CZ34708U1 - Kit pro test biologické účinnosti transfer faktoru - Google Patents

Kit pro test biologické účinnosti transfer faktoru Download PDF

Info

Publication number
CZ34708U1
CZ34708U1 CZ2020-38062U CZ202038062U CZ34708U1 CZ 34708 U1 CZ34708 U1 CZ 34708U1 CZ 202038062 U CZ202038062 U CZ 202038062U CZ 34708 U1 CZ34708 U1 CZ 34708U1
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
transfer factor
temperature
preparation
dialysis
tablet
Prior art date
Application number
CZ2020-38062U
Other languages
English (en)
Inventor
Juraj Vronka
Original Assignee
AUMED, a.s.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by AUMED, a.s. filed Critical AUMED, a.s.
Priority to CZ2020-38062U priority Critical patent/CZ34708U1/cs
Publication of CZ34708U1 publication Critical patent/CZ34708U1/cs

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5008Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
    • G01N33/5014Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics for testing toxicity
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5008Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
    • G01N33/5044Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics involving specific cell types
    • G01N33/5047Cells of the immune system
    • G01N33/505Cells of the immune system involving T-cells
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/52Use of compounds or compositions for colorimetric, spectrophotometric or fluorometric investigation, e.g. use of reagent paper and including single- and multilayer analytical elements

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Dosavadní stav techniky popisuje tyto výrobní technologické kroky:
a) Příprava leukocytámího koncentrátu
b) Dialýza a/nebo ultrafiltrace
c) Koncentrace lyofilizací
d) Příprava roztoku surového léčiva
e) Mezioperační zkoušky
f) Homogenizace
g) Předfiltrace
h) Ultrafiltrace
i) Sterilizující filtrace
j) Tepelná inaktivace
k) Rozpínání
1) Lyofilizace
Dosud vyráběné transfer faktory jsou připravovány buď jako tekuté přípravky nebo ve formě prášku, získaného lyofilizací nebo jinou formou sušení. Jejich bezpečnost je zajištěna několika metodami; nej častěji tepelným ošetřením (pasterizaci při definované teplotě a délce trvání) nebo různými stupni filtraci (např. sterilizující filtrace) a testy vstupní suroviny na nepřítomnost patologických mikroorganizmů. Výstupem všech dosud popsaných postupů je tekutá nebo prášková forma transfer faktorů, kterou lze aplikovat buď injekčně (podkožně nebo intravenózně) nebo jako perorálně podané přípravky (např. roztoky) do zažívacího traktu.
- 1 CZ 34708 UI
Biologická účinnost dosud vyráběných transfer faktorů je prokazována testováním in vivo na zvířecích modelech nebo in vitro sledováním jejich vlivu na cytokinové a jiné buněčné aktivity.
Vyráběné přípravky na bázi transfer faktorů vykazují tyto nevýhody:
- při injekčním podání mají velkou bolestivost, která je přímo úměrná aplikovaným objemům;
- parenterální přípravky musí být vyráběny jako sterilní přípravky;
- biologický účinek transfer faktorů, podávaných perorálně do zažívacího traktu, je snižován agresivním prostředím zažívacích orgánů.
Technické řešeni řeší všechny tyto nevýhody modifikaci technologie výroby a technologií přípravy transfer faktoru ve formě lyofilizované tablety definovaného složení.
Podstata technického řešení
Podstatou technického řešení je kit pro test biologické účinnosti transfer faktoru, popsaný dále v kapitole „Test biologické účinnosti“ a v příkladu 3.
Způsob výroby zahrnuje následující technologické kroky:
a) Přípravu leukocytámího koncentrátu
b) Dialýza nebo ultrafiltrace
c) Odstranění soli a koncentrace nanofiltrací
d) Tepelná inaktivace
e) Formulace tablety
f) Příprava lyofilizované tablety
Tři technologické kroky: příprava leukocytámího koncentrátu (transport, skladování, příprava homogenátu), technologie přípravy účinné látky (dialýza nebo ultrafiltrace) a tepelná inaktivace probíhají dle současného stavu techniky.
Známým způsobem získaná účinná látka (dialyzát nebo ultrafiltrát) obsahuje vedle biologicky účinných složek velké množství balastu ve formě solí. Tyto sole mají buď fýziologický původ (přirozené komponenty krevních složek) nebo umělý (protisrážlivé látky, přidávané do krve při jejím odběru). Zároveň tento materiál obsahuje nežádoucí vysoký obsah vody.
Technické řešení spočívá zejména v zařazení následujících nových kroků při způsobu přípravy léčiva transfer faktor:
- odstranění přebytečných solí a přebytečného obsahu vody použitím technologie nanofiltrace přes membránu o vhodné porozitě;
- přípravu lyofilizované tablety obsahující transfer faktor jako účinnou látku;
- aplikaci účinné látky perorálně ve formě lyofilizované tablety, která se nepolyká a působí přes bukální sliznici;
- 2 CZ 34708 UI
- test biologické účinnosti přípravku, založený na sledování proliferačního efektu na tkáňovou kulturu.
Popis jednotlivých kroků
Příprava leukocytámího homogenátu:
Leukocytámí koncentráty od jednotlivých dárců jsou transportovány a skladovány ve zmraženém stavu. Po rozmraženi při teplotě do +37 °C se surovina získaná od jednotlivých dárců spojuje do většího objemu. Práce musí probíhat ve výrobních prostorách s definovanou třídou čistoty prostředí. Následně se v leukocytámím homogenátu rozruší všechny membránové komponenty metodou opakovaného zmrazování a rozmrazování, popřípadě rozrušením buněk ultrazvukem, nebo kombinací obou postupů.
al) Příprava homogenátu metodou zmrazení - rozmražení:
Zmrazování se provádí v lázni denaturovaného etylalkoholu při minimální teplotě -35 °C na rotačních zmrazovacích zařízeních. Rozmrazování se provádí ve vodní lázni při teplotě maximálně +37 °C. Celý cyklus mrazení a rozmrazování se opakuje 6x. Po ukončeni 6. cyklu se homogenát ponechaný v původních lahvích uloží do mrazicího pultu při teplotě min. -17 °C do dalšího zpracování.
a2) Příprava homogenátu pomocí ultrazvuku:
Leukocytámí homogenát se po rozmražení připraví rozrušením buněk ultrazvukem při 20 kHz po dobu 10 minut při teplotě +2 °C až +8 °C. Po této době dezintegrace se získaný homogenát uloží do mrazicího pultu při teplotě min. -17 °C až do dalšího zpracování.
a3) Příprava homogenátu kombinovanou metodou:
Jako alternativní postup výroby se používá kombinovaný postup homogenizace leukocytů. Cyklus zmrazení a rozmraženi se opakuje 5 x s následnou dezintegrací ultrazvukem při 20 kHz po dobu 3 minut při teplotě +2 °C až +8 °C. Po této dezintegraci se získaný homogenát uloží do mrazícího pultu při teplotě min. -17 °C až do dalšího zpracováni.
U všech teplot uváděných v tomto výrobním kroku by neměl být jejich výkyv větší než 30 °C na obě strany teplotní stupnice a čas by neměl být jiný než v řádu minut.
b) Dialýza
Zpracování leukocytámího homogenátu se provádí v uzavřeném systému na dialyzační koloně. V případě, že leukocytámí homogenát byl před dalším zpracováním zmražen, rozmrazí se ve vodní lázni max. +37 °C teplé. Teplota může být i nižší (do + 4 °C). Je výhodou, pokud se od definované teploty neliší o více než +33 °C.
Dialýza homogenátu probíhá jako dialýza v uzavřeném systému.
Dialýza se provádí na dialyzační jednotce z umělé ledviny obsahující membránu, zadržující částice o relativní molekulové hmotnosti větší než 10 000. Dialýza se provádí za snížené teploty +2 °C až +8 °C. Tato teplota nemá být odlišná o více než 20 °C. Objem homogenátu leukocytámího koncentrátu zpracovaného v jednom cyklu se pohybuje s výhodu od 1,4 do 2,4 1. Neměl by být vyšší než desítky litrů a menší než 0,2 litru. Množství vody na injekci potřebné k dialýze nízkomolekulámích látek v rozmezí teplot +2 °C až +8 °C se pohybuje v rozmezí 8 až 13 1. Toto
- 3 CZ 34708 UI množství vody muže být pn použití jiných teplot různé, nemělo by být v jiném objemovém řádu, než jsou litry.
Je výhodou, pokud při vlastním průběhu dialýzy dezintegrovaný leukocytámí koncentrát pomocí čerpadla koluje přes dialyzační jednotku okruhem o průtoku 1,2 až 2,0 1 / hod. a voda na injekci jako dialyzační medium přes stejnou dialyzační jednotkou druhým okruhem rychlostí 0,4 až 0,5 1/hod. Za těchto podmínek se pohybuje doba dialýzy v rozmezí 24 hodin ± 4 hod. Pokud jsou v procesu použité jiné cirkulační rychlosti, musí se úměrně upravit i doba dialýzy. Dialýza se ukončí, když hodnota absorbance dialyzátu klesne pod 0,6 při 260 nm. Tato hodnota je doporučená, může být i odlišná.
Obdobným způsobem lze postupovat v případě, že je dialýza nahrazena ultrafiltrací.
c) Odstranění solí a koncentrace nanofiltrací
V tomto výrobním kroku se získaný dialyzát zbavuje nežádoucích solí a zároveň se koncentruje nanofiltrací na požadovaný objem. V tomto výrobním kroku jde především o to, že získaný dialyzát, který obsahuje pro další zpracování příliš velký objem solí a vody musí být odsolen a zakoncentrován tak, aby byl přímo použitelný pro konstrukci lyofilizované tablety, tedy bez další nutnosti dořeďování nebo zahušťování nebo obohacování nebo jakékoliv jiné dodatečné úpravy získaného roztoku. Metody zahušťování mohou být různé. Použitá metoda řeší dva technologické požadavky: šetrným postupem zbavuje produkt solí a nežádoucího nadměrného objemu vody. Proti tepelnému namáhání je produkt chráněn chlazením celého procesu. Teplota při nanofiltrací by neměla překročit +30 °C a je výhodou, když se tato teplota, pohybuje v rozsahu 14 až 25 °C a zpracovávaný objem tekutiny není větší než 50 litrů a menší než 5 litrů. Ideální objem se pohybuje kolem 15 litrů. Pracovní tlak na filtruje 20 bar ± 5 bar (2 MPa± 0,5 MPa). Vždyje třeba se vyhnout statickému protitlaku na straně permeátu. Filtrace se provádí systémem maximálního oddělení permeátu z filtrovaného vzorku. Zbývající vzorek je ve filtračním zařízení přímo naředěný demineralizovanou vodou v množství odebraného permeátu. Po promíchání takto naředěné tekutiny následuje vlastní filtrace. Tento postup se opakuje 4x. Pro nanofiltrací se s výhodou používá polyamidový tenkovrstvý kompozit jako membrána o porozitě umožňující propustnost do 1000 Da. Předmětem patentové ochrany v tomto výrobním krokuje krok odstranění přebytečných solí a vody popsanou metodou nanofiltrace.
d) Tepelná inaktivace
Pro bezpečnost produktu je třeba zajistit jeho inaktivaci. Transfer faktor je tepelně inaktivován pasterizací při +60 °C po dobu 10 hodin ve vodní lázni. Popsaný postup zaručuje, že produkt je bezpečný a zároveň je natolik šetrný, že nezpůsobí jeho poškození. Tento technologický krok probíhá rovněž dle současného stavu techniky.
e) Formulace matrice tablety
Z hlediska obsahu zahušťovadel a plnidel má tableta toto definované složení:
Formulace jedné tablety reprezentuje tyto komponenty:
Dextranum 40 0,05 g (C6H10O5)n lota karagenan 0,0015 g (P-D-galaktosa-4-sulfát; 3,6-anhydrid-a-D-galaktosa-2-sulfát)
Macrogolum300 0,005 g (Polyethylenglycolum 300)
- 4 CZ 34708 UI
Saccharinumnatricum (Sodná sůl l,l-dioxid-l,2-benzothiazol-3(2H)-onu; C7H4NNaO3S )
Účinná látka (transfer faktor)
Aqua purificata
0,0003333 g léčivá dávka ad 0,5 g
Vlastní příprava tablet:
Předem se připraví roztok účinné látky (transfer faktoru) tak, aby jedna dávka byla rozpuštěna v 0,25 ml vody v kvalitě „voda pro injekce“.
Následuje příprava vlastní matrice:
0,0015 g karagenanu iota se rozpustí za zvýšené teploty ve vodní lázni (60 °C) v 0,17 g čištěné vody. K tomuto roztoku se přidá 0,05 g dextranu 40 a mícháním se rozpustí. K urychlení rozpouštění dextranu lze použít ultrazvukovou lázeň po dobu 1 min nebo lze směs udržovat mírně zahřátou ve vodní lázni (40 °C).
Po ochlazení na laboratorní teplotu se přidá 0,005 g makrogolu 300 a 0,0003 g sodné soli sacharinu, doplní se čištěnou vodou na 0,25 g a míchá se do rozpuštění všech složek. Následně se matrice smísí s předem připraveným roztokem TFI. Následuje dávkování po 0,5 ml do blistru, který slouží jako primární obal lyofilizované tablety. Předmětem technického řešení v tomto výrobním kroku je matrice tablety.
f) Příprava lyofilizované tablety
Dle předpisu pro formulaci jedné tablety se připraví roztok matrice tablet a vhodným dávkovacím zařízením se tento roztok rozplní přímo do jednotlivých jamek blistrů po 0,5 ml.
Před rozplněním přípravku do blistrů se lyofilizační zařízení nastaví do modu vymražení desek do nadefinované teploty -50 °C. Vymražení desek do této teploty proběhne do cca 2 hodin.
Po dosažení požadované teploty -50 °C se na vymražené desky lyofilizačního zařízení založí blistry s rozplněným materiálem. Následně se lyofilizační zařízení přepne do modu primárního sušení (sublimace), nastaví se hodnoty pro vymražení kondenzátoru na hodnotu -55 °C a hodnotu vakua na 0,3 mbar (30 Pa). Po dosažení nastavené teploty kondenzátoru -55 °C se spustí lyofilizační proces.
Lyofilizační sušící proces lze nastavit v automatickém nebo poloautomatickém režimu.
V automatickém režimu nelze zasahovat do nastavených parametrů po celou dobu lyofilizace, poloautomatický režim umožňuje v případě potřeby upravovat a přepínat jednotlivé fáze (vymražení, primární sušení, sekundární sušení) ručním ovládáním. Po 2 hodinách se proces lyofilizace mění do modu sekundárního sušení (desorbce).
Teplota desek se nastaví na hodnotu -30 °C, vakuum na 0,005 mbar (0,5 Pa).
V dalším postupu se teplota desek vždy po 1 hodině snižuje postupně na -20 °C, -10 °C, 0 °C, +10 °C a+25 °C. Celý lyofilizační proces se ukončí maximálně do 24 hodin od jeho zahájení. Reálný čas ukončení lyofilizace se odvíjí od dosažení popsaných teplotních hodnot desek a hodnot vakua. Po ukončení lyofilizace se lyofilizační zařízení zavzdušní, blistry s vysušeným produktem
- 5 CZ 34708 UI se vyjmou a na blistrovacím zařízení uzavřou zatavovací krycí fólií. Předmětem technického řešení v tomto výrobním krokuje forma lyofílizované tablety.
Výše uvedeným způsobem je připraveno léčivo transfer faktor, z leukocytů periferní krve, obsahující bílkovinné složky a složky nukleových kyselin, jejichž poměr v léčivu vyjadřuje index absorbance, což je poměr získaný spektrofotometrickým měřením absorbance v UV oblasti při 260 nm a 280 nm. Tento index nesmí mít hodnotu menší než 1,7 s výhodu v rozpětí 1,7 až 2,1. Léčivo je zbavené balastních solí metodou nanofiltrace. Žádná ze složek léčiva nemá molekulovou hmotnost větší než 10 000 daltonů.
Léková forma podání je lyofilizovaná tableta. V jedné lyofílizované tabletě je obsažena jedna léčivá dávka přípravku, která představuje množství biologicky aktivních látek získaných z cca 200 milionů periferních leukocytů, schopných normalizovat porušenou buněčnou imunitu příjemce. Lyofilizovaná tableta se vyrábí lyofilizací tekuté matrice. Tekutá matrice se vyznačuje hodnotou osmolality v rozpětí 150 až 400 mmol/kg. V lyofílizované tabletě lze prokázat účinnost biologicky aktivních látek.
Test biologické účinnosti
Test biologické účinnosti je založený na sledování účinku transfer faktoru na viabilitu modelové buněčné linie po jejím předchozím ovlivnění imunosupresivní látkou azathioprinem.
Jako modelová buněčná linie se používá imortalizovaná Τ- lymfocytámí buněčná linie Jurkat CCL81. Viabilita buněk je měřena na průtokovém cytometru s použitím komerčního ΜΤΤ testu. ΜΤΤ měří metabolickou aktivitu buněk a je tak vhodný pro stanovení buněčné viability. Test je založen na redukci tetrazoliové soli ΜΤΤ (3- (4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5- difenyltetrazolium bromid) na nerozpustný formazan. Množství vytvořeného formazanu je pak přímo úměrné počtu živých buněk.
Buněčná linie Jurkat je kultivována v RPMI médiu obohaceném 10 % fetálního bovinního séra, 2mM glutaminu a směsi penicilín (100I/ml)-streptomycin (100pg/ml). Pro supresi modelové buněčné linie se použije azathioprin o koncentraci 5 pg/ml.
Pro test biologické účinnosti se přidá transfer faktor ředěný 80 až 160krát. Inkubace buněk probíhá po dobu 72 h. Po této době inkubace se ke každé jamce v destičce přidá 20 μΐ zásobního roztoku ΜΤΤ (5 mg/ml) a destička je nadále inkubována 3 h při 37 °C. Poté se odstraní supernatant a vytvořené krystalky formazanu se solubilizují ve 150 μΐ dimethylsulfoxidu. Výsledná optická denzita roztoků se měří při 570 nm na destičkovém spektrofotometru a vyhodnocuje se jako viabilita buněk.
Při vlastním testuje výhodné použít tyto srovnávací skupiny:
Kontrolní skupina - samotné neovlivněné Jurkat buňky;
Jurkat buňky suprimované azathioprinem;
Jurkat buňky ovlivněné transfer faktorem;
Jurkat buňky suprimované azathioprinem a následně ovlivněné transfer faktorem.
Vyhodnocení výsledků:
Přidaný samotný transfer faktor nijak neovlivní viabilitu buněk oproti kontrolní skupině.
Vzhledem ke kontrole přidaný azathioprin sníží viabilitu buněk pod 50 % hodnoty kontrolní skupiny.
Transfer faktor v kombinaci s azathioprinem vrátí viabilitu buněk potlačenou azathioprinem o cca 40 % směrem zpět k normálu.
-6CZ 34708 UI
Předmětem technického řešení v tomto výrobním krokuje in vitro test biologické účinnosti transfer faktoru.
Použití
Technické řešení je využitelné při komerční přípravě jakéhokoliv transfer faktoru, specifického i nespecifického, připraveného z homogenátu leukocytů periferní krve. Technické řešení je využitelné jak při výrobě humánního přípravku, tak i u modifikací určených pro veterinární použití. Předmětem ochrany je i doporučené podání transfer faktoru, které spočívá v podání lyofilizované tablety do oblasti bukální sliznice.
Podání transfer faktoru v této formě zabrání spolknutí tablety, v průběhu několika sekund dojde k jejímu rozpuštění na sliznici.
Hlavní terapeutický efekt je tak zprostředkovaný průnikem léčiva pouze přes ústní sliznici.
Příklady uskutečněni technického řešení
Příklad 1
Způsob přípravy léčiva transfer faktor
a) Přípravu leukocytámího koncentrátu
b) Dialýza nebo ultrafiltrace
c) Odstranění solí a koncentrace nanofiltrací
d) Tepelná inaktivace
e) Formulace tablety
f) Příprava lyofilizované tablety
a) Příprava leukocytámího koncentrátu
Leukocytámí koncentráty jsou uskladněny ve zmraženém stavu. Následně se při teplotě max. +37 °C leukocytámí koncentrát spojí do pracovního objemu. Práce musí probíhat ve výrobních prostorách s definovanou třídou čistoty „C prostředí. Následně se v leukocytámím homogenátu rozruší všechny membránové komponenty metodou opakovaného zmrazování a rozmrazování, popřípadě rozmšením buněk ultrazvukem, nebo kombinací obou postupů.
a 1) Příprava homogenátu metodou zmrazení - rozmražení:
Zmrazování se provádí v lázni denaturovaného etylalkoholu při minimální teplotě -35 °C na rotačních zmrazovacích zařízeních.
Rozmrazování se provádí ve vodní lázni při teplotě maximálně +37 °C. Celý cyklus mrazení a rozmrazování se opakuje 6x. Po ukončení 6. cyklu se homogenát ponechaný v původních lahvích uloží do mrazicího pultu při teplotě min. -17 °C do dalšího zpracování.
a 2) Příprava homogenátu pomocí ultrazvuku:
Leukocytámí homogenát se po rozmražení připraví rozmšením buněk ultrazvukem při 20 kHz po dobu 10 minut při teplotě +2 °C až + 8 °C. Po této době dezintegrace se získaný homogenát uloží do mrazicího pultu při teplotě min. - 17 °C až do dalšího zpracování.
- 7 CZ 34708 UI a 3) Příprava homogenátu kombinovanou metodou:
Jako alternativní postup výroby se používá kombinovaný postup homogenizace leukocytů. Cyklus zmrazení a rozmražení se opakuje 5x s následnou dezintegrací ultrazvukem při 20 kHz po dobu 3 minut při teplotě +2 °C až +8 °C. Po této dezintegraci se získaný homogenát uloží do mrazícího pultu při teplotě min. -17 °C až do dalšího zpracování.
U všech teplot uváděných v tomto výrobním kroku by neměl být jejich výkyv větší než 30 °C na obě strany teplotní stupnice a čas by neměl být jiný než v řádu minut.
b) Dialýza
Zpracování leukocytámího homogenátu se provádí v uzavřeném systému na dialyzační koloně. V případě, že leukocytámí homogenát byl před dalším zpracováním zmražen, rozmrazí se ve vodní lázni max. + 37 °C teplé. Teplotamůže být i nižší (do + 4 °C). Je výhodou, pokud se od definované teploty neliší o více než 20 °C.
Dialýza se provádí na dialyzační jednotce z umělé ledviny obsahující membránu, zadržující částice o relativní molekulové hmotnosti větší než 10 000. Dialýza se provádí za snížené teploty +2 °C až +8 °C. Tato teplota nemá být odlišná o více než 20 °C. Objem homogenátu leukocytámího koncentrátu zpracovaného v jednom cyklu se pohybuje s výhodu od 1,4 do 2,4 1. Neměl by být vyšší než desítky litrů a menší než 0,2 litru. Množství vody na injekci potřebné k dialýze nízkomolekulámích látek v rozmezí teplot +2 °C až +8 °C se pohybuje v rozmezí 8 až 13 1.
Toto množství vody může být při použití jiných teplot různé, nemělo by být v jiném objemovém řádu, než jsou litry.
Je výhodou, pokud při vlastním průběhu dialýzy dezintegrovaný leukocytámí koncentrát pomocí čerpadla koluje přes dialyzační jednotku okmhem o průtoku 1,2 až 2,0 1/hod. a voda na injekci jako dialyzační medium přes stejnou dialyzační jednotkou dmhým okmhem rychlostí 0,4 až 0,5 1/hod. Za těchto podmínek se pohybuje doba dialýzy v rozmezí 24 hodin ± 4 hod. Pokud jsou v procesu použité jiné cirkulační rychlosti, musí se úměrně upravit i doba dialýzy. Dialýza se ukončí, když hodnota absorbance dialyzátu klesne pod 0,6 při 260 nm. Tato hodnota je doporučená, může být i odlišná.
Obdobným způsobem lze postupovat v případě, že je dialýza nahrazena ultrafiltrací.
c) Odstranění solí a koncentrace nanofiltrací
V tomto výrobním kroku se získaný dialyzát zbavuje nežádoucích solí a zároveň se koncentmje nanofiltrací na požadovaný objem.
Cílem je, aby dialyzát, který obsahuje pro další zpracování příliš velký objem solí a vody, byl odsolen a zakoncentrován tak, aby byl přímo použitelný pro konstmkci lyofilizované tablety. Proti tepelnému namáhání je produkt chráněn chlazením celého procesu. Teplota při nanofiltrací by neměla překročit +30 °C a je výhodou, když se tato teplota, pohybují v rozsahu 14 až 25 °C a zpracovávaný objem tekutiny není větší než 50 litrů a menší než 5 litrů. Ideální objem se pohybuje kolem 15 litrů. Pracovní tlak na filtru je 20 bar ± 5 bar (2 MPa± 0,5 MPa). Vždy je třeba se vyhnout statickému protitlaku na straně permeátu. Filtrace se provádí systémem maximálního oddělení permeátu z filtrovaného vzorku. Zbývající vzorek je ve filtračním zařízení přímo naředěný demineralizovanou vodou v množství odebraného permeátu. Po promíchání takto naředěné tekutiny následuje vlastní filtrace. Tento postup se opakuje 4x. Pro nanofiltrací se s výhodou používá polyamidový tenkovrstvý kompozit jako membrána o porozitě umožňující propustnost do 1000 Da.
-8CZ 34708 UI
d) Tepelná inaktivace - tento technologický krok probíhá rovněž dle současného stavu techniky.
Pro bezpečnost produktu je třeba zajistit jeho inaktivaci. Transfer faktor je tepelně inaktivován pasterizací při +60 °C po dobu 10 hodin ve vodní lázni. Popsaný postup zaručuje, že produkt je bezpečný a zároveň je natolik šetrný, že nezpůsobí jeho poškození.
e) Formulace tablety
Velikost šarže (120 tablet)
Dextranum 40 6,0 g lota karrageenan 0,18 g
Macrogolum 300 0,6 g
Saccharinum natricum 0,04 g
TFI 30 dávek
Aqua purificata ad 60,0 g
Předem se připraví roztok transfer faktoru (30 dávek) v 30 ml čištěné vody (případně vody na injekci). Následně se připraví matrice: 0,18 g karagenanu iota se rozpustí za zvýšené teploty ve vodní lázni (60 °C) v 20 g čištěné vody (odpovídá celkovému množství vzorku 60 g k přípravě 120 tablet). K tomuto roztoku se přidá 6,0 g dextranu 40 a mícháním se rozpustí. K urychlení rozpouštění dextranu lze použít ultrazvukovou lázeň po dobu 1 min nebo lze směs udržovat mírně zahřátou ve vodní lázni (40 °C).
Po ochlazení na laboratorní teplotu se přidá 0,6 g makrogolu 300 a 0,04 g sodné soli sacharinu, doplní se čištěnou vodou na 30,0 g a míchá se do rozpuštění všech složek. Vzniklá matrice se smísí s roztokem transfer faktoru
f) Příprava lyofilizované tablety
Připravená tekutá matrice tablet, obsahující účinnou látku transfer faktor se automatickou dávkovači pipetou rozplní do jednotlivých jamek blistrů po 0,5 ml. Před rozplněním přípravku TFI do blistrů se lyofilizátor nastaví do modu funkce mražení - vymražení desek do definované teploty -50 °C. Toto vymražení desek proběhne za cca 2 hodiny.
Po dosažení požadované teploty se založí blistry s rozplněnou matricí tablet na vymražené desky, lyofilizátor se přepne do modu primárního sušení (sublimace), nastaví se definované hodnoty pro vymražení kondenzátoru na hodnotu -55 °C a hodnota vakua na 0,3 mbar (30 Pa). Po dosažení nastavené teploty kondenzátoru se spustí lyofilizační proces. Lyofilizační proces lze nastavit v automatickém nebo poloautomatickém režimu. V automatickém režimu nelze zasahovat do nastavených parametrů po celou dobu lyofilizace. Poloautomatický režim umožňuje upravovat a přepínat jednotlivé fáze ručním ovládáním (vymražení, primární sušení, sekundární sušení).
Po cca 2 hodinách přechází lyofilizace do modu sekundárního sušeni (desorbce), teplota desek se nastaví na -30 °C, vakuum na 0,005 mbar (0,5 Pa). Následně se teplota desek postupně v intervalech po 1 hodině snižuje na -20 °C, -10 °C, 0 °C, +10 °C a +25 °C.
Lyofilizační proces se ukonči maximálně do 24 hodin, čas ukončeni lyofilizace se odvíjí od dosažení nastavených hodnot desek a vakua.
Po ukončení lyofilizace se lyofilizátor zavzdušní, blistry s lyofilizátem se vyjmou a na blistrovacím zařízení zakryjí fólií. Použité lyofilizační zařízení: LYOBETA 15.
-9CZ 34708 UI
Přiklad 2
Léčivo transfer faktor
Výše uvedeným způsobem je připraveno léčivo transfer faktor, z leukocytů periferní krve, obsahující bílkovinné složky a složky nukleových kyselin, jejichž poměr v léčivu vyjadřuje index absorbance, což je poměr získaný spektrofotometrickým měřením absorbance v UV oblasti při 260 nm a 280 nm. Tento index nesmí mít hodnotu menší než 1,7 s výhodu v rozpětí 1,7 až 2,1. Léčivo je zbavené balastních solí metodou nanofiltrace. Žádná ze složek léčiva nemá molekulovou hmotnost větší než 10 000 daltonů.
Příklad 3
Metodika testování biologické účinnosti léčiva podle popsaného technického řešení
Test biologické účinnosti
Pro měření viability byl použitý průtokový cytometr Guava EasyCyte, Luminex, USA a komerční MTT test Sigma-Aldrich, USA. Pro stanovení viability buněčné linie byl použit kit GuavaViaCount, Luminex, USA, který rozlišuje živé a mrtvé buňky na principu rozdílné permeability buněčné membrány pro DNA-vázající značky. Buněčná linie Jurkat byla kultivována v RPMI médiu obohaceném 10 % fetálního bovinního séra, 2 mM glutaminu a směsi penicilín (100 I/ml)streptomycin (100 pg/ml).
Pro test biologické účinnosti se použije transfer faktor ředěný 80 až l60krát. Inkubace buněk probíhá 72 h. Po této době inkubace se ke každé jamce v destičce přidá 20 pl zásobního roztoku MTT (5 mg/ml) a destička je nadále inkubována 3 h při 37 °C. Poté se odstraní supernatant a vytvořené krystalky formazanu se solubilizují ve 150 μΐ dimethylsulfoxidu. Výsledná optická denzita roztoků se měří při 570 nm na destičkovém spektrofotometru a vyhodnocuje se jako viabilita buněk. Optická denzita roztoku byla měřena při 570 nm na destičkovém spektrofotometru (Beckman Coulter, USA).
Při vlastním testuje výhodné použít tyto srovnávací skupiny:
Kontrolní skupina - samotné neovlivněné Jurkat buňky;
Jurkat buňky suprimované azathioprinem;
Jurkat buňky ovlivněné transfer faktorem;
Jurkat buňky suprimované azathioprinem a následně ovlivněné transfer faktorem.
Vyhodnocení výsledků:
Přidaný samotný transfer faktor nijak neovlivní viabilitu buněk oproti kontrolní skupině.
Vzhledem ke kontrole přidaný azathioprin sníží viabilitu buněk pod 50 % hodnoty kontrolní skupiny.
Transfer faktor v kombinaci s azathioprinem vrátí viabilitu buněk potlačenou azathioprinem o cca 40 % směrem zpět k normálu.
Příklad 4
Léková forma
Léková forma podání, kterou je lyofilizovaná tableta. V jedné lyofilizované tabletě je obsažena jedna léčivá dávka přípravku, která představuje množství biologicky aktivních látek získaných z cca 200 milionů periferních leukocytů, schopných normalizovat porušenou buněčnou imunitu příjemce. Lyofilizovaná tableta se vyrábí lyofilizací tekuté matrice. Tekutá matrice se vyznačuje hodnotou osmolality v rozpětí 150 až 400 mmol/kg. V lyofilizované tabletě lze prokázat účinnost biologicky aktivních látek.
- 10 CZ 34708 UI
Léková forma je připravena způsobem:
Dle předpisu pro formulaci jedné tablety se připraví roztok matrice tablet a vhodným dávkovacím zařízením se tento roztok rozplní přímo do jednotlivých jamek blistrů po 0,5 ml.
Před rozplněním přípravku do blistrů se lyofilizační zařízení nastaví do modu vymražení desek do nadefinované teploty -50 °C. Vymražení desek do této teploty proběhne do cca 2 hodin.
Po dosažení požadované teploty -50 °C se na vymražené desky lyofilizačního zařízení založí blistry s rozplněným materiálem. Následně se lyofilizační zařízení přepne do modu primárního sušení (sublimace), nastaví se hodnoty pro vymražení kondenzátoru na hodnotu -55 °C a hodnotu vakua na 0,3 mbar (30 Pa). Po dosažení nastavené teploty kondenzátoru -55 °C se spustí lyofilizační proces.
Lyofilizační sušící proces lze nastavit v automatickém nebo poloautomatickém režimu.
V automatickém režimu nelze zasahovat do nastavených parametrů po celou dobu lyofilizace, poloautomatický režim umožňuje v případě potřeby upravovat a přepínat jednotlivé fáze (vymražení, primární sušení, sekundární sušení) ručním ovládáním. Po 2 hodinách se proces lyofilizace mění do modu sekundárního sušení (desorbce).
Teplota desek se nastaví na hodnotu -30 °C, vakuum na 0,005 mbar (0,5 Pa).
V dalším postupu se teplota desek vždy po 1 hodině snižuje postupně na -20 °C, -10 °C, 0 °C, +10 °C a+25 °C. Celý lyofilizační proces se ukončí maximálně do 24 hodin od jeho zahájení. Reálný čas ukončení lyofilizace se odvíjí od dosažení popsaných teplotních hodnot desek a hodnot vakua. Po ukončení lyofilizace se lyofilizační zařízení zavzdušní, blistry s vysušeným produktem se vyjmou a na blistrovacím zařízení uzavřou zatavovací krycí fólií. Předmětem technického řešení v tomto výrobním krokuje forma lyofilizované tablety.
Výše uvedeným způsobem je připraveno léčivo transfer faktor, z leukocytů periferní krve, obsahující bílkovinné složky a složky nukleových kyselin, jejichž poměr v léčivu vyjadřuje index absorbance, což je poměr získaný spektrofotometrickým měřením absorbance v UV oblasti při 260 nm a 280 nm. Tento index nesmí mít hodnotu menší než 1,7 s výhodu v rozpětí 1,7 až 2,1. Léčivo je zbavené balastních solí metodou nanofiltrace. Žádná ze složek léčiva nemá molekulovou hmotnost větší než 10 000 daltonů.
Příklad 5
Použití lékové formy
a) Použití transfer faktoru podle tohoto technického řešení jako lékové formy lyofilizované tablety k podání do ústní dutiny, při kterém lyofilizovaná tableta bezprostředně adheruje ke sliznici, tím je zabráněno jejímu polknutí a je rychle na bukální sliznici rozpuštěna, přičemž se nedostane se přímo do trávicího systému.
b) Použití transfer faktoru podle tohoto technického řešení jako humánního nebo veterinárního léčiva.
c) Použití transfer faktoru podle tohoto technického řešení jako humánního nebo veterinárního doplňku stravy.
d) Použití transfer faktoru podle tohoto technického řešení jako humánního nebo jako veterinárního přípravku k nápravě chorobných stavů souvisejících s poruchou buněčné imunity, tedy chronické infekce, septické stavy, atopický ekzém, recidivující mykózy, psoriázy imunodeficience spojené s onkologickou léčbou.
- 11 CZ 34708 UI
e) Použití transfer faktoru podle tohoto technického řešení jako humánního nebo veterinárního profylaktického přípravku.
Průmyslová využitelnost
Technické řešení je využitelné při komerční přípravě jakéhokoliv transfer faktoru, specifického i nespecifického, připraveného z leukocytů periferní krve. Technické řešení je dále použitelné jak 10 při výrobě humánního léčivého přípravku, tak i u léčivých přípravků určených pro veterinární použití. Technické řešení je využitelné při komerční přípravě jakéhokoliv transfer faktoru, specifického i nespecifického, využitelného jako součást doplňků stravy. Přípravek získaný postupem přípravy podle tohoto technického řešení je použitelný u chorobných stavů souvisejících s poruchou buněčné imunity (chronické: infekce, septické stavy, atopický ekzém, recidivující 15 mykózy, psoriázy; imunodeficience spojené s onkologickou léčbou). Přípravek je použitelný i profylakticky. Doporučené podání: lyofilizovaná tableta je vložena do úst, kde dojde k jejímu ulpění na sliznici a k rychlému rozpuštění. Tableta se nepolyká.

Claims (2)

1. Kit pro test biologické účinnosti transfer faktoru, vyznačující se tím, že obsahuje suspenzi 5 Jurkat buněk ve třech variantách:
Jurkat buňky suprimované azathioprinem a
Jurkat buňky ovlivněné transfer faktorem a o
Jurkat buňky suprimované azathioprinem a následně ovlivněné transfer faktorem, přičemž dále obsahuje roztok tetrazoliové soli MTT, kde MMT představuje sloučeninu
3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-difenyltetrazolium bromid.
CZ2020-38062U 2020-06-12 2020-06-12 Kit pro test biologické účinnosti transfer faktoru CZ34708U1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2020-38062U CZ34708U1 (cs) 2020-06-12 2020-06-12 Kit pro test biologické účinnosti transfer faktoru

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2020-38062U CZ34708U1 (cs) 2020-06-12 2020-06-12 Kit pro test biologické účinnosti transfer faktoru

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ34708U1 true CZ34708U1 (cs) 2020-12-22

Family

ID=74566322

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ2020-38062U CZ34708U1 (cs) 2020-06-12 2020-06-12 Kit pro test biologické účinnosti transfer faktoru

Country Status (1)

Country Link
CZ (1) CZ34708U1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
TW580392B (en) Process for preparing synthetic soil-extract materials and medicaments based thereon
TWI309569B (en) Biocompatible dialysis fluids containing icodextrins
US4906616A (en) Hydrolyzed sodium casein compositions for dialysis procedures
DK2373321T3 (en) Biovedhæftende platelet lysate and compositions thereof for the treatment of mucostitis
JP5475671B2 (ja) ピロホスフェートを含む滅菌透析溶液
JPH115752A (ja) 赤血球内に生物学的活性薬剤をカプセル内封入する方法およびそのための装置
JPH0813750B2 (ja) 経口用トロンビン製剤
US20190209432A1 (en) System of multiple bags and method for the preparation of hemocomponents
CN101346154A (zh) 含低粘度藻酸盐的水溶性薄膜
CZ2020342A3 (cs) Způsob přípravy léčiva transfer faktor, léčivo transfer faktor, metodika testování biologické účinnosti, léková forma a její použití
CN113975245B (zh) 一种基于人参皂苷的仿生纳米递药系统的制备方法
Global Programme
KR101330394B1 (ko) 의약 용액, 이의 제조 방법 및 용도
CZ34708U1 (cs) Kit pro test biologické účinnosti transfer faktoru
CZ34517U1 (cs) Léčivo obsahující transfer faktor a jeho léková forma
EP3400029B1 (en) Compositions for reducing tissue adhesions
RU2745413C2 (ru) Система из множества пакетов и способ приготовления компонентов крови
RU2806093C1 (ru) Применение икаритина для получения лекарственных средств
CZ2006377A3 (cs) Lécivo transfer faktor - zpusob výroby a pouzití
JPH03169823A (ja) 抗ウイルス剤
JP3028298B2 (ja) 経口用トロンビン製剤
CN108926703A (zh) 骨肽葡萄糖注射液
RU2187316C2 (ru) Способ лечения и профилактики иммунологической недостаточности
JPH03505200A (ja) 治療活性のある、特に傷治療または老人医学に用いる作用物質およびかかる作用物質を含む製剤の製造方法
CN120078809A (zh) 一种用于预防衰老的间充质干细胞冻干粉的制备工艺及其应用

Legal Events

Date Code Title Description
FG1K Utility model registered

Effective date: 20201222

ND1K First or second extension of term of utility model

Effective date: 20231207