CS242391B1 - Způsob izolace cystatinů, přirozených inhibitorů cysteinových proteináz, z roztoku získaných z přírodních materiálů pomocí imobilizovaných cysteinových proteináz - Google Patents
Způsob izolace cystatinů, přirozených inhibitorů cysteinových proteináz, z roztoku získaných z přírodních materiálů pomocí imobilizovaných cysteinových proteináz Download PDFInfo
- Publication number
- CS242391B1 CS242391B1 CS843779A CS377984A CS242391B1 CS 242391 B1 CS242391 B1 CS 242391B1 CS 843779 A CS843779 A CS 843779A CS 377984 A CS377984 A CS 377984A CS 242391 B1 CS242391 B1 CS 242391B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- cystatin
- immobilized
- cysteine proteinases
- solution
- cysteine
- Prior art date
Links
- 108010005843 Cysteine Proteases Proteins 0.000 title claims abstract description 20
- 102000005927 Cysteine Proteases Human genes 0.000 title claims abstract description 20
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 10
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 title claims description 5
- 239000000463 material Substances 0.000 title claims description 4
- 238000009413 insulation Methods 0.000 title 1
- 102000015833 Cystatin Human genes 0.000 claims abstract description 43
- 108050004038 cystatin Proteins 0.000 claims abstract description 43
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims abstract description 35
- 239000007790 solid phase Substances 0.000 claims abstract description 12
- -1 polyethylene terephthalate Polymers 0.000 claims abstract description 11
- 229920000139 polyethylene terephthalate Polymers 0.000 claims abstract description 10
- 239000005020 polyethylene terephthalate Substances 0.000 claims abstract description 10
- SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N Glutaraldehyde Chemical compound O=CCCCC=O SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 6
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims abstract description 4
- 238000006116 polymerization reaction Methods 0.000 claims abstract description 4
- 239000008346 aqueous phase Substances 0.000 claims abstract description 3
- 238000000926 separation method Methods 0.000 claims abstract description 3
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 claims description 5
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 17
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 108090000526 Papain Proteins 0.000 description 9
- 239000004365 Protease Substances 0.000 description 9
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 9
- 229940055729 papain Drugs 0.000 description 9
- 235000019834 papain Nutrition 0.000 description 9
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 8
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 8
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 8
- QCVGEOXPDFCNHA-UHFFFAOYSA-N 5,5-dimethyl-2,4-dioxo-1,3-oxazolidine-3-carboxamide Chemical compound CC1(C)OC(=O)N(C(N)=O)C1=O QCVGEOXPDFCNHA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 102000002322 Egg Proteins Human genes 0.000 description 6
- 108010000912 Egg Proteins Proteins 0.000 description 6
- 102000035195 Peptidases Human genes 0.000 description 6
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 description 6
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 6
- 235000014103 egg white Nutrition 0.000 description 6
- 210000000969 egg white Anatomy 0.000 description 6
- 235000019833 protease Nutrition 0.000 description 6
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 5
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 5
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 5
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 5
- 238000010828 elution Methods 0.000 description 4
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 4
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- XUJNEKJLAYXESH-UHFFFAOYSA-N cysteine Natural products SCC(N)C(O)=O XUJNEKJLAYXESH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 3
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 3
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 description 3
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 3
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 3
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 2
- COLNVLDHVKWLRT-QMMMGPOBSA-N L-phenylalanine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CC1=CC=CC=C1 COLNVLDHVKWLRT-QMMMGPOBSA-N 0.000 description 2
- VLSOAXRVHARBEQ-UHFFFAOYSA-N [4-fluoro-2-(hydroxymethyl)phenyl]methanol Chemical compound OCC1=CC=C(F)C=C1CO VLSOAXRVHARBEQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000005422 blasting Methods 0.000 description 2
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 2
- 229960002433 cysteine Drugs 0.000 description 2
- 235000018417 cysteine Nutrition 0.000 description 2
- 150000001945 cysteines Chemical class 0.000 description 2
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 description 2
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 2
- 210000003734 kidney Anatomy 0.000 description 2
- 244000144977 poultry Species 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 238000004064 recycling Methods 0.000 description 2
- 238000004062 sedimentation Methods 0.000 description 2
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 2
- 238000000859 sublimation Methods 0.000 description 2
- WZIMSXIXZTUBSO-UHFFFAOYSA-N 2-[[bis(carboxymethyl)amino]methyl-(carboxymethyl)amino]acetic acid Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CN(CC(O)=O)CC(O)=O WZIMSXIXZTUBSO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108090000619 Cathepsin H Proteins 0.000 description 1
- 102000004175 Cathepsin H Human genes 0.000 description 1
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 1
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 1
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 description 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 1
- 239000004698 Polyethylene Substances 0.000 description 1
- 229920002684 Sepharose Polymers 0.000 description 1
- 239000004280 Sodium formate Substances 0.000 description 1
- DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M Sodium laurylsulphate Chemical compound [Na+].CCCCCCCCCCCCOS([O-])(=O)=O DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 238000001042 affinity chromatography Methods 0.000 description 1
- 239000011543 agarose gel Substances 0.000 description 1
- 238000010923 batch production Methods 0.000 description 1
- 210000001124 body fluid Anatomy 0.000 description 1
- 239000010839 body fluid Substances 0.000 description 1
- 238000004440 column chromatography Methods 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- ATDGTVJJHBUTRL-UHFFFAOYSA-N cyanogen bromide Chemical compound BrC#N ATDGTVJJHBUTRL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000010908 decantation Methods 0.000 description 1
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 description 1
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 1
- 239000006260 foam Substances 0.000 description 1
- 238000002523 gelfiltration Methods 0.000 description 1
- 230000008676 import Effects 0.000 description 1
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 235000010746 mayonnaise Nutrition 0.000 description 1
- 239000008268 mayonnaise Substances 0.000 description 1
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- 238000005191 phase separation Methods 0.000 description 1
- 229960005190 phenylalanine Drugs 0.000 description 1
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 description 1
- 229920000573 polyethylene Polymers 0.000 description 1
- 238000011085 pressure filtration Methods 0.000 description 1
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 1
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 1
- 239000002002 slurry Substances 0.000 description 1
- HLBBKKJFGFRGMU-UHFFFAOYSA-M sodium formate Chemical compound [Na+].[O-]C=O HLBBKKJFGFRGMU-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 235000019254 sodium formate Nutrition 0.000 description 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 1
- 238000004448 titration Methods 0.000 description 1
- 239000002699 waste material Substances 0.000 description 1
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Způsob spočívá v isolaci cystatinu
z roztoku pomocí cysteinové proteinázy
imobilizované polymerací glutaralčlehydem
na polymerní nosič na bázi polyetylentsreftalátu
vsádkovým uspořádáním při pH
roztoku 5 až 8, s výhodou při pH 6,5» po
následném oddělení pevné fáze s cystatinem
a jejím opětném suspendováním do vodné
fáze se cystatin uvolní z vazby s imobilizovanou
cysteinovou proteinázou do
vodného roztoku při pH menším než 3,5
nebo vyšším než 10,0.
Description
Způsob izolace cystatinů, přirozených inhibitorů cysteinových proteináz, z roztoku získaných z přírodních materiálů pomocí imobilizovaných cysteinových proteináz
Způsob spočívá v isolaci cystatinu z roztoku pomocí cysteinové proteinázy imobilizované polymerací glutaralčlehydem na polymerní nosič na bázi polyetylentsreftalátu vsádkovým uspořádáním při pH roztoku 5 až 8, s výhodou při pH 6,5» po následném oddělení pevné fáze s cystatinem a jejím opětném suspendováním do vodné fáze se cystatin uvolní z vazby s imobilizovanou cysteinovou proteinázou do vodného roztoku při pH menším než 3,5 nebo vyšším než 10,0.
242 391
- 1 242 391
Vynález se týká izolace cystatinů, přirozených inhibitorů cysteinových proteináz, z roztoků připravených z vajec, vaječného bílku, extraktů tkání a tělních tekutin živočichů, čerstvých, sušených nebo zmražených, pomocí cysteinových imobilisovaných proteináz.
λpřičemž
Postupy dosud použité pro izolace cystatinů^ cystatiny jsou přirozené inhibitory cysteinových proteináz bílkovinné povahy, o relativní molekulové hmotnosti 10 až 15 kD, stabilních v roztocích o pH 2 až 12, stabilních ve vodných roztocích při teplotách nad 80 G, schopných vazby na aktivní jakož i na inaktivováné deriváty cysteinových proteináz, využívají aktivních nebo inaktivovaných cysteinových proteináz imobilizovaných na polymerních nosičích na bázi modifikovaných agarosových gelů, například na gel Sepharosa 4B aktivovaný bromkyanem, který dodává firma Pharmacia Švédsko, nebo Reacti-gel firmy Pierce z USA, v provedení kolonové afinitní chromatografie. Tyto gely se vyznačují nízkou mechanickou odolností, neumožňují tlakovou filtraci ani intenzivní míchání rotujícími míchadly, bez poškození nosiče.
Podstata vynálezu spočívá v isolaci cystatinů pomocí cysteinových proteináz imobilizovaných polymeraci glutaraldehydem na polyetylentereftalét. Vzniklá suspenze imobilizované proteinázy na rigidních částicích pevné fáze lze filtrovat a míchat běžnými technickými prostředky, čehož se s výhodou využije pro izolaci cystatinů.
Suspenze imobilizované cysteinové proteinázy se připraví vaz bou z roztoku na polyetylentereftalát podle postupu čs. patentu č. 195 568.
242 391
Pro izolaci cystatinů se suspenze imobilizované cystěinové proteinázy smíchá s roztokem obsahujícím aktivní cystatin. Ve vzniklé suspenzi se upraví pH roztoku v rozmezí 5 až 8.
Po dosažení postačující vazby cystatinů na pevnou fázi se tato oddělí ze suspenze filtrací nebo sedimentací, volně nebo v odstředivce a promyje se od nespecificky sorbovaných složek výchozího roztoku cystatinů. Pro dosažení vhodného promytí se osvědčila destilovaná voda v nejméně šesti dávkách v množství 200 násobku suché hmotnosti nosiče, při proraývání odstřelováním, dekantací nebo filtrací.
Po promytí se cystatin z pevné fáze eluuje roztokem o pH menším než 5,5 nebo větším než 10,0 a oddělí se filtrací přes papírový filtr nebo sedimentací v odstředivce, či dekantací. Počet možných použití pevné fáze závisí na kvalitě promytí před elucí a podmínkách eluce.
Podle poměru, v němž je objem eluátu k objemu výchozího roztoku cystatinů, lze dosáhnout různého stupně nakoncentrování cystatinu v eluátu proti výchozímu roztoku, za současného odstranění většiny balastních složek z roztoku cystatinů. Po zahuštění roztoku cystatinů mrazovou sublimací a gelové filtraci na vhodném nosiči lze získat použitím cysteinových proteináz zmobilizovaných na polyetylentereftalát, preparáty cystatinů, které vykazují homogenitu na elektroforéze v 15% gelu polyakrylamidu v přítomnosti dodecylsulfátu sodného v uspořádání podle Laemmliho. /U.K. Laemmli: Nátuře, /London/, 227» str. 680 A97O//.
Použití polymerního nosiče, polyetylentereftalátu, s navázanými cystěžňovými proteinázami pro izolaci cystatinů jež je předmětem tohoto vynálezu představuje proto nový přístup k řešení otázky izolace cystatinů a jeho hlavní výhody tkví ve vysoké mechanické pevnosti částic s zmobilizovanou proteinázou, což zajišťuje dobrou filtrovatelnost a umožňuje, intenzivní míchání suspenze, ve snadném oddělování pevné fáze sedimentací, možnosti recyklování jež snižuje nevýhodu vsádkového procesu ve srovnání s ko242 391 lonovým uspořádáním, tedy nižší výtěžnost, dále ve vyšší rychlosti provedení afinitního kroku, která se projeví především při zpracování velkých objemů roztoka o nízké koncentraci cystatinů, v dovozní nenáročnosti a nízké cené polymerního nosiče pro imobilizaci proteináz. Nevýhodou předmětu tohoto vynálezu je nutnost používat pro zajištění dobré čistoty výsledného preparátu cystatinů větších objemů promývacích roztoků, jejichž cena je ovšem nízká a dostupnost dobrá.
Podstatnou předností předmětu tohoto vynálezu je možnost použití proteinázy imobilizované na polyetylentereftalát pro izolaci cystatinů i z roztoků, které nejsou prosty koloidních částic, které jsou pro kolonovou afinitní nepoužitelné, stejně jako roztoky s vysokou viskozitou /například 3x koncentrovaný bílek/.
Výtěžnost kolonových chromátogra.fií cystatinů na afinitních nosičích udávají autoři v rozmezí 20 až 40 %. Při použití předmětu tohoto vynálezu se výtěžnost pohybuje v konkrétním případě vaječného bílku, kde je znám přibližný obsah cystatinů v intaktním materiálu kolem 10 % v prvním cyklu, lze ji však zvýšit recyklováním, nehledě na to, že bílek ze slepičích vajec je levnou surovinou, přístupnou ve velkých množstvích vznikající jako odpad při výrobě majonézy.
Příklad 1
Suspenze obsahující 1,25 g polyetylentereftalátu ve 25 ml fyziologického roztoku byla po přídavku 12,5 ml 25% roztoku glutaraldehydu a promíchání umístěna do termostatu a polymer aktivován při 37 °C po dobu 14 hodin. Polymer byl oddělen filtrací na Buchnerově nálevce přes papírový filtr a přenesen bez promytí do roztoku papainu obsahujícího 300 mg papainu ve 30 ml 0,1 M fosfátového tlumicího roztoku obsahujícího 0,002 M kyselinu etylendiamin tetráoctovou /dále EDTA/, o pH 6,3· Po kapkách bylo k suspenzi přidáno, za stálého míchání magnetickým michadlem, 3,3 ml 1% roztoku glutaraldehydu. Po třech hodinách míchání suspense při 22 °C byl polymer s navázaným papainem oddělen filtrací na Buchnerově nálevce přes papírový filtr a promyt postupně 2 dm? destilované vody, na filtru. Takto připravený imobilizovaný papain, byl
- 4 242 391 skladován v 1# roztoku NaCl okyseleném přídavkem HC1 na pH 3,0 při 4 °c několik měsíců bez ztráty vazebné kapacity.
Extrakt obsahující cystatin byl připraven z hovězích ledvin. 800 g zmrazených hovězích ledvin bylo rozmraženo, mechanicky zbaveno tukové tkáně a rozemleto na masovém mlýnku, poté smícháno se
I 600 ml destilované vody a homogenizováno v mixeru běžného kuchyňského typu po dobu 5ti minut. Po deseti minutách stání byly hrubé zbytky tkáně odstraněny z homogenátu odstředěním 6 000 x g po dobu 10 minut a supernatant byl dále odstředěn při 25 000 x g po dobu 30 minut, přídavkem 5M NaOH bylo pH v supernatantu ustaveno na 11,0 a roztok byl ponechán stát po. dobu 2 hodin. Všechny operace byly provedeny při 4 °C.
Po 2 hodinách stání při pH 11,0 bylo pH roztoku upraveno přídavkem 11 M HC1 na 7,5 a vzniklá sraženina byla odstředěna při 6 000 x g po dobu 10 minut. Poté bylo pH roztoku upraveno na 2,8
II M HG1 a roztok byl v průběhu 20 minut zahřát na vodní lázni na teplotu 90 °C. Po deseti minutách stání při této teplotě byl roztok rychle ochlazen pod tekoucí vodou na 25 °C a přídavkem 5 M NaOH bylo pH upraveno na 5,4· Vzniklá sraženina byla odstředěna při 6 000 x g, 10 minut.
150 ml takto získaného vyčeřeného extraktu bylo smícháno se smspenzí obsahující 1 g papainu zmobilizovaného na polyetylentereftalótu v 50 ml 0,1 M fosfátového tlumivého roztoku.obsahujícího 0,002 M EDTA a 0,002 M L-cysteinhydrochloriď o pH 6,3· Suspenze byla intenzívně míchána magnetickým míchadlem po dobu 30 minut při teplotě 25 °G a poté byla pevná fáze oddělena filtrací přes papírový filtr na Buchnerově nálevce, promytá 1 dm^ destilované vody a suspendována ve 150 ml destilované vody. V suspenzi bylo přídavkem 11 M HC1 upraveno pH na 2,8 a po 10 minutách míchání při 25 °C byla pevná fáze oddělena filtrací. Roztok obsahující uvolněný cystatin byl zahuštěn mrazovou sublimací.
Příklad 2
Postupem jako v příkladu 1 byly připraveny 4 g imobilizováného papainu /hmotnost nosiče s navázaným enzymem/. Z 30 kusů čerstvých slepicích vajec B /Pražské drůbežářské závody n.p., závod Libuš/ bylo odděleno 900 ml bílku a rozmixováno s 900 ml 0,25 M NaCl v kuchyňském mixeru. Vzniklý roztok měl pH 8,7· Přídavkem
- 5 242 391
5M mravenčanu sodného o pH 5,0 bylo pH v roztoku bílku upraveno na 6,2 a vzniklé sraženina ovomucínu byla odstředěna při 6 000 x g po dobu 10 minut»
Supernatant byl smíchán se suspenzí obsahující 4 g polyetylentereftalátu s navázaným paparnem ve 100 ml 0,1 M fosfátového tlumivého roztoku s 0,002 M EDTA o pH 6,5> který neobsahoval L-cystein hydrochlorid. Suspenze byla míchána přes noc magnetickým míchadlem. Pevná fáze byla oddělena odstředováním při 1 000 x g a promyta 6x11 destilované vody odstředováním při 1 000 x g po dobu 1 minuty.
Sediment byl přenesen do 200 ml destilované vody a cystatin byl uvolněn okyselením suspenze 11M HCl na pH 1,8. Po*deseti minutách míchání magnetickým míchadlem při 25 °C byl roztok obsahující uvolnění cystatin oddělen od pevné fáze filtrací přes skládaný papírový filtr a zahuštěn mrazovou sublimací.
Kromě eluce proběhly všechny operace při 4 °C.
Příklad 3
Vaječný bílek jež byl jednou použit a oddělen od pevná fáze před promýváním v příkladu 2 byl opětovně smíchán se suspenzí imobilizovaného papainu oddělenou po eluci v příkladu 2 a za podmínek stejných jako v příkladu 2 byla provedena vazba cysratinu zbyléno v roztoku bílku na zmobilizovaný papain a eluce navázaného cystatinu. Výtěžek cystatinu v eluátu byl o 21 % nižší než v příkladu 2.
Příklad 4
27,5 g sušeného slepičího vaječného bíl&u /pražské drůbežářské závody/ bylo rozmícháno a 80 ml destilované vody. Vzniklá pěna byla odstraněna odstředěním, 1 000 x g 10 minut nebo stáním po dobu 1 hodiny. Odstranění ovomucínu, vazba cystatinu a promyti suspenze zmobilizovaného papainu s navázaným cysteinem bylo provedeno jako v příkladu 2. V suspenzi bylo přídavkem 5 M NaOH ustaveno pH 11,5 a po míchání při 25 °C po dobu 10 minut byla pevná fáze oddělena odstředěním při 1 000 x g po dobu 1 minuty a v supernatantu upraveno pH na 7,0 přídavkem HCl. Supernatant obsahující uvolněný Cystatin byl zahuštěn mrazovou sublimací.
242 391
Eluáty cystatinu obsahovaly 5 až 10 mg aktivního cystatinu, v případě postupů uvedených v příkladech 2, 5, 4 S 0,7 a 2,0 mg cystatinu v případě postupu podle příkladu 1. Množství cystatinů byla stanovena pomocí titrace .roztokem kathepsinu H, o známém obsahu proteinézy, za použiti 4-nitroanilidu L-fenylalaninu jako substrátu.
Claims (1)
- PŘEDMĚT VYNÁLEZUZpůsob izolace cystatinů, přirozených inhibitorů cysteinových proteináz, z roztoků získaných z přírodních materiálů pomocí imobilizovaných cysteinových proteináz, vyznačující se tím, že se cystatin z roztoku váže na cysteinové proteinázy imobilisované polymerací glutaraldehydem na polymerní nosič na bázi polyetylentereftalátu vsádkovým uspořádáním při pH roztoku5 až 8,s výhodou při pH 6,5, po následném oddělení pevné fáze s cystatinem a jejím opětném suspendování do vodné fáze se cystatin uvolní z vazby s imobilisovanou cysteinovou proteinázou do vodného roztoku při pH menším než 3,5 nebo vyšším než 10,0.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS843779A CS242391B1 (cs) | 1984-05-21 | 1984-05-21 | Způsob izolace cystatinů, přirozených inhibitorů cysteinových proteináz, z roztoku získaných z přírodních materiálů pomocí imobilizovaných cysteinových proteináz |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CS843779A CS242391B1 (cs) | 1984-05-21 | 1984-05-21 | Způsob izolace cystatinů, přirozených inhibitorů cysteinových proteináz, z roztoku získaných z přírodních materiálů pomocí imobilizovaných cysteinových proteináz |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CS377984A1 CS377984A1 (en) | 1985-08-15 |
CS242391B1 true CS242391B1 (cs) | 1986-04-17 |
Family
ID=5378865
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CS843779A CS242391B1 (cs) | 1984-05-21 | 1984-05-21 | Způsob izolace cystatinů, přirozených inhibitorů cysteinových proteináz, z roztoku získaných z přírodních materiálů pomocí imobilizovaných cysteinových proteináz |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CS (1) | CS242391B1 (cs) |
-
1984
- 1984-05-21 CS CS843779A patent/CS242391B1/cs unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CS377984A1 (en) | 1985-08-15 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CA1223199A (en) | Partially purified osteogenic factor and process for preparing same from demineralized bone | |
JP2622686B2 (ja) | k−カゼイングリコマクロペプチドの製造法 | |
US3899419A (en) | Method for chemical fractionation, defatting and dewatering of solids and suspensions | |
US6346245B1 (en) | Procedure for extraction and use of hatching fluid from Atlantic salmon | |
AU684162B2 (en) | A process for separating milk clotting enzymes, and stable rennet compositions | |
Mirsky et al. | The isolation and crystallization of human insulin | |
KR20190065935A (ko) | 마린 콜라겐의 대량생산을 위한 고순도 정제방법 | |
Malthe‐Sosrenssen et al. | Molecular characterization of choline acetyltransferase from bovine brain caudate nucleus and some immunological properties of the highly purified enzyme | |
JPH05125100A (ja) | 高純度のペプシン可溶性魚鱗コラーゲンおよびその製造法 | |
US5061627A (en) | Method for preparing enzymes from crustaceans | |
US12325868B2 (en) | Purified fish proteases with high specific activities and its process of production | |
CS242391B1 (cs) | Způsob izolace cystatinů, přirozených inhibitorů cysteinových proteináz, z roztoku získaných z přírodních materiálů pomocí imobilizovaných cysteinových proteináz | |
US3940317A (en) | Method of isolation of lysozyme | |
EP0110688A2 (en) | Angiogenic factor production | |
US7002007B2 (en) | Production of high molecular weight hyaluronates | |
RU2034028C1 (ru) | Способ получения протеолитического комплекса | |
RU2068267C1 (ru) | Способ получения гиалуронидазы | |
RU2091073C1 (ru) | Способ получения иммуностимулятора | |
RU92013657A (ru) | Способ получения сычужного фермента | |
SU1404513A1 (ru) | Способ получени овомукоида | |
SU1108102A1 (ru) | Способ получени пероксидазы | |
RU2332423C2 (ru) | Способ получения тимических пептидов | |
EP0042560A2 (en) | A process for producing and obtaining anaphylatoxin- and cocytotaxin-containing leucotaxine preparations and of anaphylatoxin and cocytotaxin proteins in molecularly homogeneous, biologically active form | |
WO1994004551A1 (en) | Method of obtaining sodium salt of native dna | |
RU2077537C1 (ru) | Способ получения овомукоида |