DE10024383A1 - Mit toxischen Substanzen beladene dendritische Zellen - Google Patents

Mit toxischen Substanzen beladene dendritische Zellen

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Abstract

Die Erfindung beschreibt mit toxischen Substanzen beladene dendritische Zellen, wobei die toxischen Substanzen ausgewählt sind aus dem Gift von Scolopendern der Gattungen Scolopendra und Hemiscolopendra, Schlangen der Gattungen Bitis und Naja, Spinnen der Gattungen Loxosceles, Sicarius und Pholcus sowie Skorpionen der Gattung Parabuthus und einer Kombination aus einem oder mehreren dieser Toxine.

Description

Die Erfindung betrifft mit toxischen Substanzen beladene dendritische Zellen, Verfahren zu ihrer Herstellung sowie die Verwendung dieser dendritischen Zellen zur Behandlung von Tumoren, insbesondere zur Therapie von Tumoren der Schleimhaut und der Haut.
Stand der Technik
Unter Hautkrebs versteht man an der Haut, seltener an der Schleimhaut vorkommende Tumore. Die bösartigen Tumore bezeichnet man als Hautcarzinome bzw. Melanome. Die Primärtumore sind in der Haut manifestiert und an der Hautoberfläche als pigmentierte Flächen zu erkennen (Veronesi U., Cascinelli N., Santinami M. (1987): Cutaneous Melanoma. Status of Knowledge and Future Perspective. London OrlandoSan Diego New York Austin Boston Sidney Tokyo Toronto: Academic Press). Um sie von Muttermalen, mit denen sie häufig auf Grund ihres Aussehens verwechselt werden, zu unterscheiden, ist eine Gewebeentnahme und in vielen Fällen Anzucht in Gewebekultur erforderlich. Das aggressivste unter den bekannten Neoplasien ist das maligne Melanom, das auch oft " Schwarzer Krebs" genannt wird. Ein Problem bei dieser Erkrankung betrifft seine extrem metastatische Ausbreitung, die vor keiner Organgrenze stoppt.
Die folgenden Therapien werden momentan bevorzugt:
Operative Entfernung
Das gängigste Verfahren stellt derzeit die operative Entfernung des Hautkrebses dar. Wegen der Tiefe bzw. der Streuung des Hautkrebses ist eine ausreichende Dissektion des Hautkrebses nicht möglich. Daher wird oftmals eine Kombination mit anderen Therapieformen versucht (Voigt H. (1996): 150 Fragen und Anworten zum malignen Melanom. Zuckerschwerdt Verlag, München).
Nachteile
Stationärer Aufenthalt und/oder Narkose, Wundheilung und Narbenbildung.
Strahlentherapie
Heutzutage wird die Strahlentherapie mit abnehmender Bedeutung bei Hautkrebs hauptsächlich nur noch zur Lymphknoten- und Hautkrebsmetastasenbehandlung eingesetzt. Die Bestrahlung erfolgt mit ionisierender Strahlung; üblicherweise verwendet man Elektronen-, Gamma-, Neutronen- oder Röntgenstrahlen (Zetkin/Schaldach: Lexikon der Medizin, 16. Auflage 1999, Seite 1922/1923 Ullstein Medical).
Nachteil der Bestrahlung ist, dass ähnlich wie bei der Chemotherapie eine räumliche Begrenzung nicht möglich ist. Durch die Strahlungshärte werden auch gesunde Zellen nachhaltig geschädigt, vor allem die DNA. Da Krebszellen sich meist schneller als gesunde Zellen teilen, werden die Krebszellen unter normalen Umständen bei der Strahlentherapie als erstes abgetötet. Allerdings besteht dabei die Gefahr eines Strahlenulkuses (Pschyrembel- Klinisches Wörterbuch 256, Auflage 1990, Seite 1602).
Chemotherapie
Bei der Chemotherapie gilt, dass vor allem metastasierende Melanome kaum chemoresponsiv sind. Eine Monotherapie mit Zytostatika ist in aller Regel nicht ausreichend, sodass vor allem Polychemotherapien angewendet werden. Es sind vor allem nachfolgende Substanzen, die eine Anwendung finden:
Dacarbazin (DTIC)
Cisplatin (CDDP)
Carboplatin (CBDCA)
Ifosfamid IFO)
Fotemustin
Bendamustin
CCNU
BCNU
Methyl-CCNU
Cyclophosphamid (CPA)
Vindesin (DVA bzw. VDS)
Vinblastin (VBL)
Vincristin (VCR)
Procarbazin (PBZ)
Mitomycin (MMC)
Die Anwendung dieser Substanzen erfolgt in den nachfolgenden Therapieprotokollen, welche die derzeit wirksamsten darstellen:
Bleomycin + Vincristin + CCNU + Dacarbazin (BOLD-Protokoll)
BCNU + Cisplatin + Dacarbazin + Tamoxifen (+ Interleukin-2/Interferon-alfa)
Cisplatin + Vinblastin + Bleomycin (CVB-Protokoll)
Cisplatin + Vindesin + Dacarbazin (CVD-Protokoll)
BCNU + Hydroxyurea + Dacarbazin (BHD-Protokoll)
Dacarbazin + Vincristin + BCNU (DVB-Protokoll)
Cisplatin + Ifosfamid
Fotemustin + Interferon-alfa
- Voigt H. (1996): 150 Fragen und Anworten zum malignen Melanom.
Zuckerschwerdt Verlag, München -
Neben den positiven Wirkungen gegen die genetisch defekten Zellen weisen die genannten Chemotherapien leider auch viele Nebenwirkungen und Nachteile auf.
Nachteile der Chemotherapie sind, dass diese auf Grund ihrer chemischen Struktur nur schwer gezielt einzusetzen sind; diese Zytostatika äusserst agressive Zellgifte sind, die neben Tumorgewebe auch im großen Maße gesundes Gewebe, einschließlich Leber- und Nierenzellen schädigen. Die auftretenden Nebenwirkungen, wie z. B. Haarausfall, Schwindel, Erbrechen, Magen-Darmblutungen, Kreislaufbeschwerden u. a., sind wegen der systemischen Ausbreitung der Zytostatika nur schwer abzuwägen (Deutsches Krebsforschungszentrum DKFZ Heidelberg - Focus 19/1995).
Diese zahlreichen, gefährlichen und unerwünschten Nebenwirkungen erklären sich vor allem aus der Regenerationshemmung schnell proliferierender Gewebe und betreffen insbesonders das blutbildende System, die Epithelien der Schleimhäute und der Gonaden sowie die Haut und Hautanhangsgebilde. Unter den lebensbedrohlichen Komplikationen stehen Infektionen an erster Stelle gefolgt von Blutungen. (Pschyrembel - Klinisches Wörterbuch 256. Auflage 1990, Seite 1866)
Zytokinbehandlung
Hauptsächlich versucht man hier die bislang nur für Indikationen von Kaposi-Sarkom und Haarzellleukämien zugelassenen Interferon-Therapien anzuwenden. Interferon gehört zu den aktiv gegen entartete Zellen wirksamen Zytokinen. Die Wirkweise basiert auf der Erkennung von Oberflächenproteinen von Krebszellen und deren Zerstörung. Zu den Nachteilen der Interferontherapie gehören Fieber, Anorexie-Nausea-Emeses-Syndrom, Abgeschlagenheit, Kopfdruck, Kopfschmerzen, Gelenkschmerzen, Schwindel, Leberenzymerhöhung, Pruritus, IFN-Antikörperbildung, Kreislauf und Blutdruckprobleme (DeVita jr. VT., Helman S., Rosenberg SA. (1991): Biologic Therapy of Cancer. Philadelphia: J. B. Lippincott Co.).
Antikörpertherapie
Neben der Interferontherapie setzt man bei den Immuntherapien bei der Behandlung vor allem auf den Einsatz von monoklonalen Antikörpern.
Dazu werden nach einem Verfahren von Köhler und Millstein gezüchtete Myelomzellen mit Nagerlymphozyten fusioniert, welche mit menschlichen antigenen Melanomzellmaterial bzw. Membranfraktionen aus Melanomzellen immunisiert wurden. Dabei entstehen in fast unbegrenzter Menge monoklonale Antikörper aus Melanomzellen. Die Antikörper werden dann injiziert und finden dann auf natürlichem Wege über Immunmodulatoren die Hautkrebszellen und zerstören diese. Nebenwirkungen sind nicht bekannt, da es sich um körpereigene Stoffe handelt, sodass auch keine Immunschockreaktionen auftreten. Der Nachteil bei dieser Therapieform ist jedoch die geringe Sensitivität auf Hautkrebszellen (Voigt H. (1996): 150 Fragen und Anworten zum malignen Melanom. Zuckerschwerdt Verlag, München/Ibelgaufts H. (1992): Lexikon Zytokine. Medikon München).
Therapie mit dendritischen Zellen
Seit ca. 1995 erforscht man intensiv die Möglichkeit des Einsatzes von körpereigenen dendritischen Zellen bei der Behandlung von Hautkrebs. Dazu werden aus Rückenmark- und/oder Blutstammzellen des Patienten dendritische Zellen in vitro gezüchtet, die dann, wenn sie einen Mindesttitter erreicht haben, dem Patienten wieder geimpft werden. Die dendritischen Zellen suchen und finden aktiv Tumorzellen und greifen diese mit zellzerstörenden Stoffen an. Hierbei ist der geringe Wirkungsgrad der Hauptnachteil, sodass man versucht, die dendritische Zelle mit körpereigenen menschlichen Zytokinen und/oder Peptiden (z. B. Anaphylatoxine C3a, C4a u. a.) zu beladen (Kirchner H., Kruse A., Neustock P., Rink L. (1994): Cytokine und Interferone. Spektrum Akademischer Verlag, Heidelberg). Leider reicht bei den gefundenen Stoffen die Spezivität oft nicht zur vollständigen Abtötung der Tumorzellen aus.
Aufgabe dieser Erfindung ist daher die Bereitstellung verbesserter Mittel für die Therapie von Tumorerkrankungen, die mittels dendritischer Zellen angreifbar sind.
Diese Aufgabe wird erfindungsgemäß durch die Beladung von dendritischen Zellen mit toxischen Substanzen erreicht, wobei die toxischen Substanzen aus dem Gift von Scolopendern der Gattungen Scolopendra und Hemiscolopendra, Schlangen der Gattungen Bitis und Naja, Spinnen der Gattungen Loxosceles, Sicarius und Pholcus sowie Skorpionen der Gattung Parabuthus und einer Kombination aus einem oder mehreren dieser Toxine ausgewählt sind.
Derart beladene dendritische Zellen sind zur Therapie von Tumorerkrankungen, insbesondere zur Therapie von Hautkrebs und Schleimhauttumoren, einsetzbar. Die dendritischen Zellen können als alleinige Therapie, aber auch als Begleittherapie ohne die Gefahr der Nachteile des derzeitigen Standes der Technik eingesetzt werden.
Nachfolgend wird die Erfindung näher beschrieben. Die Erfindung ist jedoch nicht auf die nachfolgende Beschreibung und die Ausführungsbeispiele beschränkt. Der Fachmann kann die Erfindung auf Grundlage der beiliegenden Patentansprüche unter Berücksichtigung der Beschreibung abwandeln, ohne den Schutzbereich der beiliegenden Ansprüche zu verlassen.
Die Beladung der dendritischen Zellen erfolgt mit einer und/oder mehreren toxischen Substanzen aus dem Gift von Skolopendern der Gattungen Scolopendra und/oder Hemiscolopendra, Schlangen der Gattungen Bitis und Naja, sowie Skorpionen der Gattung Parabuthus und/oder Spinnen der Gattung Loxosceles, Sicarius und Pholcus, in einer pharmazeutisch und therapeutisch wirksamen Menge. Es ist aber auch möglich, eine Kombination von mindestens zwei dieser toxischen Substanzen aus den Giften einzusetzen.
Das Gift der oben genannten Tiere enthält einen ganzen Cocktail von Verbindungen, wozu nicht nur Peptidtoxine gehören, sondern auch Toxine mit einer Amidogruppe, die jedoch keine Proteinstruktur aufweisen und beispielsweise ein Molekulargewicht von 30-55 kDa aufweisen. Weiterhin gehören zum Giftcocktail antagonistisch wirkende Substanzen, die eine räumliche und zeitliche kontrollierte Ausbreitung der vom Tier abgegebenen Gifte sicherstellen.
Bei den Toxinen handelt es sich bevorzugt um Peptidtoxine. Die Toxine weisen im allgemeinen nekrotische, cytotoxische und/oder apoptotische Eigenschaften auf. Die Toxine können durch an sich bekannte Verfahren aus dem Giftcocktail der Tiere isoliert werden. Da dies jedoch mühsam ist, hat sich erfindungsgemäß gezeigt, daß nach einer Fraktionierung des Giftcocktails auch einzelne, die Toxine enthaltenden Fraktionen zur Beladung der dendritischen Zellen einsetzbar sind. In diesen Fraktionen liegen die Toxine zusammen mit weiteren Substanzen vor. Da die Fraktionen jedoch so ausgewählt werden, daß sie insbesondere die zelltoxisch, apoptotisch und/oder nekrotisch wirkenden Substanzen enthalten, ist eine Aufreinigung der Toxine bis zur vollständigen Reinheit nicht zwingend notwendig. Falls dies jedoch erfolgt ist und beispielsweise auch die Struktur der Toxine bekannt ist, könnten diese nicht nur in isolierter, reiner Form, sondern auch in rekombinanter Form eingesetzt werden, wenn es sich um die Peptidtoxine handelt. Die Peptidtoxine besitzen im allgemeinen ein Molekulargewicht im Bereich von 50-350 kDa, bevorzugt ein Molekulargewicht von ca. 100 kDa. Die Toxine können auch synthetisch hergestellt werden, und es sind selbstverständlich auch Abwandlungen der in den genannten Tierarten vorhandenen und erfindungsgemäß zur Beladung der dendritischen Zellen eingesetzten Toxine möglich, also Derivate, die durch chemische Modifikation der Toxine erhalten wurden. Bei den Peptidtoxinen sind unter Derivate u. a. solche Toxine zu verstehen, bei denen eine oder mehrere Aminosäuren hinzugeführt, deletiert und/oder durch andere Aminosäuren ausgetauscht wurden, wobei natürlich jeweils die toxischen Eigenschaften erhalten bleiben. Es sei darauf hingewiesen, daß ein Toxin nicht nur cytotoxische, sondern auch nekrotische und/oder apoptotische Eigenschaften in sich vereinigen kann.
Die mit den toxischen Substanzen beladenen dendritischen Zellen können zur gezielten Therapie von Tumoren eingesetzt werden. Demzufolge weisen die Toxine zellzerstörende Eigenschaften auf. Da die dendritischen Zellen aktiv Tumorzellen suchen und finden und diese mit zellzerstörenden Stoffen angreifen, werden die toxischen Substanzen so ausgewählt, daß sie zellzerstörende, d. h. cytotoxische, nekrotische und/oder apoptotische Eigenschaften aufweisen. Gerade derartige Substanzen liegen in den Giftcocktails der im Anspruch 1 genannten Tiergattungen vor. Sie eignen sich deshalb in hervorragender Weise zur Therapie von Tumoren, insbesondere zur Therapie von Tumoren der Haut und der Schleimhäute. Es ist aber auch möglich, die derart beladenen dendritischen Zellen mit weiteren, für die Tumortherapie einsetzbaren Substanzen zu beladen, beispielsweise mit Cytokinen, Cytokin- Rezeptoren, Anaphylatoxinen, Interferonen, Antikörpern, Glykosiden usw.
Die Beladung erfolgt beispielsweise durch direkte Injektion der toxischen Substanzen in die Zelle, durch Inkubation der dendritischen Zellen mit den toxischen Substanzen oder durch Lipofektion. Ursprünglich handelte es sich hierbei um eine Technik zur Transformation von Zellen mit fremder DNA oder RNA. Effektivitätssteigerung wird dadurch erreicht, daß an Liposomen Antikörper, Proteine, Glykolipide u. a. geknüpft werden, wobei zielgerichtet die Interaktionen von Liposomen und Zelloberflächen beeinflußt werden. Dadurch können die Peptidtoxine oder Zytokine als "zelleigen" erkannt werden und bei den "normalen" Stoffwechselfunktionen in die dendritischen Zellen eingeschleust werden [Herder (1995): Lexikon der Biochemie und Molekularbiologie, Band 2. Spektrum Akademischer Verlag Heidelberg].
Ein weiteres Verfahren zur Beladung ist die Laser-Mikroinjektion. Dabei werden dendritische Zellen, die in einem die toxischen Substanzen enthaltenden Medium vorliegen, für kurze Zeit mit einem stark fokussierten Laserstrahl behandelt, so daß ein Loch in der Zellwand entsteht, durch welches das umgebende Medium in die Zelle eindringen kann. Die diesem Verfahren zugrunde liegende Technik der Mikromanipulation von Zellen oder Zellenverbänden ist bspw. in Schütze K. et al.; Nature Biotechnolgy, 16,8: 737-742 (1998), Schütze K. et al.; J. Cell. Mol. Biol., 44,5: 735-746 (1998), Böhm M. et al.; Americ. J. Pathology; 151,1: 63-67, Ponten F. et al.; Mutation Research Genomics, 382: 45-55 (1997), Bernsen M. et al.; Lab. Invest. 78: 1267-1273 (1998) oder Fink L. et al.; Nat. Medicine. 4,11: 1329-1333 (1998) beschrieben.
Bevorzugt ist es, wenn das Peptidtoxin, mit dem die dendritische Zelle beladen wird, und/oder die wahlweise weiteren enthaltenen Substanzen aus dem Gift der Skolopender- Hundertfüsserarten Scolopendra gigantea ssp., Hemiscolopendra spp., der Schlangenarten Bitis arietans (Puffotter), Bitis gabonica (Gabunotter), Bitis nasicornis (Nashornviper) und der kleineren Bitisarten B. atropos, B. caudalis, B. peringueyi und der Speikobraarten Naja melanoleuca, Naja pallida und Naja naja sputatrix, der Parabuthus-Skorpionarten Parabuthus transvallicus, Parabuthus granulosus, Parabuthus villosus, der Loxosceles-Spinnenarten Loxosceles laeta, Loxosceles spiniceps, Loxosceles bergen, Loxosceles parami, Loxosceles rufescens, Loxosceles reclusa, Loxosceles deserta, der Sechsaugenkrabbenspinnenarten Sicanus hahni, Sicarius albospinosus, Sicarius oweni, Sicarius testaceus, Sicanus argentinensis und/oder der Zitterspinnenarten Pholcus phalangioides, Pholcus opilionides, Pholcus spp. (RSA) und Pholcus spp. (Kuba) stammen, wobei es besonders bevorzugt ist, wenn das Peptidtoxin und/oder die wahlweise weiteren Substanzen aus dem Gift von Skolopendern, Bitis arietans und/oder Loxosceles spiniceps stammen. Dies hat den Vorteil, dass bei der Substanz die von der Natur vorgegebene haut- und/oder gewebezersetzende Wirkung ausgenutzt werden kann. Dabei ist bevorzugt, dass das Tiergiftrohgemisch aus männlichen und/oder weiblichen Skolopendern der Gattungen Scolopendra und Hemiscolopendra ab ca. 15 cm Körperlänge, männlichen und/oder weiblichen Schlangen der Gattungen Bitis und Naja, bevorzugt ab einer Körperlänge von 50 cm, weiblichen subadulten und/oder adulten Skorpionen der Gattung Parabuthus, und/oder aus weiblichen subadulten oder adulten Spinnen der Gattung Loxosceles und/oder Pholcus und/oder Sicarius gewonnen wird. Dies ist vorteilhaft, da weibliche Spinnentiere der Gattungen Parabuthus, Loxosceles, Pholcus und Sicarius mehr Gift produzieren als männliche Vertreter. Bei Skolopendern und Schlangen produzieren beide Geschlechter vergleichbare Giftquantitäten und Giftqualitäten. Es ist weiterhin bevorzugt, dass das Tiergiftrohgemisch durch manuelles Melken erhalten wird. Dies hat den Vorteil einer besonders schonenden Gewinnung des Tiergiftrohgemisches.
Bei dem erfindungsgemäßen Verfahren ist überdies bevorzugt, dass das Tiergiftrohgemisch vor der Fraktionierung homogenisiert wird, und es ist weiterhin bevorzugt, dass die Fraktionen vor der Weiterverarbeitung tiefgekühlt und weiter bevorzugt lyophilisiert werden. Die erfindungsgemäßen pharmazeutischen Beladungen der dendritischen Zellen eignen sich zur Verwendung in der Medizin. Die mit den pharmazeutisch wirksamen Substanzen beladenen dendritischen Zellen können erfindungsgemäß bevorzugt zur Behandlung von Hautkrebserkrankungen verwendet werden. Bevorzugt ist weiterhin die Verwendung eines Peptidtoxins aus dem Gift der Skolopender-Hundertfüsserarten Scolopendra gigantea ssp., Hemiscolopendra spp., der Schlangenarten Bitis arietans (Puffotter), Bitis gabonica (Gabunotter), Bitis nasicornis (Nashornviper) und der kleineren Bitisarten B. atropos, B. caudalis, B. peringueyi, und der Speikobraarten Naja melanoleuca, Naja pallida und Naja naja sputatrix, der Parabuthus-Skorpionarten Parabuthus transvallicus, Parabuthus granulosus, Parabuthus villosus, der Loxosceles-Spinnenarten Loxosceles laeta, Loxosceles spiniceps, Loxosceles bergen, Loxosceles parami, Loxosceles rufescens, Loxosceles reclusa, Loxosceles deserta, der Sechsaugenkrabbenspinnenarten Sicarius hahni, Sicarius albospinosus, Sicanus oweni, Sicanus testaceus, Sicanus argentinensis und/oder der Zitterspinnenarten und der Pholcusspinnenarten Pholcus phalangioides, Pholcus opilionides, Pholcus spp. (RSA) und Pholcus spp. (Kuba) in einer pharmazeutischen wirksamen Beladung von dendritischen Zellen zur Behandlung von Hautkrebserkrankungen, wobei Peptidtoxine aus dem Gift von Skolopendern, Bitis arietans und/oder Loxosceles spiniceps besonders bevorzugt sind. Ausserdem ist die Verwendung eines Peptidtoxins aus dem Gift von Skolopender- Hundertfüsserarten Scolopendra gigantea ssp., Hemiscolopendra spp., der Schlangenarten Bitis anetans (Puffotter), Bitis gabonica (Gabunotter), Bitis nasicornis (Nashornviper) und der kleineren Bitisarten B. atropos, B. caudalis, B, peringueyi und der Speikobraarten Naja melanoleuca, Naja pallida und Naja naja sputatrix, der Parabuthus-Skorpionarten Parabuthus transvallicus, Parabuthus granulosus, Parabuthus villosus und/oder den Loxosceles- Spinnenarten Loxosceles laeta, Loxosceles spiniceps, Loxosceles bergeri, Loxosceles parami, Loxosceles rufescens, Loxosceles reclusa, Loxosceles deserta und den Pholcusspinennarten, Pholcus phalangioides, Pholcus opilionides, Pholcus spp. (RSA), Sicarius hahni, Sicarius albospinosus, Sicarius testaceus, Sicarius oweni und Sicarius spp. (Südamerika) in der Medizin erfindungsgemäß vorgesehen.
Bevorzugt wird das Peptidtoxin durch ein Fraktionierungsverfahren erhalten und es ist weiterhin bevorzugt, dass die pharmazeutisch wirkende Substanz aus dem Giftcocktail einer der genannten Arten erhalten wird. Dadurch kann die pharmazeutische Wirksamkeit der Beladung in ihrer Wirkung vorteilhafterweise auf die zu behandelnde Tumorart und/oder Größe abgestimmt werden.
Das Peptidtoxin kann durch an sich bekannte Fraktionierungsverfahren zur Auftrennung von Proteinen aus dem Tiergiftrohgemisch (Gesamtgiftcocktail) erhalten werden. Bevorzugt ist, dass das Peptidtoxin durch Gelchromatographie, HPLC, Affinitätschromatographie und/oder Ionenaustauschchromatographie erhalten wird.
Es ist aber auch möglich, das Peptidtoxin und/oder die weiteren verwendeten Substanzen aus dem Gift von Skolopender-Hundertfüsserarten Scolopendra gigantea ssp., Hemiscolopendra spp., der Schlangenarten Bitis arietans (Puffotter), Bitis gabonica (Gabunotter), Bitis nasicornis (Nashornviper) und der kleineren Bitisarten B. atropos, B. caudalis, B. peringueyi, und der Speikobraarten Naja melanoleuca, Naja pallida und Naja naja sputatrix, der Parabuthus-Skorpionarten Parabuthus transvallicus, Parabuthus granulosus, Parabuthus villosus, der Loxosceles-Spinnenarten Loxosceles laeta, Loxosceles spiniceps, Loxosceles bergen, Loxosceles parami, Loxosceles rufescens, Loxosceles reclusa, Loxosceles deserta, der Sechsaugenkrabbenspinnenarten Sicarius hahni, Sicarius albospinosus, Sicarius oweni, Sicarius testaceus, Sicarius argentinensis und/oder der Pholcusspinnenarten Pholcus phalangioides, Pholcus opilionides, Pholcus spp. (RSA) und Pholcus spp. (Kuba) chemisch- synthetisch oder durch geeignete gentechnologische Methoden in rekombinanter Form herzustellen. Wie bei chemischen Substanzen üblich umfasst die vorliegende Erfindung auch Derivate und Salze der erfindungsgemäß bereitgestellten Substanzen. Beispielsweise kann das Peptidtoxin ein oder mehrere Additionen, Substitutionen und/oder Deletionen von Aminosäuren umfassen, wobei sichergestellt sein muss, dass die erfindungsgemäße pharmarzeutisch-medizinische Wirkung beibehalten bleibt.
Bevorzugt ist außerdem, dass das Peptidtoxin in einer solchen Menge zur pharmazeutisch wirksamen Dosis zur Beladung vorliegt, dass durch die dendritische Zelle nur eine kontrollierte Abgabe des Peptidtoxins erfolgt.
Weiterhin bevorzugt ist eine pharmazeutisch wirksame Beladung, bei der die Menge an Peptidtoxin, die die dendritische Zelle abgeben kann, in ihrer zellzerstörenden Wirkung räumlich und zeitlich einer kontrollierten Ausbreitung unterliegt. Die pharmazeutische Zusammensetzung der Beladung weist bevorzugt eine Menge an Peptidtoxin auf, die in Abhängigkeit von dem zu behandelnden Hautkrebs und/oder sonstigen Tumor gewählt ist.
Anzucht der dendritischen Zellen
Bevorzugt sind die menschlichen Rückenmarkstammzellen tiefgefroren in Eppendorf- Probengefäßen (E-cups) mit einem Fassungsvermögen von 1 mL. Dabei handelt es sich bevorzugt um eine gesättigte Stammzellenlösung (Kochsalzlösung oder Plasma, maximal 50 Mikroliter). Zur weiteren Verarbeitung werden bevorzugt 750 Mikroliter Medium (37 Grad Celsius), bestehend aus 500 mL DMEM-Hams's F-12, 50 mL RPMI 1260, 10 mL Penicilin/Streptomycin, 5 mL Glutamin und 50 mL FBS zugegeben.
Die so verdünnte Suspension wird anschließend 10-15 Sekunden auf niederster Stufe auf dem Vortex ohne Schaumbildung zur homogenen Durchmischung geschüttelt.
Direkt danach wird die Suspension in eine 75 cm2 Zellkulturflasche eingebracht und mit 20 mL des selben Mediums (37 Grad Celsius) aufgefüllt.
Dann erfolgt ein leichtes zwei- bis dreimaliges manuelles Schwenken zur optimalen Verteilung der in der Suspension befindlichen Rückenmarkstammzellen in der Zellkulturflasche.
Diese Zellkulturflasche wird in einen auf 37 Grad Celsius eingestellten Brutschrank eingebracht.
Bevorzugt ist es, die angesetzte Zellkultur fünf Tage bei gleichbleibender Temperatur (37 Grad Celsius) im Brutschrank zu belassen.
Damit wird ein Festwachsen der Rückenmarkstammzellen am Flaschenboden ermöglicht. Die erste Sichtkontrolle unter dem Invert-Mikroskop, ob die Rückenmarkstammzellen am Flaschenboden angewachsen sind, ist bevorzugt fünf Tage nach dem Verbringen der Zellkulturflasche in den Brutschrank.
Bevorzugt ist es, den ersten Mediumwechsel unter sterilen Bedingungen fünf Tage nach dem Ansetzen der Zellkultur wie folgt vorzunehmen:
Die Mediumflasche wird so gehalten, dass möglichst viel des darin enthaltenen Mediums ausgegossen wird, ohne die bereits festgewachsenen Zellen mit auszuschwemmen. Evtl. verbleibendes Restmedium wird durch leichtes Ausklopfen des Flaschenhalses auf einer Unterlage entfernt.
Das so gesammelte Medium wird verworfen.
Anschließend werden 20 mL neues Medium in die Zellkulturflasche vorsichtig eingebracht, ohne die angewachsenen Zellen vom Zellkulturflaschenboden zu lösen.
Der so beschriebene Mediumwechsel ist jeweils nach drei bzw. vier Tagen vorzunehmen, bis mehrere Zellschichten übereinander gewachsen sind und sich die ersten Zellen ins überstehende Medium lösen.
Das Wachstum der Zellkultur wird vor jedem Mediumwechsel unter dem Invert-Mikroskop kontrolliert.
Wenn die Flasche mit mehreren Zellschichten am Zellkulturflaschenboden bewachsen ist, wird der gesamte Überstand von etwa 20 mL zu gleichen Teilen in 4 kleine 25 cm2 Flaschen subkultiviert und im Anschluss daran mit 37 Grad Celsius warmen Medium aufgefüllt.
Diese Subkulturen werden fünf Tage im Brutschrank bei 37 Grad Celsius ohne weitere Aktivitäten stehengelassen.
Ab dem fünften Tag erfolgt jeweils alle drei bzw. vier Tage der zuvor beschriebene Mediumwechsel mit je 5 mL Medium unter laufender Mikroskopkontrolle.
Wenn der Zellkulturflaschenboden vollständig mit Zellschichten bewachsen ist, erfolgt die Zugabe der Wachstumsfaktorenmischung in der Menge, dass eine Konzentration von je 900 U/mL GM-CSF und IL-4 sowie 700 U/mL sIL-4R (z. B. von Fa. Biochrom) erreicht wird. Bevorzugt ist dabei eine Temperatur von 37 Grad Celsius. Die Zugabe der Wachstumsfaktorenmischung erfolgt mittels einer sterilen 2 mL-Pipette.
Die Zellkulturflasche wird leicht manuell geschwenkt ohne die Zellen vom Boden zu lösen. Für mindestens 24 Stunden wird die Zellkulturflasche bei 37 Grad Celsius im Brutschrank gelagert.
Frühestens nach 24 Stunden erfolgt die erste Sichtkontrolle unter dem Invert-Mikroskop, ob sich schon dendritische Zellen ausdifferenziert haben, die dann jeweils täglich unter sterilsten Bedingungen mittels einer Glas-Pasteur-Pipette mit dem wenigstmöglichen Medium in eine neue Flasche (25 cm2) mit schon auf 37 Grad Celsius erwärmten Medium (2 mL) überführt werden, bis sich in der Ursprungsflasche keine neuen dendritischen Zellen mehr bilden.
Der Mediumwechsel für die in der neuen Zellkulturflasche gesammelten dendritischen Zellen wird in der Art bevorzugt vorgenommen, dass das alte Medium bis auf 1 mL mit einer Glas- Pasteur-Pipette unter sterilsten Bedingungen abgesaugt wird, ohne dendritische Zellen mitabzusaugen und dann mit 4 mL neuem, 37 Grad Celsius warmen Medium aufgefüllt wird.
Dieser Mediumwechsel wird daran anschließend alle drei bzw. vier Tage in der beschriebenen Art vorgenommen.
Durch die so gewonnenen dendritischen Zellen mit einer mindestens drei Wochen langen Lebensfähigkeit steht eine ausreichende Zahl für therapeutische Zwecke zur Verfügung. Wirkweise
Die dendritischen Zellen erkennen genetisch defekte körpereigene Zellen, docken an diese an und geben die beigeladene Wirksubstanz in die kranke Zelle ab. Die Beiladung bewirkt die gezielte Zerstörung der entarteten Zelle über die zytotoxische Wirkung. Zudem sind dendritische Zellen in der Lage, Informationen über Tumorgeschehen (durch Erkennung von Zytokinen), aber auch Informationen über tumorzerstörende Substanzen an T-Zellen weiterzugeben. Die so "informierten" T-Zellen bezeichnet man als Killerzellen.
Vorteil dabei ist, dass die dendritischen Zellen in der Lage sind, genetisch defekte Zellen zu erkennen, die beigepackte Ladung zielgenau an den Wirkort zu bringen und die Bildung von Tochtergeschwüren zu verhindern.
Beschreibung
Neben den ca. 1.500 weltweit in gemäßigten Zonen vorkommenden Skorpionarten und den ca. 35.000 Webspinnenarten weiß man von nur etwa 70 Skolopenderarten. Mit Ausnahme von etwa 300 Webspinnenarten gehören die vorgenannten Tiere alle zu den aktiv giftigen Tieren, die ihre Gifte zum Nahrungserwerb einsetzen. Da diese Tiere nur eine sehr kleine Mundöffnung haben, entwickelten sie die Aussenvorverdauung, die über ein hochentwickeltes Enzym- und Giftsystem ermöglicht wird. Entweder wird ein Giftcocktail direkt in das Beutetier injiziert oder das Beutetier wird mechanisch getötet, zerrissen und/oder durchgekaut und dabei mit dem Giftcocktail durchmischt. Die verflüssigte Nahrung mit kleinsten festen Bestandteilen kann dann eingesogen werden.
Etwa 50 Webspinnenarten, ebensoviele Skorpionarten und etwa 20 Skolopenderarten können durch ihre Gifte auch dem Menschen gefährlich werden. Nach wie vor sind vor allem die Gifte der medizinisch wichtigen Arten kaum oder gar nicht erforscht. Die Hauptbestandteile der Arthropodengifte sind:
  • - Verdauungsenzyme
  • - Biogene Amine
  • - Organische Säuren
  • - Peptide
  • - Peptidtoxine.
Unter den Peptidtoxinen finden sich folgende Toxingruppen:
  • - Herzgifte
  • - Nervengifte
  • - Blutgifte
  • - Zellgifte
  • - Gewebezerstörende Gifte.
Ursprünglich findet durch den Gesamtgiftcocktail von allen aktiv giftigen Tieren durch das synergistisch und/oder antagonistische Zusammenwirken verschiedener Substanzen generell auch eine Vorverdauung und damit eine gezielte Ursprungszellenveränderung tierischer Zellen statt.
Bei den in dieser Erfindung verwendeten Skolopender-, Schlangen-, Skorpion- und Spinnenarten finden sich im Gesamtgiftcocktail Substanzen, welche zytotoxisch, nekrotisch und/oder apoptotisch wirken (verdauende Wirkung der Gifte). Substanzen, die als Herzgifte, Nervengifte oder Blutgifte wirken, sollten dagegen erfindungsgemäß eher vermieden werden. Mittels HPLC-MS-MS wurden die Peptidtoxine aus dem Gesamtgiftcocktail bestimmt. Diesen wiederum wurden über Zeilversuche spezifische Wirkweisen zugeordnet. Überraschenderweise wurde nun gefunden, dass Bestandteile der Tiergifte von Skolopender- Hundertfüsserarten Scolopendra gigantea ssp., Hemiscolopendra spp., der Schlangenarten Bitis arietans (Puffotter), Bitis gabonica (Gabunotter), Bitis nasicornis (Nashornviper) und der kleineren Bitisarten B. atropos, B. caudalis, B. peringueyi und der Speikobraarten Naja melanoleuca, Naja pallida und Naja naja sputatrix, der Parabuthus-Skorpionarten Parabuthus transvallicus, Parabuthus granulosus, Parabuthus villosus, der Loxosceles-Spinnenarten Loxosceles laeta, Loxosceles spiniceps, Loxosceles bergen, Loxosceles parami, Loxosceles rufescens, Loxosceles reclusa, Loxosceles deserta, der Sechsaugenkrabbenspinnenarten Sicarius hahni, Sicanus albospinosus, Sicanus oweni, Sicarius testaceus, Sicanus argentinensis und/oder der Pholcusspinnenarten Pholcus phalangioides, Pholcus opilionides, Pholcus spp. (RSA) und Pholcus spp. (Kuba) zur Behandlung von Hautkrebserkrankungen verwendet werden können, wobei Peptidtoxine aus dem Gift von Skolopendern, Bitis arietans und/oder Loxosceles spiniceps besonders bevorzugt sind.
Der Gesamtgiftcocktail ist auf Grund der Vielzahl der enthaltenen Einzelsubstanzen und seiner daraus resultierenden komplexen Wirkung im Körper derzeit pharmazeutisch noch nicht einsetzbar. Als Abwehrgift von den Tieren eingesetzt, erleidet der Gebissene folgende Symptomatik:
Skolopender der Gattungen Scolopendra und Hemiscolopendra
Auf Grund seiner großen Mundwerkzeuge wird der Biss der bis zu 30 cm langen Tiere, immer gespürt. Allgemeine Beobachtungen über die Giftwirkungen von Riesenhundertfüssern (Skolopender) fehlen. Das Gift ist jedenfalls für Kleinsäuger stark wirksam. So genügt beispielsweise der Inhalt einer Giftdrüse um 25 Mäuse mit einem Gewicht von ca. 20 gr. innerhalb von 7 Stunden zu töten. Das Gift wirkt stark auf das Nervensystem, was zu folgenden Symptomen führt: Beschleunigung des Atems, Schweissausbrüche, Gleichgewichtsstörungen, Erbrechen, Atemlähmung, Krämpfe bis zum Tod. Neuere Arbeiten über Chemie, Biochemie und Toxikologie der Gifte gibt es nicht (Habermehl G. (1987): Gift- Tiere und ihre Waffen. Springer-Verlag, Berlin, 4. und nachfolgende Auflagen).
Schlangen der Gattungen Bitis und Naja
Der Biss selbst wird von den Gebissenen durch die Wucht, mit dem die Schlange zustößt, wahrgenommen. Als Besonderheit ist die Fähigkeit der Speikobras zu erwähnen, die über ihre Zähne mittels Druckluft das Gift zielgerichtet bis zu 5 Meter auf ihr Opfer versprühen können. Mit dem Biss setzt über die Giftabgabe sofortiger Schmerz ein. Bald darauf beginnt das Gift mit seiner gewebezersetzenden Wirkung. Zunächst beginnt die lokalnekrotische Wirkung, bei der die Hautschichten lysiert werden. Anschließend breitet sich mit Hilfe der permeabilitätssteigernden Enzyme das Gift großflächig im die Bissstelle umgebenden Gewebe aus. Dabei können mit Ausnahme des Skelettes alle Gewebebestandteile über Nekrose zerstört werden. Erfolgt der Biss in eine Extremität ist eine Amputation situationsabhängig abzuwägen. Neben den gewebezerstörenden Giften findet man je nach Art noch Neuro- bzw. Cardiotoxine, die in erster Linie für die Schmerzen und die Kreislaufinstabilität verantwortlich sind. Bei den tödlich verlaufenden Bissunfällen stehen Blutvergiftung und Nierenversagen an erster Stelle.
Skorpione der Gattung Parabuthus
Schon der Stich verursacht wegen der im Giftcocktail enthaltenen Neurotoxine starke Schmerzen an der Stichstelle, die den Schmerzen einer Verbrennung ähneln. Die Schmerzen werden nach einiger Zeit von einem Prickeln abgelöst welches letztendlich in eine Gefühllosigkeit übergeht. Die allgemeinen Symptome können schon nach 5 Minuten, teilweise aber auch erst 24 Stunden nach dem Stich auftreten. Der Gestochene wird erregt, Kinder haben gelegentlich Krämpfe; Reflexe gehen auf ein Minimum zurück oder verschwinden ganz. Das Bewusstsein bleibt erhalten, wobei oft starke Angstzustände auftreten. Es folgt Tränenfluss und eine Erweiterung der Pupillen bei gleichzeitiger Einschränkung der Sehkraft. Der Puls ist beschleunigt und unregelmäßig. Blutdruck kann sowohl erhöht als auch erniedrigt sein. Die Körpertemperatur schwankt stark, wobei eine Hypothermie eine Verschlechterung des Zustandes des Patienten anzeigt. Der Atem geht unregelmäßig. Erbrechen ist ein ernstes Zeichen dafür, dass auch Nervenzentren angegriffen sind. Der Tod tritt überwiegend durch Atemlähmung ein, meist innerhalb 20 Stunden, weniger häufig innerhalb von 30 Stunden (Habermehl G. (1987): Gift-Tiere und ihre Waffen. Springer-Verlag, Berlin, 4. und nachfolgende Auflagen).
Spinnen der Gattung Loxosceles
Der Biss selbst wird in den allermeisten Fällen vom Gebissenen nicht gespürt. Die Bissstelle schwillt nach 2 bis 5 Stunden sehr stark an, wobei das Anschwellen mit starken Schmerzen einhergeht. Die Bissstelle verfärbt sich dunkelrot und es bilden sich Blasen. Anschließend färbt sich das Gewebe schwarz und Hautzellen sterben ab. Dabei hinterbleibt ein Loch in der Haut, welches bis zu 5 cm im Durchmessser betragen kann. Die Heilung kann bis zu 2 Jahren betragen, wobei teilweise eine Hautverpflanzung nötig werden kann. Bei schwereren Fällen kommt es zu Blut im Urin und letztlich zu einem Nierenversagen mit Todesfolge. Es gibt ausserdem Fälle mit hämolytischer Anämie und Hämaturie welche mit Sinnesstörungen einhergehen. Die Körpertemperatur kann bis auf 41 Grad Celsius steigen, wobei sich in schweren Fällen auch ein Koma einstellen kann.
Spinnen der Gattung Pholcus
Auch hier wird der Biss in den meisten Fällen nicht gespürt. Nach etwa 2 Stunden rötet sich die Bissstelle deutlich und nässt. Im Laufe der nächsten Stunden löst sich die Hautschicht um die Bissstelle bis zu einer Größe von 3 cm. Es bildet sich eine offene Wunde, die ohne Behandlung bis zu 3 Monate nicht zuheilt. Ohne Behandlung erfogt die Wundheilung unter starker Narbenbildung. Eine Behandlungsform besteht z. B. in einer Hautverpflanzung. Begleitende Symptome äußern sich in einer Kreislaufmstabilität. Todesfälle sind nicht bekannt.
Überraschenderweise können jedoch Einzelsubstanzen, von den im Tiergift enthaltenen Peptidtoxinen, welche von Skolopender-Hundertfüsserarten Scolopendra gigantea ssp., Hemiscolopendra spp., der Schlangenarten Bitis arietans (Puffotter), Bitis gabonica (Gabunotter), Bitis nasicornis (Nashornviper) und der kleineren Bitisarten B. atropos, B. caudalis, B. peringueyi, und der Speikobraarten Naja melanoleuca, Naja pallida und Naja naja sputatrix, der Parabuthus-Skorpionarten Parabuthus transvallicus, Parabuthus granulosus, Parabuthus villosus, der Loxosceles-Spinnenarten Loxosceles laeta, Loxosceles spiniceps, Loxosceles bergen, Loxosceles parami, Loxosceles rufescens, Loxosceles reclusa, Loxosceles deserta, der Sechsaugenkrabbenspinnenarten Sicanus hahni, Sicarius albospinosus, Sicarius oweni, Sicarius testaceus, Sicarius argentinensis und/oder den Pholcusspinnenarten Pholcus phalangioides, Pholcus opilionides, Pholcus spp. (RSA) und Pholcus spp. (Kuba) stammen, zur Behandlung von Hautkrebserkrankungen sowie parallel bzw. unterstützend zu Hautkrebsoperationen eingesetzt werden, um genetisch entartete Zellen zu zerstören. Beispielsweise kann erfindungsgemäß die Zerstörung von Melanomzellen und/oder von bei der Operation nicht erfasstem Tumorgewebe über das Aufspüren, Enttarnen und die zielgerichtete Elimination der genetisch defekten Zellen erfolgen. Bei der Therapie können zum einen genetisch defekte Körperzellen (Tumorzellen) zerstört werden, da die Oberflächenproteinstruktur und die erfindungsgemäß eingesetzten, mit Peptidtoxin beladenen dendritischen Zellen, diese in ihrer Oberflächenstruktur veränderten Zellen erkennen und zerstören können. Darüberhinaus geben Tumorzellen spezifische Botenstoffe, sogenannte Tumormarker ab, auf welche die mit Peptidtoxin beladenen dendritischen Zellen reagieren und daraufhin die Tumorzellen zerstören. (Zitvogel L. et al (1999): Novel Immunologic And Therapeutic Attributes of Dendritic Cells (DC): Modulation of T and NK cell-Mediated- Antitumor Immune Responses. The European Journal Of Cancer, Vol. 35 Supplement 5- S25//Gong J., Avigan D. et al (1999): Activation of Antitumor Cytotoxic T Lymphocytes by Fusions of Human Dendritic Cells and Breast Carcinoma Cells. The European Journal Of Cancer, Vol. 35 Supplement 5-S30)
Die Funktionsweise basiert auf der Fähigkeit dendritischer Zellen, genetisch defekte Zellen aufspüren, erkennen und zerstören zu können und der gewebezerstörenden Wirkung der Peptidtoxine wie folgt:
  • - Die Peptidtoxine mit einem Molekulargewicht von ca. 50-350 kDa, im Fall von Skorpionen, Spinnen und einigen Skolopendern typischerweise ca. 100 kDa, besitzen eine gewebezerstörende Wirkung, darunter auch eine Hautzelltypen­ zerstörende Wirkung. Auf Grund ihres hohen Molekulargewichts und ihrer räumlichen Struktur haben sie in Geweben ohne die Hilfe von sogenannten Durchdringungsenzymen nur eine geringe Ausbreitungstendenz.
  • - Dendritische Zellen werden mit Hilfe eines Wachstumsfaktorengemisches (GM- CSF/IL-4, bevorzugt in Kombination mit dem Interleukin-Rezeptor sIL-4R) bevorzugt aus Rückenmarkstammzellen wegen ihrer Gleichheit hergestellt und isoliert.
Die so gewonnenen dendritischen Zellen werden bevorzugt mit den hautnekrotisch wirksamen säulenchromatographisch erhaltenen Einzelkomponenten aus den Giften der Skolopender-Hundertfüsserarten Scolopendra gigantea ssp., Hemiscolopendra spp., der Schlangenarten Bitis arietans (Puffotter), Bitis gabonica (Gabunotter), Bitis nasicornis (Nashornviper) und der kleineren Bitisarten B. atropos, B. caudalis, B. peringueyi, und der Speikobraarten Naja melanoleuca, Naja pallida und Naja naja sputatrix, der Parabuthus- Skorpionarten Parabuthus transvallicus, Parabuthus granulosus, Parabuthus villosus, der Loxosceles-Spinnenarten Loxosceles laeta, Loxosceles spiniceps, Loxosceles bergen, Loxosceles parami, Loxosceles rufescens, Loxosceles reclusa, Loxosceles deserta. der Sechsaugenkrabbenspinnenarten Sicarius hahni, Sicarius albospinosus, Sicarius oweni, Sicarius testaceus, Sicanus argentinensis und den Pholcusspinnenarten Pholcus phalangioides, Pholcus opilionides, Pholcus spp. (RSA) und Pholcus spp (Kuba), über Lipofektion beladen.
Die quantitative Beladung der dendritischen Zellen kann durch eine ca. 1,66 %ige Zugabe von Phenyl-Gal-Nac gesteigert werden.
Gegebenenfalls können weitere im Tiergiftrohgemisch enthaltene Substanzen die Wirkungen der Peptidtoxine, mit denen die dendritische Zelle beladen wird, unterstützen.
Die Wirkweise der mit Peptidtoxinen beladenen dendritischen Zellen kann durch Austestung dieser in entsprechenden gesunden und tumorösen humanen Zelllinien erfolgen.
Erfindungsgemäß stammen die toxischen Substanzen, bzw. das Peptidtoxin, mit welchem die dendritschen Zellen beladen werden, aus dem Gift von Skolopendern der Familie Scolopendridae, Schlangen der Familie Viperidae, Schlangen der Familie Elapidae, Spinnen der Familie Sicariidae (erfindungsgemäß gehören zur Familie der Sicanidae neben Sicanus auch die Gattungen Loxosceles und Scytodes), Spinnen der Familie Pholcidae, Skorpione der Familie Buthidae.
Bevorzugt sind die Gattungen Scolopendra und Hemiscolopendra, Bitis und Naja, sowie Loxosceles, Pholcus und Parabuthus. Im Bereich der Gattungen Scolopendra und Hemiscolopendra können die Scolopendra- und Hemiscolopendra-Riesenhundertfüsserarten Scolopendra morsitans, Scolopendra gigantea und Hemiscolopendra spp., im Bereich der Gattung Bitis die Bitis-Schlangenarten Bitis arietans, Bitis gabonica und Bitis nasicornis, im Bereich der Gattung Naja die Naja-Schlangenarten Naja melanoleuca, Naja pallida und Naja naja sputatrix, im Bereich der Gattung Loxosceles die Loxosceles-Spinennarten Loxosceles laeta, Loxosceles spiniceps, Loxosceles bergen, Loxosceles parami, Loxosceles rufescens, Loxosceles reclusa, Loxosceles deserta, im Bereich der Gattung Sicarius die Sicanus- Spinnenarten Sicarius hahni, Sicarius albospinosus, Sicanus oweni, Sicarius testaceus, Sicarius argentinensis im Bereich der Gattung Pholcus die Pholcus-Spinnenarten Pholcus phalangioides, Pholcus spp. (RSA.), Pholcus spp (Kuba) und Pholcus opilionides, im Bereich der Gattung Parabuthus die Parabuthus-Skorpionarten Parabuthus transvallicus, Parabuthus granulosus und Parabuthus villosus besonders bevorzugt verwendet werden. Unter den Spinnen der Gattung Loxosceles sind erfindungsgemäß auch die weiteren Arten einsetzbar.
Unter den Skolopendern der Gattung Scolopendra und Hemiscolopendra sind erfindungsgemäß alle Arten mit einer Körperlänge ab 10 cm einsetzbar.
Unter den Schlangen der Gattung Bitis sind auch alle Zwergpuffotternarten erfindungsgemäß einsetzbar. Unter den Schlangen der Gattung Naja ist erfindungsgemäß auch die asiatische Speikobra Naja naja atra einsetzbar.
Unter den Spinnen der Familie Pholcidae sind erfindungsgemäß alle größeren Arten einsetzbar.
Unter den Skorpionen der Gattung Parabuthus sind erfindungsgemäß auch alle zentralafrikanischen Arten einsetzbar. Daneben sind erfindungsgemäß die Skorpione der Gattungen Opistophthalmus, Androctonus und Nebo einsetzbar.
Die Herstellung der erfindungsgemäßen pharmazeutisch wirksamen Beladung dendritischer Zellen kann so erfolgen, dass dendritischen Zellen ein Peptidtoxin unter dem Mikroskop direkt über eine Mikrocapillare injiziert wird, und diese Zellen dann in die Kulturflasche rückgeführt werden. Bei dieser Prägung kann die schon mit diesem Peptidtoxin beladene dendritische Zelle ihre Information über die Aufnahme eines Zellgiftes an die anderen dendritischen Zellen weitergeben. Dadurch kann nach ca. 72 Stunden eine Lösung dieses verwendeten Peptidtoxins ins Medium zugegeben werden. Nach weiteren 48 Stunden haben die dendritischen Zellen eine bestimmte, vom Peptidtoxin und den dendritischen Zellen abhängige Menge des Peptidtoxins aufgenommen.
Die Herstellung kann auch so erfolgen, dass einer Kultur dendritischer Zellen, in welcher sich auch Hautkrebszellen befinden, direkt in die Kulturflasche ein Peptidtoxin, welches die Hautkrebszellen zerstört, zugeimpft wird. Dadurch, dass das Gift intakte Krebszellen zerstört, werden beim Tumorzellenabbau bestimmte Marker frei, welche den dendritischen Zellen anzeigen, dass die Tumorzellzerstörung mit Hilfe des Peptidtoxines effektiver erfolgen kann, wobei die Adaption der dendritischen Zellen mit den wirksamen Substanzen über die Zugabe von Phenyl-Gal-Nac quantitativ gesteigert werden kann.
Dadurch kann nach etwa 24 Stunden eine weitere, konzentriertere Zugabe des Peptidtoxins erfolgen, welches dann auch von den dendritischen Zellen aufgenommen wird. Ziel bei den Herstellungsverfahren ist es, eine möglichst hohe quantitative Beladung der dendritischen Zellen mit diesem Peptidtoxin zu erreichen. Eine Bestimmung der Konzentration in der Zelle ist meßtechnisch derzeit nicht oder nur sehr schwer möglich. Die Medium-Konzentrationen an zu beladender Substanz bewegen sich im letzten Inkubationsschritt jedoch üblicherweise, abhängig vom verwendeten Toxin, im Bereich von ca. 0,5 µg/ml bis 250 µg/ml.
Bevorzugt kann die Gewinnung des Tiergiftrohgemisch so erfolgen, dass dieses durch an sich bekannte Verfahren aus den Spinnentieren und Skolopendern gewonnen wird und eine Fraktionierung des Tiergiftrohgemisches durch ebenfalls an sich bekannte Fraktionierungsverfahren zur Auftrennung von Proteinen vorgenommen wird, um die Peptidtoxine und/oder die sonstigen zellzerstörend wirkenden Substanzen in möglichst voneinander getrennter Form in getrennten Fraktionen zu erhalten. Zur Herstellung einer pharmazeutisch wirksamen Beladung dendritischer Zellen werden bevorzugt einzelne Fraktionen verwendet. Bevorzugt können als Peptidtoxine auch zellzerstörend wirkende Schlangengifte wie z. B. das Kobraschlangengift Najatoxin-S eingesetzt werden, jeweils zur Beladung der zur Therapie eingesetzten dendritischen Zellen. Zur Herstellung der erfindungsgemäßen pharmazeutisch wirksamen Fraktionen der Peptidtoxine können aus dem Giftcocktail, der über manuelles Melken der o. g. Tierarten gewonnen werden kann, z. B. über säulenchromatographische Aufreinigung, spezifische Giftkomponenten, (nekrotisch und zytotoxisch wirkende Peptidtoxine) selektiert werden. Die Analytik zur Differenzierung der in den Fraktionen enthaltenen Komponenten kann über HPLC-MS-MS (z. B. mit einem Gerät der Fa. Perkin-Elmer) erfolgen. Dabei konnte nachgewiesen werden, dass es sich bei einem Teil der hochmolekularen Substanzen über die Darstellung toxischer Gruppen vom NX-NHX- NOX- und SX-Typ, um Peptidtoxine handelt. Dieses wird durch ihre Wirkweise im Zellversuch noch bestätigt. (Burda R., Schrottenloher E., Weickmann D. (2000): In vitro Versuche zur Anwendung/Verwendung von zellzerstörenden Giftkomponenten der Sechsaugen-krabbenspinnen Sicarius spp. in der biologischen Krebstherapie.
Arachnologisches Magazin 2(8): 1-7 und Lundblad R. L. (1995): Techniques in Protein Modification, CRC Press, London, Tokyo).
Die erfindungsgemäß für die pharmazeutisch wirksame Beladung verwendeten Substanzen können auf natürlichem Wege gewonnen werden. Dabei handelt es sich um von Riesenhundertfüssern der Gattungen Scolopendra und Hemiscolopendra, von Schlangen der Gattungen Bitis und Naja, von Webspinnen der Gattungen Loxosceles, Sicarius und Pholcus und von Skorpionen der Gattung Parabuthus produzierte Gifte, die ursprünglich zum Beutefang und zur Vorverdauung tierischen Proteins entwickelt wurden. Diese natürliche Wirkweise kann durch eine funktionserhaltende, schonende Gewinnung des Giftgrundstoffes (z. B. durch manuelles Melken) erhalten werden. Im Gegensatz zu herkömmlichen Melkweisen von Arthropoden, mittels eines elektrischen Verfahrens (Weickmann D. (1991): Haltung und Giftigkeit von Sicariidae. Arachnologischer Anzeiger 16: 12-13; Weickmann D., Burda R. (1994): Electrophoresis of scorpion venoms. Electrophoresis Forum 1994, Abstracts, Techn. Universität München, Okt. 24-26), bei dem den Tieren das Gift über einen elektrischen Impuls, der bei den Tieren die Kontraktion der Giftdrüsen auslöst, entzogen wird (die Spinnen sind hierbei bevorzugt unterkühlt, Skorpione und Skolopender geben bei Unterkühlung kaum bis kein Gift ab), wird gemäß der vorliegenden Erfindung der Giftcocktail über ein manuelles Verfahren, bei dem die Tiere unter Ausnutzung ihres natürlichen Abwehrverhaltens zur Abgabe ihres Giftes stimuliert werden, erhalten.
Gemäß einer Ausführungsform der Erfindung ist eine manuelle Melkweise der Spinnen vorgesehen. Dadurch werden echte, unverfälschte native Gifte gewonnen, während bei der elektrischen Melkweise von den Spinnentiergiften durch Elektronenfluss umstrukturierte Substanzen bzw. Moleküle erhalten werden, die in ihrer Wirkweise geändert sein können oder auch Substanzen in den Giften vorhanden sein können, die das Tier sonst nicht abgeben würde, während bei den Riesenhundertfüssern durch die herkömmlichen elektrischen Melkweisen kein Gift abgegeben wird. Die durch elektrisches Melken zusätzlich von den Spinnentieren abgegebenen Substanzen können, müssen aber nicht zwingend die medizinische Wirksamkeit der einzelnen im Gesamtgiftcocktail enthaltenen Verbindungen negativ beeinflussen. Standardmäßig kann eine Qualitätskontrolle des Rohgiftes über elektrophoretische Verfahren erfolgen.
Die folgenden Beispiele zeigen vorteilhafte Ausführungsformen der Erfindung, sollen den Schutzumfang der Erfindung jedoch nicht beschränken.
In den Beispielen und der Beschreibung wird auf die folgenden Figuren Bezug genommen:
Fig. 1 zeigt eine SDS-PAGE von Gesamtgiftcocktails aus Skorpionen, die in manueller und elektrischer Melkweise gewonnen wurden; Bahnen von links nach rechts: Molekulargewichtsstandard; Androctonus anst. hector, mechanische Melkweise, elektrische Melkweise; Nebo hierichonticus, mechanische Melkweise, elektrische Melkweise; Opistophthalmus sp., mechanische Melkweise, elektrische Melkweise.
Beispiele 1. Melken a) Skolopender
Zur manuellen Melkung werden Tiere ab einer Körperlänge von ca. 10 cm der Gattungen Scolopendra und Hemiscolopendra die Scolopendra- und Hemiscolopendra- Riesenhundertfüsserarten Scolopendra morsitans, Scolopendra gigantea und Hemiscolopendra spp. verwendet. Dabei werden die Skolopender mit den Fingern einer Hand hinter dem Kopf gegriffen, mit dem Handballen so fixiert, dass das Tier nicht mit dem zu Greifzangen umgebildeten letzten Beinpaar stechen kann. Dann lässt man das Tier durch eine Folie beissen, die über ein Reagenzglas gespannt ist.
Beim Biss wird gleichzeitig Gift abgebeben, welches sich am Reagenzglas sammelt. Das so gesammelte Gift wird in einen Exsikator gebracht. Dieser wird dann für mindestens 12 Stunden in einer Tiefkühltruhe bei mindestens minus 14 Grad Celsius aufbewahrt.
b) Schlangen
Zur Melkung werden Schlangen der Gattungen Bitis und Naja ab einer Körperlänge von etwa 50 cm verwendet. Dabei werden die Schlangen mit festem Griff hinter dem Kopf fixiert und der Körper über den Arm gelegt. Dann lässt man die Schlange durch eine Folie, die über ein Becherglas gespannt ist, beissen. Oder man läst die zu melkende Schlange vorsichtig direkt an den Rand eines Becherglases bzw. einer Abdampfschale beissen. Beim Biss wird jeweils Gift abgegeben, welches sich am Becherboden sammelt. Das so gesammelte Gift wird in einem Exikator getrocknet. Das getrocknete Gift kann bei plus 4 Grad Celsius mehrere Jahre aufbewahrt werden.
c) Spinnen
Zur manuellen Melkung werden adulte Weibchen der Loxosceles-Spinnenarten Loxosceles laeta, Loxosceles spiniceps, Loxosceles bergen, Loxosceles parami, Loxosceles rufescens, Loxosceles reclusa, Loxosceles deserta, im Bereich der Gattung Sicarius die Sicarius- Spinnenarten Sicarius hahni, Sicarius albospinosus, Sicanus oweni, Sicarius testaceus, im Bereich der Gattung Pholcus die Pholcus-Spinnenarten Pholcus phalangioides, Pholcus spp. (RSA.), Pholcus spp. (Kuba) und Pholcus opilionides, mit den Fingern einer Hand in Rückenlage fixiert, dabei mit einer in der anderen Hand befindlichen stehlen Spritze (2 mL Braun Injekt von Fa. B. Braun) mit aufgesetzter steriler Kanüle (20 oder 21 von Becton Dickinson), die Tageszeit spielte keine Rolle, bei einer Raumtemperatur von 21 bis 27 Grad Celsius, bei einer Luftfeuchtigkeit von ca. 60%, an den Cheliceren durch Berühren mit der stumpfen Seite der Kanüle zur Abgabe des Giftes stimuliert. Dabei ist es bevorzugt, dass die Stimulationszeit nicht länger als 90 Sekunden dauert, da ansonsten das Tier einem unnötigen Stress ausgesetzt wird. Nach Erscheinen des Gifttropfens an den Giftklauen wird dieser mit der Spritze über die Kanüle aufgezogen. Für jedes Tier wird eine neue Spritze mit neuer Kanüle verwendet. Anschließend wird die Kanüle mit der Kanülenschutzhülle wieder verschlossen. Die verschlossene Spritze samt aufgezogenem Gift wird direkt anschließend in einen Exsikator verbracht. Dieser wird dann für mindestens 12 Stunden in einer Tiefkühltruhe bei mindestens minus 14 Grad Celsius aufbewahrt.
d) Skorpione
Zur manuellen Melkung werden Tiere ab einer Körpergröße von etwa 3 cm der Skorpionarten Parabuthus transvallicus, Parabuthus granulosus und Parabuthus villosus verwendet. Dabei werden die Skorpione am Postabdomen direkt hinter der Giftblase mit einer an den Spitzen mit Schaumstoff ummantelten Pinzette gefasst und der Giftstachel bevorzugt auf eine feinstpolierte Aluminiumplatte (ca. 4 × 5 cm) mit einer Dicke von 2 mm kontaktiert. Beim Kontakt gibt der Skorpion einen Gifttropfen auf die Aluminiumplatte ab, die dann in den Exsikator verbracht wird. Dieser wird dann für mindestens 12 Stunden in einer Tiefkühltruhe bei mindestens minus 14 Grad Celsius aufbewahrt.
2. Fraktionierung des Gesamtgifts
Das durchgefrorende Gesamtgift wird nach Entnahme aus der Tiefkühltruhe in 1 mL Lösungsmittel z. B. Proteinlösungsmittel von Fa. Carl Roth GmbH & Co, KG (Lösungmittel für Protein-Säulenchromatographie: 0,25 M Tris/HCl, pH 6,5 bis 7,3, 1,92 M Glycin, in destiliertem, deionisiertem Wasser (wegen Denaturierung wird kein SDS im Puffer verwendet) eingebracht. Dadurch wird Gift in Lösung erhalten. Die so aufbereiteten einzelnen Giftlösungen der jeweiligen Arten können in einem sterilen, sauberen Teflonvial bei Raumtemperatur gesammelt werden. Das verschlossene Teflonvial wird anschließend auf einem Vortex ohne Schaumbildung 30 Sekunden lang geschüttelt, wobei eine homogene Lösung erhalten wird. Nach der Durchmischung wird die gesamte Lösung über einen Plexiglastrichter (um Kontamination zu vermeiden) in eine stehende transparente Plexiglassäule, die einen Innendurchmesser von 1,5 cm, eine Wandstärke von 2 mm und eine Höhe von 50 cm aufweist, und unten konisch bis auf 1,5 mm zulaufend, offen ist, gefüllt mit 20 mL Gel (Fa. Sigma/Supelco, AcA 34; Matrix: 3% Acrylamid/4% Agarose; Fraktionierungsbereich (MW): Proteine: 20 bis 350 kDa; Ausschlussgrenze 750 kDa; Kügelchendurchmesser: 60 bis 140 Mikrometer) eingebracht. Die so eingebrachte Giftlösung durchläuft das Gel und verdrängt dabei den im Gel befindlichen Puffer. Nach vollständigem Eindringen der Giftlösung in das Gel werden zusätzliche 150 mL Lösungmittel (0,25 M Tris/HCl, pH 6,5 bis 7,3; 1,92 M Glycin) auf die Säule gebracht. Dieses zusätzliche Lösungsmittel verdrängt bei seinem Durchlauf durch das Gel die darin befindliche Giftlösung. Die ersten 15 mL, die unten aus der Säule laufen sind Restpuffer und werden verworfen. Nach diesen 15 mL werden je nach Tierart bis zu 30 Fraktionen zu je 4 mL aufgefangen. Die Trennung in jeweils 4 mL ist bedingt durch die physikalischen und chemischen Eigenschaften der einzelnen Fraktionen, nachgewiesen durch Elektrophorese, bevorzugt SDS-PAGE. Als Auftragspuffer zum Peptidbindungs- und Proteinschutz werden Roti Load 1 + 2 (Carl Roth GmbH & Co, KG, Karlsruhe: SDS-, Glycerol-, Bromphenolblau-, Phosphatpuffer, Roti Load 1 mit Mercaptoethanol, Roti Load 2 ohne Mercaptoethanol) verwendet. Die einzelnen Fraktionen werden in steril sauberen verschraubbaren 5 mL Teflonvials getrennt aufgefangen. Die Qualtitätskontrolle der einzelnen Fraktionen erfolgt mittels Elektrophorese.
Die hautzelllysierende Wirkung der Fraktionen wurde bestimmt, indem die einzelnen Fraktionen aus dem Gesamtgiftcocktail der jeweiligen Tierarten im Versuch an menschlichen lebenden Zellen in hoch- bis überdosierten Mengen (ca. 200 bis 500 µg/ml verwendetem Medium) ausgetestet wurden. Anwendung zur Beladung dendritischer Zellen fanden diejenigen Peptidtoxine, welche sowohl gesunde Hautzellen, bevorzugt Hautfibroplasten unterschiedlicher Biologie, als auch entartete Hautzellen, bevorzugt 2 Linien vom malignem Melanom, zerstörten. Unberücksichtigt blieben diejenigen peptidtoxine, welche neben Hautzellen auch noch weitere Zellen (z. B. Brustgewebszellen und Leberzellen) schädigten und teilweise sogar lysierten.
Im Fall von Sicarius wurden Peptidtoxine in den Fraktionen 1-12 erhalten. Diese Fraktionen enthielten Peptidtoxine in einem Molekulargewichtsbereich von ca. 72 bis ca. 168 kDa. Ein hautzelllysierendes, insbesondere maligne Melanomzellen lysierendes Peptidtoxin ist in Fraktion 10 enthalten.
Für die erfindungsgemäße pharmazeutisch therapeutisch wirksame Beladung der dendritischen Zellen werden z. B. einzelne hautzelllysierende Fraktionen der Tiergifte verwendet. Diese Fraktionen enthielten Tiergiftproteinbestandteile in einem Molekulargewichtsbereich von ca. 50 bis 350 kDa bzw. Nichtproteintoxine mit zumindest einer Amidogruppe in einem Molekulargewichtsbereich von ca. 30-55 kDa. Eine SDS-PAGE des Gesamtgiftcocktails von Skorpionen ist in Fig. 1 gezeigt.
Um die Struktur der einzelnen Substanzen aufzuklären, werden die jeweiligen Fraktionen z. B. über eine HPLC-MS-MS sowie eine DAD-UV-Spektrometrie (DAD bzw. DADI: Direct Analysis of Daughter Ions, Direkte Analyse von Tochterionen) untersucht. Im höheren Molekulargewichtsbereich ab 10.000 konnten keine bekannten Substanzen dargestellt werden. Die Grundgerüstbestimmungen deuten eine Zugehörigkeit eines Teils der Substanzen zumindest zu einem Polypeptidtyp mit toxischen Komponenten, also Polypeptidtoxinen, an. Es wurden jedoch auch Toxine mit einem Molekulargewicht von 30-55 kDa ermittelt, die keine Proteinstruktur aufweisen.
Fraktionen mit gleichen Zusammensetzungen können zusammen gesammelt werden. Für die weitere Verarbeitung und Lagerung werden die einzelnen Fraktionen gefriergetrocknet, beispielweise mit folgenden Parametern:
Die zu lyophylisierende Fraktion wird in einem offenen, mit perforierter Aluminiumfolie locker bedeckten Teflonvial, auf Minus 22 Grad Celsius gekühlt. Zur sicheren Durchfrierung der Probe wird eine Kühlzeit von 11 Stunden (bei Skolopendergiften mindestens 20 Stunden) eingehalten. Dann wird ein Vakuum von 0,200 mbar angelegt. Nach Erreichen des Vakuums wird die Fraktion auf Plus 4 Grad Celsius erwärmt und mindestens 24 Stunden unter Aufrechterhaltung des Vakuums auf dieser Temperatur gehalten. Nach dem Gefriertrocknungsvorgang wird das Teflonvial mit der lyophilisierten Fraktion luftdicht verschraubt. Die Lagerzeit beträgt bei Raumtemperatur ca. 3. Monate (bei Skolopendergiften 4 Wochen), bei Plus 7 Grad Celsius ca. 1 Jahr (Skolopendergifte sind bei dieser Temperatur nur etwa 5 Monate stabil) und bei Minus 14 Grad Celsius ca. 5 Jahre (Skolopendergifte sollten bei längerer Lagerung bei Minus 80 Grad Celsius gelagert werden).
4. Beladung dendritischer Zellen mit Peptidtoxinen
3-5 mL einer Kultur dendritischer Zellen (2,5 bis 15 Millionen dendritische Zellen/5 mL), hergestellt nach dem in dieser Erfindung weiter oben beschriebenem Verfahren, wurden mit 0,5 bis 2,5 mL einer Hautkrebszelllösung (Überstand einer frisch aufgeklopften reinen menschlichen Hautkrebszellkulturflasche mit etwa 250.000 Hautkrebszellen/mL Zellmedium. Medium: 500 mL DMEM-Ham's F-12, 10 mL Penicillin/Streptomycin, 5 mL Glutamin und 50 mL FBS) versetzt. Anschließend wurden 1 bis 2 mL einer Lösung, die ca. 150 µg/mL Peptidtoxin der Fraktion 3 aus Loxosceles spiniceps enthielten, zugesetzt. Es wurde 24 Stunden bei Raumtemperatur inkubiert. Dann wurde unter der sterilen Werkbank mit einer vorher autoklavierten Pasteurpipette etwa 4 mL Mediumüberstand (möglichst ohne dendritische Zellen) abgenommen und verworfen. Anschließend erfolgte eine weitere Zugabe von 1 bis 2 mL des Peptidtoxines Lox.Tox. 3 (gleiche Konzentration wie bei erster Zugabe), so dass eine Endkonzentration an Peptidtoxin von ca. 100 µg/mL vorlag. Bis zur Verwendung der so beladenen dendritischen Zellen werden diese weiter bei 37°C im Brutschrank inkubiert
6. Wirkung der beladenen dendritischen Zellen auf maligne Melanomzellen
Die mit den genannten Toxinen beladenen dendritischen Zellen werden gesammelt/angereichert, so daß eine möglichst "gesättigte" Lösung an dendritischen Zellen, beladen mit Toxinen, entsteht. Im Mischgewebszellversuch, d. h. einer Kultur aus gesundem Gewebe und Hauttumorzellen (Zellkultur: Malign. Melanom: sicher als diese identifizierte Zellen, vom Patienten nach Absprache mit diesem erhalten, seit 1995 ebenfalls als Langzeit- und Subkultur beobachtet) wurden dann die Wirkungen unterschiedlicher Gifte, mit welchen die dendritischen Zellen beladen werden, ausgetestet. Im Mittel waren die Tumorzellbereiche (malig. Melanomzellen) im Durchmesser 4 mm groß und etwa 1-2 mm dick. Beladene dendritische Zellen wurden direkt ins Medium (500 DMEM-Ham's F-12, 10 mL Penicilin/Streptomycin; 5 mL Glutamin und 50 mL FBS) gegeben, wobei zwar alle Tumorzellbereiche angegriffen wurden, die Prozedur aber am längsten dauerte und nach 3 Wochen wiederholt werden mußte. Beim Injizieren von dendritischen Zellen in den Tumor kann sehr selektiv gearbeitet werden, doch sterben viele dendritische Zellen dabei ab. Am effektivsten erwies es sich, die mit den Giften beladenen Zellen direkt an den Tumorrand zu injizieren, so daß die dendritischen Zellen ihrer Natur entsprechend, den biologisch aktiven Tumorrandbereich zuerst zerstören können. Die lysierten Tumorzellen werden verdaut (teilweise von Makrophagen). Bei sämtlichen untersuchten tierischen Gifte wuchsen die lysierten Zellbereiche mit gesunden Zellen wieder zu. In diesem Beispiel wurde die Wirkung der nachfolgenden Gifte untersucht:
Die beste und schnellste Tumorzerstörung schon nach einmaliger Gabe von beladenen dendritischen Zellen an den Tumorrand wurde mit Giften von Skolopendern, Bitis arietans, Loxosceles spiniceps erreicht. Hierbei erfolgte eine vollständige Tumorzellzerstörung schon nach 6 h bei einmaliger Zugabe, wobei die lysierten Zellbereiche mit gesunden Zellen zuwuchsen.
Wenn nicht alle Tumorzellen zerstört sind, gibt man alle zwei Tage eine neue Gabe an beladenen dendritischen Zellen hinzu.

Claims (21)

1. Mit toxischen Substanzen beladene dendritische Zellen, dadurch gekennzeichnet, daß die toxischen Substanzen (Toxine) aus dem Gift von Scolopendern der Gattungen Scolopendra und Hemiscolopendra, Schlangen der Gattungen Bitis und Naja, Spinnen der Gattungen Loxosceles und Sicarius und Pholcus sowie Skorpionen der Gattung Parabuthus und einer Kombination aus einem oder mehreren dieser Toxine ausgewählt sind.
2. Mit toxischen Substanzen beladene dendritische Zellen, dadurch gekennzeichnet, daß die Substanzen ausgewählt werden aus Toxinen von Giften der Scolopenderarten Scolopendra morsitans, S. gigantea und Hemiscolopendra sp., der Schlangenarten Bitis arietans (Puffotter), Bitis gabonica (Gabunotter), Bitis nasicornis (Nashornviper), B. atropos, B. caudalis, B. peringueyi, der Speikobraarten Naja melanoleuca, Naja pallida und Naja naja sputatrix, der araneomorphen Einsiedlerspinnenarten Loxosceles laeta, L. spiniceps, L. bergen, L. parami, L. rufescens, L. reclusa, L. deserta, der Sechsaugenkrabbenspinnenarten Sicarius hahni, S. albospinosus, S. testaceus, 5. argentinensis, den Zitterspinnenarten Pholcus phalangioides, Pholcus opilionides, Pholcus spp. (RSA) und Pholcus spp. (Kuba), der Dickschwanzskorpionarten Parabuthus transvalllicus, P. granulosus, P. villosus und einer Kombination aus einem oder mehreren dieser Toxine.
3. Dendritische Zellen nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die dendritischen Zellen menschlichen Ursprungs sind.
4. Dendritische Zellen nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß die Toxine durch Fraktionierung des Giftcocktails der genannten Tierarten gewonnen wurden.
5. Dendritische Zellen nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die durch Fraktionierung des Giftcocktails gewonnenen Toxine zusammen mit weiteren, in den einzelnen Fraktionen vorliegenden Substanzen eingesetzt werden, ohne daß eine weitere Aufreinigung erfolgt.
6. Dendritische Zellen nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die Toxine in Reinform eingesetzt werden.
7. Dendritische Zellen nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die Toxine in rekombinanter Form vorliegen.
8. Dendritische Zellen nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die Toxine Peptidtoxine sind.
9. Dendritische Zellen nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die Peptidtoxine ein Molekulargewicht von ca. 50-350 kDa besitzen.
10. Dendritische Zellen nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die Toxine nekrotische, cytotoxische und/oder apoptotische Eigenschaften aufweisen.
11. Dendritische Zellen nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die dendritischen Zellen mit den Toxinen durch Lipofektion und/oder Laser- Mikroinjektion beladen wurden.
12. Dendritische Zellen nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die Toxine eine Amidogruppe, jedoch keine Proteinstruktur aufweisen und ein Molekulargewicht von 30-55 kDa aufweisen.
13. Dendritische Zellen nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die dendritischen Zellen in einer therapeutisch wirksamen Menge mit den Toxinen beladen sind, wobei die dendritischen Zellen zur Beladung mit einem Medium in Kontakt gebracht wurden, in dem die Toxinkonzentration im Bereich von 0,5-250 µg/mL, bevorzugt 80-225 µg/mL, noch bevorzugter ungefähr 170 µg/mL, liegt.
14. Dendritische Zellen nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß synthetisch oder rekombinant hergestellt Peptidtoxine eingesetzt werden.
15. Dendritische Zellen nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß Derivate der Peptidtoxine eingesetzt werden, bei denen ein oder mehrere Aminosäuren hinzugefügt, deletiert und/oder ausgetauscht wurden, wobei die toxischen Eigenschaften des Toxins im wesentlichen beibehalten bleiben.
16. Dendritische Zellen nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß sie weiterhin mit Interferonen, Cytokinen, Cytokin-Rezeptoren, Anaphylatoxinen, Glycosiden und/oder Antikörpern beladen sind.
17. Verfahren zur Herstellung von dendritischen Zellen nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die dendritischen Zellen mit einem oder mehreren Toxinen, wie sie in den Ansprüchen 1-16 definiert wurden, in Kontakt gebracht werden, um die Zellen mit den Toxinen zu assoziieren.
18. Verfahren nach Anspruch 17, dadurch gekennzeichnet, daß zur Beladung die dendritischen Zellen mit den toxischen Substanzen inkubiert werden.
19. Verfahren zur Herstellung von dendritischen Zellen nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die toxischen Substanzen in die dendritischen Zellen aufgenommen werden oder sich mit den dendritischen Zellen assoziieren.
20. Verfahren zur Herstellung von dendritischen Zellen nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, daß die Beladung durch Lipofektion und/oder Laser-Mikroinjektion der toxischen Substanzen erfolgt.
21. Verwendung der mit toxischen Substanzen beladenen dendritischen Zellen nach einem oder mehreren der vorhergehenden Ansprüche zur Behandlung von Tumorerkrankungen, insbesondere von Tumoren der Haut und der Schleimhaut.
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2005002604A1 (de) * 2003-06-24 2005-01-13 Toximed Gmbh Pharmazeutischer wirkstoff gegen tumorerkrankungen

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE10328252A1 (de) * 2003-06-24 2005-01-13 Toximed Gmbh Pharmazeutischer Wirkstoff
WO2005023868A1 (fr) * 2003-09-05 2005-03-17 Shanghai Chuangeng Bio-Tech. Co., Ltd. Serine protease, et nucleotides codant cette serine protease
DE102004019323A1 (de) * 2004-04-21 2005-11-10 Toximed Gmbh Mit toxischen Substanzen beladene dendritische Zellen zur Behandlung von Nierenzellkarzinomen
WO2007065925A2 (de) * 2005-12-07 2007-06-14 Toximed Gmbh Zusammensetzung zur behandlung von melanomen und hautunreinheiten sowie kosmetisches hautpflegemittel
WO2010071791A2 (en) * 2008-12-17 2010-06-24 Discovery Technology International, Lllp Piezoelectric motor with high torque
JP2012513188A (ja) 2008-12-19 2012-06-07 ディスカバリー テクノロジー インターナショナル,インク. 圧電モータ
US8183742B2 (en) * 2009-09-01 2012-05-22 Discovery Technology International, Inc. Piezoelectric rotary motor with high rotation speed and bi-directional operation
CN103823008B (zh) * 2014-03-14 2016-03-02 北京市疾病预防控制中心 构建液相色谱-质谱数据库检测未知毒物的方法
CN111574587B (zh) * 2020-05-26 2022-08-30 湖南中医药大学 一种蜈蚣提取多肽和在制备抗肿瘤药物方面的用途

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5196193A (en) * 1989-10-31 1993-03-23 Ophidian Pharmaceuticals, Inc. Antivenoms and methods for making antivenoms
US5565431A (en) * 1994-06-20 1996-10-15 Lipps; Binie V. Cancer cell inhibitors and method
US6458585B1 (en) * 1996-08-14 2002-10-01 Nexell Therapeutics Inc. Cytokine-free culture of dendritic cells
EP1113821A1 (de) * 1998-09-15 2001-07-11 University Of Pittsburgh Of The Commonwealth System Of Higher Education In situ injektion von antigen-präsentierenden zellen mit genetisch verstärkter cytokin expression

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
J. of Investigative Dermatology/Jan.2000, Vol.114,No.1, S.234, Zitat 47 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2005002604A1 (de) * 2003-06-24 2005-01-13 Toximed Gmbh Pharmazeutischer wirkstoff gegen tumorerkrankungen

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Publication number Publication date
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DE10024383B4 (de) 2005-07-21
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EP1283726A2 (de) 2003-02-19
WO2001087346A2 (de) 2001-11-22
US20040013740A1 (en) 2004-01-22

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