
Bindung und Isolierung von Proteinen oder Peptiden, die in niedrigen Konzentrationen in biologischen Matrizes,
z.B. Serum vorkommen und nachgewiesen werden müssen.
Aus der EP 0 616 638 Bl und der DE 38 43 610 Al sind Vorrichtungen
bekannt, welche aus einer Trennsäule und einem Auffanggefäß bestehen. Die Trennsäule weist einen obenseitigen
Einlaß für die Aufgabe der Probe und einen untenseitigen Auslaß, der in das Auffanggefäß hineinragt, auf. Im unteren
Bereich der Trennsäule befindet sich eine Trenneinrichtung beispielsweise in Form von ein- oder mehrstufigen Filtern.
Die Trenneinrichtung ist so ausgebildet, daß die zu gewinnenden Biomoleküle adsorptiv an der Trenneinrichtung gebunden
werden. Soweit Inhaltsstoffe z. B. aus Zellmaterial gewonnen werden sollen, gehen dem gewöhnlich mehrere Schritte
zum Aufschluß und zur Reinigung voraus. Nach der Isolierung werden die Biomoleküle mittels eines Eluats von der
Trenneinrichtung abgelöst und in einem gesonderten Auffanggefäß gesammelt. Sie stehen dann für weitere Untersuchungen
zur Verfügung.
Bei den bekannten Vorrichtungen sind relativ große Elutionsvolumina
erforderlich, um die isolierten Biomoleküle herauszulösen. Entsprechend gering ist die Konzentration der Biomoleküle
in dem Eluat. Da in den angeschlossenen Detektionsverfahren nur vergleichsweise geringe Volumina eingesetzt
werden können, macht es erhebliche Schwierigkeiten, kleine Mengen von Biomolekülen, wie Nukleinsäuren zu analysieren.
Es sind deshalb Versuche unternommen worden, mit Hilfe von Ultrazentrifugation bzw. Ultrafiltration eine Aufkonzentrierung
vorzunehmen. Diese Verfahren haben sich jedoch nicht besonders bewährt, da sie weniger reproduzierbar sind und
zudem einen erheblichen Geräte- und Zeitaufwand benötigen.
Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, eine Vorrichtung der eingangs genannten Art so auszubilden, daß man ohne separaten
Aufkonzentrierungsschritt auch bei großen Probenvolumina mit einem wesentlich geringeren Elutionsvolumen auskommt.
Außerdem sollen Kreuzkontaminationen sicher vermieden werden.
Diese Aufgabe wird erfindungsgemäß dadurch gelöst, daß das
Verhältnis von Innenvolumen der Trennsäule oberhalb der Trenneinrichtung zur Oberfläche der Trenneinrichtung mindestens
10 ml/cm2, vorzugsweise mindestens 30 ml/cm2 beträgt. Es hat sich gezeigt, daß bei dieser Geometrie der Trennsäule
wesentliche geringere Elutionsvolumina erforderlich sind, um die aufgereinigten Biomoleküle aus der Trenneinrichtung herauszulösen.
Das Volumenverhältnis zwischen Probe und Eluat liegt mindestens bei 8 und kann bis zu 100 gehen. Es wird
also eine Aufkonzentration der Biomoleküle im Eluat erzielt, die vorherige oder nachträgliche Aufkonzentrierungsschritte
selbst bei geringer Biomolekülkonzentration in der Probe erübrigt und die anschließende Analyse wesentlich erleichtert
und zuverlässiger macht.
In Ausbildung der Erfindung ist vorgesehen, daß die Oberfläche der Trenneinrichtung unter 0,4 cm2, vorzugsweise unter
0,3 cm2 liegt, und zwar bei einem Innenvolumen von mindestens
15 ml, vorzugsweise 20 ml.
Grundsätzlich läßt sich die erfindungsgemäß Geometrie auch mit zylindrischen Trennsäulen erzielen. Damit die Trennsäule
kompakt ist, ist es jedoch zweckmäßiger, daß sich der innere Querschnitt der Trennsäule von der Trenneinrichtung zum Einlaß
hin beispielsweise unter Ausformung eines Trichterabschnittes vergrößert. Dabei können sich oben- und/oder untenseitig
an den Trichterabschnitt jeweils Zylinderabschnitte anschließen. Die Trenneinrichtung sollte sich auf einem
Absatz abstützen, durch den sich der Querschnitt des Auslasses verjüngt.
In besonders bevorzugter Ausbildung weist die Vorrichtung ein Außengefäß auf, in den die Trennsäule und das damit verbundene
Auffanggefäß einsteckbar sind. Hierbei kann es sich um ein übliches Zentrifugiergefäß mit obenseitiger Öffnung
und einem Absatz für die Aufnahme in einer Zentrifuge handeln. Das Außengefäß bietet eine hohe Sicherheit gegen
Kreuzkontamination, und es dient zudem als Auffanggefäß bei der Bindung der Biomoleküle aus der Probe an die Trenneinrichtung
und bei nachfolgenden Waschschritten. Hierbei fallen vergleichsweise große Volumina an, welche von dem Außengefäß
aufgenommen werden können. Für die Elution der aufgereinigten Biomoleküle kann dann aufgrund der erfindungsgemäßen
Geometrie und der hieraus folgenden geringen Eluatmenge ein vergleichsweise kleines Auffanggefäß verwendet werden.
Vorzugsweise ist das Außengefäß so dimensioniert, daß die Trennsäule und das damit verbundene Auffanggefäß im wesent-
lichen vollständig in das Außengefäß passen. Dabei sollte das Außengefäß eine Länge haben, die der Länge der Trennsäule
und des damit verbundenen Auffanggefäßes entspricht und beide im Außengefäß unbeweglich gehalten sind, so daß es bei
der Zentrifugation nicht zu Lageveränderungen kommt.
Das Außengefäß sollte zweckmäßigerweise einen Verschlußdekkel
aufweisen, um Trennsäule und Auffanggefäß vollständig einzuschließen und somit eine Barriere gegen Kreuzkontamination
zu bilden. Um eine Eigenbewegung der Trennsäule zu vermeiden, ist es ferner von Vorteil, wenn die Trennsäule und
das damit verbundene Auffanggefäß zwischen Verschlußdeckel und Boden des Außengefäßes verspannbar ist. Dem selben Zweck
dient es, wenn die Trennsäule einen den oberen Rand des Außengefäßes übergreifenden Ringsteg aufweist, der zwischen
Verschlußdeckel und Außengefäß eingespannt werden kann und damit als Abdichtung fungiert.
Nach der Erfindung ist ferner vorgesehen, daß das Auffanggefäß luftdicht mit der Trennsäule verbindbar ist, um einen
Austritt der aufgefangenen Substanz zu vermeiden. Das Auffanggefäß
kann auf den Auslaß der Trennsäule aufsteckbar ausgebildet sein, wobei hierzu auch ein Adapter zwischengesetzt
werden kann.
Es versteht sich, daß das Auffanggefäß über einen Deckel verschließbar sein soll, damit das die Biomoleküle enthaltene
Eluat sicher transportiert und gelagert werden kann. Hierzu kann der Deckel in an sich bekannter Weise über ein
Band mit dem Auffanggefäß verbunden sein.
In der Zeichnung ist die Erfindung an Hand eines Ausführungsbeispiels
näher veranschaulicht. Es zeigt eine Vorrichtung 1 zur Isolierung von viralen Nucleinsäuren.
Die Vorrichtung 1 weist eine Trennsäule 2 aus einem Kunststoff material auf, welche einen obenseitigen Zylinderabschnitt
3, einen daran anschließenden, kegelstumpfförmigen Trichterabschnitt 4 und einen unteren Zylinderabschnitt 5
hat, welcher in einem Ringabsatz 6 ausläuft, an den sich ein zylindrischer Auslaß 7 anschließt. Auf dem Ringabsatz 6 ruht
eine Filterscheibe 8, die entsprechend den zu isolierenden Biomolekülen ausgebildet ist. Hierfür kommen beispielsweise
die in der EP 0 616 638 Bl offenbarten Filter in Frage.
Auf den Auslaß 7 ist eine Adapterhülse 9 aufgesteckt. Auf die Adapterhülse 9 ist ein kleinvolumiges mit einem oberen
Rand 10 versehenes Auffanggefäß 11 aufgesetzt, wobei die Anlage der Innenseite des Auffangefäßes 11 an der Außenseite
der Adapterhülse 9 luftdicht ist.
Die Einheit aus Trennsäule 2 und Auffanggefäß 11 ist in ein Zentrifugiergefaß 12 eingesetzt. Das Zentrifugiergefaß 12
hat im wesentlichen eine Zylinderwandung 13, welche untenseitig in einem Kegelabschnitt 14 mit Boden 15 ausläuft. Auf
dem Boden 15 stützt sich das Auffangefäß 11 ab. Auf dem oberen Rand des Auffanggefäßes 11 sitzt ein Ringsteg 16, der
den oberen Rand der Trennsäule 2 bildet. Die Oberseiten von Zentrifugiergefaß 12 und Trennsäule 2 sind durch einen hutförmigen
Verschlußdeckel 17 verschlossen, der den Ringsteg
16 einklemmt und über ein Gewinde 18 mit dem zentrifugiergefäß
12 verbunden ist.
Mit der vorbeschriebenen Vorrichtung 1 können virale Nucleinsäuren wie folgt gewonnen werden.
Zwei Milliliter einer Serum- oder Plasmaprobe werden mit einem Mehrfachen (Üblicherweise 2-4 x) Volumen an Lysispuffer
LPl (hier: 4 ml, LPl: 4.5 M Guanidinthiocyanat, 20 mM Tris/HCl pH 6.5, 20 mM EDTA pH 8,0, 1 % Triton XlOO) versetzt.
Die Mischung wird mehrmals auf- und abpipettiert, gevortext und für mehrere Minuten bei Raumtemparatur inkubiert.
Wenn die Lysismischung sichtbare Partikel und/oder Trübungen aufweist, muß diese für 5-10 min zentrifugiert
werden, um Feststoffe, die eventuell die Membran verstopfen können, abzutrennen. Wenn sehr kleine Mengen Nukleinsäure zu
erwarten sind, muß dem Lysispuffer zur Erhöhung der Ausbeute unspezifische RNA ("carrier RNA": &zgr;. Bsp. poly(A)) zugesetzt
werden.
Zu dem klaren Lysat wird vorteilhafterweise eine vergleichbare Menge (Endkonzentration 5-50 %) Ethanol (>98%), Isopropanol
oder Aceton zugegeben (hier: 4 ml) und erneut durch Vortexen gründlich gemischt. Danach kann die Mischung in die
Trennsäule 2 eingefüllt werden. Die Trennsäule 2 wird dann in ein 50 ml Zentrifugiergefaß 12 eingesetzt. Die Probe wird
nachfolgend für 3 min bei einer Umdrehungsgeschwindigkeit von 1500 rpm zentrifugiert. Die Lösung passiert die Filterscheibe
8, wobei Nukleinsäuren binden. Der Durchlauf wird im Zentrifugiergefäß 12 gesammelt.
Die Trennsäule 2 wird anschließend mit mehreren Millilitern Waschpuffer WPl (hier: 3 ml, WPl: 80% 1.5 M GTC, 30 mM Natriumcitrat
pH 7.2, 20% Ethanol) befüllt. Der Zentrifugationsschritt wird wie oben beschrieben wiederholt und der
Durchfluß verworfen. Durch die Waschschritte mit Ethanolhaltigem WPl und anderen Waschpuffern werden vor allem unerwünschte
Begleitstoffe von der Filterscheibe 8 entfernt, während die viralen Nukleinsäuren gebunden bleiben.
Die Trennsäule 2 wird jetzt mit Waschpuffer WP2 (WP2: 20 mM Tris/HCl pH 7.5, 50 mM NaCl, 80 % Ethanol) befüllt. Der Zentrifugationsschritt
wird wie oben beschrieben durchgeführt, der Durchfluß verworfen und die Waschprozedur noch einmal
auf die gleiche Weise wiederholt. Durch die Waschschritte mit stark Ethanol-haltigem Waschpuffer WP2 werden vor allem
die chaotropen Salze des Lysispuffer von der Filterscheibe 8 abgewaschen.
Vor der Elution kann optional ein weiterer Waschschritt mit Aceton durchgeführt werden, um Ethanolspuren zu entfernen.
Manche nachfolgend ausgeführten Amplifxkationsprozeduren beinhalten
Ethanol-sensitive Enzyme, so daß die Detektion viraler Nukleinsäuren in Anwesenheit von Ethanol inhibiert,
wenn nicht ganz verhindert wird.
Danach wird die Trennsäule 2 leer weitere 10 min bei 3000-5000 rpm zentrifugiert, um Waschpufferreste bzw. Acetonreste
zu entfernen. Zum vollständigen Austrocknen kann die Trenn-
säule 2 dann noch 5-10 min bei Raumtemperatur oder 370C aufbewahrt
werden.
Vor der Elution wird die Trennsäule 2 in ein frisches, steriles 50 ml Zentrifugiergefäß 12 überführt, wobei zunächst
mittels der Adapterhülse 9 am unteren Auslauf 7 ein 500 &mgr;&idiagr;
Auffanggefäß 11 luftdicht aufgesteckt wurde. Jetzt werden 100 &mgr;&idiagr; RNase-freies Wasser (600C vortemperiert) direkt auf
die Filterscheibe 8 pipetiert und für 1 min inkubiert. Durch 3 min Zentrifugation bei 3000 rpm wird die virale Nukleinsäuren
enthaltende Elutionsfraktion in das unter der Trennsäule befindliche Auffanggefäß 11 überführt. Dieses wird zur
Aufbewahrung der Probe von der Trennsäule 2 abgezogen und mit einem Deckel (hier nicht dargestellt) verschlossen.
Claims (21)
1. Vorrichtung (1) zur Behandlung von Biomolekülen, insbesondere zur Isolierung von Nucleinsäuren, mit einer
Trennsäule (2), die einen obenseitigen Einlaß und einen untenseitigen Auslaß (7) aufweist und in der eine
Trenneinrichtung (8) angeordnet ist, und mit einem Auffanggefäß (11) zum Auffangen der aus dem Auslaß (7) austretenden
Flüssigkeit, dadurch gekennzeichnet, daß das Verhältnis von Innenvolumen der Trennsäule (2) oberhalb
der Trenneinrichtung (8) zur Oberfläche der Trenneinrichtung (8) mindestens 10 ml/cm2beträgt.
2. Vorrichtung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
das Verhältnis mindestens 30 ml/cm2 beträgt, vorzugsweise über 70 ml/cm2.
3. Vorrichtung nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß die Oberfläche der Trenneinrichtung (8) unter
0,4 cm2 liegt, vorzugsweise unter 0,3 cm2.
4. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch
gekennzeichnet, daß das Innenvolumen der Trennsäule (2)
mindestens 15 ml, vorzugsweise mindestens 20 ml beträgt.
5. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, daß sich der innere Querschnitt der
Trennsäule (2) von der Trenneinrichtung (8) zum Einlaß hin vergrößert.
6. Vorrichtung nach Anspruch 5, dadurch gekennzeichnet, daß
die Trennsäule (2) zwischen Einlaß und Trenneinrichtung (8) einen Trichterabschnitt (4) aufweist.
7. Vorrichtung nach Anspruch 6, dadurch gekennzeichnet, daß
sich an dem Trichterabschnitt (4) oben - und/oder untenseitig jeweils ein Zylinderabschnitt (3, 5) anschließt.
8. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 7, dadurch
gekennzeichnet, daß sich die Trenneinrichtung (8) auf einen Absatz (6) abstützt, durch den sich der Querschnitt
des Auslasses (7) verjüngt.
9. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 1 bis 8, dadurch gekennzeichnet, daß ein Außengefäß (12) vorhanden ist,
in das die Trennsäule (2) und das damit verbundene Auffanggefäß (11) einsteckbar sind.
10. Vorrichtung nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, daß
die Trennsäule (2) und das damit verbundene Auffanggefäß (11) im wesentlichen vollständig in das Außengefäß (12)
passen.
11. Vorrichtung nach Anspruch 10, dadurch gekennzeichnet,
daß das Außengefäß (12) eine Länge hat, die der Länge der Trennsäule (2) und des damit verbundenen Auffanggefäßes
(11) entspricht.
12. Vorrichtung nach Anspruch 10 oder 11, dadurch gekennzeichnet,
daß die Trennsäule (2) und das damit verbundene Auffanggefäß (11) unbeweglich in dem Außengefäß (12)
gehalten sind.
13. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 9 bis 12, dadurch gekennzeichnet, daß das Außengefäß (12) einen Verschlußdeckel
(17) aufweist.
14. Vorrichtung nach Anspruch 13, dadurch gekennzeichnet, daß der Verschlußdeckel (17) hutförmig ausgebildet ist,
wobei ein Ringsteg als Überstand den oberen Endbereich des Außengefäßes (12) überdeckt.
15. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 9 bis 14, dadurch
gekennzeichnet, daß die Trennsäule (2) und das damit verbundene Auffangsgefäß (11) zwischen Verschlußdeckel
(17) und Boden (15) des Außengefäßes (12) verspannbar ist.
16. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 9 bis 15, dadurch gekennzeichnet, daß die Trennsäule (2) einen den oberen
Rand des Außengefäßes (12) übergreifenden Ringsteg (16) aufweist.
17. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 9 bis 16, dadurch gekennzeichnet, daß das Auffanggefäß (11) luftdicht mit
der Trennsäule (2) verbindbar ist.
18. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 9 bis 17, dadurch
gekennzeichnet, daß das Auffanggefäß (11) auf den Auslaß (7) der Trennsäule (2) aufsteckbar ist.
19. Vorrichtung nach Anspruch 18, dadurch gekennzeichnet, daß auf den Auslaß (7) der Trennsäule (2) ein Adapter
(9) aufgesetzt ist, der zu dem Auffanggefäß (11) paßt.
20. Vorrichtung nach einem der Ansprüche 9 bis 19, dadurch gekennzeichnet, daß das Auffanggefäß (11) über einen
Deckel verschließbar ist.
21. Vorrichtung nach Anspruch 20, dadurch gekennzeichnet,
daß der Deckel über ein Band mit dem Auffanggefäß (11) verbunden ist.
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Cited By (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0940676A2 (de) * | 1998-03-04 | 1999-09-08 | Macherey, Nagel GmbH & Co. Handelsgesellschaft | Vorrichtung zur Behandlung von Biomolekülen |
| WO2000007686A1 (en) * | 1998-08-03 | 2000-02-17 | Brian Brestovac | Air pressure device for extraction of dna and/or rna through a separation column |
| DE29918876U1 (de) | 1999-10-27 | 2000-12-07 | Macherey, Nagel GmbH & Co. Handelsgesellschaft, 52355 Düren | Trenneinrichtung |
| US6177009B1 (en) | 1998-04-03 | 2001-01-23 | Macherey, Nagel Gmbh & Co. | Apparatus for treating biomolecules |
| DE10015788A1 (de) * | 2000-03-30 | 2001-10-11 | Jens Hendel | Vorrichtung zur Untersuchung der Sterilität von Fluiden |
| DE20111082U1 (de) | 2001-07-06 | 2001-10-31 | Macherey, Nagel GmbH & Co. Handelsgesellschaft, 52355 Düren | Vorrichtung zur Behandlung von Biomolekülen |
| EP2055385A1 (de) | 2007-10-31 | 2009-05-06 | Roche Diagnostics GmbH | Verfahren und Vorrichtung zur Reinigung von Nukleinsäuren |
| US7897378B2 (en) | 2004-03-18 | 2011-03-01 | Roche Molecular Systems, Inc. | Method and device for purifying nucleic acids |
| DE202015104264U1 (de) | 2014-08-13 | 2015-10-23 | Axagarius Gmbh & Co. Kg | Vorrichtung zur Aufreinigung von Nukleinsäuren |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE20218503U1 (de) * | 2002-11-28 | 2003-03-06 | Macherey, Nagel GmbH & Co. Handelsgesellschaft, 52355 Düren | Trennvorrichtung zur Behandlung von Biomolekülen |
| US20100222560A1 (en) * | 2009-03-02 | 2010-09-02 | Zymo Research Corporation | Universal column |
Citations (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR2558847A1 (fr) | 1984-01-31 | 1985-08-02 | Millipore Sa | Dispositif et procede de controle microbiologique de liquides |
| DE3913814A1 (de) | 1989-01-13 | 1990-07-19 | Max Planck Gesellschaft | Verfahren zur elektrischen elution von auf trenngelen gebundenen, elektrisch geladenen substanzen und eine anordnung zur durchfuehrung des verfahrens |
| US4956298A (en) | 1988-01-13 | 1990-09-11 | Stephan Diekmann | Separation or reaction column unit |
| WO1993011218A1 (de) | 1991-12-02 | 1993-06-10 | Qiagen Gmbh | Verfahren und vorrichtung zur isolierung von zellinhaltsstoffen wie nukleinsäuren aus natürlichen quellen |
| WO1995002049A1 (en) | 1993-07-09 | 1995-01-19 | Cambridge Molecular Technologies Limited | Purification method and apparatus |
| WO1995018851A1 (de) | 1994-01-07 | 1995-07-13 | Qiagen Gmbh | Verfahren zum zerkleinern von hochmolekularen strukturen |
| DE19512361A1 (de) | 1995-04-01 | 1996-10-02 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren zur Isolierung eines biologischen Materials |
| US5578459A (en) | 1993-11-24 | 1996-11-26 | Abbott Laboratories | Method and apparatus for collecting a cell sample from a liquid specimen |
| WO1996041810A1 (en) | 1995-06-08 | 1996-12-27 | Progen Industries Limited | Method and apparatus for dna extraction |
Family Cites Families (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE3608883C1 (de) * | 1986-03-17 | 1987-08-13 | Armin Dipl-Chem Dr Rer N Gilak | Chromatographische Saeule fuer immunologische Untersuchungsverfahren |
| US4787971A (en) * | 1987-01-23 | 1988-11-29 | Alan Donald | Miniaturized column chromatography separation apparatus and method of assaying biomolecules employing the same |
| DE4208732C2 (de) * | 1992-03-18 | 1995-04-27 | Abion Ohg | Einwegreaktionsgefäß für die Festphasenimmunanalytik und Verfahren zur Messung von über Immunreaktionen bestimmbaren Komponenten |
| EP0588564B1 (de) * | 1992-09-18 | 1996-11-13 | AMERSHAM INTERNATIONAL plc | Vorrichtung und Methode zur Affinitätstrennung |
| DE29803712U1 (de) * | 1998-03-04 | 1998-04-23 | Macherey, Nagel GmbH & Co. Handelsgesellschaft, 52355 Düren | Vorrichtung zur Behandlung von Biomolekülen |
-
1998
- 1998-03-04 DE DE29803712U patent/DE29803712U1/de not_active Expired - Lifetime
-
1999
- 1999-03-02 DE DE59904802T patent/DE59904802D1/de not_active Expired - Lifetime
- 1999-03-02 EP EP99104140A patent/EP0940676B1/de not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR2558847A1 (fr) | 1984-01-31 | 1985-08-02 | Millipore Sa | Dispositif et procede de controle microbiologique de liquides |
| US4956298A (en) | 1988-01-13 | 1990-09-11 | Stephan Diekmann | Separation or reaction column unit |
| DE3913814A1 (de) | 1989-01-13 | 1990-07-19 | Max Planck Gesellschaft | Verfahren zur elektrischen elution von auf trenngelen gebundenen, elektrisch geladenen substanzen und eine anordnung zur durchfuehrung des verfahrens |
| WO1993011218A1 (de) | 1991-12-02 | 1993-06-10 | Qiagen Gmbh | Verfahren und vorrichtung zur isolierung von zellinhaltsstoffen wie nukleinsäuren aus natürlichen quellen |
| WO1995002049A1 (en) | 1993-07-09 | 1995-01-19 | Cambridge Molecular Technologies Limited | Purification method and apparatus |
| US5578459A (en) | 1993-11-24 | 1996-11-26 | Abbott Laboratories | Method and apparatus for collecting a cell sample from a liquid specimen |
| WO1995018851A1 (de) | 1994-01-07 | 1995-07-13 | Qiagen Gmbh | Verfahren zum zerkleinern von hochmolekularen strukturen |
| DE19512361A1 (de) | 1995-04-01 | 1996-10-02 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren zur Isolierung eines biologischen Materials |
| WO1996041810A1 (en) | 1995-06-08 | 1996-12-27 | Progen Industries Limited | Method and apparatus for dna extraction |
Non-Patent Citations (6)
| Title |
|---|
| LEONARD,J.T., et.al.: bioSolutions, AMICON, Inc., Vol.2, No.2, 4/94, S.1-7 |
| Prospekt: Sartorius Membranfilter, SM 300/1, überreicht am 16.01.78 |
| QIAGEN News. In: ISSUE, No. 1/93, S.1-12 |
| QIAGEN News. In: ISSUE, No. 1/94, S.1-20 |
| QIAGEN News. In: ISSUE, No. 2/94, S.1-14 |
| QIAGEN Product Guide 1996, S.27,28,32,48-50, S.56,57,72,75 |
Cited By (16)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0940676A3 (de) * | 1998-03-04 | 1999-09-29 | Macherey, Nagel GmbH & Co. Handelsgesellschaft | Vorrichtung zur Behandlung von Biomolekülen |
| EP0940676A2 (de) * | 1998-03-04 | 1999-09-08 | Macherey, Nagel GmbH & Co. Handelsgesellschaft | Vorrichtung zur Behandlung von Biomolekülen |
| US6177009B1 (en) | 1998-04-03 | 2001-01-23 | Macherey, Nagel Gmbh & Co. | Apparatus for treating biomolecules |
| WO2000007686A1 (en) * | 1998-08-03 | 2000-02-17 | Brian Brestovac | Air pressure device for extraction of dna and/or rna through a separation column |
| DE29918876U1 (de) | 1999-10-27 | 2000-12-07 | Macherey, Nagel GmbH & Co. Handelsgesellschaft, 52355 Düren | Trenneinrichtung |
| DE10015788A1 (de) * | 2000-03-30 | 2001-10-11 | Jens Hendel | Vorrichtung zur Untersuchung der Sterilität von Fluiden |
| US6410308B2 (en) | 2000-03-30 | 2002-06-25 | Jens Hendel | Device for examining the sterility of fluids |
| DE20111082U1 (de) | 2001-07-06 | 2001-10-31 | Macherey, Nagel GmbH & Co. Handelsgesellschaft, 52355 Düren | Vorrichtung zur Behandlung von Biomolekülen |
| US8927261B2 (en) | 2004-03-18 | 2015-01-06 | Roche Molecular Systems, Inc. | Method and device for purifying nucleic acids |
| US7897378B2 (en) | 2004-03-18 | 2011-03-01 | Roche Molecular Systems, Inc. | Method and device for purifying nucleic acids |
| US8158349B2 (en) | 2004-03-18 | 2012-04-17 | Roche Molecular Systems, Inc. | Method and device for purifying nucleic acids |
| EP2055385A1 (de) | 2007-10-31 | 2009-05-06 | Roche Diagnostics GmbH | Verfahren und Vorrichtung zur Reinigung von Nukleinsäuren |
| US8951780B2 (en) | 2007-10-31 | 2015-02-10 | Roche Molecular Systems, Inc. | Method and device for purifying nucleic acids |
| DE202015104264U1 (de) | 2014-08-13 | 2015-10-23 | Axagarius Gmbh & Co. Kg | Vorrichtung zur Aufreinigung von Nukleinsäuren |
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