CS252747B1 - Živá atenuovaná vakcína proti parvoviráze psov a spósob jej přípravy - Google Patents

Živá atenuovaná vakcína proti parvoviráze psov a spósob jej přípravy Download PDF

Info

Publication number
CS252747B1
CS252747B1 CS861843A CS184386A CS252747B1 CS 252747 B1 CS252747 B1 CS 252747B1 CS 861843 A CS861843 A CS 861843A CS 184386 A CS184386 A CS 184386A CS 252747 B1 CS252747 B1 CS 252747B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
virus
vaccine
cell
medium
lyophilized
Prior art date
Application number
CS861843A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Other versions
CS184386A1 (en
Inventor
Tomas Zuffa
Juraj Salaj
Jan Zajac
Original Assignee
Tomas Zuffa
Juraj Salaj
Jan Zajac
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Tomas Zuffa, Juraj Salaj, Jan Zajac filed Critical Tomas Zuffa
Priority to CS861843A priority Critical patent/CS252747B1/cs
Publication of CS184386A1 publication Critical patent/CS184386A1/cs
Publication of CS252747B1 publication Critical patent/CS252747B1/cs

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

232747
Clin. North Amer., 13, 1983, 3: 551 — 556).Pri aktívnej imunizácli získavajú postupnépřevahu živé vakcíny připravené z atenuova-ných homológnych kmeňov. Po ich apliká-cii dosahujú hladiny specifických protilá-tek úroveň, ako po prirodzenej infekcii vi-rulentným kmeňom. Protilátky sa zisťujú užna 3. deň po inokulácii a prezistujú najme-nej 2 roky (CARMICHAEL, L. E. — JOUR-BERT, J. C. — POLLOCK, R. V. H..: A modi-fied live canine parvovirus vaccine. II. Im-mune response. Oornell Vet., 73, 1983,: 13až 29, KALIN, D. E. EMERGY, J. B. — SMITH,M. J. — SPOTTS, A. M.: Safety and efficacyof modiffied-live canine parvovirus vaccine.Vet. Med. Smáli Anim. Clin., 78, 1983,: 1 739až 1746). Potomstvo od imúnnych matiekje chráněné proti infekcii materskými proti-látkami, z kterých 10 % získává transpla-centárne a 90 % kolostrom. Na druhej stra-ně tieto protilátky nepriaznivo ovplyvňujúimunitnú odpověď na podanie živých aleboinaktivovaných vakcín (CARMICHAEL, L. E.— JOUBERT, J. C. — POLLOCK, R. V. H.: Amodified live canine parvovirus vaccine. II.Immune response. Cornell Vet., 73, 1983,:13 — 29; BAKER, J. A. — ROBSON, D. S. —GILLESPIE, J. Η. — ET AL.: A nomographthat predicts the age to vaccinate puppiesagainst distemper. Cornell Vet., 49, 1959,:158 — 167; CARMICHAEL, L. E. — ROBSON, D. S. — BARNES, F. D.: Transfor and dech-ne of maternal infectious canine hepatitisantibody in puppies. Proč. Soc. Exp. Biol.Med., 109, 1962,: 677 — 681). Z experimen-tálnych aj praktických skúseností vyplývá,že podmienkou pre dosiahnutie dlhodobejchránenosti je očkovanie mláďat až vo ve-ku okolo 16 až 18 týždňov.
SpQsob kultivácie parvovírusu v buňko-vých kultúrach za účelom pomnoženia viru-sového materiálu na přípravu pokusnýchvakcín popísali viacerí antori (CARMICHAEL,L. E. — JOUBERT, J. C. — POLLOCK, R. V. H.:A modified live canine parvovirus strainwith novel plaque characteristics. I. Viralattenuation and dog response. Cornell Vet.,71, 1981, 4: 408 — 427; CHURCHILL, A. E.: Apo-tency test for inactivated smáli animialparvovirus vaccines using chicks. J. biol.Standard., 10, 1982,: 1 — 8; NARA, P. L. —WINTERS, K. — RUCE, J. B. et al.: Systemicand Local intestinal antibody response indogs given both infective and inactivatedcanine parvoviruses. Amer. J. Vet. Res., 44,1983, 11: 1989 — 1 995; BERGMAN, R. —SUNDQUIST, B. — STRÍÍMAN, L.: Producti-on of a feline parvoviruses vaccine usingmonolayer cell systems in roller flasks andmicrocarriers. Develop. biol. Standard., 55, 1984,: 77 — 78). Použili najma primárné kul-túry mačacích a psích embryomálnych bu-niek, alebo z nich připravené stabilně buňko-vé linie. Infekciu buniek robili obvykle za4 až 6 hodin po nasadení do kultivačnýchnádob. Nakolko množenie virusu nebolo do-prevádzané pravidelným vývojom cytopatic-kých zmien, kontrolovali obsah virusu v tka-nivových tekutinách na základe přítomnos-ti intranukleárnych teliesok, imunofluores-centnou metodou, připadne výšky hema-glutinačného titru. Pri infekcii buniek sačasto používal oplach fyziologickým rozto-koím a výměna kultivačného média. Velko-výrobná technológia výroby vakcín vyžadujevšak minimálně množstvo operácií a podlámožnosti priamu, pohotovu a presvedčivúmikroskopická kontrolu množenia virusu nazáklade špecifických cytopatických zmien.Táto úloha bola vyriešená následovně:
Bola připravená živá atenuovaná vakcínaproti parvoviróze psov, monovalentná, lyo-filizovaná, alebo vakcinačný komponent biva-lentnej lyofilizovanej vakcíny aj proti (psin-ke, ktorá obsahuje v 1 ml atenuovaný kmenparvovírusu psov CPVA-BN 80/82 CAMP V--290 v množstve najmenej 103 TKIDso častícvirusu a v případe bivalentnej vakcíny ob-sahuje ešte kmen virusu psinky CDV-F-BN10/83 CAPM V-289 v množstve najmenej 103TKIDso častíc virusu psinky.
Uvedený virusový kmeň bol adaptovanýna kultúry buniek stabilnej mačacej linieFE. Ako rastové médium bolo použité mini-málně esenciálně médium podlá Eaglea o-bohatené o bovinné sérum, v ktorom sa vi-rus pomnožoval pri teplote 36 až 38 °C podobu 4 až 8 dní. Po- vytvoření zřetelných cy-topatických zmien sa virusový materiál zmie-šal s lyofilízačným médiom tak, aby obsa-hoval minimálně 104 TKIDso častíc virusuenteritídy psov v 1 ml.
Virusový kmeň parvovírusu psov s ozna-čením CPVA-BN 80/82 a zbierkovým číslomCAPM V-290, uložený v Československejzbierke mikroorganizmov na Výskumno-m ú-stave veterinárneho lekárstva v Brně, Hud-cova 60, sme získali z povodně virulentnéhovirusu izolovaného z infekčných materiálovcestou sériových pasáží na mačacej bunko-vej linii označenej FE. Homogenita víruso-vej populácie a stabilita imunobiologickýchvlastností atenuovaného kmeňa sa dosiahlaizolováním linie metodou hraničných riede-ní so šesťnásobným opakováním.
Uvedený kmeň CPVA-BN 80/82 CAPM V--290 je charakterizovaný týmito imunobiolo-gickými vlastnosťami: 252747 1. Pri dodržaní definovaných kultivačnýchpodmienok je množenie virusu na stabilně]bunkovej linii FE doprevádzané vývojom vý-razných cytopatických zmien s obsahom 105až 106 TKID50. ml-1. 2. Vakcinačný virus je neškodný pre všet-ky věkové kategorie zvierat, pričom mláďa-tá bez materinských protilátok možu byťúspěšně imunizované počnúc vekom 6 týž-dňov. 3. Vakcinačný virus sa nevylučuje z orga-nizmu očkovaných zvierat a neprenáša sana spolustajnené vnímavé zvieratá. 4. Očkovanie vnímavých zvierat vyvoláchránenosť počnúc 4. dňom po podaní vak-cíny. 5. Imunita vyvolaná jednorázovým očko-váním zvierat starších ako 12 týždňov trvánajmenej jeden rok, a je doprevádzaná prí-tomnosťou špecifických protilátok.
Stabilná buňková línia FE vykazovala prijej získaní nedostatočné rastové vlastnosti,charakterizované pomalým množením bu-niek a neschopnosťou vytvořit súvlslý mo-nolayer. Uvedené vlastnosti bunkovej linienezodpovedali nárokom na intenzívně mno-ženie uvedeného virusu so získáním viruso-vých suspenzi! s dostatočnými titrami po-třebnými pre' výrobu vakcíny. Prejavom ne-dostatočných rastových vlastností bunkovejlinie bolo aj chýbanie vývoja cytopatickýchzmien po infekcii vakcinačným kmeňom, čonedovolovalo sledovat a hodnotit stupeň po-množenia virusu. Sériovým pasážovaním bun-kovej linie FE vo vybraných médiách (MEM,BEM, M199) s obsahom novorodeneckého sé-ra sme po 25 pasážach v, médiu MEM derivo-vali populáciu buniek, ktorá vykazuje ná-sledovně vlastnosti: 1. Líniu je možné pasážovať v pomere 1 : : 3 až 1 : 4 v 72- až 96hodinových interva-loch pomocou roztoku verzén-trypsín. 2. Najvhodnejšie rastové médium je mini-málně esenciálně médium podlá Eaglea sprídavkom 5 až 15 hmot. % bovinného sé-ra. 3. Buňková líniu je možné uchovávat vzmrazenom stave pri teplotách pod —100 °C,s použitím proitekčného média, ktoré obsa-huje 10 až 20 hmot. % dimetylsulfo-xidu. 4. Množenie vakcinačného virusu je pra-videlné sprevádzané výraznými cytopatic-kými změnami na 4. až 8. deň po infekciiv závislosti od dávky virusu.
Dosiahnuté titry virusu dovofujú realizo-vat efektívnu výrobu očkovacej látky protiparvoviróze psov. Výběr kultivačného média:
Kultivačně sérum s dobrými rastovými vlastnostami pre uvedená buňková líniu mo-že obsahovat nespecifické inhibitory naj-viac v titry 1: 32, stanovenom hemaglutinač-no-inhibičným testom.
Postup výroby vakcíny:
Spósob infekcie buniek linie FE vakcinač-ným vírusom: A.
Suspenzia buniek linie FE o hustotě 5 až10.106 buniek .ml-1 v rastovom médiu sazmieša s vakcinačným vírusom pri multipli-cite infekcie od 0,0001 do 0,001. Zmes viru-su a buniek sa inkubuje pri 36 až 38 °C po-čas 30 až 60 minút. Potom sa zmes virusu abuniek nariedi v rastovom médiu, ktoré před-stavuje minimálně esenciálně médium podláEaglea s pH 6,8 až 7,3 a prídavkom piatichaž desiatich hmot. % bovinného séra s vy-značenou kvalitou. B.
Do bunkovej suspenzie v rastovom médiusa přidá inokulum vakcinačného virusu omultiplicite infekcie 0,0001 až 0 001, ktorása ihned vyleje do kultivačnej nádoby. Tak-to připravená suspenzia buniek za účelompřípravy vakcíny sa kultivuje na skle, plas-tickej hmotě, štacionárnym sposobom, ale-bo v otáčených ffašiach („rolleroch“), při-padne na mikronosičoch, pri 36 až 38 °C po-čas 4 až 8 dní. Množenie virusu je sprevá-dzané výraznými cytopatickými změnami. C.
Infekcia prichytených buniek na kultivač-nom povrchu — po štvor- až šesťhodinovejinkubácii buniek linie FE pri 36 až 38 °C. Dopastového, média sa přidá inokulum vakci-načného virusu pri multiplicite infekcie0,0001 až 0,001. Inkubácia pokračuje pri 36až 38 °C počas 4 až 8 dní. Množenie virusuje rovnako ako v bode A a B sprevádzanévýraznými cytopatickými změnami.
Zmes infekčných tekutin sa získává vtedy,keď 80 až 90 percent monolayeru vykazujespecifické změny. Takto připravená viruso-vá suspenzia sa kontroluje na přítomnostnežiadácich kontaminujúcich mikroorganiz-mov a stanoví sa obsah virusu titráciou nabuňkách linie FE. Po ukončení kultivácie savirusový materiál zmieša s lyofilizačným mé-diom v pomere 50 až 75 hmot. % virusu k50 až 25 hmot. % lyofilizačného média a u-chováva pri —15 až —20 °C až do, lyofilizá-cie. Lyofilizačné médium je možné pri za-chovaní rovnakých hmotnostných pomerov 252747 pridávať až tesne před lyofilizáciou. Na pří-pravu lyofilizovanej vakcíny sa použijú in-fekčně tekutiny s obsahom minimálně 104TKIDso . ml-1 virusu, bakteriologicky steril-ně. Homogenizovaná virusová suspenzia slyofilizačným médiom, ktoré obsahuje sa-charózu, fosforečnanový pufor, glutamátsodný alebo draselný, bovinný albumin ale-bo iný zdroj bielkovín, dextrán alebo želati-nu (BOVARNICK, M. R. — MILLER, J. C. —SYNDER, J. C.: The influence of certain salts,amoinoacids, sugars, and proteins on the sta-bility of rickettsiae. J. Bacteriol., 59, 1950,:509 — 522) sa rozplňuje do ampuliek, aleboliekoviek, lyofilizuje, vzduchotěsně uzatvá-ra a uchovává pri chladničkovej teplote. Vak-cína připravená podlá uvedeného postupuobsahuje najmenej 103 TKIDso. ml-1 vakci-načného virusu, čo· představuje jednu imu-nizačnú dávku.
Použité lyofilné médium podfa BOVAR-NICK, M. R. — MILLER, J. C. — SNYDER,J. C.: The influence of certain salts, amino-acids, sugars, and proteins on the stabilityof risketsiae. J. Bacteriol 59, 1950,: 509 až622) je vhodné aj na lyofilizáciu iných dru-hov vakcinačných vírusov. Preto ak sa při-dá do infekčnej suspenzie obsahujúcej inýdruh vakcinačného virusu, například viruspsinky, je možné tieto suspenzie navzájommiešať v íubovoTnom pomere a lyofilizovať.
Uvedené příklady predmet vynálezu nijakneobmedzujú, ani nevyčerpávajú: 1. Sposoto kultivácie:
Suspenzia buniek, připravená pomocoupro-teolytických fermentov v rastovom mé-diu, ktoré obsahuje definované množstvo a-minokyselín, a vitamínov s prídavkom 10hmot. % séra určeného pre tkanivové kul-túry sa kultivuje na skle, plastickej hmotě,štacionárnym sposobom alebo v otáčanýchffašiach (rolleroch), připadne v suspenziina mikronosičoch. 2. Spdsob infekcie buňkových kultúr vakci-načným vírusom:
Buňkové kultúry, připravené a pěstovanépodfa bodu 1, sa infikuji! vakcinačným víru-som pri multiplicite infekcie najmenej 0,001nasledovnými sposobmi: a) suspenzia buniek linie FE o hustotě10.106 buniek .ml"1 v rastovom médiu sazmieša s vakcinačným vírusom pri multipli-cite infekcie 0,001. Zmes virusu a buniek sainkubuje pri 37 °C počas 30 rninút. Potom sazmes virusu a buniek nariedi v rastovom mé-diu, ktoré představuje minimálně esenciál- ně médium podfa Eaglea s pH 7,1 a prídav-kom 10 hmot. % bovinného séra. b) do suspenzie buniek linie FE o husto-tě 5.105 .ml-1 v rastovom médiu sa přidáinokulum vakcinačného virusu o multiplici-te infekcie 0,001, a infikovaná suspenzia saihned' vyleje do- kultivačnej nádoby. Taktopřipravená suspenzia buniek za účelom pří-pravy vakcíny sa kultivuje v Rouxových ffa-šiach pri teplote 37 °C počas 6 dní. Množe-nie virusu je sprevádzané výraznými cyto-patickými změnami. c) infekcia prichytených buniek na kulti-vačnom povrchu — po šesťhodinovej kulti-vácii buniek FE pri 37 °C sa do rastového-média přidá inokulum vakcinačného virusupri multiplicite infekcie 0,001. Inkubácia po-kračuje pri 37 °C počas 6 dní. Množenie vi-rusu je rovnako ako v bode a) a b) sprevá-dzané výraznými cytopatickými změnami. 3. Zber vakcinačného virusu:
Vakcinačný virus sa produkuje v rasto-vom médiu na buňkových kultúrach pěsto-vaných podfa bodu 1 a infikovaných podfabodu 2. Po vytvoření rozsiahlych cytopatic-kých zmien stanovených mikroskopicky sakultivácia ukončí a do rastového média spomnoženým vírusom sa přidá priamo dokultivačných nádob vhodné lyofilizačné mé-dium v pomere 67 hmot. % vírusovej suspen-zie a 33 hmot. % lyofilizačného média. Zmessa ďalej uchovává v kultivačných nádobáchv zmrazenom stave až do lyofilizácie.
Homogenizovaný virusový materiál s po-žadovaným obsahom infekčných jednotiek(najmenej 104 TKIDso. ml-1), ktorý neobsa-huje kontaminujúce mikroorganizmy sa roz-plňuje do ampuliek, lyofilizuje, vzduchotěs-ně uzatvorí a uchovává pri chladničkovejteplote. Vakcína připravená podfa uvedené-ho postupu obsahuje najmenej 103·0 TKIDso. . ml"1 vakcinačného· virusu. 4. Příprava kombinovanej vakcíny:
Lyofilizačné médium, ktoré obsahuje sa-charózu, fosforečnanový pufor, glutamátsodný alebo draselný, bovinný albumin ale-bo iný zdroj bielkovín a želatinu alebo dex-trán vyhovuje aj pre lyofilizáciu iných dru-hov vakcinačných vírusov. Připravená vakcí-na proti parvoviróze psov sa mieša so živouatenuo-vanou vakcínou proti psinke v 1'ubo-vofnom pomere, rozplňuje do ampuliek, lyo-filizuje, vzduchotěsně uzatvorí a uchovávápri chladničkovej teplote. Bivalentná vak-cína připravená podfa uvedeného postupuobsahuje najmenej 103 TKIDso. ml'1 vakci-načných vírusov psinky a parvovírusu psov.

Claims (6)

  1. 252747 10 PREDMET
    1. Živá atenuovaná vakcína proti parvo-viróze psov monovalentná, lyofilizovaná, a-lebo vakcinačný komponent bivalentnej lyo-filizovanej vskcíny aj proti psinke, vyzna-čujúci sa tým, že obsahuje v 1 ml atenuova-ný kmeň parvovírusu psov CPVA-BN 80/82CAPN V-290 v množstve najmenej 103 TKIDsočastíc virusu a v případe bivalentnej vakcí-ny obsahuje ešte kmeň virusu psinky CDV--F-BN 10/83 CAPM V-289 v množstve najme-nej 103 TKIDso častíc virusu psinky.
  2. 2. Živá atenuovaná vakcína podlá bodu 1,alebo vakcinačný komponent bivalentnej lyo-filizovanej vakcíny aj proti psinke, vyzna-čujúci sa tým, že obsahuje lyofilizačné mé-dium v množstve 25 až 50 hmot. %, vztiah-nuté na hmotnost celej vakcíny.
  3. 3. Sposob výroby vakcíny pódia bodov 1a 2, vyznačujúci sa tým, že atenuovaný kmeňparvovírusu psov sa pomnožuje na stabil-nej mačacej linii buniek FE v minimálnomesenciálnom médiu pódia Eaglea s pH 6,8až 7,3 obohatenom o bovinné sérum pri tep-lotě od 36 do 38 QC po dobu 4 až 8 dní, aždo vytvorenia výrazných cytopatických zmiena potom sa virusový materiál zmieša s lyo-filizačným médiom tak, aby obsahoval mi-nimálně 104 TKIDso .ml-1.
  4. 4. Sposob výroby vakcíny pódia bodu 3,vyznačujúci sa tým, že ako přísada do kul-tivačného média sa použije bovinné sérums definovaným obsahom nespecifických in-hibítorov proti odpovedajúcemu virusu. VYNALEZU
  5. 5. Spdsob výroby vakcíny pódia bodov 3a 4, vyznačujúci sa tým, že infekcia buniekna produkciu virusu sa robí buď tak, že buň-ková suspenzia s obsahom 5 až 10.10s. mlna _1 buniek v rastovom médiu sa infikujevírusom pri MOI najmenej 0 0001 na buňku,inkubuje pri 36 až 38 °C počas 30 až 60 mi-nút, potom sa 10 až 20 krát nariedi v rasto-vom médiu, vyleje do' kultivačných nádoba kultivuje pri teplote 36 až 38 °C až do zbe-ru virusu alebo buňková suspenzia s obsa-hom 4 až 8.105. ml·1 buniek v rastovommédiu sa infikuje vírusom pri MOI najme-nej 0,0001 na buňku a inkubuje pri 36 až38 C až do zberu virusu alebo do kultivač-ných nádob sa nasadzuje buňková suspenziav rastovom médiu s obsahom 4 až 8.105.. ml“1 buniek, a kultúry sa po· 4- až 6hodi-novej inkubácii pri 36 až 38 °C infikujú pria-mo do rastového média vírusom pri MOI naj-menej 0,0001 na buňku a inkubujú až dozberu virusu.
  6. 6. Sposob výroby vakcíny podl'a bodov 3až 5, vyznačujúci sa tým, že sa k virusovýmsuspenziám přidává po ukončení inkubácielyoifilizačné médium, ktoré obsahuje sacha-rózu, fosforečnanový pufor, glutamát sodnýalebo draselný, bovinný albumin alebo inýzdroj bielkovín a želatinu alebo dextrán azmes sa uchovává až do lyofilizácie v zmra-zenom stave pri teplotách vyšších ako —20stupňov Celzía, alebo sa lyoíilízuje okamži-té.
CS861843A 1985-07-31 1986-03-17 Živá atenuovaná vakcína proti parvoviráze psov a spósob jej přípravy CS252747B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS861843A CS252747B1 (cs) 1985-07-31 1986-03-17 Živá atenuovaná vakcína proti parvoviráze psov a spósob jej přípravy

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS855593A CS252736B1 (cs) 1985-07-31 1985-07-31 Živá atenuovaná vakcína proti parvovírusovej enteritíde noriek a sposob jej přípravy
CS861843A CS252747B1 (cs) 1985-07-31 1986-03-17 Živá atenuovaná vakcína proti parvoviráze psov a spósob jej přípravy

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS184386A1 CS184386A1 (en) 1987-03-12
CS252747B1 true CS252747B1 (cs) 1987-10-15

Family

ID=5401109

Family Applications (3)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS855593A CS252736B1 (cs) 1985-07-31 1985-07-31 Živá atenuovaná vakcína proti parvovírusovej enteritíde noriek a sposob jej přípravy
CS861842A CS252746B1 (en) 1985-07-31 1986-03-17 Vital attenuated vaccine against panleucopenia of cast and method of its preparation
CS861843A CS252747B1 (cs) 1985-07-31 1986-03-17 Živá atenuovaná vakcína proti parvoviráze psov a spósob jej přípravy

Family Applications Before (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS855593A CS252736B1 (cs) 1985-07-31 1985-07-31 Živá atenuovaná vakcína proti parvovírusovej enteritíde noriek a sposob jej přípravy
CS861842A CS252746B1 (en) 1985-07-31 1986-03-17 Vital attenuated vaccine against panleucopenia of cast and method of its preparation

Country Status (1)

Country Link
CS (3) CS252736B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS252736B1 (cs) 1987-10-15
CS559385A1 (en) 1987-03-12
CS252746B1 (en) 1987-10-15
CS184286A1 (en) 1987-03-12
CS184386A1 (en) 1987-03-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
TWI398272B (zh) 化學定義的安定劑
EP1123710B1 (en) Freeze-dried hepatitis a attenuated live vaccine and its stabilizer
McFerran et al. Some properties of an avirulent Newcastle disease virus
CN102470170B (zh) 用作轮状病毒疫苗的组合物及其方法
FI85222C (fi) Hund parvovirusstam och foerfarande foer framstaellning av ett hund parvovirusvaccin.
EP0027347A1 (en) Feline infectious peritonitis virus, its preparation and vaccines containing it
US3155589A (en) Parenteral extravascular injectable vaccines for simultaneous immunization of canidae against rabies, canine distemper, and infectious canine hepatitis
US3585266A (en) Live rabies virus vaccine and method for the production thereof
US3961046A (en) Mumps vaccine and preparation thereof
Blaškovič et al. Experimental infection of weanling pigs with A/Swine influenza virus: 2. The shedding of virus by infected animals
US4279893A (en) Vaccine against Newcastle fowl disease, method for preparing and use thereof
JPS5812258B2 (ja) ナマジヤクドクデンセンセイウシビコウキカンエンウイルスワクチンルイノセイゾウホウ
US2965544A (en) Tissue culture propagated canine distemper virus and vaccine thereof
CS252747B1 (cs) Živá atenuovaná vakcína proti parvoviráze psov a spósob jej přípravy
US2934473A (en) Bovine rhinotracheitis vaccine and methods of production
CA1097219A (en) Respiratory syncytial vaccine
CN112370531B (zh) 一种犬瘟热、犬细小、犬腺病毒、犬副流感四联活疫苗耐热保护剂及其制备方法和应用
US4215107A (en) Parainfluenza virus vaccine and its preparation
US3098011A (en) Process of producing a vaccine against distemper
US3836626A (en) Canine distemper virus vaccine
US3585108A (en) Transmissible gastroenteritis vaccines and methods of producing the same
US3255080A (en) Live rabies virus vaccine and method for the production thereof
US20070111211A1 (en) Integrated viral complexes, methods of production thereof, vaccines containing same and methods of use thereof
RU2297452C2 (ru) Штамм азия-1/таджикистан/2004(1960) вируса ящура типа азия-1 для изготовления диагностических и/или вакцинных препаратов
US3228840A (en) Virus culture