CZ2020342A3 - Způsob přípravy léčiva transfer faktor, léčivo transfer faktor, metodika testování biologické účinnosti, léková forma a její použití - Google Patents

Způsob přípravy léčiva transfer faktor, léčivo transfer faktor, metodika testování biologické účinnosti, léková forma a její použití Download PDF

Info

Publication number
CZ2020342A3
CZ2020342A3 CZ2020342A CZ2020342A CZ2020342A3 CZ 2020342 A3 CZ2020342 A3 CZ 2020342A3 CZ 2020342 A CZ2020342 A CZ 2020342A CZ 2020342 A CZ2020342 A CZ 2020342A CZ 2020342 A3 CZ2020342 A3 CZ 2020342A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
transfer factor
drug
preparation
tablet
temperature
Prior art date
Application number
CZ2020342A
Other languages
English (en)
Inventor
Juraj Vronka
Juraj RNDr Vronka
Original Assignee
AUMED, a.s.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by AUMED, a.s. filed Critical AUMED, a.s.
Priority to CZ2020342A priority Critical patent/CZ2020342A3/cs
Priority to EP21721385.9A priority patent/EP4072569A1/en
Priority to PCT/CZ2021/000014 priority patent/WO2021249581A1/en
Publication of CZ2020342A3 publication Critical patent/CZ2020342A3/cs

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/14Blood; Artificial blood
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/14Blood; Artificial blood
    • A61K35/15Cells of the myeloid line, e.g. granulocytes, basophils, eosinophils, neutrophils, leucocytes, monocytes, macrophages or mast cells; Myeloid precursor cells; Antigen-presenting cells, e.g. dendritic cells
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/1703Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates
    • A61K38/1709Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/0012Galenical forms characterised by the site of application
    • A61K9/0053Mouth and digestive tract, i.e. intraoral and peroral administration
    • A61K9/0056Mouth soluble or dispersible forms; Suckable, eatable, chewable coherent forms; Forms rapidly disintegrating in the mouth; Lozenges; Lollipops; Bite capsules; Baked products; Baits or other oral forms for animals
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/14Particulate form, e.g. powders, Processes for size reducing of pure drugs or the resulting products, Pure drug nanoparticles
    • A61K9/19Particulate form, e.g. powders, Processes for size reducing of pure drugs or the resulting products, Pure drug nanoparticles lyophilised, i.e. freeze-dried, solutions or dispersions
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/20Pills, tablets, discs, rods
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D61/00Processes of separation using semi-permeable membranes, e.g. dialysis, osmosis or ultrafiltration; Apparatus, accessories or auxiliary operations specially adapted therefor
    • B01D61/02Reverse osmosis; Hyperfiltration ; Nanofiltration
    • B01D61/027Nanofiltration
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D61/00Processes of separation using semi-permeable membranes, e.g. dialysis, osmosis or ultrafiltration; Apparatus, accessories or auxiliary operations specially adapted therefor
    • B01D61/14Ultrafiltration; Microfiltration
    • B01D61/145Ultrafiltration
    • B01D61/146Ultrafiltration comprising multiple ultrafiltration steps
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D61/00Processes of separation using semi-permeable membranes, e.g. dialysis, osmosis or ultrafiltration; Apparatus, accessories or auxiliary operations specially adapted therefor
    • B01D61/58Multistep processes
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D71/00Semi-permeable membranes for separation processes or apparatus characterised by the material; Manufacturing processes specially adapted therefor
    • B01D71/06Organic material
    • B01D71/56Polyamides, e.g. polyester-amides
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/15Medicinal preparations ; Physical properties thereof, e.g. dissolubility
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5008Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D2311/00Details relating to membrane separation process operations and control
    • B01D2311/10Temperature control
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D61/00Processes of separation using semi-permeable membranes, e.g. dialysis, osmosis or ultrafiltration; Apparatus, accessories or auxiliary operations specially adapted therefor
    • B01D61/14Ultrafiltration; Microfiltration
    • B01D61/145Ultrafiltration

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Water Supply & Treatment (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Nanotechnology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Physiology (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)

Abstract

Způsob přípravy léčiva transfer faktor, léčivo transfer faktor, metodika testování biologické účinnosti, léková forma a její použití, kde způsob přípravy léčiva z leukocytů periferní krve, vychází z jednotlivých kroků a) z připraveného leukocytárniho koncentrátu, b) dialýzy a nebo ultrafiltrace, c) odstranění solí a koncentrace nanofiltrací, d) tepelné inaktivace, e) formulace tablety a f) přípravy lyofilizované tablety, přičemž krok odstranění solí nanofiltrací z produktu a koncentrace produktu nanofiltrací spočívá v tom, že získaný dialyzát se zbavuje nežádoucích solí a zároveň se koncentruje nanofiltrací na požadovaný objem. Použití transfer faktoru je ve formě lyofilizované tablety k podání do ústní dutiny, při kterém lyofilizovaná tableta bezprostředně adheruje ke sliznici, tím je zabráněno jejímu polknutí a je rychle na bukální sliznici rozpuštěna, přičemž se dostane přímo do trávicího systému jako humánni nebo veterinární léčivo nebo doplněk stravy či profylaktický přípravek.

Description

Způsob přípravy léčiva transfer faktor, léčivo transfer faktor, metodika testování biologické účinnosti, léková forma a její použití
Oblast techniky
Technické řešení se týká zásadních modifikaci v technologii přípravy transfer faktoru, metody testování jeho biologické účinnosti a technologie přípravy nové lékové formy transfer faktoru ve formě lyofilizované tablety definovaného složení.
Dosavadní stav techniky
Od padesátých a šedesátých let dvacátého století je známý přenosový faktor (transfer faktor), schopný přenést imunologickou reaktivitu dárce na příjemce. Jedná se o směs biologicky Aktivních nízkomolekulámích látek, získaných dialyzací homogenátu bílých krvinek (leukocytů).
Transfer faktor lze získat různými metodami, nej častěji je popisována dialýza nebo ultrafiltrace směsi leukocytů periferní krve (lidské nebo zvířecí).
Stav techniky popisují např. dokumenty EP2037949 [Sevapharma A.S., CZ] a dokumenty téže patentové rodiny, např. WO2007143957 a CZ2006377.
Dosavadní stav techniky popisuje tyto výrobní technologické kroky:
a) Příprava leukocytámího koncentrátu
b) Dialýza a/nebo ultrafiltrace
c) Koncentrace lyofilizací
d) Příprava roztoku surového léčiva
e) Mezioperační zkoušky
f) Homogenizace
g) Předfiltrace
h) Ultrafiltrace
i) Sterilizující filtrace
j) Tepelná inaktivace
k) Rozpínání
1) Lyofilizace
Dosud vyráběné transfer faktory jsou připravovány buď jako tekuté přípravky nebo ve formě prášku, získaného lyofilizací nebo jinou formou sušení. Jejich bezpečnost je zajištěna několika metodami; nej častěji tepelným ošetřením (pasterizací při definované teplotě a délce trvání) nebo různými stupni filtrací (např. sterilizující filtrace) a testy vstupní suroviny na nepřítomnost patologických mikroorganizmů. Výstupem všech dosud popsaných postupů je tekutá nebo prášková forma transfer faktorů, kterou lze aplikovat buď injekčně (podkožně nebo intravenózně) nebo jako perorálně podané přípravky (např. roztoky) do zažívacího traktu.
Biologická účinnost dosud vyráběných transfer faktorů je prokazována testováním in vivo na zvířecích modelech nebo in vitro sledováním jejich vlivu na cytokinové a jiné buněčné aktivity.
Vyráběné přípravky na bázi transfer faktorů vykazují tyto nevýhody:
- při injekčním podání mají velkou bolestivost, která je přímo úměrná aplikovaným objemům;
- parenterální přípravky musí být vyráběny jako sterilní přípravky;
- biologický účinek transfer faktorů, podávaných perorálně do zažívacího traktu, je snižován
- 1 CZ 2020 - 342 A3 agresivním prostředím zažívacích orgánů.
Vynález řeší všechny tyto nevýhody modifikací technologie výroby a technologií přípravy transfer faktoru ve formě lyofilizované tablety definovaného složení.
Popis vynálezu
Způsob výroby zahrnuje následující technologické kroky:
a) Přípravu leukocytámího koncentrátu
b) Dialýza nebo ultrafiltrace
c) Odstranění solí a koncentrace nanofiltrací
d) Tepelná inaktivace
e) Formulace tablety
f) Příprava lyofilizované tablety
Tři technologické kroky: příprava leukocytámího koncentrátu (transport, skladování, příprava homogenátu), technologie přípravy účinné látky (dialýza nebo ultrafiltrace) a tepelná inaktivace probíhají dle současného stavu techniky.
Známým způsobem získaná účinná látka (dialyzát nebo ultrafiltrát) obsahuje vedle biologicky účinných složek velké množství balastu ve formě solí. Tyto sole mají buď fyziologický původ (přirozené komponenty krevních složek) nebo umělý (protisrážlivé látky, přidávané do krve při jejím odběru). Zároveň tento materiál obsahuje nežádoucí vysoký obsah vody.
Vynález spočívá zejména v zařazení následujících nových kroků při způsobu přípravy léčiva transfer faktor:
odstranění přebytečných solí a přebytečného obsahu vody použitím technologie nanofiltrace přes membránu o vhodné porozitě;
přípravu lyofilizované tablety obsahující transfer faktor jako účinnou látku;
aplikaci účinné látky perorálně ve formě lyofilizované tablety, která se nepolyká a působí přes bukální sliznici;
test biologické účinnosti přípravku, založený na sledování proliferačního efektu na tkáňovou kulturu.
Popis jednotlivých kroků
a) Příprava leukocytámího homogenátu;
Leukocytámí koncentráty od jednotlivých dárců jsou transportovány a skladovány ve zmraženém stavu. Po rozmražení při teplotě do +37 °C se surovina získaná od jednotlivých dárců spojuje do většího objemu. Práce musí probíhat ve výrobních prostorách s definovanou třídou čistoty prostředí. Následně se v leukocytámím homogenátu rozmší všechny membránové komponenty metodou opakovaného zmrazování a rozmrazování, popřípadě rozrušením buněk ultrazvukem, nebo kombinací obou postupů.
al) Příprava homogenátu metodou zmrazení - rozmražení:
Zmrazování se provádí v lázni denaturovaného etylalkoholu při minimální teplotě -35 °C na
- 2 CZ 2020 - 342 A3 rotačních zmrazovacích zařízeních. Rozmrazování se provádí ve vodní lázni při teplotě maximálně +37 °C. Celý cyklus mrazení a rozmrazování se opakuje 6 x. Po ukončení 6. cyklu se homogenát ponechaný v původních lahvích uloží do mrazicího pultu při teplotě min. -17 °C do dalšího zpracování.
a2) Příprava homogenátu pomocí ultrazvuku:
Leukocytámí homogenát se po rozmražení připraví rozrušením buněk ultrazvukem při 20 kHz po dobu 10 minut při teplotě +2 °C až +8 °C. Po této době dezintegrace se získaný homogenát uloží do mrazicího pultu při teplotě min. -17 °C až do dalšího zpracování.
a3) Příprava homogenátu kombinovanou metodou:
Jako alternativní postup výroby se používá kombinovaný postup homogenizace leukocytů. Cyklus zmrazení a rozmražení se opakuje 5 x s následnou dezintegrací ultrazvukem při 20 kHz po dobu 3 minut při teplotě +2 °C až +8 °C. Po této dezintegraci se získaný homogenát uloží do mrazícího pultu při teplotě min. -17 °C až do dalšího zpracování.
U všech teplot uváděných v tomto výrobním kroku by neměl být jejich výkyv větší než 30 °C na obě strany teplotní stupnice a čas by neměl být jiný než v řádu minut.
b) Dialýza
Zpracování leukocytámího homogenátu se provádí v uzavřeném systému na dialyzační koloně. V případě, že leukocytámí homogenát byl před dalším zpracováním zmražen, rozmrazí se ve vodní lázni max. +37 °C teplé. Teplota může být i nižší (do + 4 °C). Je výhodou, pokud se od definované teploty neliší o více než ±33 °C.
Dialýza homogenátu probíhá jako dialýza v uzavřeném systému.
Dialýza se provádí na dialyzační jednotce z umělé ledviny obsahující membránu, zadržující částice o relativní molekulové hmotnosti větší než 10 000. Dialýza se provádí za snížené teploty +2 °C až +8 °C. Tato teplota nemá být odlišná o více než 20 °C. Objem homogenátu leukocytámího koncentrátu zpracovaného v jednom cyklu se pohybuje s výhodu od 1,4 do 2,4 1. Neměl by být vyšší než desítky litrů a menší než 0,2 litru. Množství vody na injekci potřebné k dialýze nízkomolekulámích látek v rozmezí teplot +2 °C až +8 °C se pohybuje v rozmezí 8 až 13 1. Toto množství vody může být při použití jiných teplot různé, nemělo by být jiném objemovém řádu, než jsou litry.
Je výhodou, pokud při vlastním průběhu dialýzy dezintegrovaný leukocytámí koncentrát pomocí čerpadla koluje přes dialyzační jednotku okruhem o průtoku 1,2 až 2,0 1 / hod. a voda na injekci jako dialyzační medium přes stejnou dialyzační jednotkou druhým okruhem rychlostí 0,4 až 0,5 1/hod. Za těchto podmínek se pohybuje doba dialýzy v rozmezí 24 hodin ±4 hod. Pokud jsou v procesu použité jiné cirkulační rychlosti, musí se úměrně upravit i doba dialýzy. Dialýza se ukončí, když hodnota absorbance dialyzátu klesne pod 0,6 při 260 nm. Tato hodnota je doporučená, může být i odlišná.
Obdobným způsobem lze postupovat v případě, že je dialýza nahrazena ultrafiltrací.
c) Odstranění solí a koncentrace nanofiltrací
V tomto výrobním kroku se získaný dialyzát zbavuje nežádoucích solí a zároveň se koncentruje nanofiltrací na požadovaný objem. V tomto výrobním kroku jde především o to, že získaný dialyzát, který obsahuje pro další zpracování příliš velký objem solí a vody musí být odsolen a zakoncentrován tak, aby byl přímo použitelný pro konstrukci lyofilizované tablety, tedy bez další
- 3 CZ 2020 - 342 A3 nutnosti dořeďování nebo zahušťování nebo obohacování nebo jakékoliv jiné dodatečné úpravy získaného roztoku. Metody zahušťování mohou být různé. Použitá metoda řeší dva technologické požadavky: šetrným postupem, zbavuje produkt solí a nežádoucího nadměrného objemu vody. Proti tepelnému namáhání je produkt chráněn chlazením celého procesu. Teplota při nanofiltraci by neměla překročit +30 °C a je výhodou, když se tato teplota, pohybují v rozsahu 14 až 25 °C a zpracovávaný objem tekutiny není větší než 50 litrů a menší než 5 litrů. Ideální objem se pohybuje kolem 15 litrů. Pracovní tlak na filtru je 20 bar ±5 bar. Vždy je třeba se vyhnout statickému protitlaku na straně permeátu. Filtrace se provádí systémem maximálního oddělení permeátu z filtrovaného vzorku. Zbývající vzorek je ve filtračním zařízení přímo naředěný demineralizovanou vodou v množství odebraného permeátu. Po promíchání takto naředěné tekutiny následuje vlastní filtrace. Tento postup se opakuje 4x. Pro nanofiltraci se s výhodou používá polyamidový tenkovrstvý kompozit jako membrána o porozitě umožňující propustnost do lOOODa. Předmětem patentové ochrany v tomto výrobním krokuje krok odstranění přebytečných solí a vody popsanou metodou nanofiltrace.
d) Tepelná inaktivace
Pro bezpečnost produktu je třeba zajistit jeho inaktivaci. Transfer faktor je tepelně inaktivován pasterizací při +60 °C po dobu 10 hodin ve vodní lázni. Popsaný postup zaručuje, že produkt je bezpečný a zároveň je natolik šetrný, že nezpůsobí jeho poškození. Tento technologický krok probíhá rovněž dle současného stavu techniky.
e) Formulace matrice tablety
Z hlediska obsahu zahušťovadel a plnidel má tableta toto definované složeni:
Formulace jedné tablety reprezentuje tyto komponenty:
Dextranum 40 0,05 g (C6H10O5)n lota karagenan 0,0015 g (P-3-D-galaktosa-4-sulfát; 3,6-anhydrid-a-D-galaktosa-2-sulfát)
Macrogolum 300 0,005 g (Polyethylenglycolum 300)
Saccharinum natricum 0,0003333g (Sodná sůl l,l-dioxid-l,2-benzothiazol-3(2H)-onu; C7H4NNaO3S)
Účinná látka (transfer faktor) 1 léčivá dávka
Aqua purificata ad 0,5 g
Vlastní příprava tablet:
Předem se připraví roztok účinné látky (transfer faktoru) tak, aby jedna dávka byla rozpuštěna v 0,25 ml vody v kvalitě „voda pro injekce.
Následuje příprava vlastní matrice:
0,0015 g karagenanu iota se rozpustí za zvýšené teploty ve vodní lázni (60 °C) v 0,17 g čištěné vody. K tomuto roztoku se přidá 0,05 g dextranu 40 a mícháním se rozpustí. K urychlení rozpouštění dextranu lze použít ultrazvukovou lázeň po dobu 1 min nebo lze směs udržovat mírně zahřátou ve vodní lázni (40 °C).
- 4 CZ 2020 - 342 A3
Po ochlazení na laboratorní teplotu se přidá 0,005 g makrogolu 300 a 0,0003 g sodné soli sacharinu, doplní se čištěnou vodou na 0,25 g a míchá se do rozpuštění všech složek. Následně se matrice smísí s předem připraveným roztokem TFI. Následuje dávkování po 0,5 ml do blistru, který slouží jako primární obal lyofilizované tablety. Předmětem vynálezu v tomto výrobním krokuje matrice tablety.
f) Příprava lyofilizované tablety
Dle předpisu pro formulaci jedné tablety se připraví roztok matrice tablet a vhodným dávkovacím zařízením se tento roztok rozplní přímo do jednotlivých jamek blistrů po 0,5 ml.
Před rozplněním přípravku do blistrů se lyofilizační zařízení nastaví do modu vymražení desek do nadefinované teploty -50 °C. Vymražení desek do této teploty proběhne do cca 2 hodin.
Po dosažení požadované teploty -50 °C se na vymražené desky lyofilizačního zařízení založí blistry s rozplněným materiálem. Následně se lyofilizační zařízení přepne do modu primárního sušení (sublimace), nastaví se hodnoty pro vymražení kondenzátoru na hodnotu -55 °C a hodnotu vakua na 0,3 mbar. Po dosažení nastavené teploty kondenzátoru -55 °C se spustí lyofilizační proces.
Lyofilizační sušící proces lze nastavit v automatickém nebo poloautomatickém režimu.
V automatickém režimu nelze zasahovat do nastavených parametrů po celou dobu lyofilizace, poloautomatický režim umožňuje v případě potřeby upravovat a přepínat jednotlivé fáze (vymražení, primární sušení, sekundární sušení) ručním ovládáním. Po 2 hodinách se proces lyofilizace mění do modu sekundárního sušení (desorbce).
Teplota desek se nastaví na hodnotu -30 °C, vakuum na 0,005 mbar. V dalším postupu se teplota desek vždy po 1 hodině snižuje postupně na -20 °C, -10 °C, 0 °C, +10 °C a +25 °C. Celý lyofilizační proces se ukonči maximálně do 24 hodin od jeho zahájení. Reálný čas ukončení lyofilizace se odvíjí od dosažení popsaných teplotních hodnot desek a hodnot vakua. Po ukončení lyofilizace se lyofilizační zařízení zavzdušní, blistry s vysušeným produktem se vyjmou a na blistrovacím zařízení uzavřou zatavovací krycí fólii. Předmětem vynálezu v tomto výrobním krokuje příprava lyofilizované tablety.
Výše uvedeným způsobem je připraveno léčivo transfer faktor, z leukocytů periferní krve, obsahující bílkovinné složky a složky nukleových kyselin, jejichž poměr v léčivu vyjadřuje index absorbance, což je poměr získaný spektrofotometrickým měřením absorbance v UV oblasti při 260 nm a 280 nm. Tento index nesmí mít hodnotu menši než 1,7 s výhodu v rozpětí 1,7 až 2,1. Léčivo je zbavené balastních soli metodou nanofiltrace. Žádná ze složek léčiva nemá molekulovou hmotnost větší než 10 000 daltonů.
Léková forma podání, kterou je lyofilizovaná tableta. V jedné lyofilizované tabletě je obsažena jedna léčivá dávka přípravku, která představuje množství biologicky aktivních látek získaných z cca 200 milionů periferních leukocytů, schopných normalizovat porušenou buněčnou imunitu příjemce. Lyofilizovaná tableta se vyrábí lyofilizací tekuté matrice. Tekutá matrice se vyznačuje hodnotou osmolality v rozpětí 150 až 400 mmol/kg. V lyofilizované tabletě lze prokázat účinnost biologicky aktivních látek.
Test biologické účinnosti
Test biologické účinnosti je založený na sledování účinku transfer faktoru na viabilitu modelové buněčné linie po jejím předchozím ovlivnění imunosupresivní látkou azathioprinem.
Jako modelová buněčná linie se používá imortalizovaná T- lymfocytámí buněčná linie Jurkat CCL81. Viabilita buněk je měřena na průtokovém cytometru s použitím komerčního MTT testu. MTT
- 5 CZ 2020 - 342 A3 měří metabolickou aktivitu buněk a je tak vhodný pro stanovení buněčné viability. Test je založen na redukci tetrazoliové soli MTT (3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl) -2, 5-difenyltetrazolium bromid) na nerozpustný formazan. Množství vytvořeného formazanu je pak přímo úměrné počtu živých buněk.
Buněčná linie Jurkat je kultivována v RPMI médiu obohaceném 10 % fetálního bovinního séra, 2 mM glutaminu a směsi penicilín (1001/ml) -streptomycin (100 pg/ml). Pro supresi modelové buněčné linie se použije azathioprin o koncentraci 5 pg/ml.
Pro test biologické účinnosti se přidá transfer faktor ředěný 80 až 160 krát. Inkubace buněk probíhá po dobu 72 h. Po této době inkubace se ke každé jamce v destičce přidá 20 μΐ zásobního roztoku MTT (5 mg/ml) a destička je nadále inkubována 3 h při 37 °C. Poté se odstraní supernatant a vytvořené krystalky formazanu se solubilizují ve 150 μΐ dimethylsulfoxidu. Výsledná optická denzita roztoků se měří při 570 nm na destičkovém spektrofotometru a vyhodnocuje se jako viabilita buněk.
Při vlastním testuje výhodné použít tyto srovnávací skupiny:
Kontrolní skupina - samotné neovlivněné Jurkat buňky;
Jurkat buňky suprimované azathioprinem;
Jurkat buňky ovlivněné transfer faktorem;
Jurkat buňky suprimované azathioprinem a následně ovlivněné transfer faktorem.
Vyhodnocení výsledků:
Přidaný samotný transfer faktor nijak neovlivní viabilitu buněk oproti kontrolní skupině.
Vzhledem ke kontrole přidaný azathioprin sníží viabilitu buněk pod 50 % hodnoty kontrolní skupiny.
Transfer faktor v kombinaci s azathioprinem vrátí viabilitu buněk potlačenou azathioprinem o cca 40 % směrem zpět k normálu. Předmětem vynálezu v tomto výrobním kroku je in vitro test biologické účinnosti transfer faktoru.
Použití
Vynález je využitelný při komerční přípravě jakéhokoliv transfer faktoru, specifického i nespecifického, připraveného z homogenátu leukocytů periferní krve. Vynález je využitelný jak při výrobě humánního přípravku, tak i u modifikací určených pro veterinární použití.
Předmětem ochrany je i doporučené podání transfer faktoru, které spočívá v podání lyofilizované tablety do oblasti bukální sliznice.
Podání transfer faktoru v této formě zabrání spolknutí tablety, v průběhu několika sekund dojde k jejímu rozpuštění na sliznici.
Hlavní terapeutický efekt je tak zprostředkovaný průnikem léčiva pouze přes ústní sliznici.
-6CZ 2020 - 342 A3
Příklady uskutečnění vynálezu
Příklad 1
Způsob přípravy léčiva transfer faktor
a) Přípravu leukocytámího koncentrátu
b) Dialýza nebo ultrafiltrace
c) Odstranění solí a koncentrace nanofiltrací
d) Tepelná inaktivace
e) Formulace tablety
f) Příprava lyofilizované tablety
a) Příprava leukocytámího koncentrátu
Leukocytámí koncentráty jsou uskladněny ve zmraženém stavu. Následně se při teplotě max. +37 °C leukocytámí koncentrát spojí do pracovního objemu. Práce musí probíhat ve výrobních prostorách s definovanou třídou čistoty „C prostředí. Následně se v leukocytámím homogenátu rozruší všechny membránové komponenty metodou opakovaného zmrazování a rozmrazování, popřípadě rozrušením buněk ultrazvukem, nebo kombinací obou postupů.
a 1) Příprava homogenátu metodou zmrazení - rozmražení:
Zmrazování se provádí v lázni denaturovaného etylalkoholu při minimální teplotě -35 °C na rotačních zmrazovacích zařízeních.
Rozmrazování se provádí ve vodní lázni při teplotě maximálně +37 °C. Celý cyklus mrazení a rozmrazování se opakuje 6x. Po ukončení 6. cyklu se homogenát ponechaný v původních lahvích uloží do mrazicího pultu při teplotě min. -17 °C do dalšího zpracování.
a 2) Příprava homogenátu pomocí ultrazvuku:
Leukocytámí homogenát se po rozmražení připraví rozrušením buněk ultrazvukem při 20 kHz po dobu 10 minut při teplotě +2 °C až + 8 °C. Po této době dezintegrace se získaný homogenát uloží do mrazicího pultu při teplotě min. - 17 °C až do dalšího zpracování.
a 3) Příprava homogenátu kombinovanou metodou:
Jako alternativní postup výroby se používá kombinovaný postup homogenizace leukocytů. Cyklus zmrazení a rozmražení se opakuje 5 x s následnou dezintegrací ultrazvukem při 20 kHz po dobu 3 minut při teplotě +2 °C až +8 °C. Po této dezintegraci se získaný homogenát uloží do mrazícího pultu při teplotě min. -17 °C až do dalšího zpracování.
U všech teplot uváděných v tomto výrobním kroku by neměl být jejich výkyv větší než 30 C na obě strany teplotní stupnice a čas by neměl být jiný než v řádu minut.
b) Dialýza
Zpracování leukocytámího homogenátu se provádí v uzavřeném systému na dialyzační koloně. V případě, že leukocytámí homogenát byl před dalším zpracováním zmražen, rozmrazí se ve vodní lázni max. + 37 °C teplé. Teplota může být i nižší (do + 4 °C). Je výhodou, pokud se od definované teploty neliší o více než 20 °C.
- 7 CZ 2020 - 342 A3
Dialýza se provádí na dialyzační jednotce z umělé ledviny obsahující membránu, zadržující částice o relativní molekulové hmotnosti větší než 10 000. Dialýza se provádí za snížené teploty +2 °C až +8 °C. Tato teplota nemá být odlišná o více než 20 °C. Objem homogenátu leukocytámího koncentrátu zpracovaného v jednom cyklu se pohybuje s výhodu od 1,4 do 2,4 1. Neměl by být vyšší než desítky litrů a menší než 0,2 litru. Množství vody na injekci potřebné k dialýze nízkomolekulámích látek v rozmezí teplot +2 °C až +8 °C se pohybuje v rozmezí 8 až 13 1. Toto množství vody může být při použití jiných teplot různé, nemělo by být jiném objemovém řádu, než jsou litry.
Je výhodou, pokud při vlastním průběhu dialýzy dezintegrovaný leukocytámí koncentrát pomocí čerpadla koluje přes dialyzační jednotku okruhem o průtoku 1,2 až 2,01/hod. a voda na injekci jako dialyzační medium přes stejnou dialyzační jednotkou druhým okruhem rychlostí 0,4 až 0,5 1/hod. Za těchto podmínek se pohybuje doba dialýzy v rozmezí 24 hodin ±4 hod. Pokud jsou v procesu použité jiné cirkulační rychlosti, musí se úměrně upravit i doba dialýzy. Dialýza se ukončí, když hodnota absorbance dialyzátu klesne pod 0,6 při 260 nm. Tato hodnota je doporučená, může být i odlišná.
Obdobným způsobem lze postupovat v případě, že je dialýza nahrazena ultrafiltrací.
c) Odstranění solí a koncentrace nanofiltrací
V tomto výrobním kroku se získaný dialyzát zbavuje nežádoucích solí a zároveň se koncentruje nanofiltrací na požadovaný objem.
Cílem je, aby dialyzát, který obsahuje pro další zpracování příliš velký objem solí a vody, byl odsolen a zakoncentrován tak, aby byl přímo použitelný pro konstrukci lyofilizované tablety. Proti tepelnému namáhání je produkt chráněn chlazením celého procesu. Teplota při nanofiltrací by neměla překročit +30 °C a je výhodou, když se tato teplota, pohybují v rozsahu 14 až 25 °C a zpracovávaný objem tekutiny není větší než 50 litrů a menší než 5 litrů. Ideální objem se pohybuje kolem 15 litrů. Pracovní tlak na filtru je 20 bar ±5 bar. Vždy je třeba se vyhnout statickému protitlaku na straně permeátu. Filtrace se provádí systémem maximálního oddělení permeátu z filtrovaného vzorku. Zbývající vzorek je ve filtračním zařízení přímo naředěný demineralizovanou vodou v množství odebraného permeátu. Po promíchání takto naředěné tekutiny následuje vlastní filtrace. Tento postup se opakuje 4x. Pro nanofiltrací se s výhodou používá polyamidový tenkovrstvý kompozit jako membrána o porozitě umožňující propustnost do 1000 Da.
d) Tepelná inaktivace - tento technologický krok probíhá rovněž dle současného stavu techniky.
Pro bezpečnost produktu je třeba zajistit jeho inaktivaci. Transfer faktor je tepelně inaktivován pasterizací při +60 °C po dobu 10 hodin ve vodní lázni. Popsaný postup zaručuje, že produkt je bezpečný a zároveň je natolik šetrný, že nezpůsobí jeho poškození.
e) Formulace tablety
Velikost šarže (120 tablet)
Dextranum 40 6,0g lota karrageenan 0,18 g
Macrogolum 300 0,6g
Saccharinum natricum 0,04g
TFI 30 dávek
Aqua purificata ad 60,0 g
Předem se připraví roztok transfer faktoru (30 dávek) v 30 ml čištěné vody (případně vody na injekci). Následně se připraví matrice: 0,18 g karagenanu iota se rozpustí za zvýšené teploty ve
-8CZ 2020 - 342 A3 vodní lázni (60 °C) v 20 g čištěné vody (odpovídá celkovému množství vzorku 60 g k přípravě 120 tablet). K tomuto roztoku se přidá 6,0 g dextranu 40 a mícháním se rozpustí. K urychlení rozpouštění dextranu lze použít ultrazvukovou lázeň po dobu 1 min nebo lze směs udržovat mírně zahřátou ve vodní lázni (40 °C).
Po ochlazení na laboratorní teplotu se přidá 0,6 g makrogolu 300 a 0,04 g sodné soli sacharinu, doplní se čištěnou vodou na 30,0 g a míchá se do rozpuštěni všech složek. Vzniklá matrice se smísí s roztokem transfer faktoru
f) Příprava lyofilizované tablety
Připravená tekutá matrice tablet, obsahující účinnou látku transfer faktor se automatickou dávkovači pipetou rozplní do jednotlivých jamek blistrů po 0,5 ml. Před rozplněním přípravku TFI do blistrů se lyofilizátor nastaví do modu funkce mražení - vymražení desek do definované teploty -50 °C. Toto vymražení desek proběhne za cca 2 hodiny.
Po dosažení požadované teploty se založí blistry s rozplněnou matrici tablet na vymražené desky, lyofilizátor se přepne do modu primárního sušení (sublimace), nastaví se definované hodnoty pro vymražení kondenzátoru na hodnotu -55 °C a hodnota vakua na 0,3 mbar. Po dosažení nastavené teploty kondenzátoru se spustí lyofilizační proces. Lyofilizační proces lze nastavit v automatickém nebo poloautomatickém režimu. V automatickém režimu nelze zasahovat do nastavených parametrů po celou dobu lyofilizace. Poloautomatický režim umožňuje upravovat a přepínat jednotlivé fáze ručním ovládáním (vymražení, primární sušení, sekundární sušení).
Po cca 2 hodinách přechází lyofilizace do modu sekundárního sušení (desorbce), teplota desek se nastaví na -30 °C, vakuum na 0,005 mbar. Následně se teplota desek postupně v intervalech po 1 hodině snižuje na -20 °C, -10 °C, 0 °C, +10 °C a +25 °C.
Lyofilizační proces se ukonči maximálně do 24 hodin, čas ukončeni lyofilizace se odvíjí od dosažení nastavených hodnot desek a vakua.
Po ukončeni lyofilizace se lyofilizátor zavzdušní, blistry s lyofilizátem se vyjmou a na blistrovacím zařízení zakryjí fólii. Použité lyofilizační zařízení: LYOBETA 15
Příklad 2
Léčivo transfer faktor
Výše uvedeným způsobem je připraveno léčivo transfer faktor, z leukocytů periferní krve, obsahující bílkovinné složky a složky nukleových kyselin, jejichž poměr v léčivu vyjadřuje index absorbance, což je poměr získaný spektrofotometrickým měřením absorbance v UV oblasti při 260 nm a 280 nm. Tento index nesmí mít hodnotu menší než 1,7 s výhodu v rozpětí 1,7 až 2,1. Léčivo je zbavené balastních solí metodou nanofiltrace. Žádná ze složek léčiva nemá molekulovou hmotnost větší než 10 000 daltonů.
Příklad 3
Metodika testováni biologické účinnosti léčiva podle popsaného vynálezu
Test biologické účinnosti
Pro měření viability byl použitý průtokový cytometr Guava EasyCyte, Luminex, USA a komerční MTT test Sigma-Aldrich, USA. Pro stanoveni viability buněčné linie byl použit kit GuavaViaCount, Luminex, USA, který rozlišuje živé a mrtvé buňky na principu rozdílné permeability buněčné membrány pro DNA-vázající značky. Buněčná linie Jurkat byla kultivována v RPMI
-9CZ 2020 - 342 A3 médiu obohaceném 10 % fetálního bovinního séra, 2 mM glutaminu a směsi penicilín (100 I/ml) streptomycin (100 pg/ml).
Pro test biologické účinnosti se použije transfer faktor ředěný 80 až 160 krát. Inkubace buněk probíhá 72 h. Po této době inkubace se ke každé jamce v destičce přidá 20 μΐ zásobního roztoku MTT (5 mg/ml) a destička je nadále inkubována 3 h při 37 °C. Poté se odstraní supernatant a vytvořené krystalky formazanu se solubilizují ve 150 μΐ dimethylsulfoxidu. Výsledná optická denzita roztoků se měří při 570 nm na destičkovém spektrofotometru a vyhodnocuje se jako viabilita buněk. Optická denzita roztoku byla měřena při 570 nm na destičkovém spektrofotometru (Beckman Coulter, USA).
Při vlastním testu je výhodné použit tyto srovnávací skupiny: Kontrolní skupina - samotné neovlivněné Jurkat buňky;
Jurkat buňky suprimované azathioprinem;
Jurkat buňky ovlivněné transfer faktorem;
Jurkat buňky suprimované azathioprinem a následně ovlivněné transfer faktorem.
Vyhodnoceni výsledků:
Přidaný samotný transfer faktor nijak neovlivni viabilitu buněk oproti kontrolní skupině.
Vzhledem ke kontrole přidaný azathioprin sníží viabilitu buněk pod 50 % hodnoty kontrolní skupiny.
Transfer faktor v kombinaci s azathioprinem vrátí viabilitu buněk potlačenou azathioprinem o cca 40 % směrem zpět k normálu.
Příklad 4
Léková forma
Léková forma podáni, kterou je lyofilizovaná tableta. V jedné lyofilizované tabletě je obsažena jedna léčivá dávka přípravku, která představuje množství biologicky aktivních látek získaných z cca 200 milionů periferních leukocytů, schopných normalizovat porušenou buněčnou imunitu příjemce. Lyofilizovaná tableta se vyrábí lyofilizací tekuté matrice. Tekutá matrice se vyznačuje hodnotou osmolality v rozpětí 150 až 400 mmol/kg. V lyofilizované tabletě lze prokázat účinnost biologicky aktivních látek.
Léková forma je připravena způsobem:
Dle předpisu pro formulaci jedné tablety se připraví roztok matrice tablet a vhodným dávkovacím zařízením se tento roztok rozplní přímo do jednotlivých jamek blistrů po 0,5 ml.
Před rozplněním přípravku do blistrů se lyofilizační zařízeni nastaví do modu vymraženi desek do nadefinované teploty -50 °C. Vymraženi desek do této teploty proběhne do cca 2 hodin.
Po dosaženi požadované teploty -50 °C se na vymražené desky lyofilizačního zařízení založí blistry s rozplněným materiálem. Následně se lyofilizační zařízení přepne do modu primárního sušení (sublimace), nastaví se hodnoty pro vymraženi kondenzátoru na hodnotu -55 °C a hodnotu vakua na 0,3 mbar. Po dosažení nastavené teploty kondenzátoru -55 °C se spustí lyofilizační proces.
Lyofilizační sušící proces lze nastavit v automatickém nebo poloautomatickém režimu.
V automatickém režimu nelze zasahovat do nastavených parametrů po celou dobu lyofilizace,
- 10 CZ 2020 - 342 A3 poloautomatický režim umožňuje v případě potřeby upravovat a přepínat jednotlivé fáze (vymražení, primární sušení, sekundární sušení) ručním ovládáním. Po 2 hodinách se proces lyofilizace mění do modu sekundárního sušení (desorbce).
Teplota desek se nastaví na hodnotu -30 °C, vakuum na 0,005 mbar. V dalším postupu se teplota desek vždy po 1 hodině snižuje postupně na -20 °C, -10 °C, 0 °C, +10 °C a +25 °C. Celý lyofilizační proces se ukončí maximálně do 24 hodin od jeho zahájení. Reálný čas ukončení lyofilizace se odvíjí od dosažení popsaných teplotních hodnot desek a hodnot vakua. Po ukončení lyofilizace se lyofilizační zařízení zavzdušní, blistry s vysušeným produktem se vyjmou a na blistrovacím zařízení uzavřou zatavovací krycí fólií. Předmětem vynálezu v tomto výrobním krokuje příprava lyofilizované tablety.
Výše uvedeným způsobem je připraveno léčivo transfer faktor, z leukocytů periferní krve, obsahující bílkovinné složky a složky nukleových kyselin, jejichž poměr v léčivu vyjadřuje index absorbance, což je poměr získaný spektrofotometrickým měřením absorbance v UV oblasti při 260 nm a 280 nm. Tento index nesmí mít hodnotu menši než 1,7 s výhodu v rozpětí 1,7 až 2,1. Léčivo je zbavené balastních soli metodou nanofiltrace. Žádná ze složek léčiva nemá molekulovou hmotnost větší než 10 000 daltonů.
Přiklad 5
Použití lékové formy
a) Použití transfer faktoru podle tohoto vynálezu jako lékové formy lyofilizované tablety k podáni do ústní dutiny, při kterém lyofilizovaná tableta bezprostředně adheruje ke sliznici, tím je zabráněno jejímu polknuti a je rychle na bukální sliznici rozpuštěna, přičemž se nedostane se přímo do trávícího systému.
b) Použití transfer faktoru podle tohoto vynálezu jako humánního nebo veterinárního léčiva.
c) Použití transfer faktoru podle tohoto vynálezu jako humánního nebo veterinárního doplňku stravy.
d) Použití transfer faktoru podle tohoto vynálezu jako humánního nebo veterinárního jako přípravku k nápravě chorobných stavů souvisejících s poruchou buněčné imunity, tedy chronické: infekce, septické stavy, atopický ekzém, recidivující mykózy, psoriázy imunodeficience spojené s onkologickou léčbou.
e) Použití transfer faktoru podle tohoto vynálezu jako humánního nebo veterinárního profylaktického přípravku.
Průmyslová využitelnost
Vynález je využitelný při komerční přípravě jakéhokoliv transfer faktoru, specifického i nespecifického, připraveného z leukocytů periferní krve. Vynález je dále použitelný jak při výrobě humánního léčivého přípravku, tak i u léčivých přípravků určených pro veterinární použiti. Vynález je využitelný při komerční přípravě jakéhokoliv transfer faktoru, specifického i nespecifického, využitelného jako součást doplňků stravy. Přípravek získaný postupem přípravy podle vynálezu je použitelný u chorobných stavů souvisejících s poruchou buněčné imunity (chronické: infekce, septické stavy, atopický ekzém, recidivující mykózy, psoriázy; imunodeficience spojené s onkologickou léčbou). Přípravek je použitelný i profylakticky. Doporučené podáni: lyofilizovaná tableta je vložena do úst, kde dojde k jejímu ulpění na sliznici a k rychlému rozpuštění. Tableta se nepolyká.

Claims (22)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Způsob přípravy léčiva transfer faktor z leukocytů periferní krve, který vychází
    a) z připraveného leukocytámího koncentrátu
    b) dialýzy anebo ultrafiltrace, vyznačující se tím, že tento způsob dále zahrnuje následné postupné kroky:
    c) Odstranění solí a koncentrace nanofiltrací;
    d) Tepelná inaktivace;
    e) Formulace tablety;
    f) Příprava lyofilizované tablety
  2. 2. Způsob přípravy transfer faktoru podle nároku 1, vyznačující se tím, že krok odstranění solí nanofiltrací z produktu a koncentrace produktu nanofiltrací spočívá v tom, že získaný dialyzát se zbavuje nežádoucích solí a zároveň se koncentruje nanofiltrací na požadovaný objem, přičemž teplota při nanofiltrací je v rozsahu 14 až 25 °C a neměla by překročit +30 °C při zpracovávaném objemu tekutiny, který není větší než 50 litrů a menší než 5 litrů ideálně kolem 15 litrů, přičemž pracovní tlak na filtru je 20 bar ±5 bar s vyloučením statického protitlaku na straně permeátu, přičemž nanofiltrace je prováděna systémem maximálního oddělení permeátu z filtrovaného vzorku dialyzátu postupem, že zbývající vzorek dialyzátu je ve filtračním zařízení přímo naředěný demineralizovanou vodou v množství odebraného permeátu, po promíchání takto naředěné tekutiny následuje vlastní ultrafiltrace, kdy tento cyklus se opakuje 4x.
  3. 3. Způsob přípravy transfer faktoru podle nároku 2, vyznačující se tím, že pro koncentraci nanofiltrací je použit polyamidový tenkovrstvý kompozit jako membrána o porozitě umožňující propustnost do 1000 Da.
  4. 4. Způsob podle nároků 1, 2 a nebo 3, vyznačující se tím, že účinná látka transfer faktor je připravena jako lyofilizovaná tableta, která sestává z: Dextranum 40, lota karagenan, Macrogolum 300, Saccharinum natricum, transfer faktor a Aqua purificata.
  5. 5. Způsob podle nároku 4, vyznačující se tím, že sestává z následujících kroků:
    a) příprava roztoku transfer faktoru v čištěné vodě nebo vodě na injekci;
    b) příprava matrice v následujících krocích:
    - karagenan iota se rozpustí za zvýšené teploty ve vodní lázni (60 °C) v čištěné vody;
    - k tomuto roztoku se přidá dextran 40 a mícháním se rozpustí, přičemž k urychlení rozpouštění dextranu lze použít ultrazvukovou lázeň nebo lze směs udržovat mírně zahřátou ve vodní lázni (40 °C);
    - po ochlazení na laboratorní teplotu se přidá makrogol 300 a sodná sůl sacharinu, doplní se čištěnou vodou a míchá se do rozpuštění všech složek;
    c) smísení matrice s připraveným roztokem transfer faktoru;
    d) dávkování do blistru, tedy primárního obalu lyofilizované tablety.
    - 12 CZ 2020 - 342 A3
  6. 6. Způsob podle jakékoli kombinace předchozích nároků, vyznačující se tím, že účinná látka transfer faktor je připravena jako lyofilizovaná tableta, která je lyofilizována přímo v jamce blisteru, přičemž jedna jamka představuje jednu dávku přípravku.
  7. 7. Způsob podle nároku 6, vyznačující se tím, že účinná látka transfer faktor je lyofilizována v blisteru po dobu 24 hodin a teplotách v rozsahu postupně od -55 °C do +25 °C a tlaku 0,005 mbar.
  8. 8. Způsob podle nároku 7, vyznačující se tím, že lyofilizace účinné látky transfer faktor probíhá v následujících krocích:
    - příprava roztoku matrice tablet;
    - nastavení lyofilizačního zařízení do modu vymražení desek do nadefinované teploty -50 °C tedy vymražení desek do této teploty za cca 2 hodiny;
    - rozplnění roztoku dávkovacím zařízením do jednotlivých jamek blistrů;
    - založení blistrů s rozplněným materiálem po dosažení požadované teploty -50 °C na vymražené desky lyofilizačního zařízení;
    - lyofilizační zařízení se přepne do modu primárního sušení (sublimace), nastaví se hodnoty pro vymražení kondenzátoru na hodnotu -55 °C a hodnotu vakua na 0,3 mbar;
    - po dosaženi nastavené teploty kondenzátoru -55 °C se spustí lyofilizační proces.
  9. 9. Způsob podle nároku 8, vyznačující se tím, že lyofilizace účinné látky transfer faktor probíhá v automatickém režimu nebo v poloautomatickém režimu, který umožňuje upravovat a přepínat jednotlivé fáze (vymražení, primární sušení, sekundární sušení) ručním ovládáním v jednotlivých krocích:
    - po 2 hodinách se proces lyofilizace mění do modu sekundárního sušení (desorbce) a teplota desek se nastaví na hodnotu -30 °C, vakuum na 0,005 mbar;
    - dále se teplota desek vždy po 1 hodině snižuje postupně na -20 °C, -10 °C, 0 °C, +10 °C a +25 °C;
    - celý lyofilizační proces se ukončí maximálně do 24 hodin od jeho zahájení;
    - lyofilizační zařízení se zavzdušní, blistry s vysušeným produktem se vyjmou a na blistrovacím zařízení se uzavřou zatavovací krycí fólií.
  10. 10. Léčivo transfer faktor připravený způsobem podle nároků 1 až 9 sestávající z dialyzátu nebo ultrafiltrátu leukocytů periferní krve zbavený balastních solí, obsahující bílkovinné složky a složky nukleových kyselin, jejichž poměr v léčivu, tedy index absorbance není menší než 1,7, ve kterém žádná ze složek léčiva nemá molekulovou hmotnost větší než 10 000 daltonů.
  11. 11. Léčivo transfer faktor připravený způsobem podle nároků 1 až 9 sestávající z dialyzátu nebo ultrafiltrátu leukocytů periferní krve zbavený balastních solí, obsahující bílkovinné složky a složky nukleových kyselin, jejichž poměr v léčivu, tedy index absorbance je v rozpětí 1,7 až 2,1, ve kterém žádná ze složek léčiva nemá molekulovou hmotnost větší než 10 000 daltonů.
  12. 12. Metodika in vitro testování biologické účinnosti léčiva transfer faktor podle kterékoli kombinace předchozích nároků, vyznačující se tím, že je prováděna sledováním účinku transfer faktoru na viabilitu modelové buněčné linie po jejím předchozím ovlivnění imunosupresivní látkou azathioprinem.
    - 13 CZ 2020 - 342 A3
  13. 13. Metodika testování biologické účinnosti léčiva transfer faktor podle kterékoli kombinace předchozích nároků, vyznačující se tím, že ke sledování účinku léčiva transfer faktoru se využije imunosupresivní látka azathioprinem.
  14. 14. Metodika in vitro testování biologické účinnosti léčiva transfer faktor podle nároků 12 a 13, je prováděna v jednotlivých krocích:
    - buněčná linie Jurkat je kultivována v RPMI médiu obohaceném 10 % fetálního bovinního séra, 2 mM glutaminu a směsi penicilín (1001/ml) -streptomycin (lOOpg/ml), kdy pro supresi modelové buněčné linie se použije azathioprin o koncentraci 5 pg/ml;
    - pro určení biologické účinnosti se přidá transfer faktor ředěný 80 až 160 krát;
    - inkubace buněk probíhá po dobu 72 h;
    - ke každé jamce se na destičce přidá 20 μΐ zásobního roztoku MTT (5 mg/ml) a destička je nadále inkubována 3 h při 37 °C;
    - odstraní se supernatant a vytvořené krystalky formazanu se solubilizují ve 150 μΐ dimethylsulfoxidu;
    - výsledná optická denzita roztoků se měří při 570 nm na destičkovém spektrofotometru a vyhodnocuje se jako viabilita buněk.
  15. 15. Metodika in vitro testování biologické účinnosti léčiva transfer faktor podle nároků 12 až 14, je založena na použití imortalizovaná T-lymfocytámí buněčná linie Jurkat CCL-81 jako modelové buněčné linie.
  16. 16. Metodika in vitro testování biologické účinnosti léčiva transfer faktor podle nároků 12 až 16, zahrnuje krok měření na průtokovém cytometru s použitím komerčního MTT testu viability buněk pro stanovení buněčné viability,které je založeno na redukci tetrazoliové soli MTT (3-(4,5dimethylthiazol-2-yl)-2,5- difenyltetrazolium bromid) na nerozpustný formazan, přičemž množství vytvořeného formazanu je pak přímo úměrné počtu živých buněk.
  17. 17. Léková forma testovaná a připravená způsobem podle nároků 1 až 16, je lyofilizovaná tableta, ve které lze prokázat účinnost biologicky aktivních látek, která je připravená lyofílizací tekuté matrice, přičemž v jedné lyofilizované tabletě je obsažena jedna léčivá dávka přípravku, která představuje množství biologicky aktivních látek získaných z cca 200 milionů periferních leukocytů, schopných normalizovat porušenou buněčnou imunitu příjemce.
  18. 18. Použití lékové formy transfer faktoru podle nároků 1-17 jako lékové formy lyofilizované tablety k podání do ústní dutiny, při kterém lyofilizovaná tableta bezprostředně adheruje ke sliznici, tím je zabráněno jejímu polknutí a je rychle na bukální sliznici rozpuštěna, přičemž se dostane přímo do trávícího systému.
  19. 19. Použití lékové formy transfer faktoru podle nároků 1-17 jako humánního nebo veterinárního léčiva.
  20. 20. Použití transfer faktoru podle nároků 1-17 jako humánního nebo veterinárního doplňku stravy.
  21. 21. Použití lékové formy transfer faktoru podle nároků 1-17 jako humánního nebo veterinárního přípravku u chorobných stavů souvisejících s poruchou buněčné imunity, tedy chronické infekce, septické stavy, atopický ekzém, recidivující mykózy, psoriázy imunodefícience spojené s onkologickou léčbou.
    - 14 CZ 2020 - 342 A3
  22. 22. Použití lékové formy transfer faktoru podle nároků 1-17 jako humánního nebo veterinárního profylaktického přípravku.
CZ2020342A 2020-06-12 2020-06-12 Způsob přípravy léčiva transfer faktor, léčivo transfer faktor, metodika testování biologické účinnosti, léková forma a její použití CZ2020342A3 (cs)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2020342A CZ2020342A3 (cs) 2020-06-12 2020-06-12 Způsob přípravy léčiva transfer faktor, léčivo transfer faktor, metodika testování biologické účinnosti, léková forma a její použití
EP21721385.9A EP4072569A1 (en) 2020-06-12 2021-03-25 Method of preparation of the transfer factor medicine, transfer factor medicine, method of testing its biological activity, pharmaceutical form and its use
PCT/CZ2021/000014 WO2021249581A1 (en) 2020-06-12 2021-03-25 Method of preparation of the transfer factor medicine, transfer factor medicine, method of testing its biological activity, pharmaceutical form and its use

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2020342A CZ2020342A3 (cs) 2020-06-12 2020-06-12 Způsob přípravy léčiva transfer faktor, léčivo transfer faktor, metodika testování biologické účinnosti, léková forma a její použití

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ2020342A3 true CZ2020342A3 (cs) 2021-12-22

Family

ID=75674591

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ2020342A CZ2020342A3 (cs) 2020-06-12 2020-06-12 Způsob přípravy léčiva transfer faktor, léčivo transfer faktor, metodika testování biologické účinnosti, léková forma a její použití

Country Status (3)

Country Link
EP (1) EP4072569A1 (cs)
CZ (1) CZ2020342A3 (cs)
WO (1) WO2021249581A1 (cs)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114527246A (zh) * 2022-02-17 2022-05-24 深圳中旭生物科技有限公司 一种心脑血管药物研发检测设备

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CZ299296B6 (cs) * 2006-06-13 2008-06-11 Sevapharma A.S. Lécivo transfer faktor - zpusob výroby a použití

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114527246A (zh) * 2022-02-17 2022-05-24 深圳中旭生物科技有限公司 一种心脑血管药物研发检测设备

Also Published As

Publication number Publication date
WO2021249581A1 (en) 2021-12-16
EP4072569A1 (en) 2022-10-19

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP5657648B2 (ja) 血液製剤を製造するための装置及び方法
US11285173B2 (en) Dialysis solution, formulated and stored in two parts, comprising phosphate
US4906616A (en) Hydrolyzed sodium casein compositions for dialysis procedures
JPH03255035A (ja) 経口用トロンビン製剤
JP5475671B2 (ja) ピロホスフェートを含む滅菌透析溶液
TW200422045A (en) Biocompatible dialysis fluids containing icodextrins
CN101346154A (zh) 含低粘度藻酸盐的水溶性薄膜
CN104434819B (zh) 注射用乙酰谷酰胺粉针剂药物组合物和制法
CZ2020342A3 (cs) Způsob přípravy léčiva transfer faktor, léčivo transfer faktor, metodika testování biologické účinnosti, léková forma a její použití
JPWO2014061808A1 (ja) 胃ろう栄養患者用栄養組成物
Global Programme
CN106031710B (zh) 一种富马酸氟呐普拉赞的注射剂及其制备方法
CZ34517U1 (cs) Léčivo obsahující transfer faktor a jeho léková forma
CZ34708U1 (cs) Kit pro test biologické účinnosti transfer faktoru
EP3400029B1 (en) Compositions for reducing tissue adhesions
CZ2006377A3 (cs) Lécivo transfer faktor - zpusob výroby a pouzití
RU2745413C2 (ru) Система из множества пакетов и способ приготовления компонентов крови
Guven et al. Spontaneous gastric perforation in a child with Burkitt lymphoma
CN108926703A (zh) 骨肽葡萄糖注射液
JPH02502165A (ja) 有益な剤の投与のための微結晶性マトリックス
JPH03169823A (ja) 抗ウイルス剤
RU2152206C1 (ru) Таблетированная форма рекомбинантного человеческого эритропоэтина для перорального применения и способ ее получения
SE524530C2 (sv) Metod för att framställa en medicinsk lösning för peritonealdialys där en lösning innehållandes ett eller flera acetylerade eller deacetylerade aminosocker värme- eller strålningssteriliseras med bestämda pH-värden och med bestämda viktsprocent för att undvika att cytotoxiska produkter bildas.
JPH07165604A (ja) トロンビン固形組成物の安定性および再溶解性を改善する方法
CN109381435A (zh) 一种右旋兰索拉唑冻干粉针剂、其制备方法及应用