DE19818790A1 - Immunadsorptionsmatrix, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung - Google Patents
Immunadsorptionsmatrix, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre VerwendungInfo
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Abstract
Die Erfindung betrifft eine neue Immunadsorptionsmatrix, Verfahren zu ihrer Herstellung sowie ihre Verwendung für therapeutische, diagnostische, präparative, analytische und medizintechnische Zwecke. DOLLAR A Unter Anwendung der Kopplung an ein Trägermaterial werden antigenbindende Strukturen unter Schutz der Antigenbindungsstelle mit funktionellen Gruppen, die sich zur Kopplung an eine chemisch aktivierte Matrix eignen oder selbst eine aktivierte Gruppe darstellen, derivatisiert und/oder aktiviert.
Description
Die Erfindung betrifft eine neue Immunadsorptionsmatrix, Verfahren zu ihrer
Herstellung sowie ihre Verwendung für therapeutische, diagnostische, präparative,
analytische und medizintechnische Zwecke.
Als Immunadsorption wird ein affinitätschromatographisches Verfahren bezeichnet, bei
dem die spezifische Bindung zwischen Antikörper und Antigen zur Isolierung eines der
Reaktionspartner aus komplexen Mischungen biogenen Ursprungs genutzt wird
(Carlsson, J. et al. 1989).
Ursprünglich wurde diese Methode eingesetzt, um mit an Trägermaterial (Matrix)
fixiertem Antigen die Antikörper einer bestimmten Spezifität aus Serum zu gewinnen
(Campbell, D. H. et al. 1951).
Umgekehrt war es mit dem Vorliegen aufgereinigter Antikörper einer bestimmten
Spezifität möglich, diese als Liganden an Trägermaterial fixiert zur Gewinnung von
Antigen einzusetzen.
Die Möglichkeit, über das Immunsystem spezifische Antikörper gegen eine Vielzahl
von Molekülen zu produzieren, hat die Affinitätschromatographie mit Hilfe von an
Trägermaterial fixierten Antikörpern zum Stand der Technik gemacht (Goding, J. W.
1986).
Neben ihrem Einsatz für analytische und präparative Zwecke in Forschung und
Industrie gewinnt die Immunadsorption mit trägerfixierten Antikörpern auch
zunehmende Bedeutung in der Medizin. Speziell auf dem Gebiet der Stoffwechsel- und
Autoimmunerkrankungen sowie bei Transplantatabstoßungsreaktionen, deren
komplexe Krankheitsbilder oft auf die Anwesenheit und Konzentration einer einzigen
Substanz bzw. Substanzklasse in der Körperflüssigkeit zurückzuführen sind, läßt sich
die Spezifität der Antigen-Antikörper-Reaktion extrakorporal therapeutisch nutzen.
Bei einer als Immunapherese bezeichneten Behandlungsmethode zirkuliert das
Patientenplasma im geschlossenen Kreislauf durch Säulen mit spezifischen
trägerfixierten Antikörpern, mit deren Hilfe die Konzentration der schädlichen
Komponente im Plasma reduziert wird (Stoffel, W. 1981, Olbricht, C. J. 1991).
So gilt die Senkung des Serumcholesterins mit Hilfe der LDL-Immunadsorption
mittlerweile als anerkanntes Behandlungsverfahren bei Patienten mit familiärer
Hypercholesterinämie (Richter, W. O. und Schwandt, P. 1995, Jansen, M. et al. 1996).
Die spezifische Entfernung von Immunglobulinen aus dem Plasma von Patienten mit
Autoimmunerkrankungen oder Patienten nach einer Transplantation ist ein relativ
neues, sich aber ständig erweiterndes Anwendungsgebiet der Immunadsorption.
So führte die Reduktion von Autoantikörpern im Plasma zu einer deutlichen
Verbesserung des Krankheitsbildes bei Patienten mit thrombotischer
thrombozytopenischer Purpurea (Schlee, H. et al. 1996) oder dilatativer
Kardiomyopathie (Dörffel, W. V. et al. 1996, Wallukat, G. et al. 1996). Bei weiteren
Autoimmunerkrankungen zeichnet sich eine Verdrängung der bisherigen
Plasmapherese durch die schonendere Immunadsorption ab (Richter, W. O. et al.
1995).
Die Abstoßung von Transplantaten durch präformierte anti-HLA- oder zytotoxische
Antikörper im Plasma des Empfängers wurde mit Hilfe der Immunadsorption ebenfalls
vermieden (Schaumann, D. et al. 1994, Leventhal, J. R. et al. 1995). Genauso konnte
bei Hämophilie-Patienten mit hohem Antikörperspiegel gegen die Gerinnungsfaktoren
V bzw. VIII nach Immunadsorption die Wirksamkeit der entsprechenden Präparate
wieder hergestellt werden (Tribl, P. et al. 1995, Knöbl, P. et al. 1995).
Es ist damit zu rechnen, daß die Immunadsorption mit Antikörpern entsprechender
Spezifität demnächst auch zur Entfernung von Toxinen
und immunologischen Regulator-Substanzen (z. B. Zytokine bzw. Zytokin-Rezeptor-Kom
plexe) aus dem Plasma eingesetzt wird.
Zur Fixierung an das Trägermaterial werden die Antikörper in der Regel über ihre
primären Aminogruppen kovalent gebunden. Diese Kopplungsart setzt eine chemische
Aktivierung der Matrix mit entsprechend reaktiven Gruppen voraus.
Eine bevorzugte Aktivierungsmethode ist die Bildung von Cyanatestern bzw.
Imidocarbonaten nach der Einwirkung von Bromcyan auf eine Matrix mit vicinalen
Hydroxylgruppen (Axen, R. und Ernback, S. 1971, Jacoby, W. V. und Wilchek, M.
1975). Weitere gebräuchliche reaktive Gruppen sind N-Hydroxysuccinimidester
(Cuatrecasas, P. und Parikh, 1. 1972) oder auch N-Hydroxysuccinimid- und Imidazoyl
carbonate (Wilchek, M. und Miron, T. 1985, Hearn, M. T. W. 1987), die eine Matrix mit
Carboxyl- bzw. Hydroxyl-Gruppen voraussetzen. Seltener ist die Einführung von
Aldehydgruppen in beispielsweise eine Polysaccharidmatrix (Sanderson, C. J. und
Wilson, D. V. 1971).
Bevorzugte Trägermaterialien sind großporige Polymere auf Kohlenhydrat-, Acryl-,
Acrylamid- oder Styrolbasis. Mischpolymerisate auf der Basis dieser Polymere werden
ebenfalls genutzt.
In neuerer Zeit stehen als Trägermaterial auch sogenannte Perfusions- oder
Hyperdiffusionsharze zur Verfügung, die bei der Chromatographie bis zu 50fach
höhere Durchflußraten erlauben (Afeyan, N. B. et al. 1990, Fulton, S. P. et al. 1991).
Nach entsprechender Derivatisierung kann dieses Trägermaterial genauso wie
herkömmliches Material aktiviert werden.
Erhältlich sind diese Materialien z. B. unter der Bezeichnung POROS® (Fa. Perseptive
Biosystems) oder HYPER DTM (Fa. Biosepra).
Zur Immunadsorption können neben kompletten Antikörpern auch deren chemische
oder enzymatische Spaltprodukte eingesetzt werden, sofern die antigenbindende
Region funktionell intakt enthalten bleibt. Dazu gehören insbesondere die in der
Literatur häufig beschrieben F(ab') - bzw. F(ab')2-Fragmente, die durch kontrollierte
enzymatische Spaltung von Antikörpern entstehen. (Porter, R. R. 1959, Nisonoff, A. et
al. 1961). Weitere Möglichkeiten bestehen in der Verwendung von sogenannten "single
chain antibodies" (Davis, G. T. et al. 1991) oder auch synthetischen Oligo- oder
Polypeptiden, die chemisch oder gentechnisch hergestellt werden können.
Für die Immunadsorption müssen diese antigenbindenden Strukturen über eine
kovalente Bindung an ein Trägermaterial gekoppelt werden.
Die Zielstellung bei der Kopplung ist eine in Bezug auf die eingesetzte Menge hohe
Ausbeute an gekoppelten antigenbindenden Strukturen, gepaart mit einem möglichst
hohen Aktivitätserhalt in Bezug auf die spezifische Bindung für das Antigen.
Das Problem besteht darin, daß kovalente Bindungen auch im Bereich der
antigenbindenden Region erfolgen können, dadurch die antigenbindenden
Eigenschaften beeinträchtigen und die Aktivität verringern.
Ein weiteres Problem bei vielen Anwendungen ist eine unbefriedigende
Bindungskapazität der Immunadsorptionsmatrix. Eine hohe Bindungskapazität
ermöglicht die Verwendung kleinerer Säulenvolumina und führt damit zu Zeit- und
Materialersparnis in der Routineanwendung.
Die Bindungskapazität wird üblicherweise angegeben in mg gebundenes Antigen pro
ml Adsorptionsmatrix, oder pro mg gekoppelte antigenbindende Struktur. Sie ist
abhängig von der Affinität der antigenbindenden Struktur zum Antigen und von der
Beladungsdichte, d. h. der Menge an funktionell intakten antigenbindenden Strukturen,
die an eine bestimmte Menge des Immunadsorptionsmaterials gekoppelt werden
können. Die Beladungsdichte wird meist in mmol oder mg gekoppelte antigenbindende
Struktur pro ml Säulenmatrix angegeben.
Eine hohe Beladungsdichte wird üblicherweise durch Verwendung eines
Trägermaterials mit einer großen verfügbaren Matrixoberfläche und einer hohen
Konzentration an funktionellen oder reaktiven Gruppen auf der Matrixoberfläche
erreicht, an die die antigenbindenden Strukturen unter geeigneten Bedingungen
gekoppelt werden können.
In der Regel geht mit maximalen Bedingungen für eine hohe Beladungsdichte eine
mehrfache kovalente Bindung einer antigenbindenden Strukturen an die Matrix einher.
Das beeinträchtigt einmal die Beweglichkeit des Liganden und zum anderen steigt die
Wahrscheinlichkeit, daß eine der kovalenten Bindungen im Bereich der
Antigenbindungsstelle erfolgt. Beides führt zu einer Verminderung der
Bindungskapazität.
Eine maximal um den Faktor 1,7 höhere Bindungskapazität kann erwartet werden,
wenn bei gleicher mengenmäßiger Beladung, angegeben in mg antigenbindende
Struktur pro ml Trägermatrix, anstelle von kompletten Immunglobulinen deren F(ab')-Frag
mente gekoppelt werden. Aufgrund des kleineren Molekulargewichts ist der
prozentuale Anteil an Bindungsstellen für das Antigen höher. Das F(ab')-Fragmente
weist dafür aber nur 1 Antigenbindungsstelle auf. Ähnliche Erhöhungen sollten auch
bei der Kopplung von "single chain antibodies" oder Peptiden (mit einer
Antigenbindungsstelle) im Vergleich zu kompletten Immunglobulinen gelten.
In der Literatur beschriebene Vergleiche der Bindungskapazitäten von gekoppelten
F(ab')-Fragmenten bzw. "single chain antibodies" mit den korrespondierenden
Antikörpern zeigten allerdings nicht die zu erwartende Kapazitätserhöhung. (Lebedin,
Y. S. et al. 1991, Canaan-Haden, L. et al. 1995).
Aufgabe der Erfindung war es deshalb, eine effektive Immunadsorptionsmatrix mit
einer möglichst hohen Bindungskapazität bereitzustellen, indem für das entsprechende
Antigen spezifische antigenbindende Strukturen so an eine Trägermatrix gekoppelt
werden, daß die Aktivität in bezug auf die Bindung des Antigens auch bei hoher
Beladung nahezu vollständig erhalten bleibt.
Die Aufgabe wurde erfindungsgemäß dadurch gelöst, daß zusätzliche funktionelle
Gruppen in die antigenbindende Struktur eingeführt werden, währenddessen die
Bindungsstelle für das Antigen geschützt war.
Alle Moleküle, die eine antigenbindende Region enthalten und im Sinne einer Antigen-Anti
körper-Bindung reagieren können, werden im Folgenden als antigenbindende
Struktur bezeichnet.
Antigenbindende Strukturen können polyklonale oder monoklonale Antikörper (z. B.
Einzelkettenantikörper "single chain antibodies") oder Fragmente davon sein. Es
können aber auch rekombinante oder synthetisch hergestellte Peptide bzw. Proteine
sein.
Die antigenbindenden Strukturen können gegen die unterschiedlichsten Antigene oder
Haptene gerichtet sein, wobei man unter Haptenen Verbindungen versteht, die alleine
im Organismus keine Antikörperproduktion bewirken, sondern erst nach Kopplung an
einen polymeren Träger. Sie können aber trotzdem sehr effizient durch
antigenbindende Strukturen gebunden werden.
Vorzugsweise werden Trägermaterialien verwendet, an welche die antigenbindenden
Strukturen kovalent gebunden werden. Insbesondere handelt es sich um Matrizes als
Trägermaterial, welche aus organischen, anorganischen, synthetischen Polymeren
oder aus Mischpolymeren bestehen und die ggf. chemisch aktiviert werden.
Die eingeführten funktionellen Gruppen können sich entweder zur Kopplung an eine
chemisch aktivierte Matrix eignen oder selbst eine aktivierte Gruppe darstellen, die an
eine geeignete funktionelle Gruppe einer Matrix koppeln kann.
Es gibt eine Reihe von chemischen Gruppen und chemischen Methoden, mit denen
diese Aufgabe gelöst werden kann.
Die Aminogruppen der antigenbindenden Strukturen können z. B. mit
Bernsteinsäureanhydrid umgesetzt und die eingeführten Carboxylgruppen nach
Aktivierung mit z. B. 1-Ethyl-3-(3-Dimethylaminopropyl) carbodiimid (EDC) an eine
aminohaltige Matrix gekoppelt werden. Vernetzungen der antigen-bindenden Strukturen
untereinander sind durch die Umsetzung mit Bernsteinsäureanhydrid unterbunden.
Es können aber auch die Carboxylgruppen der antigenbindenden Strukturen mit EDC
und einem geeignetem Diamin umgesetzt und über die eingeführte Aminogruppe an
z. B. eine N-Hydroxysuccinimid- oder Bromcyan-aktivierte Matrix gekoppelt werden.
Nach Reaktion mit Succinimidyl 3(2-pyridyldithio) propionate (SPDP) und
nachfolgender Reduktion mit z. B. Dithiothreitol (DTT), oder nach Reaktion mit dem
Traut'schen Reagenz (2-Iminothiolan) können SH-Gruppen eingeführt werden, die z. B.
an eine Maleimidogruppen-tragende Matrix gekoppelt werden können.
Eine weitere Möglichkeit zur Einführung von SH-Gruppen ist die Umsetzung mit
N-Succinimidyl-S-acetylthioacetat (SATA) und Nachbehandlung mit Hydroxylamin.
SPDP und SATA haben gegenüber dem Traut'schen Reagenz den Vorteil, daß die
SH-Gruppe erst nach Abtrennung vom Antigen freigesetzt wird.
Für die Immunapherese interessante Antigene sind z. B. Autoantikörper, Low density
lipopintein (LDL), β2-Mikroglobulin, Fibrinogen, Antikörper gegen Faktor VIII oder
Endotoxin. Für andere Anwendungen wie z. B. zur Präparation von monoklonalen
Antikörpern können die Fc-Fragmente von Immunglobulinen der Maus geeignete
Antigene darstellen.
In allen Fällen wird der Bindungsbereich der antigenbindenden Struktur
erfindungsgemäß während der Durchführung der Derivatisierung durch temporäre,
reversible Bindung an das Antigen geschützt und nach Abtrennung vom Antigen über
die neu eingeführten funktionellen Gruppen an eine geeignete, entsprechend
derivatisierte Matrix gebunden.
Die erfindungsgemäß hergestellten Matrizes zeigen überraschend wesentlich erhöhte
Bindungskapazitäten. So weisen sie einen unerwarteten Anstieg bis zum Faktor 3,69
auf.
Die erfindungsgemäßen Matrizes sind somit hervorragend für eine Anwendung zu
therapeutischen, diagnostischen, präparativen, analytischen und medizintechnischen
Zwecken geeignet.
In einer bevorzugten Ausführungsvariante werden F(ab')-Fragmenten aus Antikörpern
vom Huhn (Immunglobulin Y) derivatisiert, deren Spezifität gegen humanes
Immunglobulin gerichtet ist.
Mit Hilfe von 2-Iminothiolan werden an die an Antigen gebundenen F(ab')-Fragmente
Sulfhydryl-Gruppen addiert, über die sie an eine mit m-Maleimidobenzoyl-Gruppen
aktivierte Sepharose 4B als Matrix koppeln.
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Die zur Kopplung von Immunglobulin Y (IgY) oder dessen F(ab')-Fragmente
(IgY-F(ab')) vorzugsweise verwendete Matrix m-Maleimidobenzoyl-Sepharose 4B wird wie
nachstehend beschrieben hergestellt.
Getrocknete bromcyanaktivierte Sepharose 4B wird in 1 mM HCl suspendiert und mit
dem 70fachen Volumen 1 mM HCl gewaschen. Anschließend wird die
bromcyanaktivierte Sepharose 4B mit dem 2fachen Volumen 0,5 M Diaminoethan, mit
1 M HCl auf pH 8,2 eingestellt, versetzt und 18 h bei Raumtemperatur geschüttelt. Die
so hergestellte Amino-Sepharose 4B wird mit physiologischer phosphatgepufferter
Kochsalzlösung (phosphate buffered saline, PBS) gewaschen und kann in PBS mit
einem Zusatz von 0,05% Natriumazid bei 2-8°C aufbewahrt werden.
Zur weiteren Verarbeitung wird die Amino-Sepharose 4B mit dem 50fachen Volumen
0,1 M Natriumphosphat pH 8,0 gewaschen und mit dem 2fachen Volumen einer
Mischung aus 50% (v/v) Dimethylsulfoxid und 50% (v/v) 0,1 M Natriumphosphat pH
8,0 resuspendiert. Der pH-Wert wird nötigenfalls durch Zugabe von 1 M NaOH
nachgestellt. Dann wird je 1 ml Amino-Sepharose 4B eine Lösung von 10 mg
m-Maleimidobenzoyl-N-hydroxysuccinimid in 0,2 ml Dimethylsulfoxid zugegeben und der
Reaktionsansatz 18 h bei Raumtemperatur geschüttelt.
Die m-Maleimidobenzoyl-Sepharose 4B wird unmittelbar vor der Weiterverarbeitung
mit dem 10fachen Volumen Dimethylsulfoxid gewaschen und in 0,1 M
Natriumphosphat pH 6,5 resuspendiert.
Für die Kopplung an m-Maleimidobenzoyl-Sepharose 4B werden vorzugsweise in
IgY-F(ab') (spezifisch gegen humanes Immunglobulin) wie nachstehend beschrieben
zusätzliche Sulfhydryl-Gruppen eingeführt.
Dazu wird an Sepharose 4B gekoppeltes humanes Immunglobulin bis zur maximalen
Beladung in einer Lösung aus IgY-F(ab') inkubiert.
Die mit IgY-F(ab') beladene Matrix wird mit PBS gewaschen, in einen alkalischen
Puffer wie z. B. Triethylamin-HCl-Puffer pH 8,0 (50 mM Triethylamin, 150 mM NaCl, 1
mM EDTA-Na2) umgepuffert und im 2fachen Volumen desselben Puffers
resuspendiert. Die Suspension wird unter N2-Atmosphäre mit 2-Iminothiolan-HCl
(Traut'sches Reagenz, Jue, R. et al. 1978) versetzt, dessen molare Menge
vorzugsweise dem 8fachen der vorliegenden Menge an gebundenem IgY-F(ab')
entspricht.
Nach 1 h Reaktion unter N2-Begasung bei Raumtemperatur wird die mit IgY-F(ab')
beladene Matrix mit 0,1 M Natriumphosphat pH 6,5, vorbegast mit N2, gespült.
Anschließend werden die mit 2-Iminothiolan derivatisierten IgY-F(ab') (IgY-F(ab')-SH)
mit 0,1 M Natriumphosphat-HCl pH 2,5 (mit N2 vorbegast) von der Matrix eluiert.
Das Eluat wird mit 0,5 M Natriumphosphat pH 9,1, vorbegast mit N2, auf pH 6,5
gebracht und sofort für die Kopplung an die m-Maleimidobenzoyl-Sepharose 4B
eingesetzt.
Entsprechend der gewünschten Beladung wird ein definiertes Volumen der
vorbereiteten IgY-F(ab')-SH-Lösung mit einem definiertem Volumen der vorbereiteten
m-Maleimidobenzoyl-Sepharose 4B gemischt. Der Ansatz wird 18 h bei 2-8°C
geschüttelt. Nicht gebundenes IgY-F(ab')-SH wird danach mit 0,1 M Natriumphosphat
pH 6,5 eluiert. Aus der Quantifizierung der Restmenge IgY-F(ab')-SH kann auf die
Menge des gekoppelten IgY-F(ab')-SH und damit auf die Beladung der
m-Maleimidobenzoyl-Sepharose 4B (mg Protein/ml Gel) geschlossen werden.
Zur Abreaktion überschüssiger reaktiver Gruppen wird die m-Maleimidoben
zoyl-Sepharose 4B mit dem 2fachen Volumen 0,1 M Cystein-HCl in 0,1 M
Natriumphosphat pH 6,5 versetzt und 2 h bei Raumtemperatur geschüttelt.
Anschließend wird das Kopplungsprodukt (IgY-F(ab')-SH/S 4B) mit dem 50fachen
Volumen 0,1 M Natriumbicarbonat pH 8,2 enthaltend 0,5 M NaCl und dem 50fachen
Volumen 0,1 M Glycin-HCl pH 2,5 gewaschen. Zur Lagerung bei 2-8°C wird es in PBS
mit 0,05% Natriumazid umgepuffert.
Auf Säulen mit jeweils 1 ml des Kopplungsproduktes wird Humanserum im Überschuß aufgetragen,
um die maximale Beladung zu erreichen.
Nach einer Spülung der Säule mit PBS wird das gebundene humane Immunglobulin
mit 0,1 M Glycin-HCl-Puffer eluiert.
Nach anschließender Neutralisation mit 2 M Tris wird die Menge des eluierten Proteins
spektrophotometrisch bestimmt und seine Identität (<90% humanes Immunglobulin)
im ELISA (enzyme linked immunosorbent assay) bestätigt.
Der Quotient aus der Menge an eluiertem humanen Immunglobulin und dem Volumen
des Kopplungsproduktes wird als Bindungskapazität bezeichnet (mg Human-IgG/ml
Gel).
Das in den Arbeitsschritten 1 bis 4 beschriebene Verfahren wird auch auf die Kopplung
von IgY an Sepharose 4B angewandt (Kopplungsprodukt IgY-SH/S 4B).
Zum Vergleich der Bindungskapazitäten wird IgY ohne vorhergehende Derivatisierung
an bromcyanaktivierte Sepharose 4B gekoppelt.
Dazu wird getrocknete bromcyanaktivierte Sepharose 4B in 1 mM HCl suspendiert und
mit dem 70fachen Volumen 1 mM HCl gewaschen. Gereinigtes IgY wird in 0,1 M
Natriumbicarbonat pH 8,2 enthaltend 0,5 M NaCl umgepuffert. Ein definiertes Aliquot
der Lösung wird mit einem definierten Volumen der vorbereiteten Matrix gemischt und
18 h bei 2-8°C geschüttelt. Nicht gebundenes IgY wird danach mit dem
Kopplungspuffer eluiert. Aus der Quantifizierung der Restmenge IgY kann auf die
Menge des gekoppelten IgY und damit auf die Beladung der Sepharose (mg Protein/ml
Gel) geschlossen werden.
Zur Abreaktion überschüssiger reaktiver Gruppen wird das Kopplungsprodukt mit dem
2fachen Volumen 0,1 M Ethanolamin-HCl pH 8,0 versetzt und 2 h bei
Raumtemperatur geschüttelt. Nach einer anschließenden Wäsche mit dem 50fachen
Volumen 0,1 M Natriumbicarbonat pH 8,2/0,5 M NaCl und dem 50fachen Volumen
0,1 M Glycin-HCl pH 2,5 wird es in PBS mit 0,05% Natriumazid umgepuffert und bei
2-8°C gelagert.
Jeweils 1 ml des Kopplungsproduktes (IgY/S 4B) wird wie in Arbeitsschritt 4
beschrieben getestet.
Ergebnisse der Kopplungen von komplettem IgY und den korrespondierenden
IgY-(Fab')-Fragmenten sowie Vergleiche in Bezug auf die Bindungskapazität der daraus
resultierenden Immunadsorptionsmaterialien sind in Tabelle 1 dargestellt.
Immunadsorptionsmaterialen auf der Basis von Sepharose 4B und konventionell mit
BrCN durchgeführten Kopplungen von komplettem
Igy-anti-Human-IgG erreichten Bindungskapazitäten von 0,23 bis 0,27 mg Human-IgG
pro mg gebundenem IgY.
Die Bindungskapazität der korrespondierenden IgY-F(ab')-Fragmente, beide unter
gleichen Bedingungen an Bromcyan-aktivierte Sepharose gekoppelt, ergaben unter
Berücksichtigung der Test-bedingten Fehlerbreite die erwartete Erhöhung der
Bindungskapazität. Ein Vergleich der Versuche 9 und 7 bzw. 8 und 6 in Tabelle 1 zeigt
bei der Bindung von Human-IgG pro mg IgY-F(ab')-Fragment jeweils eine Erhöhung
um ungefähr 1,7 gegenüber dem Wert des gekoppelten kompletten Immunglobulins
(IgY).
Nach Derivatisierung von komplettem IgY mit Thiolgruppen unter Schutz der
Antigenbindungsstelle und nachfolgender Kopplung an MBS-aktivierte Sepharose 4B
konnte die Bindungskapazität des Immunadsorptionsmaterials bereits auf 0,30 mg bis
0,38 mg Human-IgG gesteigert werden.
Anhand der bisherigen Überlegungen wäre bei der Kopplungsmethode nach Schutz der
Antigenbindungsstelle für das Immunadsorptionsmaterial mit F(ab')-Fragmenten eine
Bindungskapazität von etwa 0,65 mg IgG pro mg gekoppeltem F(ab')-Fragment zu
erwarten gewesen. Diese Erhöhungen entsprechen den Ergebnissen, die bei den
Versuchen mit BrCN-aktivierter Sepharose gefunden wurden.
Überraschenderweise zeigte sich, daß die so mit den IgY-F(ab')-Fragmenten hergestellten
Immunadsorptionsmaterialien mit 1,28 mg bis 1,48 mg eine wesentlich höhere
Bindungskapazität aufwiesen.
Für die Anwendung in der Immunadsorption ergeben sich durch das
erfindungsgemäße Kopplungsverfahren mit derivatisierten Antikörperfragmenten
entscheidende Vorteile. Wie in Tabelle 1 dargestellt ist, können anhand des
vorgestellten Ausführungsbeispiels Immunadsorptionsmaterialien hergestellt werden,
die Bindungskapazitäten von über 19 mg Human-IgG pro ml Sepharose 4B aufweisen.
(Siehe Versuch 3 in Tabelle 1). Diese Kapazität konnte mit herkömmlichen
Kopplungsverfahren auch bei Einsatz weit höherer Konzentrationen an
antigenbindenden Strukturen nicht erreicht werden. (Siehe Versuch 7 in Tabelle 1).
Diese Erhöhung der Bindungskapazität ermöglicht bei gegebener Kapazität eine
Verringerung des Volumens einer Immunadsorptionssäule und erlaubt damit kürzere
Zeiten beim Beladen mit dem Antigen, beim Spülen, beim Eluieren des Antigens und
bei der Regeneration der Säule. Empfindliche Antigene werden durch die kürzere
Verweilzeit im meist schädlichen Elutionspuffer geschont. Andererseits können bei
einem gegebenen Säulenvolumen in gleicher Zeit größere Ausbeuten erzielt werden.
Die hier angewandte Methode der Kopplung von antigenbindenden Strukturen kann
problemlos von der Sepharose auf andere Trägermaterialien übertragen werden.
Bei der Immunapherese zur Entfernung von Immunglobulinen oder auch LDL aus dem
Blut von Patienten können die Behandlungszeiten verkürzt werden oder bei gleicher
Behandlungszeit die Konzentrationen der zu entfernenden Substanz deutlich weiter
abgesenkt werden.
Claims (15)
1. Verfahren zur Herstellung einer effektiven Immunadsorptionsmatrix,
dadurch gekennzeichnet, daß man
antigenbindende Strukturen unter Schutz der Antigenbindungsstelle mit
funktionellen Gruppen, die sich zur Kopplung an eine chemisch aktivierte Matrix
eignen oder selbst eine aktivierte Gruppe darstellen, derivatisiert und/oder aktiviert
und nachfolgend an ein Trägermaterial koppelt.
2. Verfahren nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet, daß die
antigenbindenden Strukturen vor ihrer Derivatisierung an eine polymere Matrix
gebunden werden, an welches das Antigen kovalent gekoppelt ist.
3. Verfahren nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet, daß die
antigenbindenden Strukturen nach ihrer Derivatisierung an das Trägermaterial
gekoppelt werden.
4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3,
dadurch gekennzeichnet, daß
Trägermaterialien verwendet werden, an welche die antigenbindenden Strukturen
kovalent gebunden werden.
5. Verfahren nach Anspruch 4,
dadurch gekennzeichnet, daß
Matrizes als Trägermaterial verwendet werden, welche aus organischen,
anorganischen, synthetischen Polymeren oder aus Mischpolymeren bestehen die
ggf. chemisch aktiviert werden.
6. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5,
dadurch gekennzeichnet, daß
als antigenbindende Strukturen F(ab')-Fragmente von Immunglobulinen,
F(ab')2-Fragmente von Immunglobulinen, andere Fragmente von Immunglobulinen,
Einzelkettenantikörper, synthetische Peptide, die eine Antigenbindungsstelle
enthalten, oder Gemische davon, eingesetzt werden.
7. Verfahren nach Anspruch 6,
dadurch gekennzeichnet, daß die
F(ab')-Fragmente oder F(ab')2-Fragmente oder anderen Fragmente von
Immunglobulinen, die eine Antigenbindungsstelle enthalten, aviären oder
mammaliären Ursprungs, oder Mischungen aus beiden, sind.
8. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 7,
dadurch gekennzeichnet, daß
die Derivatisierung und/oder Aktivierung der zu koppelnden antigenbindenden
Strukturen nach adsorptiver Bindung oder nach an das Antigen erfolgter Bindung
zum Schutze der Antigenbindungsstelle durchgeführt wird.
9. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 8,
dadurch gekennzeichnet, daß
als funktionelle Gruppen Sulfhydryl-, Amino- oder Carboxylgruppen eingeführt
werden.
10. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 9,
dadurch gekennzeichnet, daß
F(ab')-Fragmente mit Sulfhydrylgruppen unter Schutz der Antigenbindungsstelle
derivatisiert und anschließend an eine Maleimido-aktivierte Sepharosematrix
gekoppelt werden.
11. Verwendung einer Immunadsorptionsmatrix hergestellt nach einem der Ansprüche
1 bis 10 zu therapeutischen, diagnostischen, präparativen, analytischen und
medizintechnischen Zwecken.
12. Immunadsorptionsmatrix gekennzeichnet durch
ein an sich bekanntes Trägermaterial, das ggf. chemisch aktiviert vorliegt und
an das mit funktionellen Gruppen derivatisierte antigenbindende Strukturen unter
Erhalt der Antigenbindungsstelle gekoppelt sind.
13. Immunadsorptionsmatrix nach Anspruch 12,
dadurch gekennzeichnet, daß
antigenbindende Strukturen F(ab')-Fragmente von Immunglobulinen,
F(ab')-Fragmente von Immunglobulinen, andere Fragmente von Immunglobulinen,
Einzelkettenantikörper, synthetische Peptide, die eine Antigenbindungsstelle
enthalten, oder Gemische davon sind, die mit Sulfhydryl-, Amino- oder
Carboxylgruppen derivatisiert vorliegen.
14. Immunadsorptionsmatrix nach Anspruch 12 oder 13,
dadurch gekennzeichnet, daß
das Trägermaterial aus organischen, anorganischen, synthetischen Polymeren oder
aus Mischpolymeren besteht und ggf. chemisch aktiviert wurde.
15. Immunadsorptionsmatrix nach einem der Ansprüche 12 bis 14,
dadurch gekennzeichnet, daß sie
IgY-F(ab')-Fragmente, die mit Sulfhydrylgruppen derivatisiert sind, und die
gekoppelt an eine Maleimido-aktivierte Sepharosematrix sind, enthält.
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