CS253709B2 - Process for preparing inactive vaccine against "aujezsky" illness - Google Patents

Process for preparing inactive vaccine against "aujezsky" illness Download PDF

Info

Publication number
CS253709B2
CS253709B2 CS837944A CS794483A CS253709B2 CS 253709 B2 CS253709 B2 CS 253709B2 CS 837944 A CS837944 A CS 837944A CS 794483 A CS794483 A CS 794483A CS 253709 B2 CS253709 B2 CS 253709B2
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
virus
vaccine
cell culture
disease
aujeszky
Prior art date
Application number
CS837944A
Other languages
English (en)
Other versions
CS794483A2 (en
Inventor
Maria Kelemen
Gabor Szabo
Ferenc Solyom
Laszlo Farkas
Andras Makar
Anna Forgacs
Tibor Perenyi
Original Assignee
Phylaxia Oltoanyagtermeloe
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Phylaxia Oltoanyagtermeloe filed Critical Phylaxia Oltoanyagtermeloe
Publication of CS794483A2 publication Critical patent/CS794483A2/cs
Publication of CS253709B2 publication Critical patent/CS253709B2/cs

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/245Herpetoviridae, e.g. herpes simplex virus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525Virus
    • A61K2039/5252Virus inactivated (killed)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/545Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the dose, timing or administration schedule
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/16011Herpesviridae
    • C12N2710/16711Varicellovirus, e.g. human herpesvirus 3, Varicella Zoster, pseudorabies
    • C12N2710/16734Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

Vynález se týká způsobu výroby inaktivované očkovací látky obsahující adiuvant určené k ocUané proti AujeszkyUn nemoci.
AujeszkyUo nemoc, která dostala své jméno po prvním člověku, který ji popsal, Maďarovi Aladáru Auueszky (Zbl. Bakt. Orig. 1903 I, 32, str. 353 až 357) je již dlouUn známou nemocí domááícU zvířat způsobující těžké ztráty. Především je napadán vepřový dobytek, zvláště mladá zvířata.
S possupuuícím věkem selit jsou oonmocnnní kknčící smrtí méně časst, onemocněním ddýhucícU orgánů, centrálníUs nervovéUo systému a komrOiktnmmi dochází však ke ztrátám Unspodárnosti nUovu zvířat. Virem napadená zvířata mohou v sobě uřeíUnvávat původce onemocnění po dlouUou dobu (1 až 2 roky) a za působení etrlep (například při porodu) se viry uvoln^í a tím se nemoc šíří (J. Am. Vet. Med. Ass. 176, str. 998 až 1 000, 1 345 až 1 347, 1980) .
Infikované prasnice ztrácej často embryo předčasným porodem (Acta Vet. Acad. Sci.j Hung. £2, str. 17 až 23, 1962). Infikovaní vepři oaj také významnou úloUu při přenášení AujeszkyUn nemoci na přežvýkavce (Uovězí dobytek a ovce) (Acta. Vet. Acad. Sci. Hung. 12, str. 53 až 58, 1962).
Způsob potírání A^^jeszkyUo nemoci je založen na tom, že je nutno chránit epecifíckýoi protilátkami nemocí nejčasitěji napadená zvířata, selata ještě sající, v prvn^U týdnecU jejich života.
V Maďarsku byla k nnUrаně proti tétn nemoci vypracována výrobní tlcUínlngil pro preventivní Uyρeriounčzační sérum (AAta Vet. Acad. Sci. Hung. 7, str. 423 až 427, 1957) . Z vepřů získané UyperiouPízační sérum snižuje při podání ve správném okamžiku ztráty, jeUo nedostatky jsou však významné: výroba séra je velmi draUá a kromě tnUo se z organismu v krátké době vylučuje (v průběUu 10 až 14 dní)) . Pro vysoké ceny sera nepřikáží jeUo pouužtí u mladýcU zvířat a u vzrcstlýcU zvířat v úvaUu.
Dalším krokem k obraně proti AujmszkyUn nemoci je zavedení aktivní imunizace. Virové kmeny se různým způsobem a v různé míře oslab^í a používá se jicU k výrobě vakciny. V Maďarsku je živá vakcina, která obsaUuje živoucí virus s oslabenou ví^Iičcí od roku 1961 obvodně dostupná.
Používá se jí k aktivní veuřovnUo dobytka, uřlžvýkαvnů a psů (MAL. 16, str. 42 až 45, 1961). Nemocí způsobované Unspndářské ztráty po zavedení programu vakcinacm poklesly (Cah. Med. Vet. £3, str. 240 až 247, 1974), ponurtí živoucí virové vakciny má však několik nedostatků:
1) Po ^шигас! březícU prasnic poskytuje cbsaU protilátky kolostra a mléka 4 až 6týden- ní pasivní i^m^i^i^-tu selat. V urůběUp této doby nelze provádět i^m^r^i^:^<^(^:i živoucí virovou vakcinou, protože i malá Uladina oizz ι^Ο^ onUrannýcU látek je dostatečná k zábraně pomocnení viru v míře potřebné pro vznik aktivní imiué-ty.
2) Z těcUtn důvodů mohou být ve stádu zvířata, u kterýcU byla vakcina bez užitku a v infikovaném stavu představní tato nedostatečně imunní individua přetrvávání virplmčtčíUn viru.
3) Používání živoucí vakciny je v mnoUa zemícU zakázáno a v moha případmU se tento zákaz rozšiřuje i na dovoz masa živoucí vakcinop iouniznvtíýcU zvířat. To nmozuje exportní scUopnost země, kde se imunizuje živoucí vakcinnu.
4) Jakkoliv se v Maďarsku vypracované, zeslabené vakciny až dosud osvědčily jako neškodné a geneticky stálé, infnrou j zahraniční publikace n případmU, kdy virové kmeny uop:žCvten prs výrobu zeslabené vakciny náhle získaly zpět svoji virpllčíí (TUe Vet. BuH. 43. str.
str. 465 až 480, 1973 ; Dtsch. Tierarzt. Wschr. 85, str. 381 až 420), což vedlo k bouřlivé reakci na očkování vakcinuř ušetřených zvířat.
5) V Maddrsku používaná zecl^a^bená vakcini je pro pcy a pro norky ne zcela bez nebezpeeí, kočkám imunitu nedodává.
Právě pro potíže spojené s živoucí vakcinou byly již prováděny zkoušky výroby inaktivované vakciny. K iniktivici se pouužlo formalinu, ozáření ultrafialovými paprsky, beta-přupiulattc)nř, caponinu, krystalové violeti a ethanolu, jakožto pomocné látky gelu hydroxidu hlinitého (Acta Microbíol. Hung. Д, str. 151 až 160, 1954; Arch. exp. Vet. Med. 21, str. 501 až 507, 1967).
Tímto způsobem vyrobená vakcina však nebyla dostatečně účinná. Moddrní způsoby pouňívalí k inlktivlci ethylethyleniminu, jakožto adiuvantu D^^A--ldet^:ranu (Zbl. Vet. Med. B .20, str. 127 až 138, 1973), DEAE, dextran však vyvolává alergické reakce.
Cílem vynálezu je způsob výroby inaktvoované vakciny proU Aujeszkyho nej^ooc,
1) která by byla stejně účinná nebo účinnější než zeslabená vakcina Aujeszkyho,
2) byla by neškodná pro zvíře napadené Aujezskyho nemocí nezáávsle na jeho druhu a stáří a poskytovala by odp^vídaící imunitu,
3) hodili by se k i^m^r^nzi^c^i selat chráněných prostřednictvím ^Ιρ^^Ιο! imurity.
Podstata způsobu výroby iolttόuovaot očkovací látky Auíeczkyhu nemooi vypěstováním kmene viru Aujeszkyho nemmoi na buněčné kultuře, sklízením a iniktivici viru a smísením a homougnizací inattOoovanéhu viru s oleúovým ldíuolntem podle vynálezu spočívá v tom, že se jako kmen viru pouniíe virulentní, pro vepře pathogenní kmen viru Auíeczkyho nemoci uložený v midirském zemském ústavu pro zdraví (Országos Kozegészségůgyi Intézet) pod číseem 00237/82 v ικ^^νί alespoň 10 7 TKID5Q/ml.
Podle vynálezu se tedy postupuje tak, že se z různých Aujeszkyho kmenů na základě jejich imunizační schopnouCi volený a pod číseem 00236/82 v OKI uložený Aujeszkyho kmen Phhlaxia očkuje na primární fibroMasoovou buněčnou kulturu kuřecího zárodku a pomnoží se. Získaná, viry ^silh^ící kapalina, se inlktiouíe známým inltt0vačním prostředkem, s výhodou ethylenimňnem, a pak se smísí se známým adjuwantem, s výhodou s inkompletním oleiovým adjuvantem.
Vyyiktaíií imunizační působení způsobem podle vynálezu vyrobené vakciny vyplývá z několiLka skutečno^í. Z tuzemské epidemie pochháeéící virulentní kmen Phylixii je ^βιτιΙ^^zován těmto biologickými ollstoustíi: muže se úspěšně ínolit jak v buněčných kulturách tik také v hossitesských zvířatech, má vysoký infekční titr a má dobrou schopnost iíunnzační.
K vyn0kalíií účinnoosi přispívá také šetrný proces, za jehož paramme^ (teplota, koncentrace iolttivačoíhю prostředku, doba) zůst<áwl± chránící antigeny zachovány. Iniktiviční prostředek řthylřoiíio se před použitím ve formě zředěného vodného roztoku iyklienjř. Im^nnel^l^:í působení šetrně iolakt0oovantho antigenu se ještě zvyšuje inkompletním lSiuvantem Phhyaxii.
V následnících příkladech popsaným způsobem připravená vatcina se používá k vepřů, hovězího dobytka a psů, přččemž se imunizace s.výhodou opakuj.
Vynález blíže objasňují oáslřdsríií příklady praktického provedení.
Příklad 1
Příprava očkovacího viru
Intracerebrálně se infikují králíci o hmoonooti 2 až 2,5 kg kmenem viru Auueszkyho nemoci Phylaxia deponovaném v maďarském zemském ústavu pro zdraví pod číseem 00236/82, izolovaném při akutní epidemii. Na zvířatech se pozorují charakteristické symptomy Aujeszkyho nemoci, smrt nastává po 72 až 96 hodinách. Za sterilních podmínek se vyjme mozek a z něho se za pouHtí f^^og^^^ého roztoku chloridu sodného připraví 10% suspenze. Použžje se jí pro hromadné pomnnoení viru.
Příklad 2
Výroba suspenze virů
Podle příkladu 1 získaný virulentní očkovací vir se namno.ží na primární na fibroblastové jednovrstvové buněčné kultuře kuřecího embrya nebo na podobné jednovrstvové buněčné kultuře v Rouxově baňce o obsahu 2 000 ml (nebo v rotující baňce kolébacího zařízení).
Jako růstového roztoku pro buněčnou kulturu se používá Hanksova roztoku nebo roztoku MEM-H, k udržování a k namnožení viru se používá Earlova roztoku nebo roztoku MEM-E. Složení těchto roztoků je uvedeno v těchto literárních pramenech: J. Nat. Cancer Inst. 3 83, 1974; Proč. Soc. exp. . Biol. Med. 21» 196, 1949; Science 139, 1959; Bakács, Farkas: Orvosi virologia, -eddcina, Bnčldaess) .
Pro růst jednovrstvové buněčné kultury používaný Hanksův roztok nebo roztok MEM-H se obohatí 10 % telecího séra, zatímco roztok, používaný pro pcmnoCení viru neobsahuje žádné telecí sérum. Po vytvoření jednovrstvové buněčné kultury se růstový roztok slije.
Na kulturu se nalije vir obsahuuící udržovací roztok. Kultury se inkul^i^^í při teplotě 37 °C až do úplného rozrušení buněk (po přibližně 48 až 72 hodinách). Získaná suspenze virů je pak vhodná pro výrobu čnaktivované vakciny, jestliže je sterilní a infekční titr, měřený v buněčné kult^e, je aksjorn 10? TCCDDg/ml.
Příklad 3
Inaktivace a formulace
Způsobem podle příkladu 2 získaná·suspenze virů se inaktivuje po dobu 6 hodin při teplotě 37 °C ethylenimnoovým roztokem o konccenraci 200 ^ig/ml. Roztok se připraví bezprostředně před svým použitím cyklizací bromcithylaminu. Pak se ethylenimin rozloží natričlmthicsulfátem a hodnota pH Zaktivované suspenze se upraví na 7,2 až 7,4.
Pro kontrolu, zdali je suspenze skutečně inaktivní, se popsaným způsobem nasazená buněčná kultura očkuje Zaktivovanou suspenzí a očk^í se jí dále králíci o hmoCnncSi 2 až 2,5 kg a ' ovce o 25 až 3.0 kg.
Virový mat^rr^.ál se pak smísí se stejným objemem Cnkcmp^l€^1nníac olejového adjuvantu Phylaxia. (Olejový adjuvant Phylaxia” je nový a sestává z 73 % oleje -arcol 52 a z 27 % povrchově aktivní látky, která je smmsi známých t^enzi^dů SPÁN 80, SPÁN 20 a TWEEN 60. Výraz ”-aacol 52” se používá ve veškeré imunologické odborné literatuře a ve výrobě vakciny pro olej vyráběný fimou Esso.)
Vodná suspenze virů a olejový adjuvant se zpracuj ve vysokotlakém emulátoru na stálou suspenzi, která se nerozpadá v teplotním oboru 0 až +45 °C. Hotová vakcina se za sterilních podmínek plní do am^rn^ a ampule se pak vzduchotěsně uzavřou.
ml naoOčLuí intaamntkulárně těmto zkušebdnů, tří týdnů a osmi týdnů a prasnice dobu tří měěíců, ostatní zvířata po dobu
PPíklad 4
Zkouška na očkovací reO^i^:L
Popsaným způsobem získané vakciny se v dávce ním zvířatům: králík, ovce, pes, sele, ve stáří 2 v poslední třetině březoosi. Veeři se pozuorjí po průběhu této doby nedošlo k Sádné reakci na očkování.
šesti týdnů. V
Příklad
Imunizace selat.
Selata ve stáří dvou dnů, tří týdnů a osm. týdnů se vakcinuuí iotaaěntCnlnrně vSdy ml vakciny. Po třech týdnech se vakci^nace opakuje. U ošetřených zvířat vunrkají speeífické proltilntky, které chr^K^ selata ed intranatální jLntetoí távtou 2 x 10° TIID^ virnSsntníhl Auje^kyho viru, zatímco neosetřená konnrolní selata při stejné dávce uhynou.
P říkl a d 6
Vytváření kolostrální imunity • Chovné prasnice se v poslední třetině březosti iitaamntknlárně ošeeří vakcinou podle příkaadu 3 použitou v mnoosSví 2 ml. OOšeření se opakuje po třech týdnech, přčšemž ·- .se doba ošetření volí tak, aby bylo druhé očkování dva týdny před předpokládaným dnem vrhu selat.
V kolost^ ošetřených prasnic vzníkaaí speecfické obranné látky, a proto se můSe naměěřt ještě . sedmý den v krevním seru sajících selat střední nesnraliuačií titr 1:16. Tento viry neeuralizační t^r poskytuje ochranu prooi vzi-ru^n^ímu viru v vce ^Infekce 2 x K6 TCID^.
zvířata ve
Koonrolní naočkováni 30, 60. a 90. den (kdyS obsah ochranných látek v koiostru klesá) skupiny k moortaitě 18, 26 a 40 %, zatímco všechna selata osiěunizovaoých V mléce obsaSené speecfické ochranné látky chrání tudíS mladá pro onemocnění nejnáccyynnjší.
vede u ošetřené prasnic uhynou. stáří, kdy jsou
Příklad
Vakcinace telat v období kolostrální imunity se očkují látky se
Selata imunizovaných prasnic podle příkaadu 6 mající kolostrální imunitn
7. a 28. den způsobem podle příkladu 3 vSdy 2 ml vakciny. SsPsiiiiCé ochranné vytvoří ve vysokém titru (1:44). Ve stáří 60 dní se selata intaanatnlně infi^kuií vi^j^ue^r^,^nm vieem v dávce 2 x 10® TCID^.
Pokusná zvířata nevykaazuí Sádné symptomy, zatímco konnrolní zvířata od neimunizovaných prasnic a nevaRci-novaná selata ze 100 % hynou. Je tedy možno úspěšně imunózovat inaktivovanou vakcinou také sadící selata mající kolostrální ΟυΓΐΟ.
Příklad 8
Četnost očkování
Způsobem podle příkaadu 6 v průběhu své březoosi dvakrát vakcinované chovné prasnice se při nové březoosi opět očkuuí 2 mi vakciny (opakované očkooáinní. Tím se v koiostru ošetřených chovných prasnic titr ochranných látek opět silně zvýší a jejceh seiata jsou pak chráněna prooi tornnroiní ^fekci 2 x 10® TCID^.
Naproti tomu selata v průběhu druhé březosti neočkovaných chovných prasnic vykazují větší mortalitu (ve stáří 6 týdnů 35 %). To ukazuje význam nutnosti opakovaného očkování pro dosažení dostatečné kolostrální ochrany u chovných prasnic v průběhu jejich březosti.
Příklad 9
Imunizace ovcí
Ovce ve stáří 3 a 6 měsíců se imunizují 2 ml vakciny podle příkladu 3. Zvířata se dní po vakcinaci infikují virulentním virem Aujeszkyho nemoci v dávce 1 000 ΤΚΙϋ^θ. Všechna zvířata z nevakcinované kontrolní skupiny hynou, zatímco ošetřené ovce nevykazují žádné příznaky nemoci.
Příklad 10
Psi ve stáří jednoho měsíce a Šesti měsíců se ošetří vakcinou podle příkladu 3 v množství 2 ml. Ošetření se opakuje po třech týdnech. Ošetření psi 15 dnů po očkování a neošetřená kontrolní skupina se infikují virulentním virem. Titr ochranných látek v krvi imunizovaných psů je 1:32 a zvířata neonemocní, zatímco kontrolní skupina hyne za charakteristických příznaků nemoci.

Claims (1)

  1. PŘEDMĚT VYNALEZU
    Způsob výroby inaktivované očkovací látky proti Aujeszkyho nemoci vypěstováním kmene viru Aujeszkyho nemoci na buněčné kultuře, sklízením a inaktivací viru a smísením a homogenizací inaktivovaného viru s olejovým adjuvantem, vyznačující se tím, že se jako kmen viru použije virulentní, pro vepře pathogenní kmen viru Aujeszkyho nemoci Phylaxia OKI č‘. 00236/82 v množství alespoň ΙΟ7 ΤΚΙϋ^θ/πιΙ.
CS837944A 1982-10-27 1983-10-27 Process for preparing inactive vaccine against "aujezsky" illness CS253709B2 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU823441A HU187421B (en) 1982-10-27 1982-10-27 Process for producing inactivated, adjuvated serum against aujeszky's illness

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS794483A2 CS794483A2 (en) 1987-05-14
CS253709B2 true CS253709B2 (en) 1987-12-17

Family

ID=10964044

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS837944A CS253709B2 (en) 1982-10-27 1983-10-27 Process for preparing inactive vaccine against "aujezsky" illness

Country Status (6)

Country Link
CS (1) CS253709B2 (cs)
DE (1) DE3335185A1 (cs)
FR (1) FR2535204B1 (cs)
GB (1) GB2129684B (cs)
HU (1) HU187421B (cs)
YU (1) YU211883A (cs)

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AR216081A1 (es) * 1976-07-02 1979-11-30 Dso Pharmachim Un metodo de preparar un mutante virosico avirulento a partir del virus de aujeszky

Also Published As

Publication number Publication date
YU211883A (en) 1987-04-30
GB2129684A (en) 1984-05-23
FR2535204B1 (fr) 1988-01-15
GB2129684B (en) 1986-06-18
CS794483A2 (en) 1987-05-14
FR2535204A1 (fr) 1984-05-04
DE3335185A1 (de) 1984-05-03
GB8328368D0 (en) 1983-11-23
HU187421B (en) 1986-01-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Doel Optimisation of the immune response to foot-and-mouth disease vaccines
KR20040028952A (ko) 웨스트 나일 백신
JPH0639386B2 (ja) アジュバント生ワクチンの製造方法
DK162421B (da) Hundeparvovirus-vaccine, fremgangsmaade til fremstilling heraf og virusstamme til brug i vaccinen
US5807551A (en) Method to provide artificial passive immunity in birds
NO159782B (no) Anordning ved fjaersystem, foerst og fremst paa kjoeretoeyer.
JPH10114678A (ja) 改良型不活化ワクチン
KR840001514B1 (ko) 광견병 백신의 제조방법
US3479430A (en) Indirect passive immunization against transmissible gastroenteritis virus in nursing piglets at birth by active immunization of sows prior to farrowing with transmissible gastroenteritis vaccine and method of producing the same
US4040904A (en) Novel rabies virus vaccine and processes
CN115068599B (zh) 猪流行性腹泻病疫苗组合物、制备方法和应用
JPH10265393A (ja) 豚流行性下痢の予防治療剤
Cursiefen et al. Evaluation of a vaccine against infectious bursal disease in field trials
US3519710A (en) Direct active modified live virus vaccine immunization against transmissible gastroenteritis in swine piglets at birth
Crick The vaccination of man and other animals against rabies
Wittmann et al. Colostral immunity in piglets from sows vaccinated with inactivated Aujeszky disease virus vaccine
CS253709B2 (en) Process for preparing inactive vaccine against &#34;aujezsky&#34; illness
US3585108A (en) Transmissible gastroenteritis vaccines and methods of producing the same
JP3043353B2 (ja) ワクチン
US4312947A (en) Process for the preparation of a vaccine against panleucopenia of the cat
US3704203A (en) Transmissible gastroenteritis vaccines and methods of producing the same
US7790178B2 (en) Trivalent vaccine with maternal anitbody transfer via the milk
NO119491B (cs)
US3346456A (en) Immunizing pigs against hog cholera with selected strains of live virus diarrhea virus and preparation of virus diarrhea virus hyper-immune hog cholera serum
Bunn Vaccines and vaccination of domestic animals