CS252746B1 - Živá atenuovaná vakcína proti, panleukopénii mačiek a sposob jej přípravy - Google Patents

Živá atenuovaná vakcína proti, panleukopénii mačiek a sposob jej přípravy Download PDF

Info

Publication number
CS252746B1
CS252746B1 CS861842A CS184286A CS252746B1 CS 252746 B1 CS252746 B1 CS 252746B1 CS 861842 A CS861842 A CS 861842A CS 184286 A CS184286 A CS 184286A CS 252746 B1 CS252746 B1 CS 252746B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
virus
vaccine
medium
cell
feline
Prior art date
Application number
CS861842A
Other languages
English (en)
Slovak (sk)
Other versions
CS184286A1 (en
Inventor
Tomas Zuffa
Juraj Salaj
Jan Zac
Original Assignee
Tomas Zuffa
Juraj Salaj
Jan Zac
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Tomas Zuffa, Juraj Salaj, Jan Zac filed Critical Tomas Zuffa
Priority to CS861842A priority Critical patent/CS252746B1/cs
Publication of CS184286A1 publication Critical patent/CS184286A1/cs
Publication of CS252746B1 publication Critical patent/CS252746B1/cs

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

252746
Vynález sa týká živej atenuovanej vakcí-ny proti panleukopénii mačiek a sposobu Jejpřípravy.
Panleukopénia mačiek představuje hro-madné ochorenie zažívacích ústrojov, ktorésa klinicky prejavuje nechutenstvom, malát-nosťou, zvracaní-m a hnačkou, ktorá móžebyť krvavá. Zvieratá majú horúčku a pri he-mato-logickom vyšetření sa zisťuje zníženýpočet leukocytov.
Ochorenie sposobuje významné straty vstavoch mačiek, pričom úhyn představuje20 až 50 % z celkového počtu zvierat. Ocho-renie postihuje všetky věkové kategorie zvie-rat, ale najma mláďatá, pričom nástup jeprudký a priebeh velmi rýchly (JOHNSON,R. H.: Feline panleucopenia. Vet. Rec., March29th, 1969,: 338 — 340).
Povodcom ochorenia je virus z čelade Par-voviridae, ktorého částice sú izomerické, ne-obalené a obsahujú dezoxyribonukleovú ky-selinu. Virus sa replikuje v bunkovom jadre,a to iba v určitých fáaach buňkového cy-klu, preto je jeho- pestovanie in vitro poměr-ně obtiažne (O‘REILLY, K. J. — WHITAKER, A. M.: The development of feline cell linešfor the growth of feline infectious enteritis/panleucopaenia/ virus. J. Hyg. Camb., 67,1969, :115; FLAGSTAD, A.: Studies on thegrowth of feline panleucopaenia virus in cellcultures. Acta. Path. microbiol. scand. Séct., B, 1975, 83: 71 — 78; O‘SHEA, J. D. — STUD-DERT, M. J.: Growth of an autonomously rep-licating parvovirus /Feline Panleukopenia/:Kinetics and morphogenesis. Arch. Virol., 57,1978, :107 — 122; ENDO, M. SHINAGAWA,M. — GOTO, Η. — ET AL.: Growth characte-rististics of feline panleukopenia virus insynchronized kitten kidney cells. Jpn. J. Vet.Sci., 43, 1981,: 65 — 70).
Specifická profylaxia je založená na pasív-nej imunizácii podáním hyperimúnneho- séraalebo' imúninych sérových globulínov, alenajčastejšie sa využívá aktívna imunizácia.Spočiatku sa používali očkovacie látky, in-aktivované a skůr živé připravené z viru-su panleukopénie mačiek (ERHARDT, W.:Ober die Anwendung von Passiv- und Aktiv-Impfstoffen gegen die Panleukopenie derKatzen. Berl. Miinch. Tierárztl. Wschr., 90,1977,: 337 — 340; CHAPPUIS, G. — PETER-MANN, H. G.: Zur Prophylaxe von Viruskran-kheiten der Katze. Prakt. Tierarzt. 2, 1979,:112 — 115; POVEY, R. CH. — KOONSE, H. —HAYS, Μ. B.: Immunogenicity and safety ofan inactivated vaccine for the preventi-o-n of rhinotracheitis, caliciviral disease, andpanleukopenia in cats. JAVMA, 177, 19814: 347 — 350).
Nevýhodou inaktivovaných vakcín je, žeich účinnost je významné ovplyvňovaná naj-ma přítomnostem materských protilátek aobsahem účinného antigénu. Imunita trválen krátku dobu — niekofko mesiacov, pri-čom chrání len proti subklinickej infekcii,ale z hradiska tlmenia nákazy je významná skutečnost, že takéto očkovanie nezabrániintenzívnemu vylučovaniu virulentného viru-su do prostredia. V poslednom období získa-li převahu živé vakcíny, ktoré obsahujú vi-rus oslabený sériovým pasážovainím na buň-kových kultúrach. Po ich aplikácii dosahujúhladiny specifických protilátek úroveň, akopo prirodzenej infekcii virulentným kme-ňom. Protilátky sa zisťujú už na 3. deň poinokulácii a perzistujú najmenej 2 roky. Po-tomstvo- od imúnnych matiek je chráněnéproti infekcii materskými protilátkami, z kte-rých 10 % získává transplacentárne a 90 %kolostrom. Na druhej straně tieto protilátkynapriaznivu ovplyvňujú imunitnú odpověďna podanie živých aleboi inaktivovaných vak-cín (SICOTT, F. W. — CSIZA, C. K. — GIL-LESPIE, J. H.: Maternally derived immunityto feline panleukopenia. JAVMA, 156, 1970,4: 439 — 453). Z experimentálnych aj prak-tických skúseností vyplývá, že podmienkoupre dosiahnutie dlhodobej chránenosti jeočkovanie mláďat až vo veku okolo 16 až 18týždňov.
Sposob kultivácie parvovírusu v buňko-vých kultúrach za účelom pomnoženia viru-sového materiálu na přípravu pokusnýchvakcín popísali viacerí autoři (GORMAN, J.R. — HARTSOUGH, G. R. — BURGER, D. —ET AL.: The preliminary use of attenuatedfeline panleukopenia virus to protéct catsagainst panleukopenia and mink against vi-rus enteritis. Cornell Vet., 55, 1965,: 559 —566; MOCHIZUKI, M. — KONISHI, S. — OGA-TA, M.: Studies on feline panleukopenia. II.Antigenicities of .the virus. Jpn. J. vet. Sci.,40, 1978, 4: 375 — 383; BERGMAN, R. —SUNDQUIST, B. — STROMAN, L. Produc-tion of a feline parvovirus vaccine u-siing mo-nalayer cell systéme in roller flasks and mic-rocarriers. Develop. biol. Standard., 55, 1984,:77 — 78). Použili najma primárné kultúrymačacích a psích embryonálnych buniek a-lebo z nich připravené stabilně buňkové li-nie. Infekciu buniek robili obvykle za 4 až6 hodin po nasadení do· kultivačných nádob.Nakolko množenie virusu nebolo doprevá-dzané pravidelným vývojom cytopatickýchzmien, kontrolovali obsah virusu v tkanivo-vých tekutinách na základe přítomnosti in-tranukleárnych teliesok, imunofluorescent-nou metodou připadne výšky hemaglutinač-ného titru. Pri infekcii buniek sa často po-užíval oplach fyziologickým r-oztokom a vý-měna kultivačného média. Velkovýrobnětechnológia výroby vakcín vyžaduje však mi-nimálně množstvo operácií a pódia možnos-ti priamu, pohotovú a presvedčivú mikro-skopickú kontrolu množenia virusu na zá-klade Specifických cytopatických zmien. Táto úloha bola vyriešená následovně:
Bola připravená živá lyofilizovaná vakcí-na proti panleukopénii mačiek, lyofilizova-ná, ktorá obsahuje v 1 ml najmenej 103 5 TKIDso častíc virusu panleukopénie mačiek,kmeň FPVA-BN 110/83 CAPM V-291.
Uvedený virusový kmeň bol adaptovanýna kultúry buniek stabilně] mačacej linieFE. Ako rastové médium bolo použité mini-málně esenciálně médium podlá Eaglea obo-hatené o bovínne sérum, v ktorom sa viruspomnožoval pri teplote 36 až 38 °C po dobu4 až 8 dní. Po vytvoření zřetelných eytopa-tických zmien sa virusový materiál zmiešals lyofilizačným médiom tak, aby obsahovalminimálně 104 TKIDso častíc virusu enterití-dy mačiek v 1 ml.
Virusový kmeň panleukopénie mačiek soznačením FPVA-BN 110/83 a zbierkovýmčíslom CAPM V-291 uložený v Českosloven-ské] zbierke mikroorganizmov na Výskum-nom ústave veterinárneho lekárstva v Brně,Hudcova 60, sme získali z povodně virulent-ného virusu izolovaného z infekčných mate-riálov cestou sériových pasáži na mačacejbuňkové] linii označené] FE. Homogenita ví-rusovej populácie a stabilita imunohiologic-kých vlastností atenuovaného kmeňa sa do-siahla izolováním linie metodou hraničnýchriedení so šesťnásobným opakováním.
Uvedený kmeň FPVA-BN 110/83 CAPM V--291 je charakterizovaný týmito imunobiolo-gickými vlastnosťami: 1. Pri dodržaní definovaných kultivačnýchpodmienok je množenie virusu na stabilně]buňkové] linii FE doprevádzané vývojom vý-razných cytopatických zmien s obsahom 105až 10e TKIDso . ml-1. 2. Vakcinačný virus je neškodný pre všet-ky věkové kategorie zvierat, pričom mláďa-tá bez materinských protilátok možu byť ú-spešne imunizované počnúc vekom 6 týž-dňov. 3. Vakcinačný virus sa nevylučuje z orga-nizmu očkovaných zvierat a neprenáša sa naspoluustajnené vnímavé zvieratá. 4. Očkovanie vnímavých zvierat vyvoláchránenosť počnúc 4. dňom po podaní vak-cíny. 5. Imunita vyvolaná jednorázovým očko-váním zvierat starších ako 12 týždňov trvánajmenej jeden rok, a je doprevádzaná prí-tomnosťou specifických protilátok.
Stabilná buňková línia FE, vykazovala prijej získaní nedostatočné rastové vlastnosti,charakterizované pomalým množením bunieka neschopnosťou vytvořit súvislý monolayer.Uvedené vlastnosti bunkovej linie nezodpo-vedali nárokom na intenzívně množenie u-vedeného virusu so získáním virusových sus-penzi! s dostatočnými titrami potřebnými prevýrobu vakcíny. Prejavom nedostatočnýchrastových vlastností bunkovej linie bolo ajchýbanie vývoja cytopatických zmien po in-fekcii vakcinačným kmeňom, čo nedovolo-valo sledovat a hodnotit stupeň pomnoženiavýrusu. Sériovým pasážovaním bunkovej li-nie FE vo vybraných médiách (MEM, BEM, M199) s obsahom novorodeneckého séra smepo 25 pasážach v médiu MEN derivovali po-puláciu buniek, ktorá vykazuje následovněvlastnosti: 1. Líniu je možné pasážovať v pomere 1: : 3 až 1: 4 v 72 až 96 hodinových intervalechpomocou roztoku verzén-trypsín. 2. Najvhodnejšie rastové médium je mini-málně esenciálně médium podl'a Eaglea spřídavkem 5 až 15 hmot. percent bovínné-ho séra. 3. Buňková líniu je možné uchovávat vzmrazenom stave pri teplotách pod —100 °C,s použitím protekčného média, ktoré obsa-huje 10 až 20 hmotnostných percent dime-tylsulfoxidu. 4. Množenie vakcinačného virusu je pra-videlné sprevádzané výraznými cytopatický-mi změnami na 4. až 8. deň po infekcii v zá-vislosti od dávky virusu.
Dosiahnuté titry virusu dovofujú realizo-vat efektívnu výrobu očkovacej látky protipanleukopénii mačiek. Výběr kultivačného séra:
Kultivačně sérum s dobrými rastovýmivlastnosťami pre uvedenu bunkovú líniu mo-že obsahovat nešpecifické inhibitory najviacv titry 1: 32, stanovenom hemaglutinačno--inhibičným testom.
Postup výroby vakcíny:
Spósob infekcie buniek FE vakcinačnýmvírusom: A.
Suspenzia bunieik linie FE o hustotě 5 až10.10s buniek .ml-1 v rastovom médiu sazmieša s vakcinačným vírusom pri multipli-cite infekcie od 0,0001 do 0,001. Zmes viru-su a buniek sa inkubuje pri 36 až 38 °C po-čas 30 až 60 minút. Potom sa zmes virusua buniek nariedi v rastovom médiu, ktorépředstavuje minimálně esenciálně médiumpodlá Eaglea s pH 6,8 až 7,3 a prídavkompiatich až desiatich hmotnostných percentbovinného séra s vyznačenou kvalitou. B.
Do bunkovej suspenzie v rastovom médiusa přidá inokulum vakcinačného· virusu omultiplicite infekcie 0,0001 až 0,001, ktorása ihned' vyleje do kultivačnej nádoby. Tak-to připravená suspenzia buniek za účelompřípravy sa kultivuje na skle, plastickej hmo-tě, štacionárnym sposobom, alebo v otáča-ných ffašiach („rolleroch“), připadne namikronosičoch, pri 36 až 38 °C počas 4 až8 dní. Množenie virusu je sprevádzané vý-raznými cytopatickými změnami. 252746 C.
Infekcia prichytených buniek na kultivač-nom povrchu — po štvor- až šesťhodinovejinkubácii buniek linie FE pri 36 až 38 °C.Do rastového média sa přidá inokulum vak-cinačného virusu pri multiplicite infekcie0,0001 až 0,001. Inkubácia pokračuje pri 36až 38 °C počas 4 až 8 dní. Množenie virusuje rovnako ako v bode A a B sprevádzanévýraznými cytopatickými změnami.
Zmes infekčných tekutin sa získává vte-dy, keď 80 až 90 percent monolayeru vyka-zuje specifické změny. Takto připravená vi-rusová suspenzia sa kontroluje na přítom-nost' nežiadúcich kontaminujúcich mikro-organizmov a stanoví sa obsah virusu titrá-ciou na buňkách linie FE. Po ukončení kul-tivácie sa virusový materiál zmieša s lyofi-lizačným médiom v pomere 50 až 75 hmot-nostných percent virusu k 50 až 25 hmot-nostným percentám lyofilizačného média auchovává pri —15 až —20 °C až do lyofili-zácie. Lyofilizačné médium je možné pri za-chovaní rovnakých hmotnostných pomerovpřidávat až tesne před lyofilizáciou. Na pří-pravu lyofilizovanej vakcíny sa použijú in-fekčně tekutiny s obsahom minimálně 104TKIDso . ml"1vírusu, bakteriologicky steril-ně. Homogenizovaná virusová suspenzia slyofilizačným médiom, ktoré obsahuje sacha-rózu, fosforečnanový pufor, glutamát sod-ný alebo draselný, bovinný albumin aleboiný zdroj bielkovín, dextran alebo želatinu(BOVARNICK, M. R. — MILLER, J. C. — SYN-DER, J. C.: The influence of certain salts, a-monoacidis, sugars, aMd proteins on the sta-bility of rickettsiae. J. Bacteriol., 59, 1950,:509 — 522) sa rozplňuje do ampuliek, ale-bo liekoviek, lyofilizuje, vzduchotěsně uza-tvára a uchovává pri chladničkovej teplote.Vakcína připravená podl'a uvedeného po-stupu obsahuje najmenej 103 TKIDso. ml"1vakcinačného virusu, čo představuje jednuimunizačnú dávku.
Použité lyofilné médium podlá BOVAR-NICK, M. R. — MILLER, J. C. — SNYDER, J. C.: The influence of certain salts, aminoa-cids, sugars, and proteins on the stability ofrickettsiae. J. Bacteriol 59, 1950,: 509 — 552)je vhodné aj na lyofilizáciu iných druhovvakcinačných vírusov, Preto ak sa přidá doinfekčnej suspenzie obsahujúcej iný druhvakcinačného virusu, například virus psin-ky, je možné tieto suspenzie navzájom mie-šať v 1'ubovoínom pomere a lyofilizovať.
Uvedené příklady predmet vynálezu nijakneohmedzujú ani nevyčerpávajú: 1. Sposob kultivácie:
Suspenzia buniek, připravená pomocouproteolytických fermentov v rastovom mé-diu, ktoré obsahuje definované množstvo a-minokyselín, a vitamínov s prídavkom 10hmot. % séra určeného pre tkanivové kul- tury sa kultivuje na skle, plastickej hmotě,štacionárnym sposobom alebo v otáčanýchflašiach (rolleroch), připadne v suspenziina mikronosičoch. 2. Sposob infekcie buňkových kultúr vakci-načným virusem:
Buňkové kultúry, připravené a pěstovanépodlá bodu 1. sa infikujú vakcinačným ví-rusom pri multiplicite infekcie najmenej0,001 nasledovnými spósobmi: a)
Suspenzia buniek linie FE o hustotě 10. . 10tí buniek .ml"1 v rastovom médiu sa zmie-ša s vakcinačným vírusom pri multipliciteinfekcie 0,001. Zmes virusu a buniek sa in-kubuje pri 37 °C počas 30 minút. Potom sazmes virusu a buniek nariedi v rastovommédiu, ktoré představuje minimálně esen-ciálně médium podlá Eaglea s pH 7,1 a prí-davkom 10 hmot. % bovinného séra. b)
Do suspenzie buniek linie FE o hustotě5 .105. ml“1v rastovom médiu sa přidá ino-kulum vakcinačného virusu o multipliciteinfekcie 0,0001, a infikovaná suspenzia saihned' vyleje do- kultivačnej nádoby. Taktopřipravená suspenzia buniek za účelom pří-pravy vakcíny sa kultivuje v Rouxových fTa-šiach pri teplote 37 °C počas 6 dní. Množe-nie virusu je sprevádzané výraznými cyto-patickými změnami. c)
Infekcia prichytených buniek na kultivač-noím povrchu po šesťhodinovej kultivácii bu-niek linie FE pri 37 °C sa do rastového mé-dia přidá inokulum vakcinačného virusu primultiplicite infekcie 0,001. Inkubácia pokra-čuje pri 37 aC počas 6 dní. Množenie virusuje rovnako ako v bode a] a b) sprevádzanévýraznými cytopatickými změnami. 3. Zber vakcinačného virusu:
Vakcinačný virus sa produkuje v rastovommédiu na buňkových kulturách pěstovanýchpodlá bodu 1 a infikovaných podfa bodu 2. Po vytvoření rozsiahlych cytopatickýchzmien stanovených mikroskopicky sa kulti-vácia ukončí a do rastového média s po-množeným vírusom sa přidá priamo do kul-tivačných nádob vhodné lyofilizačné médi-um v pomere 67 hmot. % vírusovej suspen-zie a 33 hmot. percent lyofilizačného mé-dia. Zmes sa ďalej uchovává v kultivačnýchnádobách v zmrazenom stave až do lyofili-zácie.
Homogenizovaný virusový materiál s po-žadovaným obsahom infekčných jednotiek(najmenej 104 TKIDso. ml"1), ktorý neobsa-

Claims (6)

  1. 252746 10 huje kontaminujúce mikroorganizmy sa roz-plňuje do ampuliek, lyofilizuje, vzduchotěs-ně uzatvorí a uchovává pri chladničkovej teplote. Vakcína připravená pódia uvedené-ho postupu obsahuje najmenej 103-° TKIDso.. ml"1 vakcinačného virusu. PREDMET
    1. Živá atenuovaná vakcína proti panleu-kopénii mačiek, vyznačujúca sa tým, že ob-sahuje v 1 ml najmene] 103 TKIDso častíc vi-rusu panleukopénie mačiek, kmen FPVA-BN110/83 CAPM V-291 adaptovaný na buňkovékultury.
  2. 2. Živá atenuovaná vakcína proti panleu-kopénii mačiek podlá bodu 1, vyznačujúcasa tým, že obsahuje lyofilizačné médium vmnožstve 25 až 50 hmot. percent, vztiahnu-té ;na hmotnost celej vakcíny.
  3. 3. Sposob víroby vakcíny pódia bodov 1a 2, vyznačujúci sa tým, že atenuovaný kmeňpanleukopénie mačiek sa pomnožuje na sta-bilnej mačacej linii buniek FE v minimál-nom esenciálnom médiu pódia Eaglea s pH 6,8 až 7,3 obohatenom o bovinné sérum priteplote od 36 do 38 °C po dobu 4 až 8 dní,až do vytvorenia výrazných cytopatickýchzmien a potom sa virusový materiál zmiešas lyofilizačným médiom tak, aby obsahovalminimálně 104 TKIDso . ml“1.
  4. 4. Sposob výroby vakcíny pódia bodu 3,vyznačujúci sa tým, že ako přísada do kul-tivačného média sa použije bovinné sérums definovaným obsahom nespecifických inhi-bítorov proti odpovedajúcemu virusu.
  5. 5. Sposob výroby vakcíny pódia bodov 3 a4, vyznačujúci sa tým, že infekcia buniek naprodukciu virusu sa robí buď tak, že bun- ynAlezu ková suspenzia s obsahom 5 až 10.10B .ml-1buniek v rastovom médiu sa infikuje viru-sem pri MOI najmenej 0,0001 na buňku, in-kubuje pri 36 až 38 °C počas 30 až 60 minút,potom sa 10- až 20krát nariedi v rastovommédiu, vyleje do kultivačnej nádoby a kul-tivuje pri teplote 36 až 38 °C až do zberu vi-rusu, alebo buňková suspenzia s obsahom4 až 8.105.ml_1 buniek v rastovom médiusa infikuje vírusom pri MOI najmenej 0,0001na buňku a Inkubuje pri 36 až 38 °C až dozberu virusu, alebo do kultivačných nádobsa nasadzuje buňková suspenzia v rastovommédiu s obsahorn 4 až 8.105.ml_1 buniek,a kultúry sa po 4- až 6hodinovej inkubáciipri 36 až 38 °C infikujú priamo do rastovéhomédia vírusom pri MOI najmenej 0,0001 nabuňku a inkubujú až do zberu virusu.
  6. 6. Sposob výroby vakcíny pódia bodov 3až 5, vyznačujúci sa tým, že sa k virusovýmsuspenziám přidává po ukončení inkubácielyofilizačné médium, ktoré obsahuje sacha-rózu, fosforečnanový pufor, glutamát sodnýalebo draselný, bovinný albumin alebo inýzdroj bielkovín a želatinu alebo dextrán azmes sa uchovává až do lyofilizácia v zmra-zenom stave pri teplotách vyšších ako —20stupňov Celsia, alebo sa lyofilizuje okamži-té.
CS861842A 1985-07-31 1986-03-17 Živá atenuovaná vakcína proti, panleukopénii mačiek a sposob jej přípravy CS252746B1 (sk)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS861842A CS252746B1 (sk) 1985-07-31 1986-03-17 Živá atenuovaná vakcína proti, panleukopénii mačiek a sposob jej přípravy

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS855593A CS252736B1 (cs) 1985-07-31 1985-07-31 Živá atenuovaná vakcína proti parvovírusovej enteritíde noriek a sposob jej přípravy
CS861842A CS252746B1 (sk) 1985-07-31 1986-03-17 Živá atenuovaná vakcína proti, panleukopénii mačiek a sposob jej přípravy

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CS184286A1 CS184286A1 (en) 1987-03-12
CS252746B1 true CS252746B1 (sk) 1987-10-15

Family

ID=5401109

Family Applications (3)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS855593A CS252736B1 (cs) 1985-07-31 1985-07-31 Živá atenuovaná vakcína proti parvovírusovej enteritíde noriek a sposob jej přípravy
CS861842A CS252746B1 (sk) 1985-07-31 1986-03-17 Živá atenuovaná vakcína proti, panleukopénii mačiek a sposob jej přípravy
CS861843A CS252747B1 (cs) 1985-07-31 1986-03-17 Živá atenuovaná vakcína proti parvoviráze psov a spósob jej přípravy

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS855593A CS252736B1 (cs) 1985-07-31 1985-07-31 Živá atenuovaná vakcína proti parvovírusovej enteritíde noriek a sposob jej přípravy

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS861843A CS252747B1 (cs) 1985-07-31 1986-03-17 Živá atenuovaná vakcína proti parvoviráze psov a spósob jej přípravy

Country Status (1)

Country Link
CS (3) CS252736B1 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CS252736B1 (cs) 1987-10-15
CS252747B1 (cs) 1987-10-15
CS184286A1 (en) 1987-03-12
CS559385A1 (en) 1987-03-12
CS184386A1 (en) 1987-03-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2396976C2 (ru) Вакцины и способы лечения собачьего гриппа
EP2271663B1 (en) Novel avian astrovirus
CN106399260B (zh) 一种犬瘟热、细小病毒病二联活疫苗及其制备方法
AU592786B2 (en) Canine parvovirus vaccines
US11291715B2 (en) Diluent for cell-associated alphaherpesvirus vaccine
US3520972A (en) Feline virus vaccines obtained by propagation and serial passage attenuation of virulent feline viruses in diploid feline embryo tissue cell serial passage subculture strains
IE51389B1 (en) Feline infectious peritonitis virus,its preparation and vaccines containing it
US3080291A (en) Serial passage of distemper virus in tissue cultures of chick embryo and canine tissue and vaccine therefrom
US4571386A (en) Feline infectious peritonitis vaccine
RU2452511C1 (ru) Аттенуированный штамм вируса африканской чумы свиней 2-го серотипа для разработки диагностических и вакцинных препаратов
US3585266A (en) Live rabies virus vaccine and method for the production thereof
US4279893A (en) Vaccine against Newcastle fowl disease, method for preparing and use thereof
US3961046A (en) Mumps vaccine and preparation thereof
US2965544A (en) Tissue culture propagated canine distemper virus and vaccine thereof
CS252746B1 (sk) Živá atenuovaná vakcína proti, panleukopénii mačiek a sposob jej přípravy
CA2178553A1 (en) Marek's disease vaccine
CA1097219A (en) Respiratory syncytial vaccine
RU2806164C1 (ru) Ассоциированная вакцина против чумы плотоядных, парвовирусного и коронавирусного энтеритов, аденовирусной инфекции собак
US4004974A (en) Live virus culture vaccine against carnivore distemper and method of producing same
RU2045960C1 (ru) Вакцина для профилактики чумы, инфекционного гепатита, аденовироза, парвовирусного энтерита и лептоспироза собак
RU2774588C2 (ru) Улучшенный разбавитель для вакцины против клеточно-ассоциированного альфагерпесвируса
RU2325185C1 (ru) Способ получения сухой культуральной вирус-вакцины против чумы мелких жвачных животных
US3178351A (en) Vaccine
Ritova et al. Live tissue-culture influenza vaccine
KR100556275B1 (ko) 클라미디아시타시를함유하는고양이백신및그의제조방법