CZ281198A3 - Způsob výroby N-chráněných derivátů D-prolinu - Google Patents

Způsob výroby N-chráněných derivátů D-prolinu Download PDF

Info

Publication number
CZ281198A3
CZ281198A3 CZ982811A CZ281198A CZ281198A3 CZ 281198 A3 CZ281198 A3 CZ 281198A3 CZ 982811 A CZ982811 A CZ 982811A CZ 281198 A CZ281198 A CZ 281198A CZ 281198 A3 CZ281198 A3 CZ 281198A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
amino acid
proline
acid derivative
protected
aliphatic
Prior art date
Application number
CZ982811A
Other languages
English (en)
Inventor
Martin Sauter
Daniel Venetz
Fabienne Henzen
Diego Schmidhalter
Gabriela Pfaffen
Oleg Werbitzky
Original Assignee
Lonza Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Lonza Ag filed Critical Lonza Ag
Publication of CZ281198A3 publication Critical patent/CZ281198A3/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P41/00Processes using enzymes or microorganisms to separate optical isomers from a racemic mixture
    • C12P41/006Processes using enzymes or microorganisms to separate optical isomers from a racemic mixture by reactions involving C-N bonds, e.g. nitriles, amides, hydantoins, carbamates, lactames, transamination reactions, or keto group formation from racemic mixtures
    • C12P41/007Processes using enzymes or microorganisms to separate optical isomers from a racemic mixture by reactions involving C-N bonds, e.g. nitriles, amides, hydantoins, carbamates, lactames, transamination reactions, or keto group formation from racemic mixtures by reactions involving acyl derivatives of racemic amines
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/78Hydrolases (3) acting on carbon to nitrogen bonds other than peptide bonds (3.5)
    • C12N9/80Hydrolases (3) acting on carbon to nitrogen bonds other than peptide bonds (3.5) acting on amide bonds in linear amides (3.5.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P41/00Processes using enzymes or microorganisms to separate optical isomers from a racemic mixture

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Pyrrole Compounds (AREA)

Description

Oblast techniky
Předložený vynález se týká nových mikroorganismů, které jsou schopné zužitkovat N-chráněný derivát prolinu.
Dosavadní stav techniky
N-chráněné cyklické deriváty D-aminokyselin jako např. N-chráněné deriváty D-prolinu jako je N-benzyloxykarbonyl-D-prolin (N-Z-D-prolin) jsou důležité meziprodukty pro výrobu farmaceutických přípravků (J.Org.Chem.,1994,59,7496-7498).
Dosud je známo jen málo enzymů, které přijímají N-Z-L-prolin jako substrát a hydrolyzují ho na L-prolin. Tyto enzymy byly izolovány z mikroorganismů rodu Rhodotorula (JP-A 01 074 987), Pseudomonas (JP-A 55 071 491; Kikuchi a spol., Biochim.Biophys. Acta, 744 (1983),180-188) nebo z Alcaligenes (JP-A 55 007 015).
Všechny tyto enzymy reagují výhodně se strukturně příbuznými substráty N-Z-L-prolinu, jako např. s N-chloracetyl-L-prolinem, vykazují však s N-Z-L-prolinem malou aktivitu. Proto se tyto enzymy nehodí pro hospodárný způsob např. výroby N-Z-D-prolinu. Další nevýhodou je, že se přeměna substrátu neprovádí s celými buňkami, ale provádí se surovými extrakty nebo izolovanými enzymy, což výrazně zvyšuje technický náklad.
Z EP-A 0 416 282 je známá N-acyl-L-prolin-acyláza, která např. jako substrát upřednostňuje N-acetyl-L-prolin a používá se pro získání L-prolinu. Tato N-acyl-L-prolin-acyláza se izoluje z mikroorganismů druhu Comamonas testosteroni nebo Alcaligenes denitrificans. Nevýhoda těchto mikroorganismů spočívá v tom, že nejsou schopné zužitkovat N-Z-L-prolin jako jediný zdroj dusíku a nejsou schopné N-Z-L-prolin hydrolyzovat jako substrát.
Z WO 95/10 604 je známý mikrobiologický způsob výroby kyseliny
- 2 • · « Λ
L-pipekolinové pomocí mikroorganismů druhu Alcaligenes denitrificans. Nedostatkem také těchto mikroorganismů je to, že nezužitkují odpovídající N-acylový substrát (kyselinu N-acetyl-(DL)-pipekolinovou) jako jediný zdroj dusíku.
Úkolem předloženého vynálezu je izolovat mikroorganismy, které se mohou použít jak pro jednoduchý a technicky použitelný způsob výroby N-chráněných cyklických nebo alifatických derivátů D-aminokyselin, tak také pro jednoduchý způsob výroby cyklických nebo alifatických derivátů L-aminokyselin. Přitom se mají izolovat odpovídající produkty za dobré enantiomerní čistoty.
Podstata vynálezu
Výše uvedený úkol se řeší pomocí mikroorganismů podle nároku 1, pomocí enzymů z těchto mikroorganismů podle nároku 5 a pomocí způsobů podle nároků 6,7,9 a 10.
Předložený vynález se týká nových mikroorganismů, které jsou schopné zužitkovat N-chráněný derivát prolinu obecného vzorce I r2Á\0H
I o
C = O (I) ve formě racemátu nebo ve formě jeho opticky aktivního izomeru, kde R1 znamená -(CH2)2-COOH, každá popřípadě substituovaná skupina C-^.^-alkoxy, aryl nebo aryloxy a R2 znamená atom vodíku nebo =0, jako jediný zdroj dusíku, jako jediný zdroj uhlíku nebo jako jediný zdroj uhlíku a dusíku. Tyto mikroorganismy, popř. jejich bezbuněčné enzymy se používají pro nový způsob výroby N-chráněných cyklických nebo alifatických derivátů D-aminokyselin a/nebo cyklických nebo alifatických derivátů L-aminokyselin .
- 3 • ·
Mikroorganismy podle vynálezu lze izolovat ze vzorků půdy, kalů nebo odpadních vod pomocí obvyklých mikrobiologických metod. Podle vynálezu se izolace mikroorganismů uskuteční tak, že se pěstují v mediu, které obsahuje N-chráněný derivát prolinu obecného vzorce I
Č = O° (!) ve formě racemátu nebo jeho opticky aktivního izomeru jako jediný zdroj uhlíku a dusíku nebo jako jediný zdroj dusíku se vhodným zdrojem uhlíku nebo jako jediný zdroj uhlíku se vhodným zdrojem dusíku obvyklým způsobem. Z této kultury získané pěstováním se pak účelně podrobí selekci ty, které zužitkují N-chráněný derivát L-prolinu obecného vzorce I jako jediný zdroj dusíku, jediný zdroj uhlíku nebo jako jediný zdroj uhlíku a dusíku.
Zbytek Rx v N-chraneném derivátu prolinu obecného vzorce I znamená -(CH2)2-COOH, C1_4~alkoxy, aryl nebo aryloxy. R2 znamená atom vodíku nebo =0.
Jako C-j__4-alkoxy se mohou použít methoxy, fluorenylmethoxy, ethoxy, propoxy, i-propoxy, butoxy, t-butoxy nebo i-butoxy.
Jako aryl se používá skupina fenylová nebo benzylová substituovaná nebo nesubstituovaná, jako např. 4-methoxybenzyl nebo 4-methoxyfenyl.
Aryloxy se dále definuje jako skupina fenyloxy nebo benzyloxy, substituovaná nebo nesubstituovaná. Příklady aryloxyskupiny jsou benzyloxy, 4-methoxybenzyloxy nebo 4-nitrobenzyloxy.
Obzvláště výhodné N-chráněné deriváty prolinu obecného vzorce I jsou: N-sukcinyl-L-prolin (R1=-(CH2)2 -COOH, N-fenylacetyl-L-prolin (R1=fenylmethyl), N-Z-L-prolin (R1=benzyloxy), N-benzoyl-L' · · * 9999 9999 ·· 9 ···· · · · · • · ··· 9*9·· ···· · ···· 99 9 ···
- 4 -prolin (R1=fenyl), N-isobutoxykarbonyl-L-prolin (R^isobutoxy) a N-Z-L-pyroglutamát (R-*-=benzyloxy, R2=0).
Jako vhodný zdroj uhlíku mohou mikroorganismy např. využít cukr, cukerné alkoholy nebo karboxylové kyseliny jako růstový substrát. Jako cukr se mohou použít hexosy jako např. glukosa, fruktosa nebo pentosy. Jako karboxylové kyseliny se mohou použít di- nebo trikarboxylové kyseliny, popř. jejich soli jako např. citrát nebo malát. Jako cukerný alkohol se může použít např. glycerin. Jako vhodný zdroj dusíku mohou mikroorganismy využít například amonium, nitrát, močovinu nebo glycin.
Jako selekční a růstové medium se účelně používají media běžná v oboru, jako např. medium popsané v tabulce 1. Výhodně se používá medium popsané v tabulce 1.
Během růstu a selekce se účelně indukují účinné enzymy mikroorganismů. Jako induktor enzymů se může použít N-chráněný derivát prolinu obecného vzorce I, popř. jeho L-isomer.
Obvykle probíhá růst a selekce při teplotě od 10 do 40 °C, výhodně od 20 do 35 °C a při hodnotě pH mezi pH 4 a pH 10, výhodně mezi pH 5 a pH 9.
Výhodné mikroorganismy jsou mikroorganismy zužitkující N-Z-L-prolín rodu Arthrobacter (první grampositivní mikroorganismus s prolin-acylázovou aktivitou), Agrobacterium/Rhizobium, Bacillus, Pseudomonas nebo Alcaligenes. Zejména se izolují mikroorganismy druhu Arthrobacter sp. HSZ5 s označením DSM 10328, Agrobacterium/Rhizobium HSZ30, Bacillus simplex K2, Pseudomonas putida K32, Alcaligenes piechaudii K4 nebo Alcaligenes xylosoxydans ssp. denitrificans HSZ17 s označením DSM 10329, jakož i jejich funkčně ekvivalentní varianty a mutanty. Mikroorganismy DSM 10329 a DSM 10328 byly uloženy 6.11.1995 u Německé sbírky mikroorganismů a buněčných kultur GmbH, Mascheroderweg lb, D-38124 Braunschweig, podle Budapešťské dohody.
• · · · · · • ·
- 5 Pod pojmem funkčně ekvivalentní varianty a mutanty se rozumějí mikroorgansimy, které mají v podstatě stejné vlastnosti a funkce jako původní mikroorganismy. Takové varianty a mutanty se mohou vytvořit náhodně, např. UV-ozářením.
Taxonomicky popis Alcaligenes HSZ17 (DSM 10329)
Vlastnosti kmene:
buněčná forma šířka μιη délka μιη pohyblivost mrskání
Gram-reakce lyže 3 %ním KOH aminopeptidáza (Cerny) spory oxidáza kataláza růst anaerobně
ADH (alkoholdehydrogenáza) no2 z no3 denitrifikace xylosoxydans ssp. denitrificans tyčinky
0,5-0,6
1,5-3,0 +
peritrich +
+ ureáza • · • · · • · • fefe · fe ·
• fe • ·
• · · · hydrolýza želatiny
Tweenu 80 kyselina z (OF-test) glukosy aerobně xylosy 80 využití substrátu glukosy fruktosy arabinosy citrátu + malátu + mannitolu
Taxonomický popis Arthrobacter sp. HSZ5 (DSM 10328)
Charakteristika: gram-positivní nerovnoměrné tyčinky s výrazným růstovým cyklem tyčinky-koky; striktně aerobní; žádná tvorba kyseliny nebo plynu z glukosy.
pohyblivost spory kataláza kyselina meso-diaminopimelová v buněčné stěně: ne typ peptidoglykanu: A3a,L-Lys-L-Ser-L-Thr-L-Ala podobnost sekvence 16S rDNA: sekvenování oblasti s největší variabilitou prokázalo nejvyší hodnoty 98,2 % s Arthrobacter pascens, A.ramosus a A.oxydans
- Ί -
Taxonomický popis Agrobacterium/Rhizobium HSZ30 buněčná forma šířka μιη délka μιη
Gram-reakce lyže 3 %ním KOH aminopeptidáza spory oxidáza kataláza pohyblivost růst anaerobně nitrit z nitrátu denitrifikace ureáza hydrolýza želatiny kyselina z
L-arabinosy galaktosy melezitosy fúkosy arabitolu manitolu erythritolu pleomorfní tyčinky 0,6-1,0 1,5-3,0 +
+ ♦· ····
• · · · · · ·· • · *·· ♦ ♦·· · · • · · · · · • · ·· ·· · ·
- 8 alkalizace lakmusového mléka + ketolaktosa
Parciální sekvencování 16S rDNA prokázalo srovnatelně stejně velkou podobnost ca 96 %ní se zástupci rodů Agrobacterium a Rhizobium. Jednoznačné přiřazení k jednomu druhu popsanému u těchto rodů není možné.
Taxonomický popis Bacillus simplex K2
buněčná forma šířka um délka um tyčinky 0,8-1,0 3,0-5,0
spory -
elipsoidní -
kulaté -
sporangium -
kataláza +
anaerobní růst -
VP reakce k.w.
maximální teplota
pozitivní růst při °C 4 0
negativní růst při °C 45
růst v
mediu pH 5,7 -
NaCl 2 % +
5 % -
7 % -
10 %
mediu s lysozymem +
- 9 fc· fc···
kyselina z (ASS) D-glukosy +
L-arabinosy +
D-xylosy -
D-manitu +
D-fruktosy +
plyn z fruktosy -
lecitináza -
hydrolýza
škrobu +
želatiny +
kaseinu -
Tweenu 80 +
eskulinu -
zužitkování
citrátu +
propionátu -
nitrit z nitrátu +
indol -
fenylalanindesamináza -
arginindihydroláza
podobnost s
Analýza buněčných mastných kyselin prokázala přiřazení k rodu Bacillus.
Parciální sekvencování 16S rDNA prokázalo 100 %
Bacillus simplex.
·· 99
- 10 ·· ·»·· ♦ · · ♦ · · · · • 9 9 9
99 ·
» · t · 9
9 9
999 9 ♦ ·
9 ·
9 9 ·
• · • 9
9
9
9
Taxonomický popis Alcaligenes piechaudii K4 buněčná forma šířka μη délka μπι tyčinky
0,5-0,6
1,0-2,5 pohyblivost mrskání peritrich
Gram-reakce lyže 3 %ním KOH + aminopeptidáza + spory oxidáza + kataláza
ADH nitrit z nitrátu + denitrifikace ureáza hydrolýza želatiny zužitkování substrátu glukosy fruktosy arabinosy adipátu kaprátu citrátu
4· 44 44 φ»
4 4 4 444 4 •••4 44 44
4 4 4 444 · 444 4 4 •99 9 4 4 · ···· • 4 • · • ·
4 malátu + mannitolu pimelátu +
Charakteristika buněčných mastných kyselin je typická pro rod Alcaligenes.
Parciálním sekvencováním 16S rDNA se prokázala 99,3 % příslušnost k druhu Alcaligenes piechaudii.
Taxonomický popis Pseudomonas putida K32
buněčná forma tyčinky
šířka μιη 0,8-0,9
délka μπι 1,5-4,0
pohyblivost +
mrskání polární>l
Gram-reakce -
lyže 3 %ním KOH +
aminopeptidáza +
spory -
oxidáza +
kataláza +
růst anaerobně -
pigmenty
fluoreskující +
pyanokyanin -
ADH
- 12 ·· 9··· • 9 99 « 9 9
9 9 9
9 999
9« 99 • 9 9 9
9 99
999 9 9 • 9 9
99
nitrit z nitrátu
denitrifikace -
ureáza -
hydrolýza želatiny -
zužitkování substrátu
adipátu -
citrátu +
malátu +
D-mandelátu +
fenylacetátu +
D-tartrátu -
D-glukosy +
trehalosy -
manitolu -
benzoylformiátu -
propylenglykolu +
butylaminu +
benzylaminu +
tryptaminu -
acetamidu +
hipurátu +
Charakteristika buněčných mastných kyselin je typická pro Pseudomonas putida.
Parciální sekvencování 16S rDNA prokázalo ca 98 % podobnost s
Pseudomonas mendocina a Pseudomonas alcaligenes. Podobnost s Pseudomonas putida byla 97,4 %.
Na základě fenotypických dat se může tento kmen jednoznačně přiřadit druhu Pseudomonas putida.
Enzymy podle vynálezu, N-acyl-L-prolinacylázy lze získat např. v oboru běžným otevřením popsaných buněk mikroorganismů, výhodně
- 13 AA AAAA
A A A ♦ · · • · A
A A A A
AA AA • ♦ ♦ A A AA A • •AA A A AA • A AAA A AAA A A • · A AAA ·· ·· AA AA se enzymy získají z Arthrobacter sp. HSZ5 (DSM 10329). K tomu lze použít metod jako např. s ultrazvukem, s Frenchovým tlakovým zařízením nebo metody s losozymy. Enzymy se vyznačují následujícími vlastnostmi:
N-acyl-L-prolinacyláza se vyznačuje následujícími vlastnostmi:
a) substrátová specificita:
hydrolyzuje se N-benzyloxykarbonyl-L-prolin, N-benzoyl-L-prolin,
N-isobutoxykarbonyl-L-prolin,
N-benzyloxykarbonyl-L- pyroglutamát, N-benzyloxykarbonyl-DL-pipekolinová kyselina, N-benzyloxykarbonyl-L-alanin,
b) pH-optimum:
pH-optimum je při pH 6,5±0,2
c) teplotní stabilita:
při 43 °C a pH 6,5 není po 6 hod. inkubaci prokazatelná žádná ztráta aktivity
d) aktivita při teplotě:
při 50 °C a pH 6,5 je prokazatelná dobrá aktivita
e) vlivy inhibitorů:
inhibičně působí benzylakohol a N-benzyloxykarbonyl-D-prolin.
Podle vynálezu se způsob výroby N-chráněných cyklických derivátů D-aminokyselin obecného vzorce II a/nebo cyklického derivátu L-aminokyseliny obecného vzorce III
OH (II) íf :ch
OH
Λ
(III) • fc ···· • · • · • fc • · • fc fcfc fcfc fcfc • · · · • fcfc · • fc fc fcfcfc 4» • · · ·· fcfc • fc fcfc • · · • ·· ···· fc • · « ·· fcfc
- 14 kde A spolu s -N- a -CH znamená popřípadě substituovaný čtyř-, pěti- nebo šestičlenný nasycený heterocyklický kruh a R3 znamená -(CH2)2cooh/ každou popřípadě substituovanou skupinu alkyl, alkoxy, aryl nebo aryloxy, provádí tak, že se v racemickém N-chráněném cyklickém derivátu aminokyseliny obecného vzorce IV
kde A spolu s -N- a -CH a R3 mají jmenovaný význam, N-chráněný cyklický derivát L-aminokyseliny přeměňuje pomocí již popsaných mikroorganismů nebo pomocí jejich bezbuněčných enzymů na cyklický derivát L-aminokyseliny (vzorce III) a ten se popřípadě izoluje, přičemž při biotransformaci vzniká vedle derivátu L-aminokyseliny N-chráněný derivát D-aminokyseliny (vzorce II), který se popřípadě izoluje.
Podle vynálezu se způsob výroby N-chráněných alifatických derivátů D-aminokyselin obecného vzorce V a/nebo alifatického derivátu L-aminokyseliny obecného vzorce VI
CH i—R u
.......ť
O
OH (V)
(VI) alkylovou skupinu a RJ znamená atom substituovanou nerozvětvenou alkylovou analogicky jako u odpovídajících kde R3 má jmenovaný význam, R4 znamená atom vodíku, popřípadě substituovanou nerozvětvenou alkylovou skupinu nebo (V -hydroxy------- — vodíku nebo popřípadě skupinu, se provádí cyklických derivátů φφφ φ φ
φφ φφφφ φ φ φ φφφ φ φ φ • φ φ · φφ φφ φφφφ » φ φ φφ φφ φ φ φ φ φ φ φφ φφφ φ φ φφ φ φ φ φφ φφ aminokyselin. Jako edukt se pro to používá racemický N-chráněný alifatický derivát aminokyseliny obecného vzorce VII
(VII)
C=O kde R3,R4 a R5 mají jmenovaný význam
Příklady pro případně substituované nasycené pětičlenné heterocyklické kruhy jsou prolin, pyrazolidin, imidazolidin, oxazolidin, isoxazolidin, thiazolidin, triazolidin. Jako substituovaný nasycený pětičlenný heterocyklický kruh se může použít například 5-oxoprolin (pyroglutamát).
Příklady pro případně substituované nasycené šestičlenné heterocyklické kruhy jsou piperazin, pipekolin, morfolin, chinolinan, isochinolinan, chinoxalin. Jako čtyřčlenný popřípadě substituovaný nasycený heterocyklický kruh se může použít azetidin.
Alkyl se v následujícím definuje jako C^^g-alkylová skupina, substituovaná nebo nesubstituovaná. Příklady pro C1_18-alkylovou skupinu jsou methyl, chlormethyl, hydroxymethyl, ethyl, propyl, butyl, i-butyl, i-propyl, stearyl. Nerozvětvený alkyl se v následujícím definuje jako methyl, ethyl, propyl nebo butyl. Jakoft/-hydroxyalkylová skupina se v následujícím definuje jako hydroxymethyl, hydroxyethyl, hydroxypropyl nebo hydroxybutyl. Alkoxy se v následujícím definuje jako C1_18-alkoxyskupina, substituovaná nebo nesubstituovaná. Příklady pro C1_lg-alkoxyskupinu jsou methoxy, fluorenylmethoxy, ethoxy, propoxy, butoxy, t-butoxy, i-butoxy, stearoxy.
Jako popřípadě substituované arylové skupiny nebo aryloxyskupiny se mohou použít stejné, které byly popsány výše.
• · 9 « « φ • · • 9
- 16 Obzvláště výhodné N-chráněné cyklické nebo alifatické deriváty aminokyselin (edukty, vzorce IV nebo VII) jsou: N-Z-prolin (R3=benzyloxy), N-t-butoxykarbonylprolin (R3=t-butoxy), N-acetylprolin (R3=methyl), N-sukcinylprolin (R3=-(CH2)2-COOH),N-fenyl·acetylprolin (R3=benzyl), N-benzoylprolin (R3=fenyl), N-chloracetylprolin (R3=chlormethyl), N-i-butoxykarbonylprolin (R3=i-butoxy), kyselina N-Z-pipekolinová (R3=benzyloxy; šestičlenný nasycený heterocyklický kruh=pipekolin), N-Z-alanin (R3= benzyloxy, R4=methyl, R5=atom vodíku), N-Z-serin (R3= benzyloxy, R4=hydroxyethyl, R5=atom vodíku), N-Z-pyroglutamát (R3=benzyloxy, pětičlenný nasycený substituovaný heterocyklický kruh=5-oxoprolin) a N-Z-sarkosin (R3= benzyloxy, R5=methyl).
Výroba racemických N-chráněných cyklických nebo alifatických aminokyselin, popř. jejich derivátů je v principu známá. Přitom se odpovídající L-aminokyselina známým způsobem podle EP-A 0 057 092 racemizuje, a ta se pak opět známým způsobem přeměňuje s odpovídající N-ochrannou skupinou podle autorů Grassmann a Wúnsch (Chem.Ber.91 (1958),462-465).
Neznámý je způsob výroby N-chráněných cyklických nebo alifatických aminokyselin, kdy se vychází z odpovídající L-aminokyseliny, kdy se racemizace a zavedení chránící skupiny provádí ve vodném prostředí bez izolace racemické aminokyseliny.
V podstatě je biotransformaci možné provést se všemi mikroorganismy, které zužitkují N-chráněný derivát prolinu ve formě racemátu nebo jeho opticky aktivních isomerů jako jediný zdroj dusíku, jako jediný zdroj uhlíku nebo jako jediný zdroj uhlíku a dusíku. Rovněž vhodné jsou z mikroorganismů izolované N-acyl-L-prolinacylázy. Pro způsob jsou zvláště vhodné výše popsané mikroorganismy rodu Arthrobacter, Alcaligenes, Agrobacterium/Rhizobium, Bacillus, Pseudomonas, obvzláště druhu Agrobacterium/Rhizobium HSZ30, Bacillus simplex K2, Arthrobacter sp. HSZ5, Alcaligenes xylosoxydans ssp. denitrifícans HSZ17 (DSM 10329), Pseudomonas putida K32 nebo Alcaligenes piechaudii K4, popř. jejich funkčně ekvivalentní varianty a mutanty.
- 17 • fe ···· fe · • · • fe • · ·· ·· • fefe·· • fefe · •fefe · ··· · • · · · • fe fefe • fefe · • · · · • •fefe · fefe ·
Biotransformace se může provádět po obvyklém pěstování mikroorganismů s buňkami v klidu (nerostoucí buňky, které již nepotřebují žádný zdroj uhlíku a energie) nebo s rostoucími buňkami. Výhodně se biotransformace provádí s buňkami v klidu.
Pro biotransformaci např. nízkomolární popsané v tabulce 1 podle tabulky 1.
se mohou použít v oboru běžná media, jako fosfátové pufry, Tris-pufr nebo medium Výhodně se biotransformace provádí s mediem
Účelně se biotransformace provádí při jednorázovém nebo kontinuálním přidávání N-chráněného derivátu aminokyseliny tak, aby koncentrace nepřesáhla 50 % hmot., výhodně 20 % hmotn.
Hodnota pH media může být v rozsahu od 3 do 12, výhodně od 5 do 9. Účelně se biotransformace provádí při teplotě od 10 do 70 °C, výhodně od 20 do 50 °C.
Podle způsobu podle vynálezu se N-chráněný cyklický nebo alifatický derivát aminokyseliny plně převede na cyklický nebo alifatický derivát L-aminokyseliny. Přitom vznikne N-chráněný derivát D-aminokyseliny v dobrém výtěžku a dobré enantiomerní čistotě (ee větší než 98 %), který se pak izoluje.
Takto získaný N-chráněný L-aminokyseliny se může extrakcí.
derivát D-aminokyseliny a/nebo derivát izolovat běžnými metodami, jako např.
Příklady provedení vynálezu
Příklad 1:
Selekce mikroorgansimů zužitkujících N-Z-L-prolin
Nejdřív se připravilo minimální medium (tabulka 1), které splňuje nároky na růst řady mikroorganismů:
I
- 18 00 000· • · 0 • 00
0 0
0 0 ·
0 0 • 0 0
00« • · «0 00 0 0 0 0
0 00 • 00 0 0
0 0
Tabulka 1: minimální medium
Na2SO4 0,1 g/1
Na2HPO4.2H2O 2,5 g/1
kh2po4 1,0 g/1
NaCl 3,0 g/1
MgCl2.6H2O 0,4 g/1
CaCl2.2H20 14,5 mg/1
FeCl3.6H2O 0,8 mg/1
roztok stopových prvků 1,0 ml/1
roztok vitaminů 1,0 ml/1
pH 7,0
Jako zdroj uhlíku se přidala fruktosa (5 g/1). Aby se obohatily mikroorganismy, které jsou schopné N-Z-L-prolin selektivně hydrolyzovat, přidal se k tomuto základnímu mediu N-Z-L-prolin (5 g/1) jako jediný zdroj dusíku. Různé násady se pak inokulovaly se vzorky půdy z různých míst a tak dlouho inkubovaly (30 °C, 120 otáček/min) až byl rozeznatelný jasně viditelný růst. Alikvotní část této kultury se přeočkovala do stejně velkého objemu čerstvého media a znovu inkubovala až do zřetelného zakalení. Tento postup se třikrát opakoval. Obohacené mikroorganismy se pak oddělily na pevném mediu (stejné složení jako kapalné medium jen s přidáním 20 g/1 agar-agaru) a čistily. Takto se získalo asi 30 různých bakteriálních izolátů, které byly schopné zužitkovat N-Z-L-prolin jako jediný zdroj dusíku.
Příklad 2
Pěstování selektovaných mikroorganismů
Izoláty získané metodou popsanou v příkladu 1 se pomnožily v mediu tam popsaném. Všechny kultury, které měly dostatečnou buněčnou hustotu (ODg50 2,0), se sebraly (sklízely) centrifugováním. Sedimentující buňky se resuspendovaly v 0,85 % NaCl a promyly.
Po dalším resuspendování v roztoku NaCl se testovala u buněk v klidu schopnost hydrolyzovat N-Z-L-prolin. K tomu se inkubovalo vhodné množství buněk s N-Z-L-prolinem (5 g/1) v roztoku pufru
Φ· φ φ φ φ φ
ΦΦΦ φ • φ φφ
- 19 •v ΦΦΦΦ φ φ · φ · · φ φ φ φ φ · φ φ φφ φφ φφ φφ φ φ φ φ φ φ φ φ φ · ΦΦΦ φ φ · · φφ φφ φφ φφ φφ φ
(50 mM Tris-HCl, ρΗ 7,0) (30 °C). V různých okamžicích se odebraly alikvotní části a testovaly se tenkovrstevnou chromatografií na uvolnění prolinu z N-Z-prolinu. Více izolátů mělo tuto hydrolytickou aktivitu, předně oba kmeny HSZ5 a HSZ17, určené u DSM jako Arthrobacter sp. a Alcaligenes xylosoxydans ssp. denitrificans.
Příklad 3
Růst a enzymová aktivita Arthrobacter sp. HSZ5 (DSM 10328) Arthrobacter sp. HSZ5 se pěstoval s různými zdroji uhlíku (N-Z-L-prolin jako zdroj dusíku), popř. zdroji dusíku (fruktosa jako zdroj uhlíku). Zdroje uhlíku se přidaly v množství 5 g/1, zdroje dusíku v množství 2 g/1. Z důvodu indukování požadované enzymové aktivity se navíc, pokud to bylo třeba, přidal 1 g/1 N-Z-L-prolinu. Z testovaných zdrojů uhlíku se mohly zužitkovat jen fruktosa, glukosa, sacharosa a manit. Ve všech ostatních případech byl jako zdroj uhlíku použit N-Z-L-prolin. Enzymová aktivita závisela jen v malém rozsahu na použitém zdroji uhlíku. Na rozdíl od toho mohly být zužitkovány všechny testované zdroje dusíku, avšak enzymová aktivita se zmenšila, z části i výrazně (tabulka 2):
Tabulka 2:
Růst a enzymová aktivita Arthrobacter sp. HSZ5 při pěstování s různými zdroji uhlíku (A), popř. dusíku (B)
A)
Zdroj uhlíku hustota buněk [OD650] relativní aktivita
fruktosa 12,0 100
glukosa 15,0 150
sachrosa 12,4 148
glycerin 3,7 183
manit 11,2 154
citrát 2,7 106
malát 3,9 124
acetát 3,5 144
N-Z-L-prolin 2,8 109
• · ·
B)
Zdroj dusíku hustota buněk [OD650] relativní aktivita [%]
amonium 8,4 22
nitrát 7,6 6
močovina 7,8 12
glycin 8,0 17
L-glutamát 9,6 43
L-prolin 10,8 64
Příklad 4
Induktory N-acyl-L-prolinacylázy
Arthrobacter sp. HSZ5 se pěstoval v minimálním mediu (Příklad 1) s fruktosou (5 g/1) jako zdrojem uhlíku a L-glutamátem (2 g/1) jako zdrojem dusíku. Dodatečně se přidal N-Z-L-prolin, N-Z-DL-prolin, N-Z-D-prolin, N-Z-sarkosin, N-Z-diethylamin, N-Z-glycin, L-fenylalaninamid, benzamid, N-acetyl-L-prolin, N-acetyl-L-glycin, acetamid (pokaždé 1 g/1) nebo želatina (5 g/1). Po sebrání buněk se testovala s buňkami v klidu vždy enzymová aktivita proti N-Z-L-prolinu, popř. N-Z-D-prolinu (jak je popsáno v Příkladu 2). Analytický důkaz prolinu pomocí HPLC (vysokotlaková kapalinová chromatografie) ukázal, že N-Z-L-prolin a N-Z-DL-prolin jednotlivě indukují požadovanou enzymovou aktivitu, přičemž v obou případech byl jen N-Z-L-prolin přijat jako substrát, t.z. selektivita enzymu byla v obou případech velká.
Příklad 5
Výroba N-Z-D-prolinu
a) Arthrobacter sp. HSZ5 se pěstoval v minimálním mediu (Příklad 1) s fruktosou (5 g/1) jako zdrojem uhlíku a N-Z-L-prolinem (5 g/1) jako zdrojem dusíku. Buňky se sbíraly a promyly, jak bylo popsáno výše. Buňky v klidu (ODg50=30) se za udržování konstatního pH (pH 7,0) a za míchání inkubovaly s N-Z-DL-prolinem (50 g/1) při 30 °C. V různých okamžicích se odebraly aliktvotní části a sledovala se pomocí HPLC koncentrace N-Z-L-prolinu a N-Z-D-prolinu (viz. obr. 1). Po 60 minutách byl N-Z-L-prolin • · · 4 4 4 4 4 4 4 4 « · « 4444 4444 • 4 4 4 4 4 444 4 444 4 4
4444 44 4 4 4 · « «4 44 44 44 44
- 21 téměř úplně hydrolyzován, přičemž N-Z-D-prolin byl v roztoku nezměněný. V roztoku tedy byl N-Z-D-prolin ve velké optické čistotě (ee > 99 % ) .
b) Arthrobacter sp. HSZ5 se pěstoval ve fermentoru Chemap (pracovní objem 21) v minimálním mediu (Příklad 1) s glukosou (30 g/1) a L-prolinem (7 g/1) jako zdrojem uhlíku popř. jako zdrojem dusíku při 30 °C k hustotě buněk OD650 > 35. Pro indukování enzymové aktivity se pak přidalo malé množství N-Z-DL-prolinu (5 g/1) a nějakou dobu dále inkubovalo. Nakonec se kontinuálně přidávalo dalších 145 g N-Z-DL-prolinu po dobu 20 hod. a pak dalších pět hodin inkubovalo. Nakonec se centrifugováním buňky oddělily. Fermentační břečka se kyselinou chlorovodíkovou upravila na hodnotu pH < 3 a N-Z-prolin, který je za těchto podmínek téměř ve vodě nerozpustný, se získal extrakcí pomocí butylacetátu. Rozdělením obou fází se získal vodný roztok L-prolinu a rovněž N-Z-prolinu v organickém rozpouštědle. Organické fáze se zahustily pod vakuem a získaný N-Z-prolin se rozpustil v ethylacetátu a přidáním hexanu vykrystalizoval. Přitom se izolovalo 41,4 g N-Z-D-prolinu v krystalické formě (53,4 % teoretických), jehož identita a čistota se potvrdila pomocí 1H-MNR a určením teploty tavení (75,3 °C) a který měl vynikající optickou čistotu (ee > 99,5 % podle HPLC, [a]D24=60,0 pro c=l v kyselině octové).
1H-NMR (400 MHz v CD3OD); v ppm: 7,35 (m,5H);
5,1 (m,2H);
4,3 (m,lH);
3,6-3,4 (m,2H);
2,3-2,2 (m,lH);
2,1-1,9 (m,3H)
c) Arthrobacter sp. HSZ5 se pěstoval ve fermentoru (jmenovitý objem 20 1) v 6 1 minimálního media (srovnej Příklad 1) s glukosou (20 g/1) a L-prolinem (7 g/1) jako zdrojem uhlíku popř. jako zdrojem dusíku při 30 °C k buněčné hustotě Οϋθ50 > 30. Pro indukování enzymové aktivity se pak přidalo 112 g 50 % roztoku • · · · · · • · • · ·· · · · · · · · · · • · · · · · · · · · · • · · · · · ··· · ···· · • · · · · · · · · ·
- 22 (hmot./hmot.) N-Z-DL-prolinu a 1 hodinu dále inkubovalo. Pak se snížil objem kultury na 41 odpuštěním nepoužitého množství. K těmto 4 1 kultury s indukovanými buňkami se pak kontinuálně přidávalo dalších 709 g 50 % roztoku (hmot./hmot.)) N-Z-DL-prolinu po dobu 5,5 hod. a pak dalších 17,5 hodin inkubovalo. Během biotransformace se udržovala hodnota pH na 7,5-8,5. Po skončení přeměny vzniklo 4077 g buněčné suspenze, ze které se buňky oddělily ultrafiltrací. Alikvotní část (1000 g) vzniklé fermentační břečky se zpracovala jak je popsáno v 6a). Přitom se izolovalo 31,24 g N-Z-D-prolinu v krystalické formě (85 % teoretických), který měl vynikající hodnoty s ohledem na čistotu (titrimetrický obsah=99,6 %) a optickou čistotu (ee > 99,5 % podle HPLC, [a]D24=60,2 pro c=2 v kyselině octové).
d) Arthrobacter sp. HSZ5 se pěstoval ve 450 1 fermentoru v 250 kg minimálního media (srovnej Příklad 1) s glukosou (13 g/1) a L-prolinem (7 g/1) jako zdrojem uhlíku popř. jako zdrojem dusíku při 30 °C k požadované buněčné hustotě (ODg50 ca 25). Přidáním 4 kg 50 % roztoku (hmot./hmot.) N-Z-DL-prolinu se pak indukovala enzymová aktivita. Po inkubační době 1 hod., při které se pH pomalu zvyšovalo (pH=7,5-8,5), se při udržování konstatního pH přidalo dalších 67 kg 50 % roztoku (hmot./hmot.)
N-Z-DL-prolinu rychlostí 20 kg/hod. a pak se inkubovalo dalších 20 hod. Přičemž v důsledku rychlé přeměny (maximální rychlost ca 12 g N-Z-L-prolinu hydrolysováno/1 x hod) byla reakce již 8 hod. po indukci téměř ukončena (ee > 98 %). Z nakonec vzniklých 320 kg kultury se buňky oddělily ultracentrifugací a alikvotní část (1444 g) bezbuněóné fermentační břečky se zpracovala jak je popsáno v 6a). Přitom se izolovalo 50,0 g N-Z-D-prolinu v krystalické formě (83,2 % teoretických) o velmi dobré čistotě (titrimetrický obsah > 99 %), popř. optické čistotě (ee > 99 % podle HPLC).
• · » « • ·
- 23 Obrázek 1:
Enzymatická hydrolýza N-Z-L-prolinu pomocí buněk v klidu Arthrobacter sp. HSZ5
Příklad 6
Racemizace L-prolinu
500 mMol L-prolinu se rozpustilo v 125 ml 4 N NaOH (500 mMol). Tento roztok se pak zahřál na 160 °C v tlakové nádobě a při této teplotě se udržoval 6 hod., přičemž byl maximální tlak 0,45 MPa. Po ochlazení roztoku se na základě hodnoty otáčení ( [01 ] 545 =-l, 5 ) ukázalo, že se prolin vyskytuje téměř úplně jako racemický. Podobné výsledky bylo možné dosáhnout, když se racemizace prováděla s jen 0,15 molárními ekvivalenty NaOH. Nicméně se musela reakční doba prodloužit na 16 hod.
• tt ···· • · · · · · · · · · · • · · · · tt · tttttttt • · · · · · ··· · ···· · ···· · · · · · ·
- 24 Příklad 7
Výroba N-Z-(DL)-prolinu
100,0 g DL-prolinu se rozpustilo ve 217 ml 4 N NaOH. K tomuto roztoku se přikapal benzylester kyseliny chlormravenčí (Z-Cl) za termostatování (5-10 °C) a udržování konstatního pH (pH=ll,5-12,0). Dohromady se přitom přidalo 158,1 g Z-Cl a další 251,2 g 4 N NaOH. Navíc se přidalo 150 ml destilované vody, aby se udržela možnost míchat reakční směs. Pak se směs okyselila koncentrovanou kyselinou chlorovodíkovou (76 ml) na hodnotu pH =2,4 a extrahovala celkem 584 ml butylacetátu. N-Z-DL-prolin obsažený v organické fázi se krystalizoval postupem uvedeným v Příkladu 6. Takto se získalo 187,4 g N-Z-DL-prolinu (86,5 % teoretických).
Příklad 8
Výroba N-Z-(DL)-prolinu (reakce v jedné nádobě)
80,0 g L-prolinu se rozpustilo v 174 ml 4 N NaOH a tento roztok se zahřál na 160 °C v tlakové nádobě. Tato teplota se udržovala 6 hod., přičemž byl maximální tlak 0,44 MPa. Po ochlazení roztoku se na základe hodnoty otáčeni ([^)545--0,6) zjistila téměř úplná racemizace. K tomuto roztoku DL-prolinu se přikapal benzylester kyseliny chlormravenčí (Z-Cl) za termostatování (4 °C) a udržování konstatního pH (pH=ll,5-12,0). Dohromady se přitom přidalo 124,5 g Z-Cl a další 203,7 g 4 N NaOH. Navíc se přidalo 50 ml destilované vody, aby se udržela možnost míchat reakční směs. Pak se směs neutralizovala 4,7 g koncentrované kyseliny chlorovodíkové. Po přidání 200 ml butylacetátu se nakonec pH vodní fáze upravilo přidáním 67,4 g koncentrované kyseliny chlorovodíkové na hodnotu 2,0. Vodná fáze se oddělila a ještě jednou extrahovala dohromady 200 ml butylacetátu. Organické fáze se spojily a N-Z-DL-prolin se krystalizoval postupem uvedeným v Příkladu 6. Takto se získalo 151,3 g N-Z-DL-prolinu (87,3 % teoretických).
• · · · ·· ·· • ·· 9 · 9 9 9
9 9 9 9 9 99
9 9999 9999 ·
- 25 Příklad 9
Charakteristika N-acyl-L-prolinacylázy z Arthrobacter sp. HSZ5
a) pH-optimum N-acyl-L-prolinacylázy
Arthrobacter sp. HSZ5 se pěstoval v mediu popsaném v tabulce 1 s fruktosou (5 g/1) a N-Z-L-prolinem (5 g/1) jako zdrojem uhlíku popř. jako zdrojem dusíku (30 °C, 120 otáček/min). Po dosažení požadované hustoty buněk se buňky sbíraly centrifugací, promyly v roztoku kuchyňské soli (0,9 %) a v něm také nakonec resuspendovaly. Enzymová aktivita v závislosti na hodnotě pH se určovala při zachováni všech ostatních parametrů (30 °C, 50 g/1 N-Z-L-prolinu, ODggQ=15-20). Jako 100 % hodnota se použil výsledek násady při pH=7,0.
Obrázek 2:
Aktivita N-acyl-L-prolinacylázy z Arthrobacter sp. HSZ5 v závislosti na hodnotě pH
• 4 49 44 44
4 4444 4449
9 4 4494 4 444
4 4 · 4 4 444 « ··· 4 4
4444 44 4 444
- 26 Přitom vznikla typická křivka optima s optimem v rozmezí pH=6,4-6,6. Při pH=5,0 a pH=8,5 nebylo již možné zjistit žádnou enzymatickou aktivitu.
b) Aktivita N-acyl-L-prolinacylázy z Arthrobacter sp. HSZ5 v závislosti na teplotě
Buňky s aktivitou N-acyl-L-prolinacylázy byly připraveny postupem podle 9a). Tentokrát se zjišťovala enzymová aktivita pří změnách teploty. Všechny ostatní parametry se udržovaly konstantní (pH 6,5, 50 g/1 N-Z-L-prolinu, OD650 ' 20-25). Jako 100 % hodnota se použil výsledek násady při 30 °C.
Obrázek 3:
Aktivita N-acyl-L-prolinacylázy z Arthrobacter sp. HSZ5 v závislosti na teplotě
•to ···· ·· ·· ·· to*
- 27 Enzymová aktivita stoupala formou mírné sigmoidální křivky. I při 50 °C je ještě zjistitelná dobrá aktivita, což ukazuje na dobrou stabilitu enzymu.
c) Stabilita N-acyl-L-prolinacylázy z Arthrobacter sp. HSZ5 v závislosti na teplotě
Buňky s aktivitou N-Z-L-prolinacylázy byly připraveny postupem podle 9a). Pro zjištění stability enzymu se pak inkubovaly alikvotní části buněčné suspenze (mícháno, pH=6,5, OD650 40-50) při různých teplotách a odebíraly se vzorky v různých okamžicích, které se testovaly při standardních podmínkách (30 °C, pH=6,5, 50 g/1 N-Z-L-prolinu, OD650 ' 15-20) na zbylou aktivitu N-acyl-L-prolinacylázy. Přitom byly zjištěny následující výsledky:
při 43 °C byla zjištěna plná aktivita pro nejméně 6 hodin při teplotě mezi 43 a 53 °C došlo nejprve dokonce ke zvýšení aktivity, pak ale k málé ztrátě aktivity, takže po pěti až šesti hodinách bylo ještě ca 80 % počáteční aktivity vyšší teploty vedly k inaktivaci enzymu (50 % zbytková aktivita po dvou hodinách při 60 °C, popř. úplná inaktivace po jedné hodině při 65 °C)
d) Vliv inhibice produktem na aktivita N-acyl-L-prolinacylázy z
Arthrobacter sp. HSZ5. Buňky s aktivitou N-acyl-L-prolinacylázy byly připraveny podle 9a). Alikvotní části buněčné suspenze se pak inkubovaly s různými koncentracemi produktů vznikajících při hydrolýze N-Z-L-prolinu (L-prolin, N-Z-D-prolin, benzylalkohol) po dobu 30 minut (30 °C, pH 6,4), než byla stanovena enzymová aktivita každé násady za standardních podmínek (30 °C, pH=6,5, 50 g/1 N-Z-L-prolinu, OD650 ' 15-20). Jako 100 % hodnota se použil výsledek násady, která se inkubovala bez přidání produktu.
9999
99 99 99
9 9999 9999
9 9999 9999
9 9 9 9 9 999 · 999 9 9
9999 99 9 999
- 28 Obrázek 4:
Aktivita N-acyl-L-prolinacylázy z Arthrobacter sp. HSZ5 v závislosti na koncentraci produktů
Přitom se ukázalo, že L-prolin ani při vysokých koncentracích nezpůsobuje žádnou inhibici aktivity. Oproti tomu však N-Z-D-prolin a benzylakohol drasticky snižovaly aktivitu enzymu s přibývající koncentrací. Zatímco se zdá, že N-Z-D-prolin působí jako kompetitivní inhibitor (lineárně rostoucí inhibice s rostoucí koncentrací), inhibuje benzylalkohol spíše nekompetitivním způsobem (účinný nad jistou mezní koncentrací).
«· ··♦· ·« ·· ·· · · • « · ···· «··· • · · ···* · · »« * · «<· ····· «··· · «··· ·· » ··· «« ·· ·♦ »· ·· ««
- 29 Příklad 10
Substrátové spektrum různých kmenů s N-acyl-L-prolinacylázou
a) Růst s různými N-chráněnými aminokyselinami jako jediným zdrojem dusíku
Arthrobacter sp. HSZ5, Alcaligenes xylosoxydans ssp. denitrificans HSZ17, Agrobacterium/Rhizobium HSZ30, Bacillus simplex K2 Alcaligenes piechaudii K4 a Pseudomonas putida K32 se pěstovaly v mediu popsaném v tabulce 1 s fruktosou (5 g/1) jako zdrojem uhlíku (30 °C, 120 otáček/min). Jako jediný zdroj dusíku (5 g/1) se přidala pokaždé jiná N-chráněná aminokyselina. Při dosažení buněčné hustoty OD^^q > 0,5 se násada považovala za positivní.
Tabulka 3:
Růst různých kmenů s rýznými N-chráněnými aminokyselinami jako jediný zdroj dusíku
HSZ5 HSZ17 HSZ30 K2 K4 K32
N-Z-L-prolin + + + + + +
N-acetyl-L-prolin + + + +
N-sukcinyl-L-prolin +
N-fenylacetyl-L-prolin + +
N-isobutoxykarbonyl-L- prolin + + +
N-Z-L-pyroglutamát + + + + + +
N-Z-L-alanin + + + +
N-Z-L-serin + +
N-Z-sarkosin +
b) Enzymatická hydrolýza různých N-chráněných aminokyselin Arthrobacter sp. HSZ5, Alcaligenes xylosoxydans ssp. denitrificans HSZ17, Agrobacterium/Rhizobium HSZ30, Bacillus simplex K2 ·« ···· ·« ·· ** ·· »« · *·*· * * · ♦ »*« · · · · *«»« • « · * » · ♦ ·· « ··« · · ··*· · · * ··*
- 30 Alcaligenes piechaudii K4 a Pseudomonas putida K32 se pěstovaly v mediu popsaném v tabulce 1 s fruktosou (5 g/1) a N-Z-L-prolinem (5 g/1) jako jediným zdrojem uhlíku, popř. dusíku (30 °C, 120 otáček/min). Při dosažení požadované buněčné hustoty se buňky sebraly centrigugací a promyly v roztoku kuchyňské soli (0,9 %). Poté, co byly všechny kmeny testovány na požadovanou enzymovou aktivitu, se pak buňky resuspendovaly ve 100 mM pufru fosforečnanu draselného (pH 7,0). Po přidání různých N-chráněných aminokyselin (konečná koncentrace 100 mM) se násady inkubovaly při 30 °C za třepání, přičemž se odebíraly vzorky ve vhodných odstupech. U těchto vzorků se pak zjišťovala hydrolýza vnesených substrátů.
Tabulka 4:
Enzymatická hydrolýza různých N-chráněných aminokyselin pomocí celých buněk různých kmenů obsahujících N-acyl-L-prolinacylázu
HSZ5 HSZ17 HSZ30 K2 K4 K32
N-Z-L-prolin + + + + + +
N-BOC-L-prolin + + + +
N-acetyl-L-prolin + + +
N-sukcinyl-L-prolin +
N-fenylacetyl-L-prolin + +
N-benzoyl-L-prolin + + + + + +
N-chloracetyl-L-prolin + +
N-isobutoxykarbonyl-L- prolin + + + + +
N-Z-DL-pipekolinová kys. + + +
N-Z-L-alanin + + + +
N-Z-L-serin + + +
• 0
0
0
0
0
WO 97/33987
- 30 a
Applicams or asenťs filé reference numbčr LO/709 Wd/Sh • · • «
0
0
International application b
0000 •
0 • 00
0
0
000 · *
0
00 0 0 0 0 ♦ 0 00 • 00 0 0
0 0 • 0 00
PCT/EP97/01262
INDICATIONS RELATING TO A DEPOSITED M1CROORGANISM (PCT Rule 13W.r)
A. The indications made below relate to the microorganism referred to in the description on pagc 4 , line 4
B. IDENTIFICATION OF DEPOSIT
Further deposits are identifted on an additional sheet □
Name of deposiiury institution
DSM-DEUTSCHE SAMMLUNG VON MIKROORGANISMEN UND ZELLKULTUREN GmbH
Address of depositary institution (including poslal code and country) Mascheroder Weg lb D-38124 Braunschweig
Dáte of deposit
14.11.95
Accession Number DSM 10328
C. ADDITIONAL INDICATIONS (leave blank ifnot applicable) This Information is continued on an additional sheet □
D. DESIGNATED STATES FOR WHICH INDICATIONS ARE MADE Uf the indications are not for all designated States)
E. SEPARATE FURNISHING OF INDICATIONS (leave blank ifnot applicable)
The indications listed below will be submitted to the International Bureau later íspecify the generál nátuře of the indications e.g., Accession
Number of Deposit)
For receiving Office uše only
I Μ This sheet was received with the International application
For International Bureau use only [~~Ί This sheet was received by the International Bureau on:
Authórized officer
R.L.R. Pether
Authórized officer
Fonn PCT/RO/134 (July 1992)
Applicanťs or agenis filé reference number ·· ···· ♦ · · • fc ··
WO 97/33987
30b • ♦ fc · • · · • fc • fcfc · fc fcfcfc • · fcfcfc · ··« · fc • fc · fcfcfc • fc fcfc fcfc ··
PCT/EP97/01262
J7709 Wd/Sh
International application
INDICATIONS RELATING TO A DEPOSITED MICROORGANISM (PCT Rule I3to)
A. The indications made below relate to the microorganism referrcd to in thedescription
on nace 4 . line 6
B. IDENTIFICATION OF DEPOSIT Further deposits are identified on an additional sheet | ]
Name of depositary institution DSM-DEUTSCHE SAMMLUNG VON MIKROORGANISMEN UND ZELLKULTUREN GmbH
Address of depositary institution (including poslal code and coumry)
Mascheroder Weg lb D-38124 Braunschweig
Dáte of deposit 14.11.95 Accession Number DSM 10329
C. ADDITIONAL INDICATIONS lleave blank if not applicable) This Information is continued on an additional sheet | |
D. DESIGNATED STATES FOR WHICH INDICATIONS ARE MADE (if lbe indications are not for all destgnatcd States)
E. SEPARATE FURNISHING OF INDICATIONS (leave blank if not applicable)
The indications listed below will be submitted to the International Bureau láteř (specify the generál nátuře ofthe indications e.g.. Accession Number nf Deposit)
r- · . Λ , I- « 1 .
1X1 This sheet was received with the intemational application 11 11 rui iiitviiiauuiini ouicau wsc um v 11 □ This sheet was received by the International Bureau on:
Authorized officer Pether Authorized officer
Form PCT/RO/134 (July 1992)

Claims (11)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Mikroorganismy, které jsou schopné derivát prolinu obecného vzorce I zužitkovat N-chráněný (I) ve formě racemátu nebo jeho opticky aktivního izomeru,
    -] kde R znamená -(CH2)2~COOH, popřípadě substituovanou každou skupinu C-^-alkoxy, aryl nebo aryloxy a R2 znamená atom vodíku nebo =0, jako jediný zdroj dusíku, jako jediný zdroj uhlíku nebo jako jediný zdroj uhlíku a dusíku.
  2. 2. Mikroorganismy podle nároku 1, které jsou schopné zužitkovat N-chráněný derivát L-prolinu obecného vzorce I jako jediný zdroj dusíku, jediný zdroj uhlíku nebo jako jediný zdroj uhlíku a dusíku.
  3. 3. Mikroorganismy podle nároku 1 nebo 2 rodu Arthrobacter, Agrobacterium/Rhizobium, Bacillus, Pseudomonas nebo Alcaligenes.
  4. 4. Mikroorganismy podle alespoň jednoho z nároků 1 až 3 druhu Arthrobacter sp. HSZ5 (DSM 10328), Alcaligenes xylosoxydans ssp. denitrificans HSZ17 (DSM 10329), Agrobacterium/Rhizobium HSZ30, Bacillus simplex K2, Pseudomonas putida K32 nebo Alcaligenes piechaudii K4 stejně jako jejich funkčně ekvivalentní varianty a mutanty.
  5. 5. N-acyl-L-prolinacyláza, která má následující vlastnosti:
    a) substrátová specificita:
    hydrolyzován je N-benzyloxykarbonyl-L-prolin, • fe ···· fefe • fe fefe fefe fefe • ♦ · · · · · · fe • » · fe · · fe fe* • · · · ··· fe ··· · · • fefe « · · ·
    - 32 N-benzoyl-L-prolin,
    N-isobutoxykarbonyl-L-prolin, N-benzyloxykarbonyl-L-pyroglutamát, N-benzyloxykarbonyl-DL-pipekolinová kyselina N-benzyloxykarbonyl-L-alanin,
    b) pH-optimum pH-optimum je při pH 6,5±0,2
    c) teplotní stabilita:
    při 43 °C a pH 6,5 není po 6 hodinové inkubaci zjistitelná žádná ztráta aktivity
    d) teplota a aktivita:
    při 50 °C a pH 6,5 je zjistitelná dobrá aktivita
    e) vliv inhibitorů:
    inhibičně působí benzylakohol a N-benzyloxykarbonyl-D-prolin.
  6. 6. Způsob výroby N-chránéného cyklického derivátu D-aminokyseliny obecného vzorce II a/nebo cyklického derivátu L-aminokyseliny obecného vzorce III
    A
    OH (II) (III)
    R3 kde A spolu s -N- a -CH znamená popřípadě substituovaný čtyř-, pěti- nebo šestičlenný nasycený heterocyklický kruh a R3 znamená -(CH2)2-COOH, každý popřípadě substituovaný alkyl, alkoxy, aryl nebo aryloxy, vyznačující se tím, že se v racemickém N-chráněném cyklickém derivátu aminokyseliny obecného vzorce IV ·· ···· ·· ·· ·· ·· • * · ···· ···* «·· ···· ·*·· • · · · · · ··· * ·♦· * · ·*·· · « · ·«·
    - 33 N (IV)
    R3 kde A spolu s -N- a -CH a R3 mají jmenovaný význam, N-chráněný cyklický derivát L-aminokyseliny převádí pomocí mikroorganismů podle nároků 1 až 4 nebo pomocí bezbuněčných enzymů podle nároku 5 na cyklický derivát L-aminokyseliny (vzorec III) a ten se popřípadě izoluje, přičemž při biotransformaci vzniká Vedle cyklického derivátu L-aminokyseliny N-chráněný cyklický derivát D-aminokyseliny (vzorec II), který se popřípadě izoluje.
  7. 7. Způsob výroby N-chráněného alifatického derivátu D-aminokyseliny obecného vzorce V a/nebo alifatického derivátu L-aminokyseliny obecného vzorce VI
    R4CH.......
    N—R5 (V) (ví) kde R3 má jmenovaný význam, R4 znamená atom vodíku, popřípadě substituovanou nerozvětvenou alkylovou skupinu nebo LU -hydroxyalkylovou skupinu a R5 znamená atom vodíku nebo popřípadě substituovanou nerozvětvenou alkylovou skupinu, vyznačující se tím, že se v racemickém N-chráněném alifatickém derivátu aminokyseliny obecného vzorce VII
    OH (VII) =0
    44 44 ·4 * *
    4 44 4 · 4 4 4
    9 4 4 4 4 · 44
    4 4 444« 4444 4
    4· 4 4 4 4 •4 444»
    4 » ·
    4 4 4
    4· 4 • 4 4 ·
    - 34 ο λ pr kde R , R* a R mají jmenovaný význam, N-chráněný alifatický derivát L-aminokyseliny převádí pomocí mikroorganismů podle nároků 1 až 4 nebo pomocí bezbuněčných enzymů podle nároku 5 na alifatický derivát L-aminokyseliny (vzorec VI) a ten se popřípadě izoluje, přičemž při biotransformaci vzniká vedle alifatického derivátu L-aminokyseliny N-chráněný alifatický derivát D-aminokyseliny (vzorec V), který se popřípadě izoluje.
  8. 8. Způsob podle nároku 6 nebo 7,vyznačující se tím, že se biotransformace provádí pomocí mikroorganismů rodu Arthrobacter, Agrobacterium/Rhizobium, Bacillus, Pseudomonas nebo Alcaligenes.
  9. 9. Způsob výroby N-chráněného cyklického derivátu D-aminokyseliny obecného vzorce II
    OH (II) c—0
    R3 kde A spolu s -N- a -CH znamená popřípadě substituovaný čtyř-, pěti- nebo šestičlenný nasycený heterocyklický kruh a R3 znamená -(CH2)2-cooh, každý popřípadě substituovaný alkyl, alkoxy, aryl nebo aryloxy, vyznačující se tím, že se cyklický derivát L-aminokyseliny obecného vzorce III (III) ·· 94 44 44
    4 9 4 4 4 4 4 · 4 * *
    4 4 4 9 4 4 4 · · 44 • · · * · · 449 4 449 9 9
    94·· 4 9 4 444 • 4 4 44 4
    - 35 kde A spolu s -N- a -CH mají jmenovaný význam, racemizuje na odpovídající cyklický derivát aminokyseliny, ten se převede na N-chráněný cyklický derivát aminokyseliny obecného vzorce IV kde A spolu s -N- a -CH a R3 mají jmenovaný význam, a nakonec se N-chráněný derivát L-aminokyseliny převede pomocí mikroorganismů podle nároků 1 až 4 nebo pomocí bezbuněčných enzymů podle nároku 5 na cyklický derivát L-aminokyseliny, ten se popřípadě izoluje, přičemž při biotransformaci vzniká vedle cyklického derivátu L-aminokyseliny N-chráněný cyklický derivát D-aminokyseliny (vzorec II), který se izoluje.
  10. 10. Způsob výroby N-chráněného kyseliny obecného vzorce V alifatického derivátu D-amino- kde R3, R4 a R5 mají jmenovaný význam, vyznačující se tím, že se alifatický derivát L-aminokyseliny obecného vzorce VI
    ΦΦΦΦ 4
    Φ Φ 4 * Φ Φ·
    - 36 φφ φφ φ φ φ ί φ φ ·
    Β Φ ΦΦΦ » Φ Φ ·* ΦΦ
    ΟΗ (VI) kde R4 má jmenovaný význam, racemizuje na odpovídající alifatický derivát aminokyseliny, ten se převede na N-chráněný alifatický derivát aminokyseliny obecného vzorce VII (VII) kde R3 , R4 a R5 mají jmenovaný význam, a nakonec se N-chráněný alifatický derivát L-aminokyseliny převádí pomocí mikroorganismů podle nároků 1 až 4 nebo pomocí bezbuněčných enzymů podle nároku 5 na alifatický derivát L-aminokyseliny, ten se popřípadě izoluje, přičemž při biotransformaci vzniká vedle alifatického derivátu L-aminokyseliny N-chráněný derivát D-aminokyseliny (vzorec V), který se izoluje.
  11. 11. Způsob podle nároku 9 nebo 10, vyznačující se tím, že se přeměna provádí ve vodné prostředí bez izolace racemického derivátu aminokyseliny.
CZ982811A 1996-03-13 1997-03-12 Způsob výroby N-chráněných derivátů D-prolinu CZ281198A3 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CH65696 1996-03-13

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ281198A3 true CZ281198A3 (cs) 1998-12-16

Family

ID=4192092

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ982811A CZ281198A3 (cs) 1996-03-13 1997-03-12 Způsob výroby N-chráněných derivátů D-prolinu

Country Status (12)

Country Link
US (1) US20020037559A1 (cs)
EP (1) EP0896617A1 (cs)
JP (1) JP2000506728A (cs)
KR (1) KR19990087341A (cs)
CN (1) CN1213400A (cs)
AU (1) AU2155797A (cs)
CA (1) CA2245543A1 (cs)
CZ (1) CZ281198A3 (cs)
NO (1) NO984206L (cs)
PL (1) PL328795A1 (cs)
SK (1) SK282099B6 (cs)
WO (1) WO1997033987A1 (cs)

Families Citing this family (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU5757498A (en) * 1996-12-16 1998-07-15 Lonza A.G. Method for production of d-proline derivatives
EP1005563A1 (de) * 1997-08-11 2000-06-07 Lonza AG VERFAHREN ZUR HERSTELLUNG ENANTIOMERENREINER CYCLISCHER alpha-AMINOSÄUREN BZW. DEREN N-GESCHÜTZTER DERIVATE MITTELS EINER D-SPEZIFISCHEN AMINOACYLASE
DE10050123A1 (de) * 2000-10-11 2002-04-25 Degussa Verfahren zur Herstellung von Aminosäuren
RU2006119470A (ru) * 2003-12-04 2007-12-20 Пфайзер Инк. (US) Способы получения стереоизомерно обогащенных аминов
WO2013147328A1 (ja) 2012-03-30 2013-10-03 味の素株式会社 化粧料組成物
CN104592083A (zh) * 2015-01-06 2015-05-06 宁波海硕生物科技有限公司 一种制备n-乙酰-dl-硫代脯氨酸的方法

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4401820A (en) * 1981-01-23 1983-08-30 Tanabe Seiyaku Co., Ltd. Process for racemizing optically active α-amino acids or a salt thereof
DE3929570A1 (de) * 1989-09-06 1991-03-07 Degussa Mikrobiologisch hergestellte n-acyl-l-prolin-acylase, verfahren zu ihrer gewinnung und ihre verwendung
US5219741A (en) * 1989-09-06 1993-06-15 Degussa Ag Method of making L-proline using an N-acyl-L-protine acylase
DE4116980A1 (de) * 1991-05-24 1992-11-26 Degussa Verfahren zur herstellung enantiomerenreiner offenkettiger n-alkyl-l oder d-aminosaeuren

Also Published As

Publication number Publication date
AU2155797A (en) 1997-10-01
JP2000506728A (ja) 2000-06-06
NO984206D0 (no) 1998-09-11
SK117198A3 (en) 1999-03-12
US20020037559A1 (en) 2002-03-28
EP0896617A1 (de) 1999-02-17
SK282099B6 (sk) 2001-11-06
NO984206L (no) 1998-09-11
CA2245543A1 (en) 1997-09-18
WO1997033987A1 (de) 1997-09-18
PL328795A1 (en) 1999-02-15
KR19990087341A (ko) 1999-12-27
CN1213400A (zh) 1999-04-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US8460902B1 (en) DNA encoding hydantoinase, DNA encoding N-carbamyl-L-amino acid hydrolase, recombinant DNA, transformed cell, method of producing protein, and method of producing optically active amino acid
US7351571B2 (en) Process for the production of β-amino acids using acylase
EP0857790A1 (en) Process for producing optically active amino compounds
US7405065B2 (en) Enzyme for the preparation of 1-amino-4-(hydroxymethyl)-2-cyclopentene derivatives
US6262295B1 (en) Process for the preparation of a racemic or optically active 4-(hydroxymethyl)-2-cyclopentene derivative
CZ281198A3 (cs) Způsob výroby N-chráněných derivátů D-prolinu
US4006057A (en) Method of producing L-cysteine and L-cystine
EP0954571B1 (en) Biocatalysts with amine acylase activity
EP0309310B1 (fr) Nouveau système enzymatique, son procédé de préparation et son application notamment dans la préparation de la D-parahydroxyphénylglycine
JPH01320991A (ja) D−ホモフエニルアラニン類の製造方法
JP5096911B2 (ja) 5−置換ヒダントインラセマーゼ、これをコードするdna、組換えdna、形質転換された細胞、および、光学活性n−カルバミルアミノ酸または光学活性アミノ酸の製造方法
JP2899071B2 (ja) L―α―アラニンの製造法
CZ3599A3 (cs) Mikroorganismy a způsob výroby derivátů D-prolinu
CZ76393A3 (en) Micro-biological process for preparing derivatives of malonyl-7-aminocephalosporanic acid
JP2001506500A (ja) D−プロリン誘導体を調製する方法
JPH05192190A (ja) 光学活性なカルボン酸誘導体の製造方法
CA2299324A1 (en) Method for producing cyclic .alpha.-amino acids free from enantiomers or their n-protected derivatives by means of a d-specific aminoacylase
JPH07274985A (ja) D−γ−メチルロイシンの製造法
JPH05219987A (ja) 光学活性乳酸の製造法
WO2001009365A1 (en) Process for the preparation of 2-cyano-5-hydroxypyrazine
JP2001120259A (ja) 微生物によるカルボン酸アミド類の製法

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic