CS273071B1 - Method of extracellular polysacharide and cellular biomassa preparation by means of "rhodella grisea" alga's culture - Google Patents

Method of extracellular polysacharide and cellular biomassa preparation by means of "rhodella grisea" alga's culture Download PDF

Info

Publication number
CS273071B1
CS273071B1 CS534388A CS534388A CS273071B1 CS 273071 B1 CS273071 B1 CS 273071B1 CS 534388 A CS534388 A CS 534388A CS 534388 A CS534388 A CS 534388A CS 273071 B1 CS273071 B1 CS 273071B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
grisea
rhodella
culture
cellular
polysaccharide
Prior art date
Application number
CS534388A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Other versions
CS534388A1 (en
Inventor
Frantisek Rndr Drsc Hindak
Blazena Rndr Pekarkova
Original Assignee
Frantisek Rndr Drsc Hindak
Blazena Rndr Pekarkova
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Frantisek Rndr Drsc Hindak, Blazena Rndr Pekarkova filed Critical Frantisek Rndr Drsc Hindak
Priority to CS534388A priority Critical patent/CS273071B1/cs
Publication of CS534388A1 publication Critical patent/CS534388A1/cs
Publication of CS273071B1 publication Critical patent/CS273071B1/cs

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

jř 1 CS 273 071 B1
Vynález sa týká sposobu, přípravy extracelulárneho polyaacharidu a buňkové;) bio-raasy synchrónnou kulturou riasy Rhodella grisea (Geitler) Billard et al.
Doteraz známe postupy produkoie extracelulárneho polysaoharidu, ktorý sa podobáagaru a karageenanu mořských stielkatých červených rias, používali jednobuňková červe-ná riasy Porphyridium. Kultivačný postup s nepřetržitou produkciou extracelárneho po-lysacharidu pri použití slanomilného druhu Porphyridium purpureum opísali C. Gudin aD. Thomas. Buňky sa imobilizovali pevným nosičom z polyuretanu. K buňkám sa privádzalživný roztok s nízkým obsahom dusičnanov, do ktorého buňky kontinuálně produkovaliviskózny extracelulárny polysacharid. Při tomto spísobe kultivácie netřeba mechanickyseparoval; buňky zo živného roztoku {C. Gudin, D. Thomas: C.R. Acad. Sci. Paris Ser.III,293, 35 (1981)]. Nevýhodou tohto sposobu je nízká produkcia extraoelulárneho polysa-charidu a vysoká zasolenosi; suspenzie. Pre sladkovodný druh Porphyridium aerugineumnavrhol J. Rámus kontinuálny sposob kultivácie, pri ktorom sa strieda kultivácia buniekv živnom roztoku obsahujúcim všetky potřebné živiny s kultiváciou v živnom roztoku bezdusičnanov, v ktorom buňky přestanu rási a dělit' sa, ale zvyšujú produkciu extracelu-lárneho polysaoharidu. Po istom čase třeba do živného roztoku doplnit’ dusičnany, abysa predislo nenávratnému poškodeniu fotosyntetického aparátu buniek jí. Rámus: NovaHeďwigia 83, 51 (1986)^. Nevýhodou tohto sposobu je dlhšia kultivácia a práce s dvornákoncentráciami živného roztoku.
Mikroskopická červená riasa Rhodella grisea bola pSvodne nájdená v Neziderskomjazere a opísaná Geitlerom r. 1970 pod menom Porphyrideum griseum. Billard et al. r.1988 ju previedli do rodu Rhodella ako R. grisea. Druhý nález tejto riasy pochádzaz Československa, a to z termálneho bazéna v Piešíanoch. Izolovaný kmen sa označil HK1983/1. Veími riedka suspenzia tejto riasy sa naočkovala do Petriho misky s 1,5 hmot. %agaru oto hamán živným roztokom. Z jednotlivých buniek riasy narástli na svetle klonovékolonie, na ktoré nebolo posobené mutagennými vplyvmi. Testovalo sa 20 klonov, z kto-rých mal najvyššiu produkciu extracelulárneho polysaoharidu klon HK 1983/1/7. Kulturariasy Rhodella grisea bola uchovávaná v anorganickom živnom roztoku po 100 ml suspenziev Erlenmeyerových bankách o objeme 250 ml. Zásobná kultura nebola prebublávaná vzduchema ani nebola tretaná, bola udržiavaná pri teplote 18 až 25 °C a pri intenzitě světla20 až 30 W.m“2 PAR (fotosynteticky aktívneho žiarenia).
Uvedené nevýhody v podstatnej miere odstraňuje spósob přípravy extracelulárnehopolysaoharidu a buňkovéj biomasy synchrónnou kultúrou riasy Rhodella grisea, ktoréhopodstata spočívá v tom, že produkčná synchrónna kultúra riasy Rhodella grisea a husto-tou suspenzie 0,3 až 1,1 g.l“1 suchéj hmotnosti buniek sa kultivuje pri teplote 15 až35 °C v aspoň 3 cykloch 7 až 9 h na svetle o intenzitě aspoň 70 ff.m"2 fotosyntetickyaktívneho žiarenia a 15 až 17 h v tme, pričom sa nepěstovaná biomasa zberá po tme. 8 výhodou sa kultivuje klon riasy Rhodella grisea HK 1983/1/7. Výhodou navrhovaného spásobu přípravy extracelulárneho polysaoharidu a bunkovejbiomasy synchrónnou kulturou riasy Rhodella grisea oproti doterajším sposobora je, žeumožňuje rýchlejšiu produkciu obidvoch týchto komponentov a umožňuje použil; kultivá-tory s íubovoíným objemom a tvarom pri kultiváoiách v laboratóriách alebo pod holýmnebom s využitím 3lnečného žiarenia ako zdroja svetelnej energie. Ďalšou výhodou je,že buňky použitého klonu riasy takmer nesedimentujú, nalepia sa na steny kultivátoraa netvoria zhluky. Příklad 1
Anorganický živný roztok o pH 7,5 až 8, ktorý obsahuje 500 mg.I“1 dusičnanu dra-selného, 500 mg.l"1 dusičnanu sodného, 500 mg.l"1 hydrofosforečnanu draselného, 420 mg.l hydrouhlicitanu sodného, 250 mg.l heptahydrátu síranu horečnatého, 18,5 mg.l“1 hydrátu železito-sodnej soli kyseliny etyléndiamintetraoctovej (hydrát CS 273 071 B1 2 —1 —1chelatonátu železito-sodného), 11 mg.l hexahydrátu chloridu vápenatého, 3,1 mg.lkyseliny boritej. 1,8 mg.l-1 tetrahydrátu heptamolybdénanu hexaamonného, 1,4 mg.l“1heptahydrátu síranu kobaltnatého, 1,4 mg.l“1 heptahydrátu síranu zinočnatého, 1,2 mg.l“1tetrahydrátu síranu manganatého, 1,2 mg.l“1 pentahydrátu síranu mežnatého a stopovémnožstvo kyanokobalamínu (vitamínu B^), sa inokuluje nesynchrónnou zásobnou kulturou.na hustotu 0,3 g suchej hmotnosti buniek v 1 litri suspenzie. Hustota sa stanoví pomo-oou optickéj hustoty suspenzie meranej na fotometri pri vlnovej dížke 750 nm, s použi-tím predtým zisteného koeficientu přepočtu optickej hustoty suspenzie na přibližnáhodnotu jej suchej hmotnosti.
Suspenzia sa naleje do kultivátoru temperovaného neustále na teplotu 30 °C a za-temní sa. V kultivátoři sa suspenzia stále prebubláva zmesou vzduchu s prídavkom 2 obj.% oxidu uhličitého. Počas 16 h tmy sa časť buniek připravených na delenie rozdělí, kaž-dá na dve rovnaké dcérske buňky. V prvej svetelnej perióde cyklu sa kultúra vystavína biele světlo o intenzitě 70 W.m PAR (fotosynteticky aktívneho žiarenia). Po 8 hsa kultura zatemní na 16 h. Druhá světelná perioda prebieha pri svetle 90 W.m . Trváopat' 8 h a následuje temná perioda 16 h. Suchá hmotnost’ buniek sa po prvých dvoch cy-kloch zvýši na 0,8 g.l”1. Následuje 5 cyklov, v ktorých sa automaticky riadi trvaniesvětla a tmy v intervaloch 8 : 16 h a hustota suspenzie - na kultivátoři je umiestnenýsnímač, ktorý udržuje hustotu suspenzie v rozmedzí 0,9 až 1 g.l“1 suchej hmotnosti bu-niek. Pri vyšsej hustotě suspenzie spustí snímač čerpadlo, ktore dopraví do kultiváto-ra také množstvo anorganického roztoku, že suspenzia sa zriedi na hustotu v rozmedzí0,9 až 1 g.l“1 suchej hmotnosti buniek. Rovnaký objem nadbytočnej suspenzie odtečieitrubicou z kultivátora. Svetelné periody týchto automaticky riadených cyklov prebieha-,,jú pri intenzitě světla 120 W.m PAR ("biele" evetlo). Počas 3 h po zatmění sa naras-itené materské buňky v synchronnej kultuře rozdelia na dve dcérske buňky. Přibližné 95 % buniek v synchronnej kultuře po 16 h tmy sú mladé dcérske buňky.Takáto kultúra sa nariedi na hustotu 0,45 až 0,5 g.l“1 suchej hmotnosti buniek a kulti-vuje sa pri teplotě 30 °G a intenzitě světla 100 W.m“^ PAR na čas 8 h. V priebehu sve-telnej periody sa suchá hmotnost' buniek zdvojnásobí. Následuje 16 h periody tmy, počasktorej buňky vylúčia do živného roztoku vsetok polysacharid, syntetizovaný počas sve-telnej periody. Před žalšou periodou světla sa z kultivátora odoberie polovica suspen-zie o hustotě 0,9 až 1 g.l“1 suchej hmotnosti buniek. Zvyšok suspenzie v kultivátořisa zriedi anorganickým živným roztokom na polovičnú hustotu. Nepěstovaná suspenzia sacentrifuguje 15 minát pri 6 až 8.10·1 otáčkách za minutu. Sedimentované buňky sa roz-miešajú v čerstvom živnom roztoku a po 30 minútach miešania sa centrifugácia opakuje. V čerstvom živnom roztoku sa rozpustí extraoelulárny polysacharid z vorikajsích vrstievbuňkových obalov. Obidva supernatanty sa zlejú. Suchá hmotnost' polysacharidu rozpuště-ného v živnom roztoku představuje až 55 % suchej hmotnosti celkovéj produkovanéj bio-masy, t. j. súčtu suchých hmotností buniek a polysacharidu. Suspenzia o hustotě 1 g.l“1suchej hmotnosti buniek obsahuje až 1,2 g polysacharidu v 1 litri. Uvedené hustoty sapoužijú v kultivátoroch, v ktorých vrstva suspenzie nie je vačšia ako 2 cm. Čistý extraoelulárny polysacharid sa zo živného roztoku získá vo formě bielej,vo vodě rozpustnej látky dialýzou a nasledovnou lyofilizáoiou, alebo ako biela vlákni-tá, vo vodě nerozpustná látka vyzrážaním acetónom, etylakoholom alebo 2-propanolom.Chemicky je polysacharid tvořený saoharidami (glukóza, galaktóza, xyloza, uronové ky-seliny), žalej obsahuje menšie množstvo proteinov a sulfátových skupin. Viskozita roz-puštěného polysacharidu sa nemení pri změnách pH; nepatrné sa zvyšuje při zahriatiroztoku na 100 °C.

Claims (2)

  1. 3 CS 273 071 B1 it Příklad 2 Postupuje sa ako v příklade 1 s tým rozdielom, že snímač reguluje hustotu suspen-zie v synchronizačných cykloch na hodnotu 0,4 až 0,5 g»l~1 suchéj hmotnosti huniek priintenzitě světla 80 W.m PAK a produkčně suspenzie rastu pri rovnakej intenzitě světlav rozmedzí hustot 0,3 až 0,6 g.l-1 suchéj hmotnosti huniek. Suohá hmotnost polysachari-du rozpuštěného v živnom roztoku představuje až 60 % suchej hmotnosti celkovej hiomasy,t.j. suspenzia o hustotě 0,6 g.l“1 suchej hmotnosti huniek obsahuje až 0,9 g polysacha-ridu v 1 litri. Tieto hustoty suspenzie sa použijú v kultivátoroch s vrstvou suspenzie2 až 4 cm. Příklad 3 Postupuje sa ako v příklade 2 s tým rozdielom, že sa použije kultivátor, v ktoromsú buňky počas svetelnej periody stále na dennorn 3vetle. Do kultivátora sa neleje syn-chronně kultura připravená v lahoratóriu. Světelná perioda končí, kež sa suchá hmot-nost huniek zdvojnásobí (kontrola fotometricky aleho gravimetricky),- čo závisí od in-tenzity slnečného žiarenia. Teplota suspenzie sa udržiava na 30 °C. Suchá hmotnost po-lysacharidu rozpuštěného v živnom roztoku je obdobná ako v příklade 2. Sposob přípravy extraoelulárneho polysacharidu a bunkovej biomasy synchrónnou kul-turou riasou Rhódella grisea móže nájst použitie v poínohospodárstve, vo farmaceutickoma kozmetickom priemysle; polysacharid sa mfiže uplatnit napr. ako prostriedok redukujúciturbulenciu v kvapalinách, stabilizátor koloidov, spojivová alebo výplňová látka, súčastkozmetických prípravkov, kréraov ap. Vediajší produkt kultivácie je buňková biomasa, ktorá obsahuje asi 50 hmotnostných% proteinov, 20 % florideového škrobu a 20 % lipidov, je tiež zdrojom hydrofilných pig-mentov (červeného fykoerytrínu a modrého fykocyanínu), lipofilných karotenoidov a chlo-rofylu, ktoré sa takisto dajú použit' vo farmatickom, kozmetickom a potravinárskom prie-mysle. PRE DMEI VYNÁLEZU
    1. Sposob přípravy extraoelulárneho polysacharidu a bunkovej biomasy synchronnou kultá-rou riasy:Rhódella grisea v amoganiokom živnom médiu, vyznačujúoi sa tým, že pro-dukčná synchrónna kultura riasy Rhódella grisea s hustotou suspenzi 0,3 až 1,1 g.l-1suchej hmotnosti buniek sa kultivuje pri teplote 15 až 35 °C v aspoň 3 cykloch w· 7 az 9 h světla o intenzitě aspoň 70 W.m fotosyntetického aktívneho žiarenia a15 až 17 h tmy, pričom sa napestovaná biomasa zberá po tme.
  2. 2. Sp3sob přípravy extraoelulárneho polysacharidu a bunkovej biomasy podía bodu 1, vy-značujúci sa tým, že sa kultivuje klon riasy Rhódella grisea HK 1982/1/7.
CS534388A 1988-07-28 1988-07-28 Method of extracellular polysacharide and cellular biomassa preparation by means of "rhodella grisea" alga's culture CS273071B1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS534388A CS273071B1 (en) 1988-07-28 1988-07-28 Method of extracellular polysacharide and cellular biomassa preparation by means of "rhodella grisea" alga's culture

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS534388A CS273071B1 (en) 1988-07-28 1988-07-28 Method of extracellular polysacharide and cellular biomassa preparation by means of "rhodella grisea" alga's culture

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS534388A1 CS534388A1 (en) 1990-07-12
CS273071B1 true CS273071B1 (en) 1991-03-12

Family

ID=5398147

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS534388A CS273071B1 (en) 1988-07-28 1988-07-28 Method of extracellular polysacharide and cellular biomassa preparation by means of "rhodella grisea" alga's culture

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS273071B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS534388A1 (en) 1990-07-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Arad et al. The potential of production of sulfated polysaccharides from Porphyridium
US3939279A (en) Feed and method of aquianimals cultivation
DE69525545T2 (de) Wirkstoff zur erhöhung der produktion und der zucht von tieren in der geflügelindustrie
Whyte et al. Nutritional condition of rock scallop, Crassadoma gigantea (Gray), larvae fed mixed algal diets
RU2478700C2 (ru) Золотистые водоросли и способ их производства
AU784817B2 (en) A novel medium for the production of betacarotene and other carotenoids from dunaliella salina (ARL 5) and a strain of dunaliella salina for the production of carotenes using the novel media
CN106190853B (zh) 一种高产藻蓝蛋白的红藻培养方法
CN108410737B (zh) 一种紫球藻的两步培养法
CN105483014A (zh) 发酵法高密度培养小球藻生产工艺
CN101492644B (zh) 一种生物合成15n标记螺旋藻的方法
CS273071B1 (en) Method of extracellular polysacharide and cellular biomassa preparation by means of "rhodella grisea" alga's culture
CN111925943A (zh) 天津拟甲小球藻及其培养方法与应用
CN106591138A (zh) 蛋白核小球藻培养基组合物
RU2199582C2 (ru) Способ получения обогащенной селеном биомассы спирулины (spirulina platensis)
SU1324627A1 (ru) Штамм вольвоксовой водоросли DUNaLIeLLa SaLINa TeoD CALU-834-продуцент белково-каротиновой биомассы
CN113234599B (zh) 一种杜氏盐藻培养基及其制备方法和培养方法
Westbroek et al. Calcification in coccolithophoridae: Wasteful or Functional?
RU2036233C1 (ru) Питательная среда для выращивания первичных и перевиваемых клеток
CN109527202B (zh) 制备富含二十二碳六烯酸和β胡萝卜素的饲料的方法以及饲料
CN112280682A (zh) 一种提高顶丝藻中藻红蛋白含量的培养方法
CN110317769A (zh) 一种富硒微藻的培养方法
JPS62239981A (ja) エイコサペンタエン酸高含有藻体の製造方法
JP4915760B2 (ja) 非成熟性単藻培養株、その製造方法及びそれが増殖した藻体
JP2003319795A (ja) スラウストキトリウムによるカロチノイドの製造法
RU2272547C2 (ru) Способ обогащения селеном морских организмов