DE1517746C - Verfahren zur Züchtung von Zellkulturen sowie Vorrichtung zu seiner Durchführung - Google Patents
Verfahren zur Züchtung von Zellkulturen sowie Vorrichtung zu seiner DurchführungInfo
- Publication number
- DE1517746C DE1517746C DE19661517746 DE1517746A DE1517746C DE 1517746 C DE1517746 C DE 1517746C DE 19661517746 DE19661517746 DE 19661517746 DE 1517746 A DE1517746 A DE 1517746A DE 1517746 C DE1517746 C DE 1517746C
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- cells
- cycle
- cell
- culture
- growth
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired
Links
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 title claims description 75
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims description 87
- 230000012010 growth Effects 0.000 claims description 66
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 claims description 31
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 28
- 230000022131 cell cycle Effects 0.000 claims description 14
- 230000001413 cellular Effects 0.000 claims description 8
- 230000000474 nursing Effects 0.000 claims 1
- 210000004027 cells Anatomy 0.000 description 127
- 239000002609 media Substances 0.000 description 99
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 50
- 239000000047 product Substances 0.000 description 42
- 230000000384 rearing Effects 0.000 description 27
- 230000002503 metabolic Effects 0.000 description 26
- 230000004060 metabolic process Effects 0.000 description 19
- 230000036740 Metabolism Effects 0.000 description 17
- 230000035786 metabolism Effects 0.000 description 17
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 14
- 238000003306 harvesting Methods 0.000 description 13
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 12
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 12
- 230000001360 synchronised Effects 0.000 description 11
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 description 10
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 10
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 230000003287 optical Effects 0.000 description 10
- 230000000670 limiting Effects 0.000 description 8
- 241000235646 Cyberlindnera jadinii Species 0.000 description 7
- 235000001014 amino acid Nutrition 0.000 description 7
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 description 7
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 7
- 235000011187 glycerol Nutrition 0.000 description 7
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N D-Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 6
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 6
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 5
- 238000007792 addition Methods 0.000 description 5
- 230000001488 breeding Effects 0.000 description 5
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 5
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 5
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 5
- 230000001105 regulatory Effects 0.000 description 5
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 5
- 241000005139 Lycium andersonii Species 0.000 description 4
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 4
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 4
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 4
- 230000000875 corresponding Effects 0.000 description 4
- 235000014113 dietary fatty acids Nutrition 0.000 description 4
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 4
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 4
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 4
- 239000000194 fatty acid Substances 0.000 description 4
- 150000004665 fatty acids Chemical class 0.000 description 4
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 4
- 239000000463 material Substances 0.000 description 4
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 description 4
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 description 4
- DMBHHRLKUKUOEG-UHFFFAOYSA-N Diphenylamine Chemical compound C=1C=CC=CC=1NC1=CC=CC=C1 DMBHHRLKUKUOEG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 229940081973 S-Adenosylmethionine Drugs 0.000 description 3
- MEFKEPWMEQBLKI-AIRLBKTGSA-O S-adenosyl-L-methionine zwitterion Chemical compound O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](C[S+](CC[C@H]([NH3+])C([O-])=O)C)O[C@H]1N1C2=NC=NC(N)=C2N=C1 MEFKEPWMEQBLKI-AIRLBKTGSA-O 0.000 description 3
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 229960001570 ademetionine Drugs 0.000 description 3
- 239000006227 byproduct Substances 0.000 description 3
- 230000032823 cell division Effects 0.000 description 3
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000006481 glucose medium Substances 0.000 description 3
- 239000001963 growth media Substances 0.000 description 3
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 3
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 3
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 3
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 3
- 229920000160 (ribonucleotides)n+m Polymers 0.000 description 2
- 210000001513 Elbow Anatomy 0.000 description 2
- FEMOMIGRRWSMCU-UHFFFAOYSA-N Ninhydrin Chemical compound C1=CC=C2C(=O)C(O)(O)C(=O)C2=C1 FEMOMIGRRWSMCU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- OIPPWFOQEKKFEE-UHFFFAOYSA-N Orcinol Chemical compound CC1=CC(O)=CC(O)=C1 OIPPWFOQEKKFEE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229940049954 Penicillin Drugs 0.000 description 2
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 2
- WYTGDNHDOZPMIW-UHOFOFEASA-O Serpentine Natural products O=C(OC)C=1[C@@H]2[C@@H]([C@@H](C)OC=1)C[n+]1c(c3[nH]c4c(c3cc1)cccc4)C2 WYTGDNHDOZPMIW-UHOFOFEASA-O 0.000 description 2
- SQGYOTSLMSWVJD-UHFFFAOYSA-N Silver nitrate Chemical compound [Ag+].[O-]N(=O)=O SQGYOTSLMSWVJD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 150000007513 acids Chemical class 0.000 description 2
- -1 amino- Chemical class 0.000 description 2
- 229960000626 benzylpenicillin Drugs 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 238000009835 boiling Methods 0.000 description 2
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 2
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 2
- 238000010924 continuous production Methods 0.000 description 2
- 229920003013 deoxyribonucleic acid Polymers 0.000 description 2
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 2
- 238000005755 formation reaction Methods 0.000 description 2
- 238000001030 gas--liquid chromatography Methods 0.000 description 2
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 description 2
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 2
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 2
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 2
- 239000000543 intermediate Substances 0.000 description 2
- 230000003834 intracellular Effects 0.000 description 2
- 238000009114 investigational therapy Methods 0.000 description 2
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 2
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 2
- 125000002467 phosphate group Chemical class [H]OP(=O)(O[H])O[*] 0.000 description 2
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 2
- 229920002477 rna polymer Polymers 0.000 description 2
- 238000005070 sampling Methods 0.000 description 2
- 230000034655 secondary growth Effects 0.000 description 2
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 2
- 238000009958 sewing Methods 0.000 description 2
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 2
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 2
- BVDRUCCQKHGCRX-UHFFFAOYSA-N 2,3-dihydroxypropyl formate Chemical compound OCC(O)COC=O BVDRUCCQKHGCRX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- TYMLOMAKGOJONV-UHFFFAOYSA-N 4-Nitroaniline Chemical compound NC1=CC=C([N+]([O-])=O)C=C1 TYMLOMAKGOJONV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- 240000002694 Clidemia hirta Species 0.000 description 1
- 235000014277 Clidemia hirta Nutrition 0.000 description 1
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 1
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 1
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 1
- 241000589232 Gluconobacter oxydans Species 0.000 description 1
- QNAYBMKLOCPYGJ-REOHCLBHSA-N L-alanine Chemical compound C[C@H](N)C(O)=O QNAYBMKLOCPYGJ-REOHCLBHSA-N 0.000 description 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 1
- 229940116542 OTHER NUTRIENTS in ATC Drugs 0.000 description 1
- 240000005332 Sorbus domestica Species 0.000 description 1
- 240000008529 Triticum aestivum Species 0.000 description 1
- 241000235033 Zygosaccharomyces rouxii Species 0.000 description 1
- 230000001594 aberrant Effects 0.000 description 1
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 1
- 230000002411 adverse Effects 0.000 description 1
- 235000004279 alanine Nutrition 0.000 description 1
- 230000003698 anagen phase Effects 0.000 description 1
- 238000004164 analytical calibration Methods 0.000 description 1
- 210000004102 animal cell Anatomy 0.000 description 1
- 235000013405 beer Nutrition 0.000 description 1
- 230000027455 binding Effects 0.000 description 1
- 238000011088 calibration curve Methods 0.000 description 1
- 230000004663 cell proliferation Effects 0.000 description 1
- 210000003850 cellular structures Anatomy 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 1
- 239000007795 chemical reaction product Substances 0.000 description 1
- 229910052804 chromium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011651 chromium Substances 0.000 description 1
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 1
- 238000009833 condensation Methods 0.000 description 1
- 230000005494 condensation Effects 0.000 description 1
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 1
- 230000001276 controlling effect Effects 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 230000001808 coupling Effects 0.000 description 1
- 238000010168 coupling process Methods 0.000 description 1
- 238000005859 coupling reaction Methods 0.000 description 1
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 1
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 1
- 239000010200 folin Substances 0.000 description 1
- VZCYOOQTPOCHFL-UHFFFAOYSA-N fumaric acid Chemical compound OC(=O)C=CC(O)=O VZCYOOQTPOCHFL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000005021 gait Effects 0.000 description 1
- 230000001788 irregular Effects 0.000 description 1
- KFZMGEQAYNKOFK-UHFFFAOYSA-N iso-propanol Chemical compound CC(C)O KFZMGEQAYNKOFK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000004301 light adaptation Effects 0.000 description 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 1
- 239000011976 maleic acid Substances 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- 238000005374 membrane filtration Methods 0.000 description 1
- 230000004066 metabolic change Effects 0.000 description 1
- 230000037353 metabolic pathway Effects 0.000 description 1
- 230000037323 metabolic rate Effects 0.000 description 1
- 239000002207 metabolite Substances 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 238000006011 modification reaction Methods 0.000 description 1
- 230000035772 mutation Effects 0.000 description 1
- 235000021049 nutrient content Nutrition 0.000 description 1
- 230000016087 ovulation Effects 0.000 description 1
- 238000004816 paper chromatography Methods 0.000 description 1
- 230000035515 penetration Effects 0.000 description 1
- VLTRZXGMWDSKGL-UHFFFAOYSA-N perchloric acid Substances OCl(=O)(=O)=O VLTRZXGMWDSKGL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000035699 permeability Effects 0.000 description 1
- 238000000819 phase cycle Methods 0.000 description 1
- 235000021317 phosphate Nutrition 0.000 description 1
- 238000000053 physical method Methods 0.000 description 1
- 238000005086 pumping Methods 0.000 description 1
- 238000004080 punching Methods 0.000 description 1
- 230000002829 reduced Effects 0.000 description 1
- 239000003507 refrigerant Substances 0.000 description 1
- 230000001850 reproductive Effects 0.000 description 1
- 239000012266 salt solution Substances 0.000 description 1
- 229910001961 silver nitrate Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 1
- 238000000638 solvent extraction Methods 0.000 description 1
- 238000002798 spectrophotometry method Methods 0.000 description 1
- 239000007858 starting material Substances 0.000 description 1
- 230000003068 static Effects 0.000 description 1
- 238000010025 steaming Methods 0.000 description 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 1
- 230000001225 therapeutic Effects 0.000 description 1
- 239000010409 thin film Substances 0.000 description 1
- 210000001519 tissues Anatomy 0.000 description 1
- 238000002255 vaccination Methods 0.000 description 1
- 230000002792 vascular Effects 0.000 description 1
- 238000009423 ventilation Methods 0.000 description 1
- 239000002699 waste material Substances 0.000 description 1
- 238000003809 water extraction Methods 0.000 description 1
- 238000004018 waxing Methods 0.000 description 1
- 235000021307 wheat Nutrition 0.000 description 1
- HCHKCACWOHOZIP-UHFFFAOYSA-N zinc Chemical compound [Zn] HCHKCACWOHOZIP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000011701 zinc Substances 0.000 description 1
- 229910052725 zinc Inorganic materials 0.000 description 1
Description
2. Verfahren nach Anspruch I, dadurch gekennzeichnet, daß man die Aufzucht, Teilung und
Nährmediumzugabe mehrmals wiederholt.
. 3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch ge" kennzeichnet, daß man bei jeder Teilung die weiteren
Wiederholungen mit einer Hälfte der Zellkultur durchführt und die andere Hälfte ihren
Kreislauf vollenden und zu weiterem Wachstum in einen Nachkreislauf eintreten läßt.
4. Vorrichtung zur Durchführung des Verfahrens nach den Ansprüchen 1 bis 3, mit einem geschlossenen
Aufzuchtgefäß zur Aufnahme einer Zellkultur, bestehend aus einer Zyklonkolonne,
einem Umwälzbogen und einer Umwälzpumpe, mit einer Einrichtung zum Konstanthalten der
Zellkulturtemperatur. mit einer eine l'umpe mit regelbarer Fördermenge/Zeit umfassenden Nährinediumzuführungseinrichtung
sowie mit einer Alislaßeinrichtung für die mit Nährmedium gemischte Zellkultur in ein Sammelgefäß, gekennzeichnet
durch ein zwischen die Nährmediumzufiilmmgseiniichtimg
(33 bis 37) und das Aufzuchtgefäß (1) geschaltetes Dosiergefäü (21) mit
einem automatischen Heber (22) für die Zugabe konstanter Volumina in vorherbestimmten Zeitumständen
und einen zwischen die Aiislaßeinrichtung und das Aufzuchtgefäß (1) geschalteten
automatischen Heber (40) für das Überleiten von mit den zugegebenen Nährmiltelvolumiiia gleichen
Zellkiillurvolumina in das Sammclüefäß (39).
Die Erfindung betrifft ein Verfahren /ur Züchtung
von Zellkulturen, deren Zellen weitgehend in tier gleichen Entwicklungsphase vorliegen, sowie eine
Vorrichtung zu seiner Durchführung.
Unter »in gleicher Entwicklungsphase befindlichen« oder »phasengleichen« Zellkulturen sind nachstehend
/ellkiilturen zu verstehen, bei denen sich mindestens
ein überwiegender Anteil der Zellen, gewöhnlich mindestens 70 bis 80%, in-einem entwicklimgsgkichen
Zustand des Wachstums befinden, d. li. in ciiuiii
übereinstimmenden Wachstiimsstad'ium ihres Zeilkreislaufs
vorliegen.
Verfahren /ur Züchtung von Zellkulturen sind bekannt:
es gibt im wesentlichen die urundlegiMukMi
Allen einer kontinuierlichen und einer diskoiitinuiu ·
liehen Arbeitsweise.' Bekanntlich ist von den das Wachstum von Zellkulturen bestimmenden Umgebungseinflüssen
insbesondere das Nährmedium von Einfluß auf die Wachstumsgeschwindigkeit, während
Belüftung, ph-Wert und Temperatur von nachgcordneter Bedeutung sind.
Bei dem bekannten, diskontinuierlichen Verfahren zur Züchtung von Zellkulturen läßt man die Zellkultur
bei konstantem Volumen in einer gegebenen
ίο Menge an Nährmedium wachsen. Zunächst ist mehr
Nährmedium vorhanden als für die maximale Wachs-Unnsgeschwindigkeit
der Zellen erforderlich ist. Bei fehlender Zufuhr von Nährmedium von außen ändert
sich infolge seines Verbrauchs seine Zusammensetzung mit zunehmender Anzahl der Zellen ständig, bis
nach Aufbrauchen des Überschusses an Nährmedium eine ständige Änderung der Wachstumsgeschwindigkeit
eintritt und bei völligem Verbrauch einer'Nährstoffkomponente
das Zellwachstum vollständig auf-
.20 hört.
Die ständige Änderung der Wachstumsgeschwindigkeit bei diesem Verfahren — gegebenenfalls ausgenommen
während des kurzen Zeitraumes exponentiellen Wachstums — macht eine Untersuchung der
Stoflwechselprodukte oder Metabolite und damit des Stoffwechsels der Zellen äußerst schwierig. Es ist
auch bereits ein kontinuierliches Verfahren zur Züchtung von Zellkulturen bekannt (USA.-Patentschrift
2 822 319), bei welchem man die Zusammensetzung des Nährmcdiums und die Anzahl der Zellen in dein
Nähnnedium konstant hält, so daß auch die Wachstumsgeschwindigkeit
der Zellen in der Kultur im wesentlichen konstant bleibt. Hierzu führt man einerseits
kontinuierlich Nährmedium zu und zieht andererseits kontinuierlich entsprechende Volumenanteile
der Zellkultur ab, so daß sich ein Gleichgewichtszustand ergibt, der praktisch unbegrenzt aufrechterhalten werden kann. Durch vorherige Festlegung
der Zusammensetzung des Nährmediums kann zusätzlich eine vorherbestimmte Wachstumsgesehwindigkeit
eingestellt werden. Es läßt sich somit ein konstanter Stoffwechsel der Zellen mit konstanter Bildung
von StofTwechselprodukten erreichen.
Sowohl bei der bekannten kontinuierlichen als auch bei der bekannten diskontinuierlichen Arbeitsweise
liegen die einzelnen Zellen der Kultur zu einem bestimmten Zeitpunkt in ganz verschiedenen Entwicklungsphasen
\or, d. h., es erfolgt keine Teilung der Zellen in einem einheitlichen Takt, da sich die
Zellen der Kultur von Natur aus in statischer Verteilung entsprechend dem Gaußschen Wahrscheinlichkeitsgesetz
teilen, nine Untersuchung des Zellstoffwechsels
und ein Ernten der Stoffwechselprodukte der Zellen in Abhängigkeit von der Entwicklungsphase
bzw. dem Zellkreislauf ist bei diesen bekannten Verfahren nicht möglich, da die Zellkultur zu
jedem Zeitpunkt ein Mittel über den gesamten Zcllkreislauf darstellt und demgemäß weder irgendeine
besondere Entwicklungsphase untersucht werden kann noch die darin erzeugten Produkte geerntet
werden können. Sowohl bei dem diskontinuierlichen als auch bei dem kontinuierlichen Ziichtungsverfahlen
wird daher wegen der Zuf'ailsverteilung der Zellen über alle Entwicklungsphasen jede Größe, die für
eine bestimmte F.ntwicklungsphase charakteristisch ist. über die gesamte Kultur gemittelt und nivelliert.
Dabei ergibt sich bei dem bekannten kontinuierlichen Züchtuniisv erfahren weizen tier konstanten Wartuims
ι. ο1 ι ι ι -re\j
geschwindigkeit der Zellen lediglich ein höherer — aber dennoch nivellierter — Wert. ;
Es ist auch bereits bekannt (H. Lüers, »Die wissenschaftlichen
Grundlagen von Mälzerei und Braueret«, 1950, S. 631), die Vermehrungsintensität von
Hefen bzw. Mikroorganismen durch die Generationsdauer auszudrücken. In dieser Literaturstelle wird
auch auf Möglichkeiten zur Kennzeichnung der ZeI-lenvermehrung hingewiesen.
Es ist auch bekannt (K. Le η se, »Katechismus der Brauerei-Praxis«, 1956, S. 229, Abs. 744), in einer
Reinzuchtanlage eine Hefe-Zellkultur durch Gärung in einem Nährmedium sich vermehren zu lassen, das
gebildete Gemisch aus Jungbier und dünnflüssiger Reinhefe bis auf einen Rest abzulassen und mit dem verbleibenden
Rest wieder von neuem Reinhefe zu züchten.
Auch bekiesen bekannten Verfahren werden Zeilkulturen
mit einer vollständig regellosen Zellteilung
gezüchtet d. h solche Zellkulturen, in denen die
Zellen sich auf die verschiedenen Entwicklungsphasen
entsprechend dem Gaußschen Wahrsche.nhchkeits-
gesetz verteilen .·,·,',..,
Es sind auch bere.ts d.skontinu.erhche Vertahreh
zur Züchtung von ZeI kulturen bekannt, bei denen
d.e Erzeugung phasengle.cher Zellen versucht wurde. D.e in dieser Weise hergestellten Kulturen werden im
allgemeinen als synchrone oder synchronisierte KuI-türen
bezeichnet, je nachdem, ob der herbeigeführte Prozeß als Zwangsbehandlung oder als eine Ausdehnung
des normalen Wächstumsvorgangs anzusehen ist.
Bei dem Verfahren der Herstellung von synchronisicrten
Kulturen werden auf die Kultur Zwangsbehandlungen angewendet, z. B. breitere Temperaturänderungen,
Inhibitorzugaben und Nährstoffentfernungen, die das Zellwachstuin am Ende ihres Entwicklungskreislaufs
anhalten; wenn der äußere Zwang von der Zellkultur entfernt wird, tritt eine gleichzeitige
plötzliche Zunahme neuer Teilung ein. Dabei wurde gefunden, daß es möglich ist, die Zellen zu
einer im wesentlichen in Phase erfolgenden Teilung während der nachfolgenden zwei oder drei Generationen
zu veranlassen, bevor wieder eine vollständige Regellosigkeit der Teilung eintritt.
Bei der Methode zur Herstellung synchroner KuI-türen
wird die normal gewachsene Kultur durch physikalische Methoden, wie Filtration oder Zentrifugieren.
fraktioniert, wobei eine Fraktion kleiner Zellen abgetrennt wird; diese dient als Anfangsbestand
oder Besiedlung für synchrones Wachstum. Es wurde gefunden, daß im Verlauf von drei bis fünf. Generationen
wieder völlige Regellosigkeit vorliegt.
Bei diesen bekannten Verfahren zur Züchtung sowohI
von synchronen als auch von synchronisierten Zellkulluren ergibt sich jedoch wegen der Diskontinuierlichkeit
ein äußerst beschränkter Anwendungsbereich, und auch bei der diskontinuierlichen Arbeitsweise
selbst ergeben sich beträchtliche Beschränkungen der Untersuchung der Zellen und des Erntens
bestimmter Produkte, da ein .synchronisiertes oder
synchrones Wachstum nur zeitweilig über eine sehr beschränkte Anzahl von Zellkreisläufen erzielt werden
kann. Diese bekannten Arbeitsweisen eignen sich daher weder für eine Untersuchung der Zellen, noch
für ein. Ernten der Nebenprodukte des Zellkreislaufs,
die auf den Gebieten der Pharmacie, Biologie usw. von großem gewerblichem Interesse sein können.
Aufgabe der Eiliudung ist es daher, ein Verfahren
zur Züchtung von Zellkulturen zu schaffen, deren Zellen während einer praktisch unbegrenzten Zeit
weitgehend in der gleichen Entwicklungsphase vorliegen. Das neue Verfahren soll kontinuierlich und
5 ohne nachteilige Einflüsse auf die Reinheit und den phasengleichen Entwicklungszustand der Kultur
durchführbar sein. Weiter soll das Verfahren einfach und mit möglichst geringem apparativem Aufwand
durchführbar sein; demgemäß soll auch eine einfache, brauchbare und zuverlässig arbeitende Vorrichtung
zur Durchführung des Verfahrens angegeben werden.
Die Aufgabe wird gelöst durch ein Verfahren zur
Züchtung von Zellkulturen, deren Zellen weitgehend in der gleichen Entwicklungsphase vorliegen, welches
dadurch gekennzeichnet ist, daß man
a) die ZellkuItur mit vorherbestimmter Wachstümsgeschwindigkeit
in einer solchen Menge eines Nährmediums aufzieht, die nur ausreicht, daß dig Ze„en ^. dieser Wachstumsgeschwindigkeit
ao ^ ZeIlkreislauf einmal „,„«.„&„ können?
b) die Zcnkultur zu ihrer Yerdoppelungszeit in
zwei gleiche Hälften teilt und
c) der Zellkultur vor der Teilung oder jeder der beiden Hä,ften sovid weiteres
Nährmedium zu-
25- xm daß jede der Häjften de genügend
Nährmedium für eine Vollendung des Zellkreislaufs der darin
befindlichen Zellen enthält.
Die Erfindung schafft ein kontinuierliches Verfahren
zur Züchtung von Zellkulturen,' deren Zellen weitgehend in der gleichen Entwicklungsphase vorliegen
und für Stoffwechselvorgänge, Extraktion der Zellen oder Gewinnung von Produkten herangezogen
· werden können, ohne nachteilige Beeinflussung der Reinheit oder des phasengleichen Entwicklungszu-
{ stands der Kultur und unabhängig von der herrschenden
Wachstumsgeschwindigkeit. .
Das vorliegende Verfahren beruht auf der Feststellung,
daß das Wachstum einer Zelle von ihrer Umgebung gesteuert wird, und die Zellkreislaufcharakteristik
für spezifische Bedingungen, die experimentell bestimmt und in dem Verfahren reproduziert
werden können, kennzeichnend ist. Es wurde gefunden, daß sich der ZeIlkreislauf mit der Wachstumsgeschwindigkeit
ändert und daß eine Zelle keine hinsichtlich der Zeit festliegende Lebensspanne aufweist,
wie das bisher häufig im Schrifttum angenommen wurde, und daß weiterhin die Änderungen, die
sich aus Abwandlungen des Kreislaufs ergeben, für alle Zellen der Kultur gelten und nicht, wie bisher
gemeinhin angenommen wurde, auf einer Änderung des Mengenanteils an aktiven Zellen festliegender
Aktivität, d. h. der Lebensspanne in der Kultur, beruhen. Während also bei den bisher bekannten Vcrfahren
festgestellt wurde, daß man die Wachstumsrate der Zellen durch das Nährmedium regeln kann,
wurde eine reproduzierbare Arbeitsweise für eine vorherbestimmte Regelung nicht gefunden, und die
Änderung des Zellkreislaufs mit der Zusammenset-Zung
des Nährmediums wurde nicht als die wesentliehe Stufe für die Regelung der Wachstumsrate erkannt.
Während des Zellkreislaufs, d. h. im Verlauf der Reproduktions- oder Verdoppelungszeit der Zellen.
kann jedoch ein Gang des Stoffwechsels festgestellt werden, der für das Nährmedium. die Wachstumstieschwindigkcit
und die Umgehungsbedingungen keiinzeichnend
ist. Dies wurde in erster Linie am der
i öl/ /4b
Grundlage empirischer Analysen von intrazellularen Stoffwechselprodukten und Deoxyribonucleinsäure
und Ribonucleinsäure und Proteinfraktionen, die in Zeitabständen während des Zellkreislaufs vorgenommen
wurden, gefunden. Es wurde festgestellt, daß die anwesende Nährmediummenge, die nach den bisherigen
Kenntnissen die Geschwindigkeit des Zellwachstums bestimmt, d. h. die Zeit, die die.Zelle
zur Vollendung ihres Kreislaufs und zur Teilung braucht, in Wirklichkeit von den Zellen in einer auf
ihren zyklischen Stoffwechsel abgestimmten ganz besonderen Weise verarbeitet wird, nicht aber in konstanter
oder gleichbleibender Art, wie das bisher angenommen wurde, und daß eine Zelle für eine bestimmte Verdoppelungszeit eine Einheitsmenge an
Nährmedium erfordert, die von der Zelle in eben dieser besonderen Weise verbraucht wird.
Als Zellkulturen können bei dem vorliegenden
Verfahren nicht in phasengleichem Zustand befindliche Zellkulturen oder — vorzugsweise — Kulturen,
in denen sich die Zellen in jeweils gleicher Entwicklungsphase befinden, verwendet werden. Wenn es sich
bei der als Ausgangsmaterial verwendeten Zellkultur um eine nicht phasengleiche Zellkultur handelt, wird
durch das Verfahren die Gleichheit der Entwicklungsphase der Kultur verbessert, d. h., die Regellosigkeit
der Zellteilung wird verringert und schließlich annähernd beseitigt.
Hierzu wiederholt man gemäß einer besonderen Ausführungsform der Erfindung die Aufzucht, Teilung
und Nährmcdiumzugabe mehrmals.
Gemäß einer Weiterbildung der erfindungsgemäßen Arbeitsweise kann man bei jeder Teilung die weiteren
Wiederholungen mit einer Hälfte der Zellkultur durchführen und die andere Hälfte ihren Kreislauf
vollenden und zu weiterem Wachstum in einen Nachkrcislauf
eintreten lassen. Auf diese Weise wird jeweils eine Hälfte für die Erzeugung weiterer phasengleicher
Zellkulturen benutzt, während die jeweils andere Hälfte zur Untersuchung oder Gewinnung von
Stoffwechselprodukten dienen kann.
Da sich die Zellen normalerweise in regelloser statistischer Verteilung nach dem Gaußschen Wahrschcinlichkeitsgcsctz
teilen,, teilt sich eine überwiegende Menge der Zellen, d. h. mindestens 70 bis
800Ai der Zellen, innerhalb einer sehr kurzen Zeitspanne.
Diese mittlere Zeit ist als Verdopplungszeit der Zellkultur anzusehen und ist experimentell steuerbar.
Wenn die Zellkultur zu diesem Verdopplungszcitpunkt genau halbiert wird, befinden sich in jeder
Hälfte der Zellkultur die gleiche Anzahl an Zellen, wie sie ursprünglich in der Kultur anwesend waren,
wobei jedoch die Anzahl an sich langsam teilenden Zellen, die in der ursprünglichen Kultur anwesend
waren und die sich zu dem Verdopplungszeitpunkt nicht geteilt hatten, halbiert worden ist. Da jedoch
die sich schneller teilenden Zellen vom rein statistischen
Gesichtspunkt selbst wieder sowohl langsam als auch schnell teilende Tochterzellen erzeugen,
wird die Anzahl an sich langsam teilenden Zellen in irgendeinem besonderen Teil im wesentlichen die
gleiche bleiben wie in der ursprünglichen Zellkultur. Durch Teilung der Zellen zum Vcrdopplungszeitpunkt
ist es demgemäß möglich, einen gleichbleibenden Zustand aufrechtzuerhalten, wenn es sich bei der
ursprünglichen Zellkultur selbst um eine phasengleiche Kultur handelte; wenn es sich bei der ursprünglichen
Zellkultur nicht um eine phasengldche
Kultur handelte,, steigt die Anzahl an phasengleichen Zellen nach Wachstum bis zur Verdopplungszeit wesentlich,
bei wiederholten Teilungen der Zellkultur in dieser Art nimmt die Anreicherung ständig zu, und
es wird bald eine phasengleiche Kultur erreicht.
Unter der Voraussetzung einer Teilung des Nährmediums zur Verdopplungszeit und der weiteren Voraussetzung,
daß bei der Teilung der Kultur genügend Nährmedium zur Herbeiführung eines weiteren ZeIlkreislaufs
zugegeben wird, läßt sich eine Regellosigkeit der Zellteilung im wesentlichen vollständig beseitigen.
Da jedoch der Zellkreislauf hinsichtlich der Anzahl an Zellen von der Zusammensetzung des
Nährmediums abhängig ist, soll — damit die nachfolgende.
Verdopplungszeit mit der ursprünglichen Verdopplungszeit übereinstimmt — die Menge an
Nährmedium in jeder Hälfte der geteilten Kultur die gleiche sein "wie die Menge an Nährmedium in der
ursprünglichen Kultur vor deren Teilung. Wenn das nicht der Fall ist, ergibt sich ein unterschiedlicher
ZcIIkrcislauf mit einer andc-ren Verdopplungszeit,
und demgemäß wird ein 'abweichender Stoffwechsel der Zelle eintreten, und es werden sich andere Nebenprodukte
aus der Zelle ergeben. '
25- Im einzelnen ist es besonders bequem und praktisch,
unmittelbar vor der Verdopplungszeit das Nährmedium zu der Zellkultur vorzugsweise im gleichen
Volumen zuzugeben und gleichmäßig mit der Kultur zu vermischen und unmittelbar darauf die Zellkultur
in zwei gleiche Volumina zu teilen. Hierdurch gelingt es, in kontinuierlicher Weise eine phascngleichc Zellkultur
mit genau den gleichen Eigenschaften und dem gleichen Zellkreislauf wie eine vorhergehend erzeugte
Zellkultur herzustellen; diese kann dann für die Untersuchung ihrer Zellen, oder ihrer Produkte,
intrazellular und extrazcllular, unzcrstört oder zer-1
stört, herangezogen werden, so daß die Zellen, Stoffwechsclzwischenprodukte
oder Produkte in jedem Kreislauf des Verfahrens immer wieder in einem gewünschten spezifischen Zustand erhalten werden
können.
Wenn die Zelle einen Zellkrcislauf durchläuft, erzeugt sie in verschiedenen Stadien des Kreislaufs verschiedene
Stoffwechselprodukte. Dabei kann es sich um nur vorübergehende und nachfolgend zu anderen
Produkten umgewandelte Stoffwechselprodukte oder um Endprodukte handeln. Das Verfahren gemäß der
Erfindung ermöglicht ein Ernten der gewünschten StofTwechselprodukte aus. der Zellkultur in der maximal
möglichen Ausbeute. Der Grund dafür liegt darin, daß in der phasengleichen Zellkultur 70 bis 80%
der Zellen dieser Kultur das besondere Stoffwechselprodukt zu ein und derselben Zeit erzeugen, und
wenn die Ernte oder Gewinnung zu diesem Zeitpunkt vorgenommen wird, die maximal mögliche Ausbeute
anfällt. Im Gegensatz hierzu erzeugt in einer Zellkultur, wie sie nach dem herkömmlichen kontinuierlichen
Verfahren erhalten wird und in der regellos Zellen jeder Entwicklungsstufe vorliegen, nur ein
kleiner Anteil der Zellen ein bestimmtes StofTwechselprodukt zu irgendeiner gegebenen Zeit, und demgemäß
ist eine Gewinnung schwierig oder unmöglich, insbesondere wenn das Stofiwechsclprodukt einer weiteren
Umwandlung unterliegt. Weiterhin kann erfindungsi.'cmäß
aus jeder Kultur das gleiche SlofTwcchselpnxhikl
«eeinlcl werden, da jede erzeugte Folgekultur
bei Anwendung gleicher Volumina, an Nälum.cdium
genau mit der umhergehenden Kuiiur über-
1 U 1
einstimmt. Andererseits kann gewünschtenfalls auch ein anderes Sloilwechselprodukt aus jeder Kultur gewonnen
werden, einfach durch Ernten zu einer anderen Zeit. Um den geeigneten Erntezeitpunkt zu bestimmen,
ist es nur notwendig, den Gang der Stoffwechseländerung in dem Zellkreislauf bei einer derartigen
phasengleichen Kultur zu analysieren und festzustellen, wann das oder die gewünschten Stoffwechselprodukte
erzeugt werden.
nung von Stoffwechselprodukten aus der in Phase befindlichen Zellkultur angestrebt wird, ist die Art des
Nährmediums nicht von erstrangiger Bedeutung.
Durch Anwendung einer geeigneten Wachstumsgeschwindigkeit kann ein bestimmter und gewünschter
Stoffwechselablauf erreicht werden. Die Änderungen im Verlauf des Zellkreislaufs können in einem
vorhergehenden Kreislauf analysiert und dann in der gewünschten Weise bei jedem nachfolgenden Kreis-
Das vorliegende Verfahren ist jedoch auch sehr an- io lauf der gleichen Kreislaufdauer zur Gewinnung von
paßbar; es ist möglich, nach Erzeugung einer phasen- Produkten*od. dgl. ausgenutzt werden, entweder bei
gleichen Zellkultur eines ersten Typs, die eine bestimmte Kreislaufzeit und einen bestimmten Stoffwechselgang
aufweist, eine andere abweichende phasengleiche Zellkultur herzustellen, einfach durch
Änderung der Zusammensetzung des Nährmediums oder der Zeitabslände zwischen den Nährmediumzugaben
oder durch Änderung der Bruttemperalur der Kultur. Hierdurch kann man leicht andere Stoffwechselpiodukte
und andere Zellen zur Untersuchung und Gewinnung erzeugen.
Das neue Verfahren ist anwendbar auf die Herstellung von wertvollen Chemikalien und Biochcmikalien
sowie auf die Herstellung von natürlichen Vercinem bestimmten Punkt im Kreisprozeß aller nachfolgenden
Kreisläufe oder an unterschiedlichen Punkten bei den nachfolgenden Kreisläufen. Weiterhin ist
es möglich, durch Änderungen der Wachstumsgeschwindigkeit den Gang im Kreisprozeß zu ändern,
so daß nach einem Zeitraum der Durchführung eines bestimmten Kreisprozesses gewünschtenfalls eine andere
W.achstumsgeschwindigkeit und damit ein ande-
ao rcr Kreisprozeß herbeigeführt werden kann.
Durch Vornahme von Änderungen in dem Nährmedium oder durch Anwendung anderer Nährmedien
können weitere Änderunge'n herbeigeführt werden, oder der Kreislauf kann durch TempcraUiränderun-
bindungen, z. B. Enzymen und komplexen Stoffen, 25- gen abgewandelt werden.
wie sie beispielsweise als Zwischenprodukte während Es ist bereits eine Vorrichtung für die Durchfüh
rung eines Verfahrens zur Züchtung von Zellkulturen bekannt (Canadian Journal of Microbiology, Bd. 9
[1963J5 S. 671 bis 687), die ein geschlossenes Aufzuchtgefäß
zur Aufnahme einer Zellkultur aufweist, bestehend aus einer Zyklonkolonnc, einem Umwälzbogen
und einer Umwälzpumpe, mit einer Einrichtung zum Konstanthalten der Zcllkulturtcmperatiir,
mit einer eine Pumpe mit regelbarer Fördermenge/ Zeit umfassenden Nährmediumzuführungseinrichtung,
sowie mit einer Auslaßeinriclitung für die mit Nährmedium gemischte Zellkultur in ein Sammelgcfäß.
Die Erfindung schafft eine Vorrichtung dieser Art
Die Erfindung schafft eine Vorrichtung dieser Art
des Zellwachstums erzeugt werden, z. B. datcnübcrnüttelnde
Ribonucleinsäure; diese können für chemo-' therapeutische, prophylaktische, Herstellungs- oder
Weiterverarbeitungszwecke und andere Anwendungen eingesetzt werden. Dabei handelt es sich vielfach
um Materialien, die bisher übciliaupt nicht erkannt
oder vernachlässigt wurden oder die bei den hohen Verdünnungen, in denen sie bei Anwendung herkömmlicher
Methoden zum Aufziehen der Zellen vorkommen, nicht zu gewinnen waren. Das vorliegende
Verfahren kann in jedem gewünschten Maßstab innerhalb der technologischen Gesichtspunkte,
die normalerweise für das Aufziehen von Mikro
organismen und Zellen gelten, durchgeführt werden. 40 zur Durchführung des vorliegenden Verfahrens, wel-
Die neue Arbeitsweise ist anwendbar auf Kulturen jeglicher frei lebenden Zellen, seien dies Mikroorganismen
oder Gewebezcllen. Als Beispiele typischer ZellkuUurcn seien jene von Hefen, z. B. S. cerevisicae,
S. rouxii, S. magnoliac, Bakterien, z. B. Strep, bovis, A. acrogenes, A. suboxydans, Pseudomonad sp. und
anderen, wie Strcptomyces venezuleae und insbesondere Candida utilis sowie Pflanzenzellen und tierische
Zellen genannt.
Zur Erhöhung der phasengleichen Anzahl an ZeI-lcn
in der Zellkultur können, um beispielsweise 90 bis K)O0Zo der Zellen in gleicher Entwicklungsstufe
zu haben, die bekannten Arbeitsmaßnahmen, die bei diskontinuierlichen Verfahren zur Züchtung von synchronen
oder synchronisierten Kulturen angewendet worden sind, z. B. Temperaturünderimgcn und Inhibilorzugaben,
auf die phasengleiche Kultur zu der Verdopplungszeit angewendet werden; hierdurch wird
die Verdopplungszeit verlängert, und es können sich mehr Zellen teilen, während das weitere Wachstum
der geteilten Zellen aufgehalten wird.
Bei dem Nährmedium kann ei; sich um ein chemisch
Undefiniertes Nährmedium handeln, vorzugsweise wird jedoch ein chemisch definiertes Nährmedium
verwendet. Wenn es erwünscht ist, die Zellen G5
hinsichtlich ihres Stoffwechsels zu untersuchen, ist es wichtig, die Natur der ursprünglich.anwesenden VerbmdiiMP.cn
zu kennen: wenn daiicuen nur die (iewinche
gekennzeichnet ist durch ein zwischen die Nährmediumzuführungseinrichtung
und das Aufzuchtgefäß geschaltetes Dosiergefäß mit einem automatischen
Heber für die Zugabe konstanter Volumina in vorher bestimmten Zeitabständen und einen zwischen die
Auslaßeinrichlung und das Aufzuchtgefäß geschalteten
automatischen Heber für das Überleiten von mit den zugegebenen Nährmittelvolumina gleichen ZcIlkulturvolumina
in das Sammelgefäß.
Die Erfindung wird nachstehend an Hand der Zeichnungen weiter erläutert; diese zeigen in
F i g. 1 in schematischer Darstellung eine Vorrichtung
zur Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens,
F i g. 2 Diagramme, welche Änderungen (α) der prozentualen Fettsüurczusamincnsetzung und (b) der
Gesamtfetlsäurcn einer C. utilis-Zellkultur wiedergeben, die bei einer Kreislaufzeit von 4 Stunden 15
Minuten in einem Glucosemedium nach dem Verfahren gemäß der Erfindung gezüchtet wurde,
Fig. 3A und 3B Gas-FKissigkeits-Chromato- .
gramme von Aminosäuregemischen, die aus der C. utilis-Zellkultur der F i g. 2 bei Krcislaufzeitcn von
bzw. 6.5 Stunden extrahiert wurden, und
Fig. 4 Gas-Flüssigkeits-Chromatogramme einer
ansonsten wie in den F'ig. 3A und 3B, jedoch in
einem (ilyceriiimedium mit einer Kreislaufzeit von 6,5 Stunden aufgezogenen C. utilis-Zellkullur.
309 614/21
9 10
Die in Fig. 1 dargestellte Vorrichtung umfaßt im tel 14 des Umwälzbogens Il abfließende Wasser
wesentlichen eine Apparategruppe 1 zur Herstellung durch eine Leitung 31 zu einer Schlange 21 b geleitet,
phasengleicher Entwicklungsstufe, nachstehend zur die in dem Dosiergel'äß 21 angeordnet ist; das Wasser
Vereinfachung als Aufzuchtgefäß bezeichnet, und ein Hießt schließlich aus der Schlange durch eine Lei-
Veraibeitungsgefäß 2. . 5 tung32 ab. Das Dosiergefäß 21 kann genauso ausge-
Das Aufzuchtgefäß 1 besteht aus einer Zyklonko- bildet sein, wie ein auf S. 671J der vorgenannten Verlonnc
10 und einem Umwälzbogen 11, der eine öfTentlichung erläuterter Kühler, mit der Ausnahme,
Schleife bildet, durch die ein Gemisch aus Zellkultur daß die Rohrschlange in der vorstehend angegebenen
und Nährmedium 12 zirkuliert wird; hierdurch wird Weise mit dem Wassermantel 14 und nicht mit einer
die Homogenität des Gemisches aufrechterhalten. Die io Kältemittelanlage verbunden ist. Das Dosiergefäß 21
Zirkulation des Gemisches 12 erfolgt durch eine Um- ist ebenfalls mit einem Probenehmer 21α ausgestattet.
wälzpumpe 13. Während dieser Zirkulation tritt das Die Verbindungen zwischen dem Kopf der Zyklon-Gemisch
12 in das Rohr der Zyklonkolonne 10 ein kolonne 10 und dem Kondensator 29 können so aus-
und Hießt an den Seitenwänden zum Boden herab, gebildet sein, wie das in der vorgenannten Vervon
wo es erneut von der Pumpe in der Pfeilrichtung 15 öffentlichung erläutert ist, dasselbe gilt für die in der
umgewälzt wird. Eine geeignete Ausbildung von Zy- Vorrichtung angeordneten Probenehmer,
klonkolonne 10, Umwälzbogen 11 und Pumpe 13 ist Dem Dosiergefäß 21 wird aus Nährmediumvorratsauf S. 674 der Veröffentlichung von P. S. S. Dawson gefäßen 33 durch Leitungen 34 und 35 mittels einer in »Canadian Journal of Microbiology«, Bd. 9.(1963), Pumpe 36 ständig Nährmedium zugeführt. Die Leinochausführlicher erläutert. 20 tung 35 enthält einen Durchflußmesser 37 und ein
klonkolonne 10, Umwälzbogen 11 und Pumpe 13 ist Dem Dosiergefäß 21 wird aus Nährmediumvorratsauf S. 674 der Veröffentlichung von P. S. S. Dawson gefäßen 33 durch Leitungen 34 und 35 mittels einer in »Canadian Journal of Microbiology«, Bd. 9.(1963), Pumpe 36 ständig Nährmedium zugeführt. Die Leinochausführlicher erläutert. 20 tung 35 enthält einen Durchflußmesser 37 und ein
Die Temperatur des zirkulierenden Gemisches 12 Sterilfilter 38. Die Nähimediumvorratsgefäße 33 um-
wird in dem Aufzuchtgefäß 1 ^mittels eines Wasser- fassen ein Vorratsgefäß 33«, und das Nährmedium
mantels 14, der den Umwälzbogen 11 umgibt, im in diesem Vorratsgefäß wird ständig aus Mediumzu-
wesentlichen konstant gehalten; der Wassermantel - führungsbehältern 33ft und 33c· 'ergänzt. Letztere
wird durch Leitungen 15 und 16 mit einem Gemisch 25 sind durch Heber 33«* miteinander verbunden und
aus heißem und kaltem Wasser gespeist, wobei die stehen über Sterilfilter 33 c mit der Atmosphäre in
geeigneten Mengenverhältnisse an heißem und kaltem Verbindung. Der Durchfließmesser 37, die Pumpe 36
Wasser durch Solenoidventile 17 und 18 geregelt wer- und die Nährmediumvorratsgefäße33 können im ein-
den; letztere werden von einer in dem Umwälzbogen zelnen so ausgebildet sein, wie das in der genannten
11 angeordneten Thermistorsonde 19 über ein Re- 3° Veröffentlichung erläutert ist.
lais 20 betätigt. Die Temperatur des Gemisches 12 im Wenn das Nährmedium in dem Dosierungsgefäß
Aufzuchtgefäß 1 wird mittels eines Thermometers Π a 21 eine vorherbestimmte Höhe erreicht, was natürbestimmt,
das in dem Umwälzbogen 11 angeordnet lieh durch entsprechende Regelung genau zu dem
ist. In dem oberen waagerechten Teil des Umwälz- Verdoppelungszeitpunkt der Zellen in dem Gemisch
bogens 11 können eine Anzahl von seitlichen Stutzen 35 12 eintritt, überführt der automatische Heber 22 das
zur Aufnahme weiterer Fühler verschiedener Meß- Nährmedium aus dem Dosiergefäß 21 in die Zyklonoder
Regelinstrumente, wie pH-Elektroden, oder an- kolonne 10, und das Medium vermischt sich bei der
dere Einrichtungen, wie beispielsweise angeordnet Eindosierung mit dem Gemisch 12 in der Kolonne
nehmer life'oder eine Impfeinrichtung angeordnet 10. Wenn diese Zugabe (und auch der Mischvorgang)
sein. Das Relais 20, die Solenoidventile 17 und 18, 40 abgeschlossen ist, wird die Hälfte des verdünnten
das Thermometer Ha, der Probenehmer 11 b und Gernisches 12 aus der Kolonne 10 entweder durch
der Thermistor 19 können im einzelnen ebenfalls so einen automatischen Heber 40 in ein Sammelgefäß 39
ausgebildet sein, wie das in der vorgenannten Ver- geleitet, oder es wird eine Klemme 41 in einer Ldöfientlichung
beschrieben ist. ' tung 42 von Hand geölfnet, so daß ein gleiches Vo-
Das Aufzuchtgefäß 1 wird zum Verdopplungszeit- 45 lumen zn verdünntem Gemisch 12 zu dem oberen
punkt aus einem Dosiergefäß 21 über einen automa- Ende einer Zyklonkolonne 10' des Verarbeitungsgetischen
Heber 22, eine Nährmedium-Gaszuführungs- fäßes 2 Hießt. Wohin das Gemisch 12 im einzelnen
-leitung 23 und seitliche Zuführungen 24 und 25 der geleitet wird, hängt von dem Phasenzustand des Ge-Zyklonkolonne
10 mit frischem Nährmedium ver- misches 12 in dem Aufzuchtgefäß 1 ab. Wenn das sorgt. Ein Gas, wie Luft oder Stickstoff, wird der 50 Gemisch 12 in dem Aufzuchtgefäß 1 aus einer phasen-Zyklonkolonne
10 aus einer nicht dargestellten Quelle gleichen Kultur gebildet worden ist und der Zweck
über eine Leitung 26, die ein Sterilfilter 27 enthält, des Verfahrens darin besteht, Produkte daraus zu gedas
Dosiergefäß 21, eine Leitung 28,-die Medium- winnen. wird das Gemisch durch die Leitung 42 in
Gaszuführungsleitung 23 und die seitlichen Zufüh- das Verarbeitungsgefäß 2 abgeleitet. Wenn andererrungen
24 und 25 kontinuierlich zugeführt. Das Gas 55 seits das Gemisch 12 in dem Aufzuchtgefäß 1 aus
tritt aus der Kolonne 10 durch einen Wasserdampf- nicht in Phase befindlichen Zellen gebildet wurde und
kondensator 29 und ein Sterilfilter 30 kontinuierlich die Aufgabe darin besteht, eine phasengleiche Kultur
aus. Die Anwesenheit des Kondensators 29 ist, wie zu gewinnen, wird das Gemisch über den Heber 40
in der vorgenannten Veröffentlichung im einzelnen in das Sammelgefäß 39 abgeleitet; das nicht phasendargelegt
ist, zweckmäßig, um Kondensationswasser 60 gleiche Produkt hat im Rahmen der Erfindung keine
aus dem abfließenden Gas zu entfernen und eine besondere Verwendung. Der Heber 40 ist ebenfalls
Kondensatbildung in dem Filter 30 und einen daraus mit einem Probenehmer 40a versehen,
folgenden Rückdruck in die Zykloiikolonne 10 zu Das Verarbeitungsgefäß 2 ist in seiner Ausbildung vermeiden. Der Zufluß und der Abfluß des Gases dem Aufzuchtsgefäß 1 sehr ähnlich und umfaßt eine werden mittels Durchllußmeßeinrichtungen gemessen. 65 Zyklonkolonne 10', einen Umwäl/bogen 1Γ und eine Um das Nährmedium in dem Dosiergefäß 21 und Pumpe 13', welche das Gemisch 12' aus Zellkultur das Gemisch i2 in dem Aufzuchtgefäß 1 bei gleicher und Nährmedunn in der Pieilrichtim» durch den Temperatur zu halten, wird das aus dein Wassernuin- Uimväbbogen und die Kolonne zirkuliert. Der Um-
folgenden Rückdruck in die Zykloiikolonne 10 zu Das Verarbeitungsgefäß 2 ist in seiner Ausbildung vermeiden. Der Zufluß und der Abfluß des Gases dem Aufzuchtsgefäß 1 sehr ähnlich und umfaßt eine werden mittels Durchllußmeßeinrichtungen gemessen. 65 Zyklonkolonne 10', einen Umwäl/bogen 1Γ und eine Um das Nährmedium in dem Dosiergefäß 21 und Pumpe 13', welche das Gemisch 12' aus Zellkultur das Gemisch i2 in dem Aufzuchtgefäß 1 bei gleicher und Nährmedunn in der Pieilrichtim» durch den Temperatur zu halten, wird das aus dein Wassernuin- Uimväbbogen und die Kolonne zirkuliert. Der Um-
101//4O
wälzbogen 11' ist in ähnlicher Weise mit einem Wassermantel 14' ausgestattet, um die Temperatur des
Gemisches 12' zu regeln, wobei der Fluß von heißem und kaltem Wasser durch Leitungen 15' und 16'
durch Solenoidventile 17' und 18', welche von einem Thermistor 19' über ein Relais 20' betätigt werden,
geregelt wird. Jedoch wird das aus dein Mantel 14' austretende Wasser fortgeleitet. Ein Gas, wie Luft
oder Stickstoff, fließt zu dem Gemisch 12' in der Zyklonkolonne 10' aus einer nicht dargestellten
Quelle über ein Sterilfilter 27', eine Leitung 23' und seitliche Zuführungen 25'; es tritt aus der Kolonne
10' durch eine Leitung 43 und ein Sterilfilter 30' aus.
Der Umwälzbogen 11.' ist genauso ausgebildet wie in dem Aufzuchtgefäß 1 und enthält ein Thermometerllrt'
und einen Probenehmer 11//.
Wenn der Gang des Stoffwechsels im Verlauf des Zellkreislaufs untersucht werden soll, werden in
gleichmäßigen Abständen Reihenproben zur Analyse aus dem Probenehmer Hb abgezogen.
Wenn das Produkt aus dem Verarbeitungsgefäß 2 geerntet werden soll, wird die Kultur 12' durch Öffnen
einer Klemme 44 über eine Leitung 45 in ein Sammelgefäß 46 geleitet, das durch ein. Sterilfilter 47
mit der Atmosphäre verbunden ist. 25"
Wie ersichtlich, ist die Vorrichtung an verschiedenen Stellen mit Probenehmern ausgestattet, so daß
von dem Medium oder der Kultur an irgendeiner bestimmten Stelle der Vorrichtung Proben genommen
werden können; zusätzlich zu den Probenehmern lib, Hb', 21a und 40« ist ein weiterer Probenehmer
35« in der Leitung 35 vorgesehen.
Zum Betrieb wird die leere Vorrichtung sterilisiert, z. B. durch Dämpfen oder Autoklavenbehandlung;
zweckmäßig wird die Vorrichtung hierzu in verschiedene Abschnitte zerlegt. Eine geeignete Autoklavenbehandlung
ist in der vorgenannten Veröffffentlichung im einzelnen beschrieben. Die Vorrichtung
wird dann zusammengesetzt und das Nährmedium, das zuvor sterilisiert worden ist, zweckmäßig in ahnlicher
Weise wie das auf S. 683 der vorgenannten Veröffentlichung erläutert ist, wird bis zu dem Umwälzvolumen
in die Zyklonkolonne 10 eingeführt.
Ein Impfmaterial wird hergestellt, indem man einen geeigneten Kulturansatz wachsen läßt, bis die
exponentiell Wachstumsphase erreicht ist. Die Zellkultur wird dann in das zirkulierende Medium eingeimpft,
zweckmüßig nach einer der verschiedenen aseptischen Methoden, wie sie auf S. 684 der vorgenannten
Veröffentlichung angegeben sind. ■
Der Nährmediumfluß von der Mediumquelle 33 zu .dem Dosiergefäß 21 wird dann begonnen; die
Fließrate, d. h. die pro Zeit zufließende Menge, bestimmt die Ver'doppelungszeit des Verfahrens. Es
wird willkürlich eine Vcrdoppelungszeit gewählt, beispielsweise 6 Stunden, und der Mediumfluß durch
die Leitungen 34 und 35 zu dem Dosiergefäß 21 wird dann so geregelt, daß nach jeweils 6 Stunden das
Nährmedium in dem Qosiergefäß 21 automatisch mittels des Hebers 22 in die.Zyklonkolonne 10 entleert
wird. Die Zellkultur in dem Gemisch 12 nimmt dann eine Wachstumsgeschwindigkeit in Übereinstimmung
mit dieser Verdoppelungszeit an, so daß , sich zum Zeitpunkt der Zudosierung des Nährmediums
die Hauptmenge der Zellen in dem Gemisch 12 bei ihrer Verdoppelungszeit befindet. Praktisch
sofort nach Vollendung der Zudosierung von frischem Nährmedium in die Zyklonkolonne 10 wird
der automatische Heber 40 betätigt, und ein Volumen des Gemisches 12, das dem Volumen des in die
Zyklonkolonne eindosierten Nährmediums gleich ist, wird zu dem Sammelgefäß 3? geleitet. Nach wiederholtem
Zudosieren in die Zyklonkolonne 10 und wiederholtem Abziehen von gleichen Volumina Gemisch,
und zwar alle 6 Stunden, erreichen die Zellen in dem Gemisch 12 einen phasengleichen Zustand. Dies erfordert
im allgemeinen einen Zeitraum von einigen Tagen. Wenn es erwünscht ist, die Zellen in dem Gemisch
12 in einer anderen' Geschwindigkeit wachsen zu lassen, so wird hierzu die Fließrate des Nährmediums
aus den Nährmediumvorratsgefäßen 33 zu dem Dosiergefäß 21 geändert, so daß sich eine neue willkürlich
gewählte Verdoppelungszeit ergibt, beispielsweise 4,5 Stunden, und der Arbeitskreislauf aus Dosierung
der Zyklonkolonne 10 und Abzug gleicher Volumina an. Gemisch 12 in-das Sammelgefäß 39
wird fortgesetzt, bis die Zellen in dem Gemisch 12 wieder ihr phasengleiches Wachstum erreicht
haben. ": .
Wenn es sich bei der anfänglichen Zellkultur, die in das Nährmedium in der Zyklonkolonne eingeimpft
wird, um eine phasengleiche Zellkultur handelt oder wenn die Zellen in dem Gemisch 12 ein phasengleiches
Wachstum erreicht haben, kann das periodisch aus der Zyklonkolonne 10 abgezogene Gemisch für
weitere Arbeitsmaßnahmen verwendet werden, z. B. Ernte und Gewinnung besonderer Stoffwechselprodukte
und/oder Untersuchung der Zellen und ihrer Produkte. Hierzu wird das Gemisch 12 aus dem Umwälzbogen
11 durch Öffnen der Klemme 41 über die Leitung 42 zu dem Verarbeitungsgefäß 2 abgezogen,
wo das Gemisch 12' mittels der Pumpe 13' durch den Umwälzbogen 1Γ und die Zyklonkolonne 10'
zirkuliert wird; zu verschiedenen Zeitpunkten während dieser Zirkulation können Proben aus dem Probenehmer
lift' abgezogen und untersucht werden,
beispielsweise hinsichtlich des Stoffwechsels der Zellen und der hierdurch erzeugten Stoffwechselprodukte.
Wenn ein besonderes Stolfwechselprodukt geerntat und gewonnen werden soll, wird der genaue
Zeitpunkt der Erzeugung dieses Stoffwechselprodukts in einem früheren Kreislauf bestimmt, und zu diesem
Zeitpunkt wird das zirkulierende Gemisch 12' durch Öffnen der Klemme 44 über die Leitung 45 in das
Sammelgefäß 46 abgeleitet.
In dem Aufzuchtgefäß 1 werden Ablesungen und Aufzeichnungen von der Temperatur des Mediums in
dem Dosiergefäß und von der Kultur sowie der Dosierungs- und Verdoppelungszeit und von den Arbeitsvolumina an Nährmedium und Gemisch 12 in der
Vorrichtung gemacht. Weiterhin werden zweckmäßig die optische Dichte und der pH-Wert des Gemisches
12 unmittelbar vor und nach dem Dosieren bestimmt, um die Arbeitsweise der Vorrichtung zu überwachen.
Im Verarbeitungsgefäß 2 der Vorrichtung werden Proben der Kultur in Zeitabständen über den Kreislauf
gesammelt und geeignete Analysen dieser Proben vorgenommen; gewöhnlich wird die Photomikrographie
zur Aufzeichnung der Eigenschaften des Wachstumsvorgangs herangezogen. Das Gemisch 12'
muß vor dem Ende des Zellkreislaufs aus dem Verarbeitungsgefäß abgezogen werden, da zu diesem
Zeitpunkt frisches Gemisch 12' aus dem Aufzuchtgefäß 1 in das Verarbeitungsgefäß 2 geleitet wird.
Die Erfindung wird an Hand des nachstehenden Beispiels weiter veranschaulicht.
13 14
' BeiSDiel 77 ml/Sld., und eine unmittelbar darauffolgende Ent-
■ .. . fernung von 500 ml verdünnter Kultur aus der Zy-
I. Herstellung einer phasengleichcn Kultur klonkolonne 10 in das Sammelgefäß 39 sicher. Diese
Eine Vorrichtung gemäß F i g. 1 mit einem Arbeits- Betriebsweise wurde 4 Tage lang fortgesetzt. Der
fassungsraum von 500 ml wurde in der beschriebenen 5 achtzehnte Ausfluß aus der Zyklonkolonne 10 wurde
Weise zusammengestellt und sterilisiert. Die Vor- durch Handbetätigung der Klemme 41 in der Auslaßrichtung
wurde benutzt, um Candida utilis Art Y. 900 leitung 42 zu dem Verarbeitungsgefäß 2 geleitet, wein
phascngleicher Kultur bei 28° C auf einem ein- bei wiederum 500 ml der Kultur entfernt wurden, so
fachen chemisch definierten Medium der nachstehen- daß ebenfalls 500 ml der Kultur weiter in dem Aufden
Zusammensetzung aufzuziehen: 10 zuchtgefäß 1 zirkulierten. Der neunzehnte, zwanzigste
V '. ■■'.......... -ion un<* e'nundzwanzigsle Ausfluß aus dem Aufzucht-1
Glucose 30,0 g gefäß j wurcjen danach durch automalischen Abzug
MgSO4 · 7 H2O 0,5 g miUels des Hcbers 40 in das Sammelgefäß 39 abge-
'■ vHPn'■"""" ····'· 5^r5S führt; dasselbe gilt für alle nachfolgenden Entnahmen,
J^ri?^ Q4 n ''■
in *5 ausgenommen jene, die zur Analyse oder zur Ver-
if/· V2 4 1» " ' " Λ f arbeilung durch Handbetätigung der Klemme 41 zum
.- Winzlersalzlosung 10 ml Zeitpunkt 'der Vollendung - der Eindosicrung von
destilliertes Wasser 1 Liter Medium in das Aufzuchtgefäß 1 entfernt wurden. Die
Die Winzlersalzlosung enthielt je Liter: 10 ng zweiündzwanzigstc, sechsundzwänzigste und dreißigste
H3PO3; 10 ng ZnSO4; 10 [ig MnGl2; 5 ng FeCl3; ao Ernte,, und danach andere im Bedarfsfall, wurden
1 ng CuSO4 · 5 H2O; 1 ng KJ. Bei einigen Verfall- einzeln wie oben die achtzehnte Ernte zur Analyse
rensdurchführungen enthielt das Nährmedium 30,0 g in das Verarbeilungsgefäß 2 übergeführt.
Glycerin an Stelle der Glucose. Die durch die Leitung 42 in das Verarbcitungs-
500 ml eincsauf dem vorstehenden Medium wach-_ gefäß 2 geleitete 500-ml-Kiillur wurde dort unter den
senden Kulturansatzcs von Cadida utilis Rasse Y. 900 25 gleichen Bedingungen wie in dem Aufzuchlgefäß 1
(N.R.R.L. Y.900) wurden erhallen durch Vereinigen weiter wachsen gelassen. Hierzu wurde die Kultur
von 5· lOO-ml-SchüUelkolbenkülturen von 18 Stunden in der Kolonne 10' und dem Umwälzbogen 1Γ mit
Inkubation bei 28° C und aseptische Einführung als der gleichen Geschwindigkeit (6 Lilcr/Min.) mittels
Impfmaterial in das Aufzuchtgefäß 1 der Vorrichtung. der Pumpe 13' umgewälzt und mittels des Wasser-Alternativ
wurden 500 ml Impfmaterial direkt in 3O mantels14' bei der gleichen Temperatur von 28''C
einem Chemostat hergestellt (s. »Canadian Journal öl" gehalten; es wurde die gleiche Luftströmung (500 ml/
Microbiology«, Bd. 9 [1963], S. 671 bis 687), indem Min.) angewendet, dieseLuft trat durch das Filter 27'
Candida utilis Rasse Y.900 auf dem gleichen Medium ein und floß durch das Auslaßlilter 30' ab. In rcgclbei
28'■' C und unter Anwendung einer Aufenthalts- mäßigen Zeitabständen während des Kreislaufs, (d. ii.
zeit von 6 Stunden wachsen gelassen wurde. In jedem 35 der Zeitspanne zwischen den Dosierungszcilen) wur^
Falle wurde nach der Impfung sofort die Zirkulation den Proben der zirkulierenden Kultur aus dem Probeder
Kultur in der Zyklonkolonnc 10 und dem Um- nehmer 11 b' für Analysen, wie sie nachstehend bcwälzbogen
11 mittels der Umwälzpumpe 13 aufgc- schrieben werden, abgezogen. Nach Vollendung des
nommen. Die Temperatur der zirkulierenden Kultur Kreislaufs wurde das Verarbeilungsgefäß 2 an der
wurde mittels des Wassermantels 14 bei 28r'C ge- 40 Luer-Lok-Vcrbindung 50 in der Leitung 42 zur Aushalten.
Die Luftströmung durch die Zyklonkolonne 10 spülung und Reinigung abgetrennt und durch ein
wurde mittels eines Durchflußmessers auf 500 ml/Min. neues steriles, leeres Verarbeitungsgefäß 2 ersetzt. Die
eingestellt. Die Luft trat durch das Slerilfilter 27 in Kupplung an der Verbindung 50 erfolgte unter ascpdas
Aufzuchlgefäß ein und verließ die Anlage durch tischen Bedingungen,
das Auslaßfilter 30. ■ 45 Die Betriebsspanne (Kreislaufzeit) war für das
Das Nährmedium, das in der vorstehend beschrie- Aufzuchlgefäß 1 und das Verarbeitungsgcfäß 2 gleich
bencn Weise sterilisiert und in die Mediumvorrats- und entsprach der Zeitspanne zwischen Dosierungen;
gefäße 35,eingefüllt worden war, wurde nun mittels für einen Mediumfluß von 77 ml/St, betrug also bei
der Mediumpumpe 36 in das Dosiergefäß 21 geleitet. einem Volumen der Kultur von 500 ml die Krcislauf-
Die Pumpe arbeitete mit einer Fördermenge von 50 zeit 6,5 Stunden. :·
77ml/Sld.; das Dosiergefäß wurde durch die Schlange Änderungen der Betriebsweise können während des
21Λ bei einer Temperatur von 28° C gehalten. Nach Aufziehens von pliasengleichen Kulturen auf den
6,5 Stunden wurde der nunmehr 500 ml ausmachende bereits beschriebenen Wegen vorgenommen werden,
Nährmcdiuminhalt des Dosiergefäßes 21 durch den und in diesem Beispiel wurden verschiedene,Bctricbs-
automalischcn Heber 22 abgezogen und das Medium 55 weisen untersucht. Zur Herbeiführung dieser Ändc-
in dieser Weise durch die Leitung 23 und die seit- rungcn ist es nur erforderlich, die Mediunmifliißrate
liehen Zuführungen 24 und 25 in die Zyklonkolonne zu dem Dosiergefäß 21 in der gewünschten Weise zu
10 übergeführt. .Dort trat Vermischung mit der zirku- ändern, gefolgt von einer Periode der Anpassung der
licrcnden Kultur ein, wodurch das Volumen auf .Kultur an die neuen Bedingungen. Gewöhnlich wurde
1000 ml zunahm. Nach Abschluß der Zugabe wurde 60 gefunden, daß diese Anpassungsperiode nach zehn *
der automatische Heber 40 des Aufzuchlgcfäßcs 1 in Dosierungen, d. h. zehn Kreisläufen, beendet war.
Betrieb gesetzt, und 500 ml der zirkulierenden Kultur In dem Beispiel wurde nach mehreren Bclriebs-
wurdcn in das Sanimclgcfäß 39 abgehebert. Fort- monaten bei einer Krcislaufdaiicr von 6,5 Stunden,
gesetzter Betrieb der Mediumzuführungspumpe 36 d.h. einem Medienfluß von 77 ml/Sld., eine Ändc-
stelltc eine ständige Wiederholung dieser 500 ml 65 rung auf eine Krcislaufdaiicr von 2 Stunden vorge-
Mediuindosicrung aus dem Dosiergefäß 21 in die nommen, indem der Medienfluß zu dem Dosiergefäß
Zyklonkolonne 10 in gleichmäßigen Zcilabständcn, 21 auf 250 ml/Sld. eingestellt wurde. Die Iktricbs-
d. h. alle 6,5 Stunden bei einer Pumpleislung von Volumina, d.h. 5(K) ml Medium und 500 ml Kultur,
1 ö 17 /40
blieben unverändert. Nach 24 Stunden, d. h. nach zwölf Kreisläufen, wurden von Hand Überleitungen
in das Verarbeitungsgefäß 2 zur Analyse der phasengleichen
Kulturen vorgenommen. Die Analysen aufeinanderfolgender Kreisläufe zeigten, daß durch
Wiederholung eines gleichbleibenden Gangs über den Kreislauf Phasengleichheit erreicht worden war; dies
ist aus der nachstehenden Tabelle 11 ersichtlich. Es
wurde kontinuierlicher Betrieb bei dieser neuen Rate über mehrere Wochen aufrechterhalten,,bevor weitere
Änderungen auf andere Betriebsräten vorgenommen wurden, um phasenglcichcs Wachstum bei anderen
Kreislaufzeiten herbeizuführen. Diese Betriebsdurchführungen sind in der nachstehenden Tabelle I zusammengefaßt.
Tabelle Γ
Änderungen der Kreislaufzeit — Anpassungsperioden für phasengleiche Kultur
Kreislaufzeit | Mediumfkiß | Stabilisiert nach | (b) |
(a) | Kreisläufe | ||
Stunden | ml/Std. | Stunden | 12 |
2,0 | 250 | 24 | 11 |
ν 2;5 | 200 | . 24 | 11 |
4,2 | 120 | 48 | 11 |
6,5 | 77 | 72 | 9 |
8.3 | 60 | 72 |
II. Analysen der phascngleichen Kultur
25 ml der Kultur wurde in aseptischer Weise aus der Kolonne 10 des Aufzuclitgcfäßes 1 mittels des
Probenehmers 11 b' abgezogen, und aliquote Teile dieses Materials wurden unmittelbar anschließend für
verschiedene Analysen verwendet:
(a) 1 ml wurde mit destilliertem Wasser verdünnt, und hiermit wurde eine indirekte Bestimmung des
Trockengewichts an Zellen durch spcktrophotometrische Bestimmung der optischen Dichte der Zellsuspension
vorgenommen; die Werte wurden in üblicher Weise zu einer Eichkurve in Beziehung gesetzt.
Ein mit dieser verdünnten Zellsuspchsion befeuchteter Objektträger wurde zur Bestimmung der Morphologie
der Zellen durch Photomikroskopie unter Verwendung eines Zciß-Pholomikroskops benutzt.
Für direkte Zählungen der Zellen unter dem Mikroskop wurden Reihenverdünnungen unter Verwendung
von 1 ml in einer Reihe von Rohren mit einem Inhalt von 9 ml destilliertem Wasser vorge:
nommen; diese wurden in der üblichen Weise gezählt, (b) 20 ml Kultur wurden zur Extraktion der Zellen
nach Methoden, wie sie nachstehend erläutert sind, benutzt. Weiter wurden in der nachstehend beschriebenen
Weise direkte Bestimmungen des Zclltrockengewichts an Hand voii gewaschenen Zellen vorgenommen.
EineAnzahl von Proben, gewöhnlich zwischen acht und zwölf, aber meistens neun oder zehn, wurden im
Verlauf eines Kreislaufs analysiert: die Ergebnisse zeigen die Folge von Änderungen im Verlauf des
Kreislaufs. Der Wachstumsfortschritl wurde (a) durch Untersuchung des Zcllwachslums im Verlauf des
"Kreislaufs und (b) durch Untersuchung der Art der Änderungen in den Zellen im Verlauf des Kreislaufs
verfolgt.
a) Das Zellwachslum in der Kultur wurde durch Messungen der Zellmassc (indirekte und direkte
Werte für das Trockengewicht an Zellen) im Verlauf des Kreislaufs und durch direkte Zählungen am Anfang
und am Ende des Kreislaufs, d. h. von Proben, die unmittelbar nach und unmittelbar vor aufeinanderfolgenden
Dosierungen genommen wurden, bestimmt. Die Ergebnisse zeigen, wie aus den nachstehenden
Tabellen II, III und IV ersichtlich ist, daß eine Verdoppelung während der Zeitspanne des
Kreislaufs stattfindet und daß sich diese bei jedem Kreislauf wiederholt; dies geht sowohl aus der Zunahme
der Zellmassc als auch aus der Anzahl an Zellen hervor.
Zeitlicher Ablauf des phasengleichen Wachstums
Wachstum ausgedrückt als optische dichte in einer Verdünnung 2/25 bei 600 ηψ in 45minutigen Zeilabständen
über den Kreislauf; Glucosemedium (N-begrenzt); Krauslaufdauer 6,5 Stunden
Datum | Zeit | Kreis | 0 | 1 | 2 | I | 3 | 'robe | 4 ·, | 5 | 6 ■ | 0,71, | 8 |
lauf | _. | 0,44 | 0,47 | '0,50 | 0,54 | 0,65 | 0,69 | 0,72 | 0J6 | ||||
19/11 | 8:30 | 18 | 0,43 | 0,45 | 0,48 | 0,51 | 0,55 | 0,65 | 0,69 | 0,72 | 0,76 | ||
20/11 | 10:30 | 22 | 0,44 | 0,46 | 0,48 | 0,52 | 0,55 | 0,66 | 0,68 | 0,72 | 0,75 | ||
21/11 | 12:35 | 26 | 0,43 | 0,45 | 0.47 | 0,53 | 0,54 | 0,66 | 0,68 | 0,75 | |||
22/11 | 14:35 | 30 | 0" | -..Vt | IV2 | 2V4 | 3 | 33/4 .. | 4,5 | 6 | |||
Zeitpunkt (Stunden) | |||||||||||||
Tabelle III Phasengleiches Wachstum — Änderung des Zelltrockengewichts* im Verlauf des Kreislaufs
2,0 . Kreislaufzeit (Stunden)
3,25 I 6,50 I 3,25
3,25 I 6,50 I 3,25
4,25
Beginn des Kreislaufs
Ende des Kreislaufs ..
Ende des Kreislaufs ..
.0,20 0,39 0,30
0,56
0,56
Glucose
0,43
0,82
0,82
0,24
0,42
0,42
0,33
0,60
0,60
Medium
* Wachstum bestimm! a!s optische Dichte'in einer Verdünnung von 1A.., bei 6(X) nvi.
Glycerin
309 614/21
17 18
T-h»lh IV Kreislaufs traten in verschiedenen Hauptgruppen der
Zellstotrwcchselprodukle Änderungen auf, welche für
Phasengleiches Wachstum - Glycerinmedium den Stoffwechsel der Zelle charakteristisch sind. Dies
•-■(4,25 Stunden.Kreislauf) __ waren folgende:
Anzahl an Zellen (0 Ninhydrin-positive Verbindungen (d.h. Amino-
ZU-Beginn des Kreislaufs 234 säuren usw.).
am Ende des Kreislaufs 446 (|j) Verbindungen, die Ultraviolett bei 260 mji ab-
■ sorbieren (d. h. Nucleotide usw.).
Untersuchungen der Änderung des Erscheinungs- io (iü) p-Nitranilin-positive Verbindungen (d.h. pheno-
bildes der Zellen im Verlauf des Kreislaufs zeigten, jisehe Säuren usw.).
daß sich zu jedem Zeitpunkt des Kreislaufs eine (iv) Verbindungen, die mit alkalischem Silbernitrat
überwiegende Menge der Zellen (70 bis 80%) im reagieren (d.h. Zucker und reduzierende Sub-
gleichcn Wachstunisstadium befanden. Dies" ist aus stanzen usw.). .
der Fig. 2 ersichtlich. Bei Durchführung des Vcr- 15 (v) Phosphatverbindungen (d.h. Phosphate usw.).
fahrens in einem größeren technischen Maßslab ist
ein phasengleiches Wachstum von 80 bis 90% er- In Fig. .2 sind typische Änderungen, die bei
reicht worden. Festsloffkomponenten während des phasengleichen
Die Verdoppelung des Zellwachstums und die Wachstums auftraten, dargestellt, und zwar an Hand
Änderungen der Morphologie der Zellen wurden in 20 der Änderungen, die bezüglich der Gesamtfettsäuren
Beziehung gebracht zu dem Stoffwechsel im Verlauf und der Änderung der prozentualen Fettsäurezusam-
des Kreislaufs, und zwar durch Anwendung verschie- menselzung, bestimmt durch Gas-Flüssigkeits-Chro-
dener chemischer Analysen der Zellen, die zu ver- matographie, beobachtet wurden,
schiedenen Zeitpunkten im Verlauf des Kreislaufs- 2. Änderungen des Stoffwechsels in Abhängigkeit
vorgenommen wurden. 25 von der Wachstumsgeschwindigkeit: Diese wurden
b) Insbesondere wurden folgende Untersuchungen ermittelt durch quantitative Gas-Flüssigkeits-Chrovorgenommen:
Deoxyribonucleinsäure (DNA), Ribo- matographie der Aminosäuregemische, die aus den
maleinsäure (RNA) und Protein — als Kenngrößen Zellen von phasengleichen Kulturen extrahiert wurmakromolekularer
Bestandteile; Aminosäuren, Nu- den, welche bei unterschiedlichen Kreislaufzeilen
cleotide (als Materialien, die bei 260 ηΐμ absorbieren), 30 wuchsen. Die Fig. 3 A und 3 B zeigen von oben nach
Fettstoffe (lipids) und andere Substanzen — als Stoff- unten die erzielten Ergebnisse bei Anwendung von
Wechselzwischenprodukte. Die Stoffe der letztgenann- Zellen, die in regelmäßige*!! Zeitabständen (d.h.
ten Klasse, die Verbindungen geringerer Molekular- 30 Minuten bzw. 90 Minuten) von phasengleichen
größe umfassen und aus dem weiten Bereich des Kulturen geerntet wurden, welche auf dem gleichen
Zellstoffwechsels herrühren, wurden als emplind- 35 Medium unter übereinstimmenden Wachstumsbedinlicherc
Indikatoren der StoH'wechseländerung gewählt, gungen aber bei verschiedenen Wachstumsgeschwin-
und sie wurden, da sie Analysen leichler zugänglich digkeiten (d. h. 2 bzw. 6,5 Stunden) wuchsen. In der
sind, intensiver uniersucht. Die Komponenten wurden Zeichnung sind die Chromatogramme der Analysen
nach herkömmlichen Arbeitsweisen auf der Grund- angegeben; die Flächen unter den entsprechenden
lage von Papier-, Dünnschicht- und Gas-Flüssigkcits- 40 Spitzen stellen ein quantitatives Maß für die von den
Chromatographie bestimmt, und zwar nach Extrak- Spitzen gekennzeichneten verschiedenen Komponention
aus den.Zellen durch Lösungsmittelextraktion ten dar. Es traten qualitative und quantitative Än-
und Membranfiltration. derungen in den Gemischen ein, die bei den beiden
Da die Zellen auf einem chemisch definierten · Kulturen unterschiedlich waren.
Medium aufgezogen wurden, das keine von Glucose 45 3. Änderungen des Stoffwechsels bei unterschied-
oder Glycerin verschiedenen vorgebildeten organi- liehen Medien: Diese wurden ebenfalls durch quantischen
Substrate enthielt, handelte es sich bei allen tative Gas-Flüssigkeits-Chromatographie der Aminoaus
den Zellen ausgezogenen Stoifwechselkomponen- säuren bestimmt, die aus phasengleichen Kulturen
ten um echte Stoffwechselprodukte der Zelle und extrahiert wurden, welche mit der gleichen Wachsnicht
um irgendwelche Produkte, die durch Transport 50 tumsgeschwindigkeil und übereinstimmenden Bedin-
und Durchdringung von extrazellulären Komponen- gungen, aber auf unterschiedlichen Medien wuchsen,
ten in der Zelle konzentriert worden sind. Fig. 4 zeigt von oben nach unten die Chromato-
Nachstehend sind die unter Anwendung dieser gramme, die von Proben erhalten wurden, welche in
Methoden erzielten Ergebnisse, welche für das Bei- 90minutigen Abständen entnommen wurden; es hanspiel
von Bedeutung sind, zusammengefaßt: 55 delt sich um Reihenextrakte von Zellen, .die in
phasengleicher Kultur mit einer Kreislaufzeit von
Ergebnisse 6,5 Stunden in einem Medium aufgezogen wurden,
in dem die. Glucose durch Glycerin ersetzt worden
1. Änderung der Stoffwechselprodukte während war (auf Basis gleichen Kohlenstoffgehalts); im
des Zellkreislaufs, d. h. der Kreislaufspanne einer 60 übrigen stimmten jedoch die Wachstumsbedingungen
phasengleichen Kultur oder der Spanne zwischen völlig mit denen überein, die für die Versuche gemäß
Dosierungen in dem Aufzuchtgefäß 1: den Fig. 3 A und 3 B Anwendung fanden. Ein Ver-
Bei phasengleichem Wachsen von C. utilis auf dem gleich der analogen Fig. 3 B und 4 zeigt, daß quali-
Glucosemedium mit einer Kreislaufzeit von 4 Stunden tative und quantitative Änderungen des~Aminosäure-
15 Minuten und Probenahme in Zeitabständen von 65 gemisches, und demgemäß des Zellstoffwechsels, bei
30 Minuten ergaben sich Extrakte aus den Zellen, die ' unterschiedlichen Medien eintraten.
bei Papierchromatographie nach der zweidimensio- Die Ergebnisse der vorstehenden Ziffern ,1, 2 und 3
nalen Methode fünf Folgen ergaben. Während des zeigen, daß sich der ZellstofTwechsel im Verlauf des
Zellkreislaufs ändert und daß dies von der Wachstumsgeschwindigkeit, der Zusammensetzung des Mediums oder der Umgebung abhängig ist.
Weiter ist aus den quantitativen Gaschromatogrammen der vorstehenden Fig. 3 und 4 ersichtlich, daß
sich die verschiedenen Komponenten einer Stoffgruppe im Verlauf des Kreislaufs ändern und große
Unterschiede untereinander zeigen.
Diese Änderungen können durch eine systematische und methodische Zusammenstellung der Ergebnisse
von Reihenanaiysen während des Kreislaufs erfaßt werden, so daß Punkte optimaler Ausbeute (beispielsweise
in bezug auf die im Kreislauf verstrichene Zeitspanne) für die nachfolgende Benutzung beim Ernten
spezifischer Produkte ermittelt und zusammengestellt werden können.
Eine oberflächliche Prüfung der Fig. 3 B zeigt beispielsweise, daß Alanin aus dem Aminosäuregemisch
von Zellen, die. sich in phasengleichem Wachstum unter den Bedingungen dieser Ausführungsform
des Verfahrens befinden, zu dem Zeitpunkt, der der zweiten Probe "von oben entspricht,
d. h. 90 Minuten nach der Dosierung, in maximaler Ausbeute geerntet werden kann. -
.;i Tabelle V .... ■ ' : V
Ergebnisse von phasengleichem Wachstum; Glyceriiimedium; Kreislauf 4,25 Stunden
30 | Zeitpunkt im Kreislauf, Minuten | 90 | 120 | 150 | 180 | 210 | |
0 | 0,36 | 60 | 0,41 | 0,45 | 0,43 | - 0,50 | 0,53 |
0,33 | 2,10 | 0,39 | 2,50 | 2,75 | 3,00 | •3,14 | 3,80 |
1,88 | 49,0 | 2,38 | 32,0 | 32,0 | 39,0 | 53,5 | 58,-5 |
75,5 | 0,09 | 46,0 | 0,11 | 0,17 | .0,15 | 0,20. | 0,16 |
0,09 | -0,10 | ||||||
240 I 255
Optische Dichte (2/25) bei 600 ηημ .. :.
Trockengewicht, mg/ml
ges. Amino-Ninhydrin, °/0 Durchlässigkeit
UV 260 πιμ — Optische Dichte 1-ml-Zelle..
Optische Dichte (2/25) bei 600 πΐμ.
SW ....
ges. Amino-Ninhydrin als % T bei 570 ιτιμ.
SW
RNA (Orcinol) als °/0 T 670/380 πιμ.
SW.J....
DNA (Diphenylamin) als % T 600 πιμ
SW ...-' .,..
Protein (Folin) mg/ml
* Wert als ein Drittel Siedewasserkonzentration.
SW: Siedewasserextraktionsmethode. FT: Einfrier-Auftaü-Extraktionsmethode..
0,57.1 3,60 j
68,5 1 0,10
Zeitpunkt im Kreislauf, Minuten
50 I 100 ! · . 150
200
0,33 .0,33
69
47 '
38/66 45/66
4.3 66
0,78 0,39
0,39
0,39
36 '■■'
39
39
4/66
31/60
31/60
48
59 ,
59 ,
*0,98
0,44
. Ο-44
. Ο-44
34
23
23
19/42
15/45
15/45
64
62
62
1,02
0,49 0,49
42" 25
23/50 10/38
60 61
1,37
0,54 . 0,54
·■■ 25. ' .35
■·■ 50/73 ■ · 54/76
... 64
2,00
Wenngleich Amiriosäüregemische vorstehend als Beispiele herangezogen wurden, . gilt dasselbe für
andere Stoffgruppen. Dies geht aus der Tabelle V hervor. Die Tabelle V zeigt die Ergebnisse, die bei
Anwendung des vorstehend angegebenen Glycerinmediums mit der C. utilis-Zellkultur bei einer Kreislaufzeit
von 4 Stunden und 15 Minuten erhalten wurden. Die in der Tabelle V angegebenen empirischen
Gesamtwerte von verschiedenen Zellbestandteilen zeigen quantitative Änderungen, weiche die qualitativen
Änderungen widerspiegeln. In dem nachstehenden Abschnitt 4 ist als weiteres Beispiel, das sich auf
Nucleotidbestandteile bezieht, gezeigt, wie die Gewinnung
oder Ernte spezifischer Produkte erreicht
werden kann. ... :.. \
4. In dem vorstehend angegebenen Nährmedium wurden die 30 g/l Glucose durch 30 g/l Glycerin ersetzt;
Zellen von einer phasengleichen Kultur (4 Stunden 15 Minuten Kreislauf zeit) wurden bei 0" C mit
1,5 n-Perchlorsäure extrahiert, nachdem sie kalt.mit
-destilliertem Wasser gewaschen und ihre Fettstoffe durch Isopropanol entfernt worden waren. Das Filtral
wurde in eine Dowex-50-Säule eingeführt, die nach der Methode von Schlenk und. DePalma, J. Biol.
Chem., 229, S. 1037, 1051 (1957), >
bereitet worden war. Nach Eluierung der Nucleotide mit In · H2SO4
wurde gewaschen, bis der Ausfluß keine nennenswerte
Ablesung bei 256 ηΐμ. ergab. Die nachfolgende Chromatographie,
der Extrakte, unter; Anwendung eines
Lösungsmittelsystems aus Äthanol, Wasser und Essigsäure (Volumenverhältnis; 65 : 32.: 1) ergab, eine Stelle
von Rf 3^2, sichtbar, mit Ultraviolettlicht bei,260 mu
- und mit Ninhydrin. Offensichtlich handelte es sich um die Verbindung, die von Schlenk und DePalma
als S-Adenosylmethionin identifiziert worden war; aus den in der Tabelle VI angegebenen Weiten geht hervor,
daß sie kurz nach der Mitte· des Kreislaufs in maximaler Menge vorlag. .:
21 22
Tabelle VI
Phasengleiches Wachstum — Gehalt an S-Adenosylmethionin
Phasengleiches Wachstum — Gehalt an S-Adenosylmethionin
Zeitpunkt im Kreislauf, Minuten 0 I 30 I 60 I 90 1 120 i 150 180 I 210 j 240 i 255
Optische Dichte (2/25), 600 ηψ .......
1 n-H2SO4 Eluat, optische Dichte 256 ηιμ* ..
In-H2SO4 Waschflüssigkeit, optische Dichte
In-H2SO4 Waschflüssigkeit, optische Dichte
256 ΐημ
On-H2SO4 Eluat, 256 ΐημ**
*) Nucleotidfraktion.
**) S-Adenosylmethionin-Fraktion.
**) S-Adenosylmethionin-Fraktion.
0,35
0,09
0,09
0,02
0,08
0,08
0,43
0,10
0,10
0,02
0,10
0,10
0,46
0,11
0,11
0,01
0,11
0,11
0,48
0,17
0,17
0,01
0.12
0.12
0,51
0,15
0,15
0,01
0,15
0,15
0,54
0,21
0,21
0,58
0,16
0,16
0,01 1 0,02
0,12 ! 0,08
0,12 ! 0,08
0,63
0,11
0,11
0,01
0,08
0,08
III. Unterschiede und Beziehungen zwischen
regellosen und phasengleichen Kulturen
regellosen und phasengleichen Kulturen
Es ist von Bedeutung und zeigt die erfindungsgemäß erzielten Vorteile besonders deutlich, wenn
man die nach dem Verfahren gemäß der Erfindung mit den phasengleichen Kulturen erzielten Ergebnisse
mit den Ergebnissen vergleicht, die bei entsprechen-_ den, nach den herkömmlichen kontinuierlichen Arbeitswcisen
erzeugten Kulturen, d. h. Kulturen der gleichen Wachstumsgcschwindigkeit, aber regelloser
Besiedlung von Zellen sämtlicher Entwicklungsstadien, erhalten werden.
Bei den phasengleichen Kulturen ergeben eindimcnsionale
Papicrchromatogramme der Aminosäuren (oder anderer Stoffgruppen) im Verlauf des
Kreislaufs einen Gang der Spektrumsänderung, der sieb in jedem Kreislauf wiederholt. Wenn man jedoch
die Extraktreihen eines Kreislaufs vereinigt, erhält man eine Mittelung oder einen mittleren Bestand
über den Kreislauf, der ein gemitteltes Spektrum ergibt, das für diesen Kreislauf charakteristisch ist.
Da eine phascngleiche Zellkultur nur im Verlauf mehrerer Kreisläufe regellos wird, ist die bei Vo1II-cndung
des Verarbeitungskrcislaufes in dem Verarbeitungsteil der Vorrichtung erzeugte Zellkultur
noch in einem phasengleichen Zustand, und sie kann daher auch mit den gleichen Vorteilen während eines
weiteren Zellkreislaufs, d. h. eines Nachkreislaufs, analysiert und untersucht werden, und es können erwünschte
StoiTwcchselprodukte während dieses Nachkrcislaufs geerntet werden. Jedoch ist das Nähr-'
-medium am Ende des Verarbeitungskreislaufs hinsichtlich mindestens einem der Nährstoffe, z. B. hinsichtlich
der Stickstoff- oder Kohlenstoffquclle, im wesentlichen erschöpft, da die Zellkultur in dem
Verarbcitungskrcislauf genauso-wie in dem Phasenkreislauf
eine Wachstumsgeschwindigkeit angenommen hat, die einem Aufbrauch der Gesamtmenge
dieses Nährstoffs entspricht; dies bedeutet gewöhnlich, daß die Zellkultur den Nährstoff, der in der
begrenzenden Geringstmenge anwesend ist, ganz aufgebraucht hat. Die Zellkultur, in der sich die Anzahl
der Zellen verdoppelt hat und in der die Zellen exponentiell wachsen, befindet sich also am Ende des
Verarbeitungskreislaufs in einem verarmten oder ausgelaugten Nährmedium, in dem sie während des
Nachkreislaufs sich entwickeln' und wachsen muß. Ein solches weiteres Wachstum oder eine solche Entwicklung
der Zellen kann daher nur auf Kosten der nicht erschöpften Nährstoifc, die in dem Nährmediuni
zurückgeblieben sind, und der von den Zdlen gebildeten
extrazellularen und intrazellularen Reserven erfolgen, und demgemäß wird eine unterschiedliche
Art von Wachstum eintreten.. Demgemäß handelt es sictfalso bei dem in den Zellen während der Verarbeitungs-
und Aufzuchtkreisläufe auftretenden Stoffwechsel um einen solchen des Wachstums, d.h.
des primären Wachstums, während es sich bei dem Stoffwechsel im Nachkreislauf um einen Stoffwechsel
der Entwicklung, d. h. eines sekundären Wachstums, handelt.
Gemäß einer weiteren Ausführungsform der vorliegenden Arbeitsweise wiederholt man demgemäß
die Aufzucht, Teilung und Nährmediumzugabc mehrmals, führt bei jeder Teilung die weiteren Wiederholungen
mit einer Hälfte der Zellkultur durch und läßt die andere Hälfte ihren Kreislauf vollenden und
zu einem weiteren Wachstum in einen Nachkreislauf eintreten.
Bei Anwendung dieser Ausführungsform def Erfindung ist es möglich, die Nachkreislauf-Wachstumsentwicklung der Zellkultur gewerblich auszunutzen
und/oder zu untersuchen, und zwar unter Anwendung phascngleichcr Zellen, deren Wachstumsgeschwindigkeil
bei einem vorherbestimmten Wert gehalten wurde. Dies ermöglicht eine ganz wesentliche Verbesserung
hinsichtlich maximaler Stoffwechselproduktkonzentrationsschwankungcn
im Vergleich zu den bekannten Arbeitsmethoden der herkömmlichen satzweisen und kontinuierlichen Verfahren mit regelloser Zellvcrteilung,
vermeidet die Notwendigkeit von Temperaturänderungen und äußeren Zwangsmaßnahmen wie
Fitlration, Abtrennung, Wiedersuspendierung und ähnlichen Behandlungen. Natürlich können aber gewünschtcnfalls
auch derartige zusätzliche Regelgrößen der Regelung durch das Nährmittel über-'
lagert werden, um die Konzentration an dem gewünschten Stoffwechselprodukt auf einen Höchstwert
zu bringen.
Wie bereits dargelegt wurde, wird das Wachstum der Zellkultur in den Aufzucht- und Verarbeitungs-.
krcisläufen in erster Linie durch Begrenzung mindestens eines der anwesenden Nährstoffe, z. B. der
Stickstoff- oder Kohlensloffquellc, geregelt, wobei die anderen Nährstoffe in nichtbegrenzenden (überschüssigen)
Konzentrationen anwesend sind. Die Menge der nichlerschöpften Nährstoffe in dem Nährmedium
zu Beginn des Nachkrcislaufs hängt demgemäß von der Menge dieser Nährstoffe ab, die ursprünglich
in dem bei den Phasen- und Verarbeitungskreisläufen verwendeten frischen Nährmedium anwesend
waren, und hierdurch wird die in dem Nachkreislauf eintretende Entwicklung gesteuert. Hieraus
folgi, daß die Entwicklung der Zeilen in dem Nach-
kreislauf durch die Mengen der nichtbegrenzenden Nährstoffe in dem frischen Nährmedium, das in den
Phasen- und Verarbeitungskreisläufen zur Anwendung kommt, in gewissem Maße geregelt werden
kann. Es können jedoch auch die Mengen der nichtbegrenzenden Nährstoffe in dem Nährmedium während
des Verarbeitungskreislaufs ohne Änderung der Wachstumsgeschwindigkeit der Zellen in diesem
Kreislauf gesteigert werden, indem man weitere Mengen dieser nichtbegrenzenden Nährstoffe zu irgendeinem
Zeitpunkt während des Verarbeitungskreislaufs, je nach experimenteller Zweckmäßigkeit, und insbesondere
unmittelbar vor dem Beginn des Nachkreislaufs zusetzt. Diese Zugaben können satzweise
oder kontinuierlich erfolgen, ganz wie das gewünscht wird. ■-.-■■■
In dieser Weise können systematische Änderungen der Mengen der nicht begrenzenden Nährstoffe in dem
Nährmedium vorgenommen werden, während die Menge des begrenzenden Nährstoffs als der bestimmende
Faktor, der das Wachstum der Zellen während ihres primären Wachsens in den Aufzucht- und Verarbeitungskreisläufen
steuert, konstant gehalten wird. Beispielsweise kann die Menge der Stickstoffquelle
in dem Nährmedium bei einem kohlenstoffbegrenzten Wachstum geändert werden, oder umgekehrt. Auf
diesem Wege können Änderungen oder Abwandlungen der Entwicklung der Zellen in der Kultur in dem
Nachkreislauf, der einem konstanten primären Wachstumszyklus folgt, vorgenommen werden. Dabei können
jedoch dem Nachkreislauf nach Wunsch auch
andere systematische Änderungen oder Zwangseinflüsse überlagert werden, z. B. eine Temperaturänderung.
Außerdem können wiederum Änderungen des primären Wachstums in den Aufzucht- und Verarbeitungskreisläufen
vorgenommen werden, beispielsweise durch Änderung der Verdoppelungszeit, Wahl anderer
wachstumsbegrenzender Faktoren oder Änderung physikalischer Bestimmungsgrößen, wie der Temperatur,
so daß eine Änderung der Entwicklung der
ίο Zellen in dem Nachkreislauf bei Zellen verfolgt und
ausgenutzt werden kann, die bei unterschiedlichen Wachstumsgeschwindigkeiten und unterschiedlichen
Umgebungsbedingungen gewachsen sind.
Die Ausführungsform der Erfindung mit einer Nachkreislaufentwicklung ist besonders vorteilhaft
anwendbar auf das Ernten und die Gewinnung von Stoffwechselprodukten aus Zellkulturen, welche die
gewünschten Stoffwechselprodukte nur im sekundären -Wachstum, d.h. in >
dem auf das primäre Wachstum folgenden Nachkreislauf, erzeugen. So ist beispielsweise bei der Erzeugung von Penicillin in einer Satzkultur
das Penicillin ein sekundäres Stoffwechselprodukt, das in der stationären Stufe erzeugt wird,
die dem primären Wachstum folgt. Bei dem phasen-
25- gleichen Kulturverfahren gemäß der Erfindung kann
dieses Stoffwechselprodukt in dem Nachkreislauf zum experimentell bestimmten optimalen Zeitpunkt geerntet werden, und infolge des phasengleichen Wachstums
der Zellkultur wird eine weit höhere Ausbeute erhalten als bei dem satzweisen Kulturverfahren mit
regellosem Zellwachstum.
Hierzu 2 Blatt Zeichnungen
309 614/21
Claims (1)
1. Verfahren zur Züchtung von Zellkulturen, deren Zellen weitgehend in der gleichen Hntwicklungsphase
vorliegen, dadurch gekennzeichnet,
daß man
a) die Zellkultur mit vorherbestimmter Wachstumsgeschwindigkeit in einer solchen Menge
eines Nühnnediums aufzieht, die nur ausreicht, daß die Zellen bei dieser Wachstumsgeschwindigkeit ihren Zcllkreislauf einmal
vollenden können,
b) die Zellkultur zu ihrer Verdoppelungszeit in zwei gleiche Hälften teilt und
c) der Zellkultur vor der Teilung oder jeder der beiden Hälften so viel weiteres Nährmcdium
zusetzt, daß jede der Hälften gerade genügend Nährmedium für eine Vollendung des Zellkreislaufs der darin befindlichen Zellen
enthält.
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US43773465A | 1965-03-08 | 1965-03-08 | |
US43773465 | 1965-03-08 | ||
DEC0038396 | 1966-03-04 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE1517746A1 DE1517746A1 (de) | 1970-04-16 |
DE1517746C true DE1517746C (de) | 1973-04-05 |
Family
ID=
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE69305163T2 (de) | Reaktor mit veraenderlichem volumen und zellkulturverfahren | |
EP3548895B1 (de) | Aufbereitung lebendiger, mikrobieller proben und mikroorganismen für anschliessende massenspektrometrische messung und auswertung | |
EP1152053A2 (de) | Verfahren und Vorrichtung zur Herstellung eines vaskularisierten bioartifiziellen Gewebes | |
DE2144462B2 (de) | Verfahren zum Herstellen folien artigen Materials fur Rauchzwecke | |
EP2490522B1 (de) | Verfahren zur erzeugung von grundstoffen aus aquatischen pflanzen, sowie grundstoffe selbst | |
DE2537277A1 (de) | Verfahren zur industriellen zuechtung von schwefelbakterien, die dabei erhaltenen produkte und sie enthaltende mittel | |
DE1517746C (de) | Verfahren zur Züchtung von Zellkulturen sowie Vorrichtung zu seiner Durchführung | |
AT507918B1 (de) | Verfahren und vorrichtung zur hefevitalisierung im zuge eines brauprozesses | |
DE2212092B2 (de) | Verfahren zur Herstellung von 14 C-markierten Verbindungen | |
DE60013592T2 (de) | Zellkulturvorrichtung und -verfahren mit mehrfachanwendungen | |
DE1517746B (de) | Verfahren zur Züchtung von Zellkulturen sowie Vorrichtung zu seiner Durchführung | |
DE3127654C2 (de) | Automatisiertes Verfahren zur Selektion von Mikroorganismen | |
DE2365769C3 (de) | Kulturmedium für Wachstum und Wachstumanzeige von Candida Albicans | |
Jayaprakash et al. | In vitro pollen germination of some wild species of pigeonpea (Cajanus cajan) using PGM droplet technique | |
DE2603588A1 (de) | Verfahren zur herstellung von alkaloiden durch in vitro-zuechtung von zellen von vinca minor l. | |
DE2827484C2 (de) | ||
WO2003029444A2 (de) | Verfahren und vorrichtung zur gewinnung von sekundären pflanzeninhaltsstoffen | |
DE1517746A1 (de) | Verfahren und Vorrichtung zur Herstellung und Vervielfaeltigung von und zur Gewinnung von Stoffwechselprodukten aus phasengleichen Zellkulturen | |
DE1810486A1 (de) | Verfahren und Vorrichtung zur Herstellung und Vervielfaeltigung von und zur Gewinnung von Stoffwechselprodukten aus phasengleichen Zellkulturen | |
EP0075904A2 (de) | Verfahren zur Züchtung von humanen Fibroblasten und fibroblastenartigen Zellen | |
Hell | Anwendung ausgewählter histochemischer Reaktionen zum Studium der Binde-und Stützgewebsdifferenzierung am unentkalkten Knochenschnitt | |
DE2533437A1 (de) | Verfahren zur ernaehrung von in vitro- kulturen von pflanzenzellen mit kohlenstoff | |
Moesghlin | Klinische und experimentelle Untersuchungen über den Wirkungsmechanismus des Urethans | |
DE3882528T2 (de) | Verfahren zur Produktion von PflanzensubstanzEN. | |
EP0098826A1 (de) | Verfahren zur chargenweisen Herstellung von Essig |