DE2656317A1 - Verfahren zur herstellung einer masse von in einer physiologischen loesung suspendierten beladenen zellen - Google Patents

Verfahren zur herstellung einer masse von in einer physiologischen loesung suspendierten beladenen zellen

Info

Publication number
DE2656317A1
DE2656317A1 DE19762656317 DE2656317A DE2656317A1 DE 2656317 A1 DE2656317 A1 DE 2656317A1 DE 19762656317 DE19762656317 DE 19762656317 DE 2656317 A DE2656317 A DE 2656317A DE 2656317 A1 DE2656317 A1 DE 2656317A1
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
cells
substances
cell
loaded
cell membrane
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
DE19762656317
Other languages
English (en)
Other versions
DE2656317C2 (de
Inventor
Guenter Dr Pilwat
Ulrich Prof Dr Zimmermann
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Forschungszentrum Juelich GmbH
Original Assignee
Kernforschungsanlage Juelich GmbH
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Kernforschungsanlage Juelich GmbH filed Critical Kernforschungsanlage Juelich GmbH
Priority to DE2656317A priority Critical patent/DE2656317C2/de
Priority to CH1378777A priority patent/CH632412A5/de
Priority to SE7713945A priority patent/SE445423B/sv
Priority to FR7737046A priority patent/FR2373290A1/fr
Priority to JP14776577A priority patent/JPS5396382A/ja
Priority to US05/859,563 priority patent/US4269826A/en
Priority to GB51534/77A priority patent/GB1560166A/en
Priority to IL53595A priority patent/IL53595A/xx
Publication of DE2656317A1 publication Critical patent/DE2656317A1/de
Application granted granted Critical
Publication of DE2656317C2 publication Critical patent/DE2656317C2/de
Expired legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/14Blood; Artificial blood
    • A61K35/18Erythrocytes
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/48Preparations in capsules, e.g. of gelatin, of chocolate
    • A61K9/50Microcapsules having a gas, liquid or semi-solid filling; Solid microparticles or pellets surrounded by a distinct coating layer, e.g. coated microspheres, coated drug crystals
    • A61K9/5005Wall or coating material
    • A61K9/5063Compounds of unknown constitution, e.g. material from plants or animals
    • A61K9/5068Cell membranes or bacterial membranes enclosing drugs
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/48Preparations in capsules, e.g. of gelatin, of chocolate
    • A61K9/50Microcapsules having a gas, liquid or semi-solid filling; Solid microparticles or pellets surrounded by a distinct coating layer, e.g. coated microspheres, coated drug crystals
    • A61K9/5094Microcapsules containing magnetic carrier material, e.g. ferrite for drug targeting

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)

Description

Kernforschungsanlage Jülich Gesellschaft mit beschränkter Haftung
Verfahren zur Herstellung einer Masse von
in einer physiologischen Lösung suspendierten
beladenen Zellen
Die Erfindung bezieht sich auf ein Verfahren zur Herstellung einer Masse von in einer physiologischen Lösung suspendierten beladenen Zellen mit einer Anreicherung von zur chemischen oder physikalischen Wechselwirkung mit außerhalb der Zellmembran befindlichen Substanzen vorgesehenen Stoffen, bei dem die Permeabilität von tierischen oder menschlichen, eine Zellmembran aufweisende, in einer zellverträglichen Lösung suspendierten lebenden zellen durch Einwirkung von osmotischem Druck oder durch Einwirkung eines elektrischen Feldes erhöht wird und bei dem die Stoffe aus die Zellen umgebender zellverträglicher Lösung durch Permeation durch die die erhöhte Permeabilität aufweisenden Zellmembranen bei gleichzeitigem Austausch mit dem Zellinhalt in das Innere der zu beladenden Zellen gelangen und in diesen nach durch Regeneration der Zellen bewirktem Ausheilen der durch Einwirken des osmotischen Druckes oder des elektrischen Feldes bewirkten Veränderungen der Zellmembran eingeschlossen werden, wonach die beladenen Zellen von der die Stoffe enthaltenden zellverträglichen Lösung abgetrennt und zur
PT 1.344 - 2 -
809825/0070
ir -
(ο
Aufbewahrung in eine physiologische Lösung mit einer Osmolarität, die der Osmolarität des Inhaltes der beladenen Zellen entspricht, suspendiert werden.
Verfahren zur Herstellung einer Masse der eingangs bezeichneten Art sind aus der DT-PS 23 26 224, aus der DT-OS 23 26 161 und aus der DT-OS 24 05 119 bekannt. Dabei bezieht sich das aus der vorgenannten Patentschrift bekannte Verfahren auf den Einschluß von Komplexbildnern in aus lebenden Zellen von Lebewesen gebildeten beladenen Zellen und das aus der DT-OS 23 26 161 bekannte Verfahren auf den Einschluß von katalytisch wirkenden Stoffen wie Enzymen oder Pharmaka in beladenen Zellen, wobei bei beiden bekannten Verfahren die Erhöhung der Permeabilität der Zellmembran durch Einwirkung osmotischen Druckes auf die Zellmembran erzielt wird. Bei dem aus der DT-OS 24 05 119 bekannten Verfahren wird dagegen die Erhöhung der Permeabilität durch Einwirkung eines elektrischen Feldes erreicht.
Neben der Bezeichnung "beladene Zellen" oder "loaded cells" - die zum Ausdruck bringen soll, daß es sich um Zellen handelt, die mit solchen Substanzen "beladen" worden sind, die sich vom Zellinhalt unterscheiden sind für die nach den bekannten Verfahren hergestellten Gebilde auch die Bezeichnungen "Membranvesikel", "Ghost-Zellen" oder "Geister-Zellen" oder auch "membrane-envelope" bekannt geworden.
80982 5/0070
Für die bekannten Verfahren zur Herstellung der Masse aus beladenen Zellen sind sowohl Zellen/ die als Einzelzellen in einer physiologischen Lösung vorkommen, wie beispielsweise Erythrozyten, Lymphozyten Thrombozyten oder Leukozyten, als auch solche zellen verwendbar, die - wie beispielsweise Leberzellen - in Geweben als Verbänden von miteinander zusammenhängenden Zellen angeordnet sind. Denn der Zellverband eines Gewebes ist durch biochemische oder biophysikalische Maßnahmen auflösbar, so daß auf diese Weise in einer Lösung suspendierbare Zellen erhalten werden. Dabei wird bei der Durchführung der bekannten Verfahren, insbesondere beim Einschluß der Stoffe in die beladenen Zellen, eine spezifische Eigenschaft der Membran lebender Zellen ausgenutzt, nämlich die, daß eine in Grenzen vorgenommene Permeabilitätserhöhung durch Regeneration der Zellen wieder ausheilbar ist. Die ausgeheilte Membran der beladenen Zellen erlangt daher wieder die semipermeablen Eigenschaften der Membran der ursprünglichen Zellen. Dadurch ist es - abgesehen von der Verwendung von Stoffen, die nach ihrem Einschluß in die beladenen Zellen die Membran zerstören und dadurch freigesetzt werden - möglich, die in den beladenen Zellen eingeschlossenen Stoffe mit in in einer physiologischen Lösung außerhalb der beladenen Zellen befindlichen Substanzen in Wechselwirkung zu bringen, ohne daß die in den beladenen Zellen eingeschlossenen Stoffe in die physiologische Lösung gelangen. Das geschieht dadurch, daß die beladenen Zellen in die die Substanzen enthaltende physiologische Lösung eingegeben werden und
— 4 —
80982S/0070
4r -
die Substanz durch Permeation durch die semipermeable Membran der beladenen Zellen gelangen. Dadurch ist es beispielsweise möglich, durch das in beladenen Zellen eingeschlossene Enzym Invertase den in einer physiologischen Lösung befindlichen Rohrzucker zu Glucose und Fructose umzusetzen, da sowohl der Rohrzucker als auch Glucose und Fructose durch die Membran gelangen, während das Enzym Invertase in den beladenen Zellen eingeschlossen bleibt. Auch ist es beispielsweise möglich, Zellen mit Urease zu beladen, die gebildeten beladenen Zellen in die Blutbahn eines menschlichen Körpers zu injizieren und, ohne daß die Urease aus den beladenen Zellen in das Blut freigesetzt wird, den im Blut befindlichen und in die beladenen Zellen eindringenden Harnstoff abzubauen.
Von Nachteil ist bei der nach den bekannten Verfahren hergestellten Masse von beladenen Zellen jedoch, daß die Wechselwirkung der in den beladenen Zellen eingeschlossenen Stoffe mit den außerhalb der Zellmembran befindlichen Substanzen sich auf den gesamten Bereich der physiologischen Lösung erstreckt und somit die Wirkung des Stoffes nicht auf eine bevorzugte Stelle in der physiologischen Lösung konzentriert werden kann. Werden beispielsweise aus Erythrozyten gebildete beladeneZellen in die Blutbahn injiziert, so verteilen sich die nach den bekannten Verfahren hergestellten beladenen Zellen über die gesamte Blutbahn, was zur Folge hat, daß sich auch die Wirkung des in den beladenen Zellen
80982 5/0070
- Sr -
eingeschlossenen Stoffes auf den gesamten Bereich der Blutbahn erstreckt. Eine Begrenzung der Wirkung, beispeilsweise eines in den beladenen Zellen eingeschlossenen Medikamentes auf eine bestimmte Stelle innerhalb der BLutbahn des Körpers oder gar in einem Organ des Körpers ist bei nach den den bekannten Verfahren gebildeten beladenen Zellen nicht möglich.
Es ist Aufgabe der Erfindung, ausgehend von den aus den vorgenannten Druckschriften bekannten Verfahren, ein Verfahren zur Herstellung einer Masse von beladenen Zellen zu schaffen, nach dem eine Masse herstellbar ist, mit der es möglich ist, die in einer physiologischen Lösung - die beispielsweise das in den Adern oder Venen des tierischen oder menschlichen Körpers fließende Blut sein kann - durch die beladenen Zellen mitgeführten Stoffen an einer bevorzugten Stelley im vorgenannten Falle beispielsweise an oder in einem bestimmten Organ des tierischen oder menschlichen Körpers, zur Wirkung zu bringen.
Die der Erfindung zugrundeliegende Aufgabe wird bei einem Verfahren der eingangs bezeichneten Art gemäß der Erfindung dadurch gelöst, daß magnetische Substanzen, deren Durchmesser im Bereich zwischen 1 und 20 nm liegt, zur Aufnahme in das Innere der beladenen Zellen zusammen mit den Stoffen und den die Zellmembran mit der erhöhten Permeabilität aufweisenden Zellen in die für
8 09825/0070
den Stoffaustausch vorgesehene physiologische Lösung in einer solchen Dosierung eingegeben werden, daß die beladenen Zellen durch ein auf die magnetischen Substanzen einwirkendes äußeres Magnetfeld an einer vorbestimmten Stelle in der physiologischen Lösung festgehalten werden.
Werden beispielsweise nach dem Verfahren gemäß der Erfindung ferri-, ferro- oder auch paramagnetische Verbindungen, wie beispielsweise Kobalt- oder Nickelferrit oder Magnetit oder Ferritin in die beladenen Zellen eingeschlossen, dann ist es auf einfache Weise möglich, die in der Blutbahn eines Körpers befindlichen beladenen Zellen durch ein an bevorzugter Stelle des menschlichen Körpers angelegtes magnetisches Feld an dieser Stelle festzuhalten und somit die Stoffe - die pharmakologische aber auch andererStoffe, wie Radionuklide, sein können - an dieser Stelle bevorzugt zur Wirkung zu bringen, wobei zur Erzeugung eines hinreichenden Feldgradienten des magnetischen Feldes gegebenenfalls ein mit physiologischem Kunststoff überzogenes Metallstück an die betreffende Stelle gebracht wird.
Eine vorteilhafte Weiterausgestaltung des Verfahrens gemäß der Erfindung besteht darin, daß bei Stoffen, die nach alleinigem Einschluß in die beladenen Zellen durch Wechselwirkung mit der Zellmembran zu deren vorzeitigen Zerstörung führen wurden - was eine vorzeitige unkontrollierte Freisetzung des Stoffes aus den Membran-
809825/0070
It
vesikeln und möglicherweise eine Verteilung des Stoffes in der physiologischen Lösung zur Folge hätte - zur Aufnahme in das Innere der beladenen Zellen zusammen mit den Stoffen/ den magnetischen Substanzen und den die Zellmembran mit der erhöhten Permeabilität aufweisenden Zellen weitere Stoffe, die mit den zur Wechselwirkung mit den außerhalb der beladenen Zellen befindlichen Substanzen vorgesehenen Stoffen Wasserstoffbrücken bilden oder kovalente Bindungen eingehen, so daß die Stoffe nicht mit der Membran reagieren können, ihre vorgesehene Wirkung jedoch nicht beeinträchtigt wird, in die für den Stoffaustausch vorgesehene physiologische Lösung in einer solchen Dosierung eingegeben werden, daß nach Einschluß sämtlicher Stoffe in den beladenen Zellen die Wechselwirkung der Stoffe mit der Zellmembran für eine vorbestimmte Zeit verhindert wird. Dadurch wird eine vorzeitige Zerstörung der beladenen Zellen auch bei Stoffen verhindert, die bei alleinigem Einschluß zur vorzeitigen Zerstörung der Membran führen würden, bei ihrer Verwendung in den an einer bevorzugten Stelle in der physiologischen Lösung festgehaltenen beladenen Zellen eingeschlossen bleiben sollen.
Bei Anwendung dieser Variante des Verfahrens gemäß der Erfindung wird beispielsweise zu dem als Mittel zur Krebsbekämpfung bekannten Stoff 6-Fluorouracil und den magnetischen Substanzen beispielsweise das Protein Albumin oder ein Zucker, beispielsweise Saccharose, in die be-
809825/0070
Ά -
ladenen Zellen eingeschlossen und dadurch erreicht, daß die Membrane der beladenen Zellen etwa doppelt so lange stabil bleiben. Selbstverständlich ist es durch entsprechende Dosierung der die Zerstörung verzögernden Stoffe auch möglich, zu erreichen, daß die beladenen Zellen nur über kurze Zeit intakt bleiben.
Eine besonders vorteilhafte Verwendung der nach der vorgenannten Verfahrensvariante gemäß der Erfindung hergestellten beladenen Zellen besteht beispielsweise in ihrer Verwendung beim Einsatz zur Behandlung von Tumoren. Hierzu wird beispielsweise Methotrexat, das zu den Folsaureantagonisten gehört, die heute neben alkylierenden Wirkstoffen zu den wirksamsten Substanzen für die Behandlung von Neoplasien (Geschwulste) zählen, zusammen mit dem magnetischen Stoff und dem die Zerstörung der Zellmembran verzögernden Stoff in den beladenen Zellen eingeschlossen. Die beladenen Zellen werden sodann in die Blutbahn des Körpers injiziert und durch ein äußeres magnetisches Feld an der Stelle des Tumors festgehalten. Das nach vorbestimmter Zeit freiwerdende Methotrexat entfaltet sodann an der Stelle des Tumors seine Wirkung. Dadurch wird in vorteilhafter Weise verhindert, daß das Methotrexat im gesamten Blutkreislauf verteilt wird, überall im Körper seine Wirkung entfaltet und somit auch gesundes Gewebe angreift. Dieser Nachteil war bei der bisher üblichen Anwendung des Methotrexats, wobei Methotrexat direkt in die Blutbahn injiziert wird,
80982B/0070
2 Π .S 6
nicht zu verhindern. Bei Verwendung der nach der vorgenannten Verfahrensvariante hergestellten beladenen Zellen wird zudem erreicht, daß eine geringere Dosis als bisher erforderlich für die Behandlung von Tumoren in den Körper eingebracht zu werden braucht oder daß eine geringere Zahl von Injektionen als bisher nötig ist, was dazu beiträgt, negative Nebenwirkungen beim Einsatz dieses Mittels zu vermeiden.
Eine weitere, sehr vorteilhafte Weiterausgestaltung des Verfahrens gemäß der Erfindung besteht darin, daß bei zur Freisetzung aus den beladenen Zellen vorbestimmten, jedoch mit der Zellmembran verträglichen Stoffen, die keine Zerstörung der Zellmembran bewirken, zur Aufnahme in das Innere der zu beladenden Zellen zusammen mit den Stoffen, den magnetischen Substanzen und den die Zellmembran mit der erhöhten Permeabilität aufweisenden Zellen die Zerstörung der Zellmembran bewirkende Wirkstoffe in die für den Stoffaustausch vorgesehene physiologische Lösung in einer solchen Dosierung eingegeben werden, daß nach dem Ausheilen der Zellmembran und dem Abtrennen der beladenen Zellen von der die Stoffe enthaltenden Lösung die Zellmembran der beladenen Zellen nach einer vorbestimmten Zeit zerstört wird. Bei Verwendung von solchen, die Zerstörung der Zellmembran bewirkenden Stoffen, wie zum Beispiel· proteolytische Knζynie und Lipid abbauende Substanzen, wie Pronase, PhosphoLiphase und Trypsin, ist es beispielsweise nach Inji/. icren
K)
β 0 9 Β 2 B / 0 0 7 0
? f i S 6 3 1
von beladneen Zellen in die Blutbahn eines tierischen oder menschlichen Körpers möglich, bestimmte, in den beladenen ZeILen eingeschlossene Stoffe, wie beispielsweise Tetrazyklin, dem Ferritin beigefügt ist, durch Festhalten der beladenen Zellen an einer bevorzugten Stelle in der BLutbahn zu sammeln und den Stoff nach einer vorbestimmten Zeit in die Blutbahn freizusetzen. Hierdurch wird eine besonders hohe Effektivität des verwendeten Stoffes erzielt. Dabei -ist es selbstverständlich möglich, eine Mischung von beladenen Zellen mit unterschiedlicher Dosis des die Zellmembran zerstörenden Wirkstoffes in die Blutbahn zu injizieren, um so den Verlauf der Freisetzung des Stoffes im Körper in vorbestimmter Weise zu steuern.
Als zweckmäßig hat sich ferner erwiesen, daß bei Stoffen, die nach alleinigem Einschluß in die beladenen Zellen durch Wechselwirkung mit der Zellmembran zu deren vorzeitigen Zerstörung führen würden, die jedoch erst nach einer vorbestimmten Zeit aus den beladenen Zellen freigesetzt werden soLLern, zur Aufnahme in die zu beladenden Zellen zusätzlich zu den Stoffen, die die Zerstörung der Zellmeinbr m durch Wasserstoffbrückenbildung oder durch BiLdung von kovaLenten Bindungen mit den zur WechsfiLwirkung mit außerhalb der beladenen Zellen befindlichen Substanzen vorgesehenen Stoffen hemmen, die Zerstörung dejr Ze Llme;nibr in bewirkende Wirkstoffe in die für den Stoftaustciunch vorgesehene zellverträgliche Lösung in
- 11 -
η η 1J a ■->^ / ο ο ν π
ORIGINAL
einer solchen Dosierung eingegeben werden, daß nach dem Ausheilen der Zellmembran und dem Abtrennen der beladenen Zellen von der die Stoffe enthaltenden Lösung die Zellmembran der beladenen Zellen nach einer vorbestimmten Zeit zerstört werden. Ein unkontrolliertes Freisetzen des in den beladenen Zellen eingeschlossenen Stoffes wird somit in vorteilhafter Weise verhindert.
Eine sehr vorteilhafte Weiterausgestaltung des Verfahrens gemäß der Erfindung besteht ferner darin, daß die zur Wechselwirkung mit den außerhalb der beladanen Zellen befindlichen Substanzen vorgesehenen Stoffe mit einer aus Liposomen bestehenden Umhüllung eines Durchmessers im Bereich von 5 bis 20 nm in die für den Stoffaustausch vorgesehene zellverträgliche Lösung eingegeben werden.
Da die Liposomen nach ihrer Freisetzung aus den beladenen Zellen sofort in das die Blutbahn angrenzende Gewebe gelangen, ist es somit möglich, bestimmte Stoffe direkt in das Innere von Organen eines Körpers, das durch Blutkapillare nicht erreicht wird, zur Wirkung zu bringen. Dazu ist es lediglich erforderlich, die beladenen Zellen zunächst in der Blutbahn des Organs durch Einwirkung eines von außen an den Körper angelegten magnetischen Feldes festzuhalten und danach den oder die mit Liposomen umhüllten Stoffe durch Zerstörung der Zellmembran freizusetzen.
- 12 _
80982S/0070
-Yt-
Bei der Durchführung des Verfahrens gemäß der Erfindung kann die Permeabilitätserhöhung je nach den Erfordernissen wahlweise durch Einwirkung osmotischen Druckes oder durch Einwirkung eines elektrischen Feldes erfolgen.
Für den Fall, daß gemäß der in der DT-PS 23 26 224 und in der DT-OS 23 26 191 gegebenen Lehre die Permeabilitätserhöhung durch Einwirkung osmotischen Druckes erfolgen soll, wird bei der Durchführung des Verfahrens gemäß der Erfindung folgendermaßen verfahren:
Die für die Herstellung der Masse aus beladenen Zellen vorgesehenen Zellen werden in eine zellverträgliche Lösung, die beispielsweise eine mindestens 0,5 mM/1 Magnesium- und/oder Kalzium sowie Kalium-Ionen enthaltende wäßrige Lösung sein kann, gegeben, deren Osmolarität gegenüber der Osmolarität des Zellinhaltes so niedrig ist, daß durch den in den Zellen dadurch entstehenden osmotischen Druck die Permeabilitätserhöhung der Zellmembran - ohne diese jedoch zu zerstören - bewirkt wird. Falls Erythrozyten zur Herstellung von beladenen Zellen verwendet werden, beträgt der zu wählende Osmolaritätsunterschied etwa einen Faktor 15. In der zellverträglichen Lösung sind außerdem die in den beladenen Zellen einzuschließenden Stoffe enthalten oder werden nunmehr eingegeben. Dabei werden die gemäß der durch die Erfindung gegebenen Lehre in die Zellen einzuschließenden Stoffe in geeigneter Dosierung in die zellverträgliche Lösung
_ 13 _
809825/0070
eingegeben. Nachdem der Stoffaustausch zwischen den in der zellverträglichen Lösung befindlichen Stoffen und dem Zellinhalt durch die nunmehr eine erhöhte Permeabilität aufweisende Zellmembran erfolgt ist und der Inhalt der sich bildenden beladenen Zellen praktisch der zellverträglichen Lösung entspricht, wird im Anschluß daran die Osmolarität der zellverträglichen Lösung durch Zugabe osmotisch aktiver Stoffe, wie Kalzium-, Kalium- und Natriumionen, auf die Osmolarität des ursprünglichen Zellinhaltes erhöht. Unter osmotisch aktiven Stoffen werden hier Stoffe verstanden, die einen Reflexionskoeffizienten von etwa 0,8 aufweisen, dennoch aber, da sie im allgemeinen in einer zellverträglichen Lösung enthalten sind, daher einen hinreichenden osmotischen Druck aufbauen. Nach einer Verweilzeit, in der die Zellmembranen ausheilen, werden die so gebildeten beladenen Zellen von der zellverträglichen Lösung abgetrennt und die so hergestellte Masse aus beladenen Zellen zur Aufbewahrung in eine isotone, physiologische Flüssigkeit gegeben. Bei Verwendung von Erythrozyten ist es zweckmäßig, zur Ausheilung der bei der Permeabilitätserhöhung bewirkten Veränderungen der Zellmembranöie Zellen etwa 5 Minuten bei 00C zu belassen und sodann für etwa 30 bis 60 Minuten auf Körpertemperatur aufzuwärmen.
Für den Fall, daß gemäß der in der DT-OS 24 05 119 gegebenen Lehre die Permeabilitätserhöhung durch Einwirkung eines elektrischen Feldes erfolgen soll, wird
- 14 -
809825/007(1
der Durchführung des Verfahrens gemäß der Erfindung wie folgt verfahren:
Die für die Herstellung der Masse aus beladenen Zellen vorgesehenen Zellen werden in eine zweckmäßigerweise zwischen 0 C und 25 C liegende Temperatur aufweisende, elektrischen Strom leitende, eine zellverträgliche Elektrolytlösung bildende Flüssigkeit eingegeben. Im Anschluß daran wird die die Zellen enthaltende Elektrolytlösung einem elektrischen Feld mit einer Stärke
3 5
von 10 bis 10 V/cm solange ausgesetzt, bis die Permeabilität der Zellmembran soweit erhöht ist, daß Moleküle mit einem Radius von wenigstens 0,5 mm durch die Zellmembran gelangen. Dabei wird zweckmäßigerweise die Elektrolytlösung durch den Fokus eines elektrischen Feldes geleitet. Die erfolgte Permeabilitätserhöhung ist beispielsweise bei Anwendung des Verfahrens auf Erythrozyten an der Verfärbung der Elektrolytflüssigkeit infolge des aus dem Zeil inneren austretenden Hämoglobins und an der Entfärbung der Erythrozyten zu erkennen. Für den Fall, daß in der zellverträglichen Elektrolytlösung bereits die in den beladenen Zellen einzuschließenden Stoffe und Substanzen enthalten sind, findet nach der Permeabilitätserhöhung der Stoffaustausch statt. Es ist jedoch auch möglich, nach der Permeabilitätserhöhung die Zellen noch vor dem erfolgten Ausheilen der Zellmembran in eine zellverträgliche Lösung zu geben, deren Osmolarität der Osmolarität des zelLinhaltes der ursprünglichen
-15 -
80982Π/007Π
- 2-3 -
Zellen entspricht. In dieser zellverträglichen Lösung, in der die in die beladenen Zellen einzuschließenden Stoffe enthalten sind, findet der Stoffaustausch zwischen den Stoffen und dem Zellinhalt statt. Nach einer Verweilzeit, in der die Zellmembranen ausheilen, werden die gebildeten beladenen Zellen von der zellverträglichen Lösung abgetrennt und die so hergestellte Masse aus beladenen Zellen zur Aufbewahrung in eine isotone physiologische Flüssigkeit gegeben. Bei Verwendung von Erythrozyten ist es zweckmäßig, die beladenen Zellen in einer Kaliumchloridlösung herzustellen und die gebildeten beladenen Zellen sodann in eine isotone Natriumchloridlösung zu übertragen, die in ihrer Ionenkonzentration und Osmolarität dem Blutserum entspricht.
Ausführungsbeispiel 1
Nach der von W. J. Schnehle und V. D. Deetschreak in J. appl. Phys. 32, 2355 (1961) angegebenen Methode wurden zunächst Ferritpartikeln hergestellt, indem
1 Mol Kobaltchlorid und 2 Mole Eisen(III)-Chlorid in
2 1 heißem, destilliertem Wasser gelöst und zu 1 1 einer siedenden 8 molaren Natronlaugenlösung unter Rühren hinzugegeben wurden. Das gebildete Kobalt-Ferrit wurde sodann mit Wasser bis zum Erreichen der Neutralität gewaschen und danach große Partikeln abfiltriert. Um nach dem Einschluß der Ferritteilchen in die beladenen Zellen eine nachträgliche Hämolyse oder die Zerstörung
- 16 -
809825/0070
a er
der beladenen Zellen zu vermeiden, wurden die Ferritpartikeln im Anschluß daran mit einem Silikonfilm überzogen, indem die die Ferritpartikeln enthaltende Suspension mit Silikonöl der Handelsbezeichnung AR5 geschüttelt wurden. Nach dem Abtrennen des Silikonöls durch Abzentrifugieren wurden die Ferritpartikeln in eine Lösung folgender Zusammensetzung im Gewichtsverhältnis von 1 : 10 suspensiert:
105 mM KCl; 20 mM NaCl; 4 mM MgCl2; 7,6 mM Na3HPO4; 2,4 mM NaH2PO4 und 10 mM Glucose.
Zur Bildung der beladenen Zellen wurden Erythrozyten, unabhängig von der Herstellung der Ferritpartikeln, in einer Lösung der vorgenannten Zusammensetzung im Verhältnis von etwa 1 Volumenteil Erythrozyten zu Volumenteilen der Lösung suspendiert. Der pH-Wert der Lösung betrug 7,2.
Von der so gebildeten, die Erythrozyten enthaltenden Suspension wurden 10 ml in einer hierfür geeigneten Apparatur für 40 ,usek bei 00C einer elektrischen Feldstärke von 12 KV/cm ausgesetzt. Etwa 1 Minute nach Anwendung des elektrischen Feldes, auf die die Hämolyse erfolgte, wurden Methotrexat im Verhältnis von 5 mM pro Liter Lösung sowie 1 ml der die Ferritpartikeln enthaltenden Suspension zugegeben. Nach der Hämolyse, die etwa 5 Minuten dauerte, wurde die Lösung für weitere 5 Minuten auf 00C gehalten, um einen Ausgleich zwischen dem in dem Zellinnern befindlichen Medium mit der
- 17 -
809825/Q070
Außenlösung, die das Methotrexat enthielt, zu erreichen. Im Anschluß daran wurde die Temperatur der Lösung auf 37°C erhöht, um das Ausheilen der in den Membranen durch das elektrische Feld bewirkten Veränderungen zu beschleunigen. Der Ausheilvorgang war dabei nach etwa 20 Minuten abgeschlossen. Um die mit den Ferritpartikeln beladenen Zellen aus der Suspension zu gewinnen, wurde danach die Suspension mehrmals 2 Minuten lang bei einer Beschleunigung, die dem tauseuäfachen Wert der Erdbeschleunigung entspricht, zentrifugiert, wobei jeweils die auf den nicht eingeschlossenen Partikeln liegende Zell^schicht entnommen wurde.
Die erhaltenen beladenen Zellen wurden im Anschluß daran im Volumenverhältnis von 1 : 10 in einer physiologischen Lösung suspendiert, die wie folgt zusammengesetzt war:
138,6 mM NaCl; 12,3 mM Na3HPO4; 2,7 mM NaH3PO4.
Der pH-Wert der Lösung betrug 7,4. Die so erhaltene Suspension wurde in ein Reagenzglas mit einem Durchmesser von 10 mm gefüllt und dieses zwischen die Polschuhe eines u-förmigen Permanentmagneten gebracht. Wie durch Untersuchung mittels eines Mikroskops nachgewiesen werden konnte, sammelten sich die beladenen Zellen an den an den Polschuhen anliegenden Reagenzglaswänden.
Bei einer Lagerung der beladenen Zellen bei etwa 4°C wurden nach etwa einem Tag noch 90 %, nach 2 Tagen
- 18 -
80982 5/0070
87 %r nach 4 Tagen noch 65 % und nach 7 Tagen noch 53 % der beladenen Zellen im Zellsediment nachgewiesen.
Ausführungsbeispiel 2
Die beladenen Zellen wurden, wie im Ausführungsbeispiel 1 beschrieben, hergestellt, dabei jedoch anstelle der die Ferritpartikeln enthaltenden Lösung 1 ml einer 10 %igen isotonen Ferritinlösung der die Erythrozyten enthaltenen Lösung zugegeben. Nach Präparation der gebildeten beladenen Zellen wurde das eingeschlossene Ferritin mittels eines Elektronenmikroskops nachgewiesen.
Ausführungsbeispiel 3
Die beladenen Zellen wurden, wie im Ausführungsbeispiel 1 beschrieben, gebildet, jedoch zusätzlich zu dem Methotrexat und den Ferritpartikeln noch 0,1 Volumen % Albumin in die Lösung gegeben, in der die Erythrozyten dem elektrischen Feld zur Permeabilitätserhöhung und zum Einschließen der Stoffe ausgesetzt wurden.
Die beladenen Zellen konnten bei einer Temperatur von etwa 4 C über eine längere Zeit gelagert werden als die nach dem Ausführungsbeispiel 1 gebildeten beladenen Zellen. Nach 7 Tagen wurden noch 85 % der beladenen Zellen im Zellsediment nachgewiesen.
- 19 -
5/0070
Ausführungsbeispiel 4
Die beladenen Zellen wurden, wie im Ausführungsbeispiel 1 angegeben, hergestellt. Anstelle jedoch der die Erythrozyten enthaltenden Lösung nach der Applizierung des elektrischen Feldes die das Methotrexat und die die Ferritpartikeln enthaltenden Lösung zuzugeben, wurden schon vor der Applizierung des elektrischen Feldes in die Lösung, in die die Erythrozyten eingegeben wurden, Saccharose und Pronase P in einer Dosierung eingegeben, so daß diese Lösung 10 mM Saccharose und 0,01 mg pro 100 ml Lösung Pronase P enthielt. Die Saccharose war mit dem Radionuklid C 14 markiert.
Um die Wirkung des in den beladenen Zellen eingeschlossenen Pronase P zu verfolgen, wurden die beladenen Zellen in einer physiologischen Lösung der in Ausführungsbeispiel 1 angegebenen Zusammensetzung aufbewahrt, nach 20 Stunden abzentrifugiert und durch Messung der in der Lösung und der in den noch intakten beladenen Zellen enthaltenen Radioaktivität die Menge der intakten beladenen Zellen festgestellt. Bezogen auf beladene Zellen, die ohne den Einschluß von Pronase P hergestellt worden waren, betrug die Zahl der noch intakten beladenen Zellen nach 20 Stunden nur noch 11 %.
Ausführungsbeispiel 5
Die Zellen wurden, wie in Ausführungsbeispiel 1 beschrie-
- 20 -
80982S/0070
2 (i 1S G 3
ben, hergestellt. Statt jedoch nach der Applizierung des elektrischen Feldes die das Methotrexat und die die Ferritpartikeln enthaltenden Lösungen zuzugeben, wurden schon vor der Applizierung dos elektrischen Feldes Mothotrexat, das mit Tritium markiert worden war, Albumin und Phospholiphase C zugegeben. Der Anteil an Met Iiot rexat in der Lösung betrug 5 mM, der an Albumin 0,1 Volumen % und der an Phospholiphase C 0,01 mg pro 100 ml Lösung.
Nach Hi Idling der beladenon Zellen wurde die Wirkung d(i in <Jen Zellen eingeschlossenen Phospholiphase C duich Messung der Radioaktivität - wie in Ausfuhrungsbeispiel 4 angegeben - festgestellt. Nach 20 Stunden waion noch - bezogen auf beladene Zellen, die ohne lünschluH von I'hosphol iphase C hergestellt worden waren run noch 17 % an intakten beladonen Zellen vorhanden.
Ausfühi unqrbeispiel G
Zui Herstellung von boladonen Zellen dutch Einwirkung onmoti sehen Druckes wurden Li yi Iir o?yt en im Volumenverhältni.'j von 1 : 1 in inotonei, phorph.ii-q^jiuf f er t er NaCl-I.ösung der folgenden Zusamneni;« \ -im g suspendiert.:
138,( mM NaCl; 12,3 mM Nn^HI'O.; ?, 7 mM Dei pH-Wert der Lösung betrug 7,4.
- 21 -
809 8 ?r; /0070
Von der so gebildeten Suspension wurde 1 ml zur Erhöhung der Permeabilität der Membran der Zellen zu 10 ml einer Lösung unter Rühren zugegeben/ die 5 mM Methotrexat, das mit Tritium markiert worden war, 4 mM MgSCK und 50 mM Saccharose enthielt. Im Anschluß daran wurden weitere 1 ml einer Lösung zugegeben/ die 4 mM MgSO., 50 mM Saccharose und Ferritpartikeln im Gewichtsverhältnis von 1 : 10 enthielt. Die so gebildete Lösung wurde 5 Minuten bei 0 C belassen.
Im Anschluß daran wurde die Osmolarität der ursprünglichen Lösung wieder hergestellt, indem eine entsprechende Menge einer 2 molaren KCl-Lösung zugegeben wurden. Die Losung wurde darauf weitere 5 Minuten bei 00C belassen und sodann die Temperatur für 20 Minuten auf 37 C erhöht, um das Ausheilen der Membranen zu beschleunigen. Nach Abzentrifugieren der so gebildeten belädenen Zellen aus der Lösunj wurden die Zellen in eine isotone, phosphat-gepufferte NaCl-Lösung der vorgenannten Zusammensetzung inkubiert.
Die so gebildeten belädenen Zellen enthielten - bezogen auf die Volumeneinheit - praktisch die gleiche Menge an Methotrexat wie das Außenmedium nämlich 98 % der in dem Außenmedium vorhandenen Konzentration an Methotrexat.
Der Nachweis der Wirkung der in den belidenen Zellen einje.-3chl )3f3enen Ferritpartikeln je.jchah wie in Aasf ührun-jsbeiapiel 1 beschrieben.
- 22 ·
809825/0070 RiI 1«?5/0f)70

Claims (6)

  1. Patenta α Sprüche
    Γΐ\ Verfahren zur Herstellung einer Masse von in einer physiologischen Lösung suspendierten beladenen Zellen mit einer Anreicherung von zur chemischen oder physikalischen Wechselwirkung mit außerhalb der beladenen Zellen befindlichen Substanzen vorgesehenen btoffe, oei dem die Permeabilität von tierischen oder menschlichen, eine Zellmembran aufweisende, in einer zellverträglichen Lösung suspendierten, lebenden zellen durch Einwirkung von osmotischem Druck oder durch Einwirkung eines elektrischen Feldes erhöht wird und bei dem die Stoffe aus die Zellen umgebender zellverträglicher Lösung durch Permeation durch die die erhöhte Permeabilität aufweisenden Zellmembranen bei gleichzeitigem Stoffaustausch mit dem Zellinhalt in das Innere der so sich bildenden beladenen Zellen gelangen und in diesen nach durch Regeneration der Zellen bewirktem Ausheilen der durch Einwirkung des osmotischen Druckes oder des elektrischen Feldes bewirkten Veränderungen der Zellmembran eingeschlossen werden, wonach die beladenen Zellen von der die Stoffe enthaltenden zellverträglichen Lösung abgetrennt und zur Aufbewahrung in eine physiologische Lösung mit einer Osmolarität, die der Osmolarität des Inhaltes der beladenen Zellen entspricht, suspendiert werden, dadurch
    - 23 -
    809825/0070
    gekennzeichnet, daß magnetische Substanzen, deren Durchmesser im Bereich zwischen 1 und 20 nm liegt, zur Aufnahme in das Innere der zu beladenden Zellen zusammen mit den Stoffen und den die Zellmembran mit der erhöhten Permeabilität aufweisenden Zellen in die für den Stoffaustausch vorgesehene Lösung in einer solchen Dosierung eingegeben werden, daß die beladenen Zellen durch ein auf die magnetischen Substanzen einwirkendes äußeres Magnetfeld an einer vorbestimmten Stelle in der physiologischen Lösung festgehalten werden.
  2. 2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß bei Stoffen, die nach alleinigem Einschluß in die beladenen Zellen durch Wechselwirkung mit der Zellmembran zu deren vorzeitigen Zerstörung führen würden, zur Aufnahme in das Innere der zu beladenden Zellen zusammen mit den Stoffen, den magnetischen Substanzen und den die Zellmembran mit der erhöhten Permeabilität aufweisenden Zellen weitere Stoffe, die mit den zur Wechselwirkung mit den außerhalb der beladenen Zellen befindlichen Substanzen vorgesehenen Stoffen Wasserstoffbrücken bilden oder kovalente Bindungen eingehen, so daß die Stoffe nicht mit der Membran reagieren können, ihre vorgesehene Wirkung jedoch nicht beeinträchtigt wird, in die für den Stoffaustausch vorgesehene zellverträgliche Lösung in einer
    - 24 -
    809825/0070
    24 -
    solchen Dosierung eingegeben werden, daß nach Einschluß sämtlicher Stoffe in den beladenen Zellen die Wechselwirkung der Stoffe mit der Zellmembran für eine vorbestimmte Zeit verhindert wird.
  3. 3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß bei zur Freisetzung aus den beladenen Zellen vorbestimmten, jedoch mit der Zellmembran verträglichen Stoffen, die keine Zerstörung der Zellmembran bewirken, zur Aufnahme in das Innere der zu beladenden Zellen zusammen mit den Stoffen, den magnetischen Substanzen und den die Zellmembran mit der erhöhten Permeabilität aufweisenden Zellen die Zerstörung der Zellmembran bewirkende Wirkstoffe in die für den Stoffaustausch vorgesehene zellverträgliche Lösung in einer solchen Dosierung eingegeben werden, daß nach dem Ausheilen der Zellmembran und dem Abtrennen der beladenen Zellen von der die Stoffe enthaltenden Lösung die Zellmembranen der beladenen Zellen nach einer vorbestimmten Zeit zerstört werden.
  4. 4. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet , daß zur Aufnahme in die zu beladenden Zellen zusätzlich die Zerstörung der zellmembran bewirkende Wirkstoffe in die für den Stoffaustausch vorgesehene zellverträgliche Lösung in einer solchen Dosierung eingegeben werden,
    - 25 -
    80982B/0070
    -j* if
    daß nach dem Ausheilen der Zellmembranen und dem Abtrennen der beladenen Zellen von der die Stoffe enthaltenden Lösung die Zellmembran der beladenen Zellen nach einer vorbestimmten Zeit zerstört werden.
  5. 5. Verfahren nach einem der Ansprüche 2 bis 4, dadurch gekennzeichnet, daß die zur Wechselwirkung mit den außerhalb der Zellmembran befindlichen Substanzen vorgesehenen Stoffe mit einer aus Liposomen bestehenden Umhüllung eines Durchmessers im Bereich von 5 bis 20 nm in die für den Stoffaustausch vorgesehene zellverträgliche Lösung eingegeben werden.
  6. 6. Masse nach einem der vorhergehenden Ansprüche.
    809825/0070
DE2656317A 1976-12-11 1976-12-11 Verfahren zur Herstellung einer Suspension von beladenen Erythrocyten Expired DE2656317C2 (de)

Priority Applications (8)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE2656317A DE2656317C2 (de) 1976-12-11 1976-12-11 Verfahren zur Herstellung einer Suspension von beladenen Erythrocyten
CH1378777A CH632412A5 (de) 1976-12-11 1977-11-11 Verfahren zur herstellung einer masse von in einer physiologischen loesung suspendierten beladenen zellen.
FR7737046A FR2373290A1 (fr) 1976-12-11 1977-12-08 Procede pour la preparation d'une masse de cellules chargees en suspension dans une solution physiologique
SE7713945A SE445423B (sv) 1976-12-11 1977-12-08 Forfarande for framstellning av en suspension av i fysiologisk losning suspenderade och med metotrexat eller 6-fluorouracil belastade blodceller samt magnetiska substanser
JP14776577A JPS5396382A (en) 1976-12-11 1977-12-10 Production of assembled substance of load cell suspended in phisiological solution
US05/859,563 US4269826A (en) 1976-12-11 1977-12-12 Physiological preparation containing loaded cells in suspension and a magnetic agent for local concentration thereof in a living body
GB51534/77A GB1560166A (en) 1976-12-11 1977-12-12 Loaded cells
IL53595A IL53595A (en) 1976-12-11 1977-12-13 Biological cells comprising pharmaceutically active substances and particles of magnetic material,their preparation and pharmaceutical compositions containing them

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE2656317A DE2656317C2 (de) 1976-12-11 1976-12-11 Verfahren zur Herstellung einer Suspension von beladenen Erythrocyten

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE2656317A1 true DE2656317A1 (de) 1978-06-22
DE2656317C2 DE2656317C2 (de) 1986-06-19

Family

ID=5995351

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE2656317A Expired DE2656317C2 (de) 1976-12-11 1976-12-11 Verfahren zur Herstellung einer Suspension von beladenen Erythrocyten

Country Status (8)

Country Link
US (1) US4269826A (de)
JP (1) JPS5396382A (de)
CH (1) CH632412A5 (de)
DE (1) DE2656317C2 (de)
FR (1) FR2373290A1 (de)
GB (1) GB1560166A (de)
IL (1) IL53595A (de)
SE (1) SE445423B (de)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0042249A2 (de) 1980-06-13 1981-12-23 Northwestern University Magnetisch lokalisierbare, bioabbaubare Lipid-Mikrokugeln

Families Citing this family (53)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4345588A (en) * 1979-04-23 1982-08-24 Northwestern University Method of delivering a therapeutic agent to a target capillary bed
JPS5661992A (en) * 1979-10-24 1981-05-27 Kibun Kk Fermentation and/or aging method
US4392040A (en) * 1981-01-09 1983-07-05 Rand Robert W Induction heating apparatus for use in causing necrosis of neoplasm
US4558690A (en) * 1982-01-26 1985-12-17 University Of Scranton Method of administration of chemotherapy to tumors
FR2529463B1 (fr) * 1982-07-05 1986-01-10 Centre Nat Rech Scient Procede et dispositif pour l'encapsulation dans les erythrocytes d'au moins une substance a activite biologique, notamment des effecteurs allosteriques de l'hemoglobine et erythrocytes ainsi obtenus
US4731239A (en) * 1983-01-10 1988-03-15 Gordon Robert T Method for enhancing NMR imaging; and diagnostic use
US4622952A (en) * 1983-01-13 1986-11-18 Gordon Robert T Cancer treatment method
US4545368A (en) * 1983-04-13 1985-10-08 Rand Robert W Induction heating method for use in causing necrosis of neoplasm
US4590922A (en) * 1983-08-19 1986-05-27 Gordon Robert T Use of ferromagnetic, paramagnetic and diamagnetic particles in the treatment of infectious diseases
US4829984A (en) * 1983-12-15 1989-05-16 Gordon Robert T Method for the improvement of transplantation techniques and for the preservation of tissue
US4610241A (en) * 1984-07-03 1986-09-09 Gordon Robert T Atherosclerosis treatment method
US4652257A (en) * 1985-03-21 1987-03-24 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Magnetically-localizable, polymerized lipid vesicles and method of disrupting same
US4983159A (en) * 1985-03-25 1991-01-08 Rand Robert W Inductive heating process for use in causing necrosis of neoplasms at selective frequencies
US4690130A (en) * 1985-12-19 1987-09-01 Mirell Stuart G Electromagnetic therapy control system
US5019372A (en) * 1986-06-27 1991-05-28 The Children's Medical Center Corporation Magnetically modulated polymeric drug release system
US4770183A (en) * 1986-07-03 1988-09-13 Advanced Magnetics Incorporated Biologically degradable superparamagnetic particles for use as nuclear magnetic resonance imaging agents
US4996991A (en) * 1986-07-18 1991-03-05 Gordon Robert T Method for following the distribution of particles in neurological or neuromuscular tissue and cells
US4950221A (en) * 1986-07-18 1990-08-21 Gordon Robert T Process for affecting molecules in tissue
US4923437A (en) * 1986-07-18 1990-05-08 Gordon Robert T Process for applying a localized magnetic or electric field
US4869247A (en) * 1988-03-11 1989-09-26 The University Of Virginia Alumni Patents Foundation Video tumor fighting system
US5057301A (en) * 1988-04-06 1991-10-15 Neorx Corporation Modified cellular substrates used as linkers for increased cell retention of diagnostic and therapeutic agents
US4935223A (en) * 1988-08-04 1990-06-19 Board Of Regents, The University Of Texas System Labeled cells for use in imaging
DE3925680A1 (de) * 1989-08-03 1991-02-07 Kruess Gmbh Wissenschaftliche Verfahren zur herstellung vitaler wirkstoff-beladener humanerythrozyten
DK0487615T3 (da) * 1989-08-18 1994-03-14 Monsanto Co Ferritin-analoger
SU1722256A3 (ru) * 1989-11-02 1992-03-23 Viktor A Volkonskij Cпocoб пoлучehия maгhиtoупpabляemoй диcпepcии
US5125888A (en) * 1990-01-10 1992-06-30 University Of Virginia Alumni Patents Foundation Magnetic stereotactic system for treatment delivery
US5443813A (en) * 1991-06-06 1995-08-22 Associated Universities, Inc. Loading and conjugating cavity biostructures
US6374670B1 (en) * 1995-03-13 2002-04-23 University Of Washington Non-invasive gut motility monitor
WO1997004830A1 (en) 1995-07-28 1997-02-13 Gray James R Use of a polarizing field to modify the efficacy of a bioactive agent
US6986942B1 (en) 1996-11-16 2006-01-17 Nanomagnetics Limited Microwave absorbing structure
US20060003163A1 (en) * 1996-11-16 2006-01-05 Nanomagnetics Limited Magnetic fluid
US6815063B1 (en) 1996-11-16 2004-11-09 Nanomagnetics, Ltd. Magnetic fluid
GB2319253A (en) 1996-11-16 1998-05-20 Eric Leigh Mayes Composition, for use in a device, comprising a magnetic layer of domain-separated magnetic particles
US6713173B2 (en) * 1996-11-16 2004-03-30 Nanomagnetics Limited Magnetizable device
EP0882448B1 (de) * 1997-05-05 2005-01-12 DIDECO S.r.l. Verfahren zur Verkapselung von biologisch aktiven Stoffen in Erythrocyten und Gerät dafür
US6135118A (en) * 1997-05-12 2000-10-24 Dailey; James P. Treatment with magnetic fluids
US6203487B1 (en) * 1997-12-31 2001-03-20 Thomas Jefferson University Use of magnetic particles in the focal delivery of cells
US6645464B1 (en) 1998-07-30 2003-11-11 James F. Hainfeld Loading metal particles into cell membrane vesicles and metal particular use for imaging and therapy
US20060041182A1 (en) * 2003-04-16 2006-02-23 Forbes Zachary G Magnetically-controllable delivery system for therapeutic agents
US6972095B1 (en) 2003-05-07 2005-12-06 Electric Power Research Institute Magnetic molecules: a process utilizing functionalized magnetic ferritins for the selective removal of contaminants from solution by magnetic filtration
AU2004249172A1 (en) * 2003-06-24 2004-12-29 Baxter International Inc. Specific delivery of drugs to the brain
US8986736B2 (en) * 2003-06-24 2015-03-24 Baxter International Inc. Method for delivering particulate drugs to tissues
US20050202094A1 (en) * 2004-01-29 2005-09-15 Werling Jane O. Nanosuspensions of anti-retroviral agents for increased central nervous system delivery
US20070100457A1 (en) * 2004-03-04 2007-05-03 Hyde Edward R Jr Paramagnetic liquid interface
RU2006144851A (ru) * 2004-06-15 2008-06-20 Бакстер Интернэшнл Инк. (Us) Применение терапевтических средств ex-vivo в виде твердых микрочастиц
DE102004054536A1 (de) * 2004-11-06 2006-05-11 Capsulution Nanoscience Ag Multimodal veränderte Zellen als zellulare Darreichungsformen für aktive Substanzen und als diagnostische Zellpartikel
EP1849482A1 (de) * 2006-04-25 2007-10-31 Capsulution Nanoscience AG Multimodal veränderte Zellen als Darreichungsformen für aktive Substanzen und als diagnostische Partikel
US20080097606A1 (en) * 2006-10-19 2008-04-24 Cragg Andrew H Knee joint prosthesis and hyaluronate compositions for treatment of osteoarthritis
GB0621894D0 (en) * 2006-11-02 2006-12-13 Iti Scotland Ltd Magnetic recognition system
RU2496482C2 (ru) 2008-03-05 2013-10-27 Бакстер Интернэшнл Инк. Композиции и способы для доставки лекарственных средств
GB0808090D0 (en) * 2008-05-02 2008-06-11 Iti Scotland Ltd Use of magnetic proteins in medicine
US10952965B2 (en) * 2009-05-15 2021-03-23 Baxter International Inc. Compositions and methods for drug delivery
US20120061317A1 (en) * 2010-09-13 2012-03-15 Beng Joo Reginald Thio Magnetic Pollen Grains as Sorbents for Organic Pollutants in Aqueous Media

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2150581A1 (de) * 1970-10-12 1972-04-13 Technicon Instr Verfahren und Vorrichtung zum Trennen der Lymphozyten von einer Blutprobe
DE2217266A1 (de) * 1971-04-13 1972-10-26 Technicon Instr Verfahren und vorrichtung zum trennen der lymphozyten von einer blutprobe
DE2405119A1 (de) * 1974-02-02 1975-09-04 Kernforschungsanlage Juelich Verfahren und vorrichtung zur erhoehung der permeabilitaet der haut von zellen von lebewesen

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3474777A (en) * 1966-02-10 1969-10-28 Amp Inc Method of administering therapeutic agents
US3887698A (en) * 1973-03-12 1975-06-03 Univ Leland Stanford Junior Sacs with epitopic sites on walls enclosing stable free radicals
DE2326161C2 (de) * 1973-05-23 1986-07-17 Kernforschungsanlage Jülich GmbH, 5170 Jülich Verfahren zum Aufbau oder zum Abbau von durch chemische Eigenschaften ausgezeichneten, in einer wäßrigen Lösung enthaltenen Stoffen
DE2326224C3 (de) 1973-05-23 1975-11-13 Kernforschungsanlage Juelich Gmbh, 5170 Juelich Verfahren zum Abtrenne», von durch chemische oder physikalisch^ Eigenschaften ausgezeichneten ionisierten Stoffen aus einer wäßrigen Lösung
DE2326191B2 (de) 1973-05-23 1978-03-30 Hutschenreuther Ag, 8672 Selb Verfahren zum Herstellen eines Reliefdekors auf keramischen Erzeugnissen

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2150581A1 (de) * 1970-10-12 1972-04-13 Technicon Instr Verfahren und Vorrichtung zum Trennen der Lymphozyten von einer Blutprobe
DE2217266A1 (de) * 1971-04-13 1972-10-26 Technicon Instr Verfahren und vorrichtung zum trennen der lymphozyten von einer blutprobe
DE2405119A1 (de) * 1974-02-02 1975-09-04 Kernforschungsanlage Juelich Verfahren und vorrichtung zur erhoehung der permeabilitaet der haut von zellen von lebewesen

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0042249A2 (de) 1980-06-13 1981-12-23 Northwestern University Magnetisch lokalisierbare, bioabbaubare Lipid-Mikrokugeln
US4331654A (en) 1980-06-13 1982-05-25 Eli Lilly And Company Magnetically-localizable, biodegradable lipid microspheres

Also Published As

Publication number Publication date
CH632412A5 (de) 1982-10-15
IL53595A (en) 1981-06-29
SE445423B (sv) 1986-06-23
JPS5396382A (en) 1978-08-23
FR2373290A1 (fr) 1978-07-07
US4269826A (en) 1981-05-26
GB1560166A (en) 1980-01-30
FR2373290B1 (de) 1983-09-23
SE7713945L (sv) 1978-06-12
DE2656317C2 (de) 1986-06-19

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE2656317A1 (de) Verfahren zur herstellung einer masse von in einer physiologischen loesung suspendierten beladenen zellen
DE2655801C2 (de) Injizierbare Suspension von Membranvesikeln aus Erythrozyten und Verfahren zur Herstellung der Suspension
DE2656746C2 (de) Verwendung von beladenen Erythrozyten
Caldwell Factors governing movement and distribution of inorganic ions in nerve and muscle.
DE60216234T2 (de) Radionukleotide enthaltendes Silikon-Implantat für Brachytherapie
DE3587639T3 (de) Entwässerte liposome.
Katzman Electrolyte distribution in mammalian central nervous system: Are glia high sodium cells?
Niebauer et al. Osmium zinc iodide reactive sites in the epidermal Langerhans cell
Kerkut et al. An electrogenic sodium pump in snail nerve cells
DE3106984A1 (de) Verfahren zur herstellung eines mehrschichtigen verbundstoffs mit langzeit-freigabe
DE19904785A1 (de) Verfahren zur Herstellung von stabilem Alginatmaterial
DE2538388C3 (de) Verfahren zur Herstellung eines stabilen, nicht-radioaktiven Trägermaterials für mit radioaktiven Elementen markierte Diagnosemittel und seine Verwendung für mit Tc-99m-markierte Diagnosemittel
DE2558750A1 (de) Verfahren zur herstellung einer masse von in einer physiologischen loesung suspendierten, eine zellwand aufweisenden lebenden zellen von lebewesen
DE2600311A1 (de) Markierte phospholipoidsphaeren fuer die organdarstellung
DE3650048T2 (de) Verfahren und Vorrichtung zur selektiven Bestrahlung biologischer Materialien.
DE2235681A1 (de) Macroaggregate aus albumin, technetium99m und zinn(ii)-ionen, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung als radioindikatoren bei der untersuchung von organen
Bourgeois et al. Quantitative studies on the localization of the cholinergic receptor protein in the normal and denervated electroplaque from Electrophorus electricus.
Josefsson Some bioelectrical properties of Amoeba proteus
Eder et al. Thiamine and cholinergic transmission in the electric organ of torpedo: ii. effects of exogenous thiamine and analogues on acetylcholine release
DE2427659C3 (de) Verfahren zur Herstellung von radioaktiv markierten Erythrozyten
DE2419310C3 (de) Verwendung von Tc-99m-Komplexen
DE2822731A1 (de) Vaccine zur immuntherapie neoplastischer erkrankungen
DE2618449A1 (de) Serumdiagnostische zusammensetzung
DE10047272A1 (de) Verfahren zur Fusion von dendritischen Zellen mit erkrankten Gewebezellen, insbesondere Tumorzellen und Medien für solche Verfahren
DE3913438A1 (de) Verfahren zum herstellen einer immunitaetsgedaechtniszellsuspension

Legal Events

Date Code Title Description
OAP Request for examination filed
OD Request for examination
D2 Grant after examination
8364 No opposition during term of opposition
8339 Ceased/non-payment of the annual fee