DE102004043449A1

DE102004043449A1 - Verfahren zur Herstellung von Bandscheibenzelltransplantaten und deren Anwendung als Transplantationsmaterial

Info

Publication number: DE102004043449A1
Application number: DE200410043449
Authority: DE
Inventors: Olivera Josimovic-Alasevic; Jeannette Libera; Vilma Siodla; Hans-Jörg MEISEL
Original assignee: Co Don AG
Current assignee: CoDon De GmbH
Priority date: 2004-09-06
Filing date: 2004-09-06
Publication date: 2006-03-09
Anticipated expiration: 2024-09-07
Also published as: DE102004043449B4

Abstract

Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur in vitro Herstellung von Bandscheibenknorpelzelltransplantaten aus erkranktem Bandscheibengewebe von Patienten und dessen Anwendung als Transplantationsmaterial zur Behandlung von erkrankten Bandscheiben. Die Erfindung betrifft weiterhin dreidimensionales, vitales und mechanisch stabiles Bandscheibenknorpelgewebe und dessen Verwendung als Transplantationsmaterial zur Behandlung von erkrankten Bandscheiben sowie zur Testung von Wirkstoffen. Gegenstand der Erfindung sind weiterhin die hergestellten Bandscheibenzelltransplantate und die hergestellten Bandscheibenknorpelgewebe und therapeutische Zubereitungen, z. B. Injektionslösungen, die dieses Gewebe und die Zelltransplantate beinhalten.

Description

Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur in vitro Herstellung von Bandscheibenknorpelzelltransplantaten aus erkranktem Bandscheibengewebe von Patienten und dessen Anwendung als Transplantationsmaterial zur Behandlung von erkrankten Bandscheiben. Die Erfindung betrifft weiterhin dreidimensionales, vitales und mechanisch stabiles Bandscheibenknorpelgewebe und dessen Verwendung als Transplantationsmaterial zur Behandlung von erkrankten Bandscheiben sowie zur Testung von Wirkstoffen. Gegenstand der Erfindung sind weiterhin die hergestellten Bandscheibenzelltransplantate und die hergestellten Bandscheibenknorpelgewebe und therapeutische Zubereitungen, z.B. Injektionslösungen, die dieses Gewebe und die Zelltransplantate beinhalten.
Die Degeneration der Bandscheiben wird während der Alterung oder durch Trauma ausgelöst und induziert akute und chronische Schmerzen und Instabilitäten in der Wirbelsäule. Mehr als 300.000 Patienten in Europa leiden an Bandscheibenerkrankungen. Ungefähr 70 % der Patienten, die einen Bandscheibenvorfall erleiden und mittels Discectomie behahndelt werden, leiden weiterhin an Rückenschmerzen. Anhaltende starke Schmerzen machen bei 10 % dieser Patienten eine weitere operative Behandlung notwendig (Yorimitsu et al, 2001). Grund dafür ist die durch die Operation bedingte Abnahme der Bandscheibenhöhe, die damit verbundene Erhöhung der lokalen Belastund des Bandscheibengewebes (Brinckmann und Grootenboer, 1991) und vor allem die fehlende Heilung und Regeneration des zerstörten und entfernten Bandscheibengewebes (Lundon und Bolton, 2001, Meakin et al., 2001). Mit fortschreitender Zeit resultiert diese Instabilität der betroffenen Bandscheibe in degenerativen Veränderungen angrenzender Bandscheiben, wodurch weitere operative Eingriffe und im schlimmsten Fall eine Fusion der Wirbelkörper oder das Einsetzen einer Prothese notwendig werden. Deshalb ist die biologische Reparatur bzw. Regeneration der Bandscheibe die Zukunft für die Behandlung degenerierter Bandscheiben.
Eine bekannte Methode zur biologischen Regeneration eines Gewebes ist die Knorpelzelltransplantation unter Verwendung von körpereigenen Zellen, die zur Behandlung von Gelenksknorpeldefekten angewandt wird. Dabei wird das Potential der Gelenksknorpelzellen genutzt, um in vivo nach Transplantation der Zellen neues Gewebe aufzubauen. Dazu wird dem Patienten eine Gelenksknorpelbiopsie entnommen, daraus Knorpelzellen isoliert, mittels Zellkultivierung vermehrt und anschließend dem Patienten im Bereich des Gewebedefektes, z.B. durch Einspritzen, transplantiert. Dort bilden sie neues Gewebe und füllen somit den Defekt vollständig auf. Durch diese Verfahren wird erreicht, dass nach Applikation eines Zelltransplantates im Körper Gewebe aufgebaut wird. Prinzipiell ist diese Methodik für die Behandlung der Bandscheibendegeneration nicht anwendbar, da den Patienten aus ethischen Gründen kein Ausgangsmaterial aus einer intakten benachbarten Bandscheibe entnommen werden kann und krankes Gewebe a priori nicht verwendbar ist.
Erste Ansätze zum biologischen Ersatz der Bandscheibe gehen von der Verwendung von gesundem Bandscheibengewebe aus. So beschreiben Handley ( US 6,080,579 ) und Ferree ( US 6,340,369 B1 ) die Verwendung von normalem Bandscheibengewebe für die Isolation von Bandscheibenzellen und die Kombination dieser Zellen mit einem bioresorbierbaren Träger. Auch viele wissenschaftliche Arbeiten haben die Verwendung von normalem Bandscheibengewebe als Grundlage: Okuma et al., 2000, Gruber et al., 2000, Chelberg et al., 1995. Jedoch kann eine gesunde Bandscheibe eines Patienten nicht als Gewebequelle zur Behandlung einer anderen Bandscheibe dienen, da die Gewebeentfernung zu einer Zerstörung, zur Degeneration und somit zum Verlust der Funktion dieser Bandscheibe führt.
Ein anderer Ansatz ist die Verwendung von degeneriertem Nukleus Pulposus Gewebe, welches aus dem Inneren einer degenerierten Bandscheibe entfernt und aufgearbeitet wird. Bei diesem operativen Eingriff wird die ohnehin schon degenerierte und zerstörte Bandscheibe noch weiter zerstört. Die Aufarbeitung des Gewebes wird dabei zum einen vorgeschlagen als Dehydrierung ( US 6,648,918 ) oder die Kombination von darin befindlichen Zellen mit einem Trägermaterial ( US 6,569,442 ; US2001/0020476 A1) und die anschliessende Transplantation zurück in diese degenerierten Bandscheiben. Allerdings enthält das dehydrierte Gewebe keine lebenden Zellen und stellt somit keine Methode der biologischen Regeneration dar. Die vorgeschlagene Kombination der Nukleus Zellen oder anderer Zellen mit einem Trägermaterial stellt ebenfalls keine reine biologische Methode dar und bedingt die Verwendung eines geeigneten Trägermaterials, welches zum Beispiel biomechanisch geeignet sein muss, welches im selben Masse wie neues Gewebe aufgebaut werden soll abgebaut wird, welches die Bildung neuen Gewebes nicht behindern darf oder zum Beispiel keine immunologische Reaktion aufgrund der auf jeden Fall verwendeten synthetischen, allogenen oder xenogenen Materialien auslösen darf.
Eine weitere Behandlungsmöglichkeit wäre die Verwendung von Bandscheiben anderer Patienten, wobei es sich somit um eine allogene Transplantation handelt (6,344,058; Keith DK et al., 2003). Hierbei stellt jedoch die immunologische Reaktion ein Problem dar und durch die alleinige Einbringung einer Spenderbandscheibe wird wahrscheinlich auch keine biologische Regeneration der betroffenen Bandscheibe ausgelöst.
Aus den genannten Problemen bestehen deshalb für die Behandlung von degenerierten Bandscheiben und zur Bandscheiberegeneration die allgemeinen Ziele darin: medizinisch und ethisch vertretbares Ausgangsgewebe bzw. -zellprobe zu verwenden, keine anderen oder die betroffene, erkrankte Bandscheibe des Patienten zu zerstören, nur patienteneigene Materialien zu verwenden (autologe Therapie), optimale Zellisolationsbedingungen und – kultivierungsbedingungen zur Vermehrung der Bandscheiben zekllen und anschliessender Bandscheibenmatrixbildung zu finden, zur Vermeidung von Immunreaktionen auf Trägermaterialien zu verzichten. Diese Probleme sind lösbar durch die Transplantation eines speziellen autologen Zelltransplantates oder durch Transplantation eines außerhalb des Körpers vorgefertigten 3-dimensionalen Bandscheibenknorpelgewebes.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung war es deshalb, Verfahren zur Herstellung von Bandscheibenknorpelzelltransplantaten und stabilem vitalen Bandscheibenknorpelgewebe bereitzustellen, die zur autologen Transplantation, zum schnellen Wiederaufbau und der Erhaltung der Funktion der Bandscheibe geeignet sind. Dabei ist es essentiell, dass das Ausgangsmaterial zur Herstellung der Zelltransplantate medizinisch und ethisch vertretbar entnommen werden kann sowie, dass die autolog kultivierten Bandscheibenzellen ihre Eigenschaften über den Zeitraum von der Entnahme bis zur Transplantation nicht verändern und eine hohe Proliferations- und Differenzierungskapazität aufweisen.
Überraschend konnte gezeigt werden, dass als Ausgangsmaterial erkranktes Bandscheibengewebe verwendet werden kann. Bisher wurde angenommen, dass es nicht möglich ist, aus degeneriertem Gewebe, adulte Zellen in ausreichender Anzahl zu isolieren, die vital sind, ausreichend proliferieren und anschließend auch noch in der Lage sind, gewebespezifisch zu differenzieren und Bandscheibengewebe aufzubauen, da in Geweben, die einer Degeneration unterliegen die gewebespezifische Zellen ihre Eigenschaften im Hinblick auf die Matrixsynthese verändern und auch absterben und auch durch andere Zellen mit anderen gewebe-unspezifischen Eigenschaften ersetzt werden.
Überraschenderweise konnte jedoch aus vorgefallenem degenerierten Bandscheibengewebe eine ausreichende Anzahl an vitalen Zellen isoliert werden. Das vorgefallene degenerierte Bandscheibengewebe besteht aus Bandscheibenteilen des Anulus Fibrosus und Nucleus Pulposus, wobei die aus beiden Gewebebereichen isolierten Zellen (Anulus Fibrosus Zellen und Nucleus Pulposus Zellen) unter den gegebenen autologen Kulturbedingungen dann auch noch proliferieren und gewebespezifisch besonders spezifisch differenzieren. Damit sind diese Gemischzelltransplantate für eine zell-basierte Therapie zur Wiederherstellung der Funktion der Bandscheibe geeignet.
Es ist somit erstmals ein Verfahren beschrieben, durch welches besondere autologe Gemisch-Bandscheibenzelltransplantate hergestellt werden können, die nach Transplantation in eine geschädigte/erkrankte Bandscheibe durch den Aufbau neuen Bandscheibengewebes die Erhaltung der Bandscheibe und damit die Wiederherstellung der neurologischen und mechanischen Funktion der Wirbelsäule bei einer Bandscheibenerkrankung oder nach einem Bandscheibenvorfall erlaubt.
Auch bei fortgeschrittener Degeneration der Bandscheibe, d.h. auch bei Degeneration oder traumatischer Schädigung der äußeren Schicht der Bandscheibe (Anulus Fibrosus), ist durch die vorliegende Erfindung die Wiederherstellung und Erhaltung der neurologischen, biologischen und mechanischen Funktion der Bandscheibe ermöglicht, wenn aus vorgefallenen, degenerierten Bandscheiben Gemisch-Gewebezellen isoliert werden, die folgend zu einem autologen 3-dimensionalen Gewebe ohne die Verwendung von Trägermatieralien kultiviert werden.
Bei der Behandlung mit den erfindungsgemäßen Bandscheibenzelltransplantaten ist es vorteilhaft, wenn vor der Transplantation die äußere Hülle der Bandscheibe, der Anulus Fibrosus, der durch den Austritt des Bandscheibengewebes geschädigt wurde, in der Art heilt, dass keine Flüssigkeit, wie die hergestellten Zelltransplantate, aus dem Inneren der Bandscheibe mehr auslaufen kann. Dieser Zeitraum ist patientenabhängig. Während dieses Zeitraumes werden die Bandscheibenzelltransplantate hergestellt, wobei die Gemisch-Bandscheibenzellen während der Vermehung in der Zellkultur ihre gewebe-spezifischen Eigenschaften im Hinblick auf deren Differenzierungspotential und damit den Erfolg der Transplantation erhalten. Im Gegensatz dazu wird dieses Potential bei der getrennten Kultivierung der Anulus Fibrosus und Nucleus Pulposus Zellen verringert, wobei nach Überführung in die 3-dimensionale Umgebung einige Bandscheiben-spezifische Marker nicht exprimiert werden. Deshalb sind nur die Gemisch-Kulturen besonders geeignet Bandscheibengewebe nach deren Transplantation in eine degenerierte Bandscheibe aufzubauen.
Außerdem sollen die in vitro hergestellten Zell- und Gewebetransplantate keine immunologischen Reaktionen im Organismus, der das Transplantat erhält, auslösen. Es wurde überraschender Weise gefunden, dass diese erfindungsgemäß autolog hergestellten Zellen und Gewebe keine immunologische Reaktionen auslösen.
Das entnommene, patienteneigene erkrankte Bandscheibengewebe kann unterschiedlich weiter bearbeitet werden:

(a) Aus den Biopsien werden die Gemisch-Bandscheibenzellen mittels enzymatischem Verdau des Gewebes, durch Auswandern oder durch Reagenzien, die Zielzellen erkennen, mit üblichen Methoden isoliert. Diese Zellen werden dann nur nur unter Zusatz von körpereigenem Serum und ohne Zusatz von exogenen wachstumsfördernden Verbindungen und ohne den Zusatz von Antibiotika und mit üblichem Kulturmedium in Zellkulturgefäßen kultiviert und so lange vermehrt, bis eine ausreichende Menge an Zellen zur Verfügung steht. Diese Zeit wird so kurz wie möglich gehalten, um ihre phänotypischen Eigenschaften nicht zu verändern. Nach ausreichender Vermehrung der Zellen werden diese geerntet und das Zelltransplantat bestehend aus einer Bandscheibenzellsuspension ist für therapeutische Verwendungen bereitgestellt. Erfindungsgemäß werden die isolierten Bandscheibenzellen im Gemisch verwendet, d.h. die Zellen werden nicht nach Anulus Fibrosus und Nucleus Pulposus Zellen, deren Gewebeanteile im vorgefallenen Bandscheibengewebe enthalten sind, aufgetrennt und getrennt oder nur als Einzelzellart kultiviert. Genau unter diesen Gemisch-Bedingungen wird eine spätere verbesserte Bandscheiben-spezifische Differenzierung der Zellen erreicht (siehe Bearbeitung b)). Diese autologe Gemisch-Kultiverungstechnik zur Vermehrung der Bandscheibenzellen ermöglicht somit erstmals eine Bandscheiben-spezifische Differenzierung dieser so kultivierten Zellen, nachdem diese in eine 3-dimensionale Umgebung überführt werden.
(b) In einem weiteren Verfahren werden die isolierten Bandscheibenzellen vorkultiviert und ohne Passagierung der Zellen nur kurzzeitig vermehrt. Danach werden die vorkultivierten Zellen geerntet und eingefroren und bis zum Zeitpunkt der Transplantation tiefgefroren gelagert. Vor der Transplantation werden die Zellen aufgetaut und bis zum Erreichen einer ausreichenden Zellzahl mit autologem Serum und in herkömmlichem Zellkulturmedium weiterkultiviert. Nach ausreichender Vermehrung der Zellen werden diese geerntet und das Zelltransplantat bestehend aus einer Bandscheibenzellsuspension bereitgestellt. Überraschenderweise wurde festgestellt, dass die Bandscheibenzellen durch das Einfrieren und Auftauen nicht ihre spezifischen Eigenschaften im Hinblick auf die Synthese von spezifischen Marker- und Matrixproteinen verlieren.
(c) In einem weiteren bevorzugten Verfahren wird als Ausgangsmaterial ebenfalls patienteneigenes erkranktes Bandscheibengewebe verwendet. Aus den Biopsien werden die gewebeaufbauenden Zellen aus dem Anulus Fibrosus und Nucleus Pulposus mittels enzymatischem Verdau des Gewebes, durch Auswandern oder durch Reagenzien, die Zielzellen erkennen, mit üblichen Methoden isoliert. Diese Gemisch-Zellen werden dann unter autologen Bedingungen und mit üblichem Kulturmedium zunächst in Monolayer kultiviert bis eine ausreichende Zellzahl erreicht ist und anschließend in Zellkulturgefäße mit hydrophober Oberfläche und sich verjüngendem Boden überführt und dort so lange in Suspension kultiviert, bis ein dreidimensionales Zellaggregat entsteht, das zu mindestens 40 Volumen%, vorzugsweise mindestens 60 Volumen% bis maximal 99 Volumen%, extrazelluläre, de novo synthetisierte Matrix (ECM) beinhaltet, in welche differenzierte Zellen eingebettet sind. Der Fachmann kann diese Werte durch Entnahme kleinerer Proben bestimmen. Das entstandene Zellaggregat weist einen äußeren Bereich auf, in welchem proliferations- und migrationsfähige Zellen vorhanden sind (siehe auch 1).

Erfindungsgemäß werden die isolierten Bandscheibenzellen im Gemisch verwendet, d.h. die Zellen werden nicht nach Anulus Fibrosus und Nucleus Pulposus Zellen aufgetrennt und getrennt oder nur als Einzelzellart kultiviert. Genau unter diesen Gemisch-Bedingungen wird in der 3-dimensionalen Kultur und damit bei der Bildung der 3-dimensionalen Bandscheibengewebe die Banscheiben-spezifische Differenzierung der Gemischzellen gefördert, wobei die Expression von Bandscheiben-spezifischen Markern nur in diesen Kulturen erreicht werden kann und die Bildung der 3-dimensionalen Bandscheibengewebe bei Verwendung der Gemischkulturen gefördert ist. Diese autologe Gemisch- Kultiverungstechnik ermöglicht somit erstmals die Herstellung und Verwendung eines Bandscheiben-spezifischen Gewebetransplantates, welches autolog aus degenerierem, vorgefallenen Bandscheibengewebe hergestellt wurde.
Die Gemisch-Bandscheibenzellen, die aus erkranktem Bandscheibengewebe isoliert werden und aus denen autologe 3-dimensionale Bandscheibenzellaggregate hergestellt werden, so dass die entnommenen Zellen in einem de novo synthetisierten Gewebe integriert sind, überleben auch mit fortschreitender Kultivierungsdauer, d. h. die Zellen im Inneren der Aggregate sterben nicht ab. Mit fortschreitender Kultivierungsdauer differenzieren die Zellen im Inneren der Aggregate aus und es bilden sich Bandscheibenknorpelgewebe, die aus ECM, differenzierten Zellen und einer Proliferationszone am Rand bestehen. Während der Differenzierung in der autologen Zellkultur wird der Abstand der aggregierten Zellen durch Bildung der gewebespezifischen Matrix immer größer. Es entsteht im Inneren der in vitro hergestellten Bandscheibengewebe eine Gewebehistologie, die dem natürlichen Gewebe sehr ähnlich ist. Während der weiteren Herstellung der Bandscheibenknorpelgewebe bildet sich die "Proliferationszone" am Rand selbiger aus. Diese Zone hat den unschätzbaren Vorteil, dass nach Einbringen der so entstandenen Bandscheibenknorpelgewebe in degenerierte Bandscheiben, die in dieser Randzone befindlichen Zellen in der Lage sind, auszuwandern und aktiv den Kontakt zum umliegenden Gewebe herzustellen bzw. eine Integration des in vitro gebildeten Bandscheibenknorpelgewebes in seine Umgebung ermöglichen. Damit sind die hergestellten gewebespezifischen Zellaggregate hervorragend zur Behandlung von degenerierten Bandscheiben und zum Neuaufbau von Bandscheibengewebes in vivo geeignet.
Aufgrund der biomechanischen Belastung der Bandscheiben direkt nach Behandlung sowie dem Ziel die Bandscheibe in ihrer Höhe gleich mit der Transplantation des Bandscheibenknorpelgewebes wiederherzustellen, kann es von Vorteil sein, bereits größere und mechanisch stabile Gewebestücke zu transplantieren. Für diesen Fall werden mindestens zwei, besser aber mehr der erhaltenen in vitro Bandscheibenknorpelgewebe fusioniert, indem sie gemeinsam unter den gleichen Bedingungen und in den gleichen Kulturgefäßen wie oben beschrieben bis zur gewünschten Größe weiterkultiviert werden (siehe auch 4).
Als Zellkulturmedium kann sowohl für die Suspensions- als auch für die Monolayerkultur übliches Medium, z. B. Dulbecco's MEM, unter Zusatz von Serum, verwendet werden. Vorzugsweise wird DMEM und Hams im Verhältnis 1:1 eingesetzt. Um jedoch immunologische Reaktionen des Patienten auf das in vitro hergestellte Gewebe zu vermeiden, wird als Serum vorzugsweise autologes Serum des Patienten eingesetzt. Es ist auch möglich xenogenes oder allogenes Serum zu verwenden.
Dem Kulturmedium werden erfindungsgemäß keine Antibiotika, Fungistatika oder andere Hilfsstoffe zugesetzt. Es hat sich gezeigt, dass nur die autologe oder allogene Kultivierung der Zellen und Zellaggregate sowie die Kultivierung ohne Antibiotika und Fungistatika eine unbeeinflußte Proliferation sowie Differenzierung der Zellen in der Monolayerkultur und eine ungestörte Bildung der spezifischen Matrix in den Zellaggregaten ermöglicht. Weiterhin sind durch den Verzicht von Zusatzstoffen während der Herstellung nach Einbringen des in vitro hergestellten Gewebes in den menschlichen und auch tierischen Organismus immunologische Reaktionen ausgeschlossen.
Die Größe der hergestellten Bandscheibengewebe hängt von der eingebrachten Zellzahl pro Volumen Kulturmedium ab. Werden beispielsweise 1 × 10⁷ Zellen in 300 μl Kulturmedium eingebracht, so entstehen innerhalb von 1 Woche dreidimensionale Bandscheibenzellaggregate von ca. 500–700 μm Durchmesser. Die andere Möglichkeit ist die in vitro-Fusion der kleinen Zellaggregate zu größeren – wie oben beschrieben – und das Einbringen dieser in die Bandscheibe. Vorzugsweise werden erfindungsgemäß zwischen 1 x 10⁴ und 1 × 10⁷ Zellen in 300 μl Kulturmedium zur Herstellung der kleinen Zellaggregate verwendet, besonders bevorzugt 1 x 10⁵ Zellen. Die nach einigen Tagen gebildeten in vitro Bandscheibengewebe werden dann für mindestens 2–4 Wochen in Abhängigkeit von der Zellart und den patientenspezifischen Charakteristika in dem geeigneten Kulturmedium kultiviert, um die Ausbildung der gewebespezifischen Matrix zu induzieren. Im besonderen Falle können dann einzelne in vitro Bandscheibengewebe ab ca. einer Woche Kultivierung fusioniert werden, um die Größe des Gewebestückes zu erhöhen.
Als Zellkulturgefäße kommen für die erfindungsgemäße Kultivierung in Suspension bevorzugt solche mit hydrophober, also adhäsionsverhindernder Oberfläche, in Betracht, wie z. B. Polystyrol oder Teflon. Zellkulturgefäße mit nichthydrophober Oberfläche können durch Beschichten mit Agar oder Agarose hydrophobiert werden. Weitere Zusätze sind nicht erforderlich. Vorzugsweise dienen als Zellkulturgefäße Napfplatten. Dabei können für die Herstellung der kleinen Zellaggregate beispielsweise 96-Napfplatten und für die Herstellung der fusionierten Aggregate 24-Napfplatten Verwendung finden.
Gegenstand der Erfindung sind auch therapeutische Zubereitungen, die die erfindungsgemäßen Bandscheibenzelltransplantate und das Bandscheibenknorpelgewebe umfassen, z.B. Injektionslösungen.
Gegenstand der Erfindung ist auch die Verwendung des erfindungsgemäßen Bandscheibenknorpelgewebe zur Testung von Wirkstoffen, die z. B. die Bildung und Differenzierung von Matrix und Zellen beeinflussen. Dazu werden die Bandscheibenzellaggregate erfindungsgemäß hergestellt und in unterschiedlichen Reifestadien werden die zu testenden Medikamente hinzugegeben und unterschiedlichste Parameter der in vitro Bandscheibengewebeherstellung und -reifung charakterisiert. Diese Tests sind im Vergleich zu den herkömmlichen Medikamententests an Tieren oder Tumorzellsystemen durch die Verwendung von nur autologem Material patientenspezifisch und ermöglichen eine individuelle Diagnose.
Nachfolgend soll die Erfindung an Ausführungsbeispielen näher erklärt werden, ohne sie darauf einzuschränken.
Ausführungsbeispiele
Beispiel 1: Herstellung von Bandscheibenzelltransplantaten
Aus dem erkrankten Bandscheibengewebe werden mittels enzymatischen Verdaus durch Inkubation mit Kollagenaselösung die Bandscheibenknorpelzellen aus dem Anulus Fibrosus und Nucleus Pulposus isoliert. Nach Trennung der isolierten Zellen vom unverdauten Gewebe, werden diese als Gemischzellpopulationen in Zellkulturflaschen überführt und unter Zugabe von DMEM/ Hams F12 Kulturmedium (1/1) und 10% autologem Serum des Patienten bei 37°C und 5% CO₂ inkubiert. Zweimal wöchentlich wird ein Mediumwechsel durchgeführt. Nach Erreichen des konfluenten Stadiums wird die Zellayer mit physiologischer Kochsalzlösung gewaschen und mittels Trypsin von der Zellkulturoberfläche geerntet. Nach einer weiteren Waschung werden die Bandscheibenzellen in physiologische Kochsalzlösung überführt und zur Transplantation zur Verfügung gestellt.
In einem in vitro Model konnte das Differenzierungspotential der im Zelltransplantat enthaltenen Bandscheibenzellen aufgezeigt werden. Es werden bandscheibenspezifische Matrixproteine und Markerproteine exprimiert (3) und damit eine bandscheibenspezifische Gewebestruktur aufgebaut.
Beispiel 2: Transplantation von Bandscheibenknorpelzellen
Die in Beispiel 1 hergestellten Bandscheibenzelltransplantate (mind. 1.000 Zellen, max. 100 Millionen Zellen) vorzugsweise ca. 1 Million Bandscheibenknorpelzellen wurden in physiologischer Kochsalzlösung aufgenommen und in die erkrankte Bandscheibe eingespritzt. Es wurde unter anderem festgestellt, dass in der behandelten Bandscheibe der Wassergehalt wieder ansteigt, sowie die Höhe des Zwischenwirbelraumes aufrechterhalten werden kann, was beides auf die durch die Bandscheibenknorpelzellen synthetisierten Matrixproteine zurückzuführen ist.
Die erfindungsgemäße in vitro hergestellte Bandscheibenzelltransplantate werden von den Patienten angenommen, gewährleisten eine schnelle Integration der proliferationsfähigen und migrationsfähigen Zellen sowie eine Regeneration des Bandscheibengewebes durch die Differenzierungsfähigkeit der enthaltenen Zellen. Somit erlauben die Bandscheibenzelltransplantate den schnellen Wiederaufbau von Bandscheibengewebe, eine schnelle Genesung der Patienten und die Wiederherstellung der Bandscheibenfunktion.
Beispiel 3: in vitro Herstellung von Bandscheibenknorpelgewebe
Aus dem vorgefallenen Bandscheibengewebe werden mittels enzymatischen Verdaus durch Inkubation mit Kollagenaselösung die Bandscheibenknorpelzellen aus dem Anulus Fibrosus und Nucleus Pulposus isoliert. Nach Trennung der isolierten Zellen vom unverdauten Gewebe, werden diese als Gemischkultur in Zellkulturflaschen überführt und unter Zugabe von DMEM/Hams F12 Kulturmedium (1/1) und 10% autologem Serum des Patienten bei 37°C und 5% CO₂ inkubiert. Zweimal wöchentlich wird ein Mediumwechsel durchgeführt. Nach Erreichen des konfluenten Stadiums wird die Zellayer mit physiologischer Kochsalzlösung gewaschen und mittels Trypsin von der Zellkulturoberfläche geerntet. Nach einer weiteren Waschung werden 1 × 10⁵ Zellen in je ein Zellkulturgefäß überführt, das mit Agarose beschichtet ist. Nach einem Tag haben sich die ersten Zellen in Aggegaten angeordnet. Diese Aggregate werden regelmäßig mit frischem Medium versorgt und für mindestens 2 Wochen kultiviert.
Den Aufbau der erhaltenen Bandscheibenknorpelgewebe verdeutlicht die mikroskopische Aufnahme in 1, die den Querschnitt eines erfindungsgemäß hergestellten Bandscheibengewebes mit M als Zone verminderter Proliferation und Bildung von gewebespezifischen Matrixproteinen und P als äußere Proliferationszone zeigt.
In diesen in vitro Bandscheibengeweben wurde die Expression und Deposition von bandscheibenspezifischen Matrixbestandteile und regulatorische Proteine wie Aggrecan (3a), hyalin-spezifische Proteoglykane (3b), Kollagen Typ I (3c), Kollagen Typ II (3d), Kollagen Typ III (3e) und 5100 (3f) nachgewiesen. Diese sind Bestandteile des nativen Bandscheibenknorpelgewebes in vivo und stellen die wichtigsten Strukturproteine dar, die für die Funktion des Bandscheibenknorpels von entscheidender Bedeutung sind.
Es war überraschend, dass die aus dem erkrankten Bandscheibengewebe isolierten Bandscheibenzellen, wenn diese als Gemisch aus Anulus Fibrosus und Nucleus Pulposus kultiviert werden, eine hohe Proliferationskapazität (2) sowie ein sehr hohes Differenzierungspotential zur Bildung bandscheibenspezifischer Matrixproteine und regulatorischer Proteine aufweisen und ihre Eigenschaften durch das Prozedere des Einfrierens und Auftauens erhalten werden können.
Beispiel 4: Transplantation von Bandscheibenknorpelgewebe
Das in Beispiel 3 hergestellte Bandscheibenknorpelgewebe (ca. 10 bis 1000 Gewebestückchen aus je 1·10⁵ Zellen) vorzugsweise 100 Gewebestückchen wurden in physiologischer Kochsalzlösung aufgenommen und in den Zwischenwirbelraum von erkrankten oder geschädigten Bandscheiben eingespritzt. Das erfindungsgemäß in vitro hergestellte Bandscheibenknorpelgewebe wird von den Patienten angenommen und gewährleistet neben der Erfüllung der mechanischen Funktion des hergestellten Gewebes die schnelle Integration der hergestellten Gewebestücke durch die proliferationsfähigen und migrationsfähigen Zellen in der äußeren Schicht der Aggregate sowie eine Regeneration des Bandscheibengewebes durch die Differenzierungsfähigkeit der enthaltenen Zellen. Somit erlaubt die Struktur und Funktion der Gewebestücke den schnellen Wiederaufbau von Bandscheibengewebe, eine schnelle Genesung der Patienten und die Wiederherstellung der Bandscheibenfunktion.
4 zeigt fünf fusionierende Bandscheibengewebe. Es ist zu sehen, dass die beiden Gewebekugeln aneinander haften und sozusagen verschmelzen, die Grenze zwischen den beiden Bandscheibengeweben ist nicht mehr zu erkennen. Nach längerer Kultivierungszeit fusionieren die Bandscheibengewebe vollständig und es entsteht ein größeres in vitro Gewebestück. Der Aufbau der so erhaltenen größeren Zellaggregate ist mit dem der zunächst erhaltenen in vitro Bandscheibengewebe identisch. Sie können bis zu maximal 99% ECM beinhalten und die im erhaltenen Gewebestück enthaltenen Zellen sind vital.

Claims

Verwendung von degeneriertem Bandscheibengewebe zur Herstellung eines therapeutischen Mittels zur Behandlung von Bandscheibendefekten.
Verwendung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass das degenerierte Bandscheibengewebe vorgefallenes degeneriertes Gewebe ist.
Verwendung nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, dass das isolierte Bandscheibengewebe, insbesondere Bandscheibenzellen, unter autologen Kultivierungsbedingungen nur unter Zusatz von patienteneigenem Serum im Zellkulturmedium vermehrt werden.
Verwendung nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die isolierten Bandscheibenzellen während der Vermehrung in einem Zellkulturmedium, das 1–20% autologen Serumzusatz enthält und dessen Verhältnis von aplha-MEM-Medium und HAM-F12-Medizum zwischen 1:1 beträgt, und bei 36.8–37°C, 5% Kohlendioxid Luftanteil und einer Luftfeuchte von 85–95% kultiviert sind und dadurch ihre Synthese von Matrixproteinen und Markerproteinen nicht verändern.
Verwendung nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die isolierten Bandscheibenzellen nach ihrer Vermehrung in Monolayer in einem Zellkulturmedium, das 1–20% autologen Serumzusatz enthält und dessen Verhältnis von aplha-MEM-Medium und HAM-F12-Medizum zwischen 1:1 beträgt, und bei 36.8–37°C, 5% Kohlendioxid Luftanteil und einer Luftfeuchte von 85–95% kultiviert und dadurch differenzierungsfähig sind und Matrixstrukturen bilden, die spezifische Bandscheibenmatrixproteine umfassen.
Verwendung nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die kultivierten Zellen aus eingefrorenem Material gewonnen werden.
Verwendung nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die isolierten Bandscheibenzellen nach deren Vermehrung in Monolayer in einer Lösung aus 10 % DMSO, 20 % Serum und 70 % Kulturmedium eingefroren und wieder aufgetaut werden können und so deren Eigenschaften im Hinblick auf die Synthese von spezifischen Matrixkomponenten und Markern nicht zu verändern.
Verwendung nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die isolierten Bandscheibenzellen nach deren Vermehrung in Monolayer die isolierten Bandscheibenzellen nach deren Vermehrung in Monolayer in einer Lösung aus 10 % DMSO, 20 % Serum und 70 % Kulturmedium eingefroren und wieder aufgetaut werden und so deren Eigenschaften im Hinblick auf die Synthese von spezifischen Matrixkomponenten und Markern nicht verändern und dass die Bandscheibenzellen nach dem Einfrieren und folgendem Auftauen Gewebestrukturen aufbauen, die aus Bandscheiben-spezifischen Matrixproteinen bestehen.
Verwendung nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass dass die isolierten, spezifisch vermehrten und ggf. spezifisch eingefrorenen und aufgetauten Bandscheibenzellen nach deren Transplantation im Körper eines Patienten Bandscheibengewebe in vitro aufbauen.
Verwendung nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die aus dem Bandscheibengewebe isolierten Zellen in einem Kulturgefäß mit hydrophober Oberfläche und sich verjüngendem Boden kultiviert und so dreidimensionale Zellaggregate erhalten werden.
Verfahren zur Herstellung von Bandscheibenzelltransplantaten, dadurch gekennzeichnet, dass aus vorgefallenem degeneriertem Bandscheibengewebe und/oder erkranktem Bandscheibengewebe, Bandscheibenzellen isoliert und unter Zusatz von körpereigenem Serum als dreidimensionalen Aggregate kultiviert und so Bandscheibenzelltransplantate erhalten werden.
Verfahren nach dem vorhergehenden Anspruch, dadurch gekennzeichnet, dass das Bandscheibengewebe nach kurzer Vorkultivierung eingefroren wird.
Verfahren nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die Bandscheibenknorpelzelltransplantate und in-vitro-Bandscheibenknorpelgewebe in Gegenwart von wachstumsfördernden Zusätzen kultiviert werden.
Bandscheibengeweberegenerationsmittel erhältlich dadurch, dass aus degeneriertem Bandscheibengewebe Zellen isoliert, kultiviert, geerntet und als Bandscheibenregenerationsmittel verwendet werden.
Mittel nach dem vorhergehenden Anspruch, dadurch gekennzeichnet, dass die Zellen nach kurzer Vorkultivierung eingefroren werden.
Mittel nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die Kultivierung im wesentlichen nur unter Zusatz von körpereigenem Serum erfolgt.
Mittel nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass das Mittel ein durch Kultivierung der Zellen in Kulturgefäßen mit hydrophober Oberfläche und sich verjüngendem Boden gewonnenes dreidimensionales Gewebe ist.
Mittel nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass mehrere Gewebe miteinander fusioniert sind.
Mittel nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass das Mittel ein Gemisch aus kultivierten Zellen und dem dreidimensionalem Gewebe ist.
Mittel nach einem der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass aus degeneriertem Bandscheibengewebe Zellen isoliert, kultiviert, geerntet und das Bandscheibenregenerationsmittel erhalten wird.
Verwendung der Mittel nach einem der Ansprüche 15–20 zur Testung von Wirkstoffen.
Verwendung der Mittel nach dem vorhergehenden Anspruch, dadurch gekennzeichnet, dass das Mittel mit den Wirkstoffen in Kontakt gebracht und die Bildung und Differenzierung des Mittels im Vergleich zu einem Mittel, welches nicht mit den Wirkstoffen in Kontakt gebracht wird, bestimmt wird.
Zelltherapeutische Zubereitungen umfassend Bandscheibenregenerationsmittel gemäß einem der Ansprüche 15 bis 20.