CS206546B1 - Způsob čištěni peptidů kapalinovou chromatografii - Google Patents

Způsob čištěni peptidů kapalinovou chromatografii Download PDF

Info

Publication number
CS206546B1
CS206546B1 CS70980A CS70980A CS206546B1 CS 206546 B1 CS206546 B1 CS 206546B1 CS 70980 A CS70980 A CS 70980A CS 70980 A CS70980 A CS 70980A CS 206546 B1 CS206546 B1 CS 206546B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
peptides
liquid chromatography
weight
water
alcohol
Prior art date
Application number
CS70980A
Other languages
English (en)
Inventor
Miroslav Novak
Martin Flegel
Josef Kriz
Ludek Vodicka
Milan Brezina
Jiri Kolinsky
Milan Krojidlo
Original Assignee
Miroslav Novak
Martin Flegel
Josef Kriz
Ludek Vodicka
Milan Brezina
Jiri Kolinsky
Milan Krojidlo
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Miroslav Novak, Martin Flegel, Josef Kriz, Ludek Vodicka, Milan Brezina, Jiri Kolinsky, Milan Krojidlo filed Critical Miroslav Novak
Priority to CS70980A priority Critical patent/CS206546B1/cs
Publication of CS206546B1 publication Critical patent/CS206546B1/cs

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

(54) Způsob čištěni peptidů kapalinovou chromatografii
Vynález se týká způsobu čištění peptidů kapalinovou chromatografii.
Syntetické peptidy se používají· jako léčiva v řadě indikací v humánní i veterinární ;
medicíně. Jejich účinky jsou velmi výrazné a často značně specifické. Protože působí intensivně ve velmi malých množstvích, je důležité při výrobě zaručit vysokou čistotu a v maximální míře odstranit ty látky, které by mohly mít nežádoucí nebo nekontrolovatelné vlivy na živý organismus.
Čištění peptidů obsahujících v sekvenci 10 až 20 aminokyselin představuje komplikovaný problém.. V průběhu syntézy vzniká řada vedlejších· produktů s velmi podobnými strukturními rysy a často s molekulovou hmotností blízkou žádoucí látce.
Pro čištění peptidů uvedeného typu je stále ještě používán způsob protiproudého roztřepávání. Způsob je však pracný a zdlouhavý a má omezenou kapacitu. Při separaci dochází často k tvorbě emulsí, což velmi komplikuje separační proces. Čistota získaných peptidů činí zpravidla 90 %.
Čištění peptidů elektroforesou je pomalé, má i v případě použití komplikované přístrojové techniky nedostatečnou kapacitu. Pro separaci látek s nepříliš rozdílným isoelektrickým bodem je nutné používat značně vysoké napětí, někdy 4 až 5 kV, což zvyšuje pracovní riziko a představuje i určitý energetický problém. Čistota peptidů čištěných elektroforesou je do 90 %.
Nejužívanějším postupem dělení peptidů je v současné době jejich gelová chromatografie na látkách polymerního charakteru. Gelově chromatograficky lze však separovat pouze látky, jejichž molekulová hmotnost se dostatečně liší (např. peptid a sůl nebo peptid a výšemolekulární vedlejěí produkt), čištění pouze touto technikou nemůže tedy v řadě případů zaručit požadovanou čistotu produktu.
Proto je nutné kombinovat několik způsobů čištěni,např. gelovou a ionexovou chromatografií, případně použít ještě další separační techniku. Tím se stává separace peptidů značně časově náročnou a ztrátovou operací. Podmínky čištění se nedají v řadě případů reprodukovat.
V současné době se začíná pro čištění peptidů používat vysokotlaké kapalinové chromatografie s kolonami plněnými chemicky vázanými fázemi na silikagelu. Jako mobilní fáze se používají směsi metanol-voda, které mají často upravené pH na požadovanou hodnotu. Výhodou je vysoká čistota takto získaných peptidů. Nevýhodou zůstává vysoká cena chemicky vázaných fází.
Uvedené nedostatky odstraňuje způsob čištění peptidů kapalinovou chromatografii podle vynálezu. Jeho podstata spočívá v tom, že se peptidy podrobí působení kapalinové chromatografie, jejíž stacionární fáze je tvořena silikagelem velikosti částic 2 až 200 yum, s výhodou 5 až 25 /im, a mobilní fáze obsahuje směs alkoholu nebo acetonitrilu s vodou v poměru 95:5 až 10:90, s výhodou 90:10, případně směs alkoholu, acetonitrilu a vody s obsahem vody od 5 do 90 % hmot., .výhodně 10 až 20 % hmot.
Podle dalšího význaku vynálezu se jako alkohol použije metanol a/nebo etanol a/nebo propanol a/nebo isopropylalkohol. Je výhodné použít v mobilní fázi pufr o pH 3 až 8, s výhodou pH 4,4 až 4,8. Jako pufry je možno použít látky na bázi fosfátů alkalických kovů a kyseliny fosforečné. Konečně je možno přidávat látky na bázi solí organické kyseliny v množství od stopového množství do 5 % hmot., tvořící s peptidy iontové péry.
Způsobem podle vynálezu se získá vysoká čistota peptidů, většinou vyšší než 95 až 99 %, přičemž jako stacionární fáze je použit namísto drahých ionexů a/nebo chemicky vázaných fází čistý silikagel, který je podstatně lacinější a ve větším množství dostupnější.
Způsob podle vynálezu je dále blíže popsán podle několika konkrétních příkladů provedení.
Přikladl
1,0 g surového peptidů (£l-kyselina-3-merkaptopropionová, 8-D-argeninJ vasopressin) rozpuštěného v mobilní fázi byl nanesen na chromatografickou kolonu průměru 40 mm, délky 270 mm, jejíž náplň tvořil silikagel pro chromatografii o velikosti částic 10 až 25/Jm.
Látka byla eluována, za zvýšeného tlaku, mobilní fázi tvořenou 90 % metanolu, 10 % vodného fosfátového pufru o pH 4.6. Retenční čas čištěného peptidů byl 15 min. Bylo získáno 0,72 g peptidů o čistotě 98 %. Čistota byla ověřena vysokotlakou kapalinovou chromatografii s použitím dvou různých kolon.
Příklad 2
0,1 g (8-D-argenin) vasopressinu byla rozpuštěna v 1 ml směsi obsahující 50 % metanolu a 50 % vody a nestříknuta na kolonu světlosti 8 mm, délky 250 mm, plněnou silikagelem pro chromatografii, velikosti částic 7,5 ^im. Průtok mobilní fáze, obsahující 90 % metanolu a 10 % vodného fosfátového pufru o pH 4,6,byl 100 ml/hod. Retenční čas čištěného peptidů byl 30 minut, celková délka děleni byla 45 minut. Bylo získáno 0,8 g peptidů čistoty 93 %.
Příklad 3
0,1 g (2-0-methylthyrosin) oxytocinu bylo rozpuštěno v mobilní fázi a nastříknuto na .206546 kolonu světlosti 8 mm, délky 250 min, plněnou silikagelem o velikosti částic 10 (tun. Mobilní fází je směs 80% metanolu a 20 % vody, průtok 50 ml/hod. Celková doba čiětění byla 25 minut, retenční čas čištěného peptidů 10 minut. Bylo získáno 0,7 g peptidů čistoty vyšší než 98 %.
Příklad 4
Byl čištěn LHRH - releasing factor pro luteinizační a folikuly stimulující hormon. 0,08 g této látky bylo nastříknuto na kolonu jako v případě 2 a eluováno mobilní fází obsa hující 80 % metanolu, 7 % acetonitrilu a 13 % vody. Bylo získáno 0,055 g hormonu čistoty vyšší rtež 99 %.

Claims (5)

  1. PŘEDMĚT VYNÁLEZU
    1. Způsob čištění peptidů kapalinovou chromatografií vyznačený tím, že se peptidy podrobí působení kapalinové <phromatografie, jejíž stacionární fáze je tvořena silikagelem velikosti částic 2 až 200 <um, s výhodou 5 až 25 (Um, a mobilní fáze obsahuje směs alkoholu nebo acetonitrilu s vodou v poměru 95:5 až 10:90, s výhodou 90:10, případně směs alkoholu, acetonitrilu a vody s obsahem vody od 5 do 90 % hmot., výhodně 10 až 20 % hmot.
  2. 2. Způsob podle bodu 1 vyznačený tím, že se jako alkohol použije metanol a/nebo etanol a/nebo propanol a/nebo isopropylalkohol.
  3. 3. Způsob podle bodů 1 a 2 vyznačený tím, že v mobilní fázi se použije pufr o pří 3 až 8, s výhodou pH 4,4 až 4,8.
  4. 4. Způsob podle bodů 1 až 3 vyznačený tím, že se používají pufry na bázi fosfátů alkalických kovů a kyseliny fosforečné.
  5. 5· Způsob podle bodů 1 až 4 vyznačený tím, že se přidávají látky, tvořící s peptidy iontové páry, například na bázi soli anorganických a organických kyselin v množství od stopového množství do 5 % hmot.
CS70980A 1980-02-01 1980-02-01 Způsob čištěni peptidů kapalinovou chromatografii CS206546B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS70980A CS206546B1 (cs) 1980-02-01 1980-02-01 Způsob čištěni peptidů kapalinovou chromatografii

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS70980A CS206546B1 (cs) 1980-02-01 1980-02-01 Způsob čištěni peptidů kapalinovou chromatografii

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS206546B1 true CS206546B1 (cs) 1981-06-30

Family

ID=5339692

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS70980A CS206546B1 (cs) 1980-02-01 1980-02-01 Způsob čištěni peptidů kapalinovou chromatografii

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS206546B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Swingle et al. Tricalcium phosphate as an adsorbent in the chromatography of proteins
Hancock et al. Use of mixed-mode, high-performance liquid chromatography for the separation of peptide and protein mixtures
EP0134385A3 (en) A protein having cell growth stimulating action, composition thereof and method for producing the same
US4332717A (en) Purification of human growth hormone
JP2002511484A (ja) Ca++を含有する溶出液を用いたタンパク質の新規な分離方法
Craig et al. Bacitracin A. Isolation by counter double-current distribution and characterization
CA1305285C (en) Production of proteins in active forms
Gráf et al. On the primary structure of pituitary bovine growth hormone
DE3688712T2 (de) Reinigung von Proinsulinstoffen.
Wang et al. SOLID PHASE SYNTHESIS OF BOVINE PITUITARY GROWTH HORMONE‐(123–131) NONAPEPTIDE
Bishop et al. High-performance liquid chromatography of amino acids, peptides and proteins: XXI. The application of preparative reversed-phase high-performance liquid chromatography for the purification of a synthetic underivatised peptide
SENSHU et al. Fractionation of calf thymus histone by a new method of CM-cellulose chromatography
JPH03118393A (ja) ペプチド又はプソイドペプチド構造の低分子量化合物の精製方法
KR890001244B1 (ko) 성장 호르몬-양 물질의 정제방법
CS206546B1 (cs) Způsob čištěni peptidů kapalinovou chromatografii
Dobashi et al. Optical resolution of D-and L-amino acid derivatives by silica gel liquid chromatography with chiral additive N-acetyl-L-valine tert-butylamide
Jorgensen et al. Angiotensin II analogs. 6. Stereochemical factors in the 5 position influencing pressor activity. 1
US4677192A (en) Process for the separation of mixtures of insulin, insulin derivatives and, where appropriate, impurities
DE3605908A1 (de) Verfahren zum reinigen von interferon
KR840001516B1 (ko) 인체 섬유아세포 인터페론의 제조방법
DD157613A5 (de) Verfahren zur herstellung eines insulins oder insulinanalogs
CN115260293B (zh) 一种醋酸加尼瑞克的纯化方法
KR100400638B1 (ko) 재조합 인간 성장호르몬 유사체의 분리방법
Westall The use of ion‐exchange resins for the isolation of glutamine and other nitrogenous substances from beetroot
Wälti et al. Synthesis of [1-(L-2-hydroxy-3-mercaptopropanoic acid)] oxytocin, a highly potent analogue of oxytocin