CS196604B1 - Způsob biologického čištění odpadních vod, zejména ze zemědělské velkovýroby a zařízení k provádění tohoto způsobu - Google Patents

Způsob biologického čištění odpadních vod, zejména ze zemědělské velkovýroby a zařízení k provádění tohoto způsobu Download PDF

Info

Publication number
CS196604B1
CS196604B1 CS765577A CS765577A CS196604B1 CS 196604 B1 CS196604 B1 CS 196604B1 CS 765577 A CS765577 A CS 765577A CS 765577 A CS765577 A CS 765577A CS 196604 B1 CS196604 B1 CS 196604B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
cultivation
nutrient medium
rennet
microorganism
yeast extract
Prior art date
Application number
CS765577A
Other languages
English (en)
Inventor
Frantiska Paleckova
Karel Culik
Jiri Pelzbauer
Raimund Denk
Milos Teply
Jaroslav Masek
Jana Havlova
Ludmila Mikova
Original Assignee
Frantiska Paleckova
Karel Culik
Jiri Pelzbauer
Raimund Denk
Milos Teply
Jaroslav Masek
Jana Havlova
Ludmila Mikova
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Frantiska Paleckova, Karel Culik, Jiri Pelzbauer, Raimund Denk, Milos Teply, Jaroslav Masek, Jana Havlova, Ludmila Mikova filed Critical Frantiska Paleckova
Priority to CS765577A priority Critical patent/CS196604B1/cs
Publication of CS196604B1 publication Critical patent/CS196604B1/cs

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

, ' Yynálevse týká způsobu výroby mikrobiálního „syřiala na bázi směsi exoproteáz s vysokým obsahem neutrální proteázy, kultivací mikroorganismu Bacillus subtijist za aerobních podmínek, v tekuté živné1 půdě obsahující zdroje asimilovatelného uhlíku a dusíku.
„v , i r L
Jako syřidla, bylo používáno a stále se ještě používá rennetu, extraktu ze žaludků narozených telat. .Avšak již koncem 19. století bylo popsáno účinné mikrobiální syřidlo (H. W, Čonn, Centr. -Bqct. 12, 223, .1892,- C. Corini, Riv. Ing. Sanit. 3, 527, 1892). Nověji byl a, popsána syřidla produkovaná mikroorganismy, Aspergillus sp., Mucor sp., .Penicilliurn sp, a. Eurotium oryzae (americký pat. spis č. 1,391.219),„jakož i bakterie, které produkují enzymy vhodná* přo použití v sýrařství (G, J. WahΊίη. ϊ. Bact. lé, 355', 1928). .
,- I když rennet zůstává hlavním syřidlem, je stále více nahrgzpvgn, syřidly jiného původu, neboť je výrobně dražší a nestačí zvyšující se výrobě sýrů. f Stále stoupající. poče,t 'publikací svědčí o tom, že se výzkum, zaměřuj© na otá.zky výroby syřidel . mikrobiálního původy. .
Syřidlo bakteriálního původu je směs ěxoproteáz produkovaná na začátku sporulačního stadia cyklu buňky. Vhodnou kombinací genetických vlastností a jejich pozměněním lze získat stabilní směs exoproteáz, jež vyhovuje všem požadavkům kladeným na syřidlo. Důležitou složkou směsi exoproteáz sloužící jako syřidlo je proteáza s enzymatickou aktivitou při neutrální hodnotě pH (neutrální proteáza). Je proto důležité vést kultivaci vhodného mikroorganismu za takových podmínek, a'by se dosáhlo maximální produkce neutrální proteázy. Tomuto účelu je nutno přizpůsobit podmínky aerace, poněvadž vyšší obsah neutrální proteázy jé kromě genetického založení kmené závislý i na množství vzduchu používaného při kultivaci. V laboratorním měřítku lze optimálních podmínek dosáhnout při kultivaci v Erlenmayerových baňkách o objemu 750 ml s 80 ml média a na reciproké třepačce. Zvýšení aerace má sice za následek zvýšení celkového množství produkovaných exoproteáz (měřeno sýřivou aktivitou), ale obsah neutrální proteázy je nižší.
Schopnost produkovat vysoká množství směsi exoproteáz se zvýšeným podílem neutrální proteázy se příznivě projevuje na půdách s krmnou pšeničnou moukou jako zdrojem uhlíku v koncentraci 8 až 3 % hmot., a to v laboratorních podmínkách na reciproké třepačce o 96 kyveeh/min s výkyvem 9 cm, v provozních podmínkách pak v 5 m3 tanku za míchání 300 obr./min a vzdušnění do 16. hodiny 1000 I vzduchu/min a po 16. hodině 1400 I vzduchu/min,
Z uvedených poznatků vychází a optimálním podmínkám je přizpůsoben způsob výroby mikro>19 6 6 0 4 biálního syřidla na bázi směsi exoproteáz s vysokým obsahem neutrální proteázy, kultivací mikroorganismu Bacillus subtilis za aerobních podmínek v tekuté živné půdě obsahující zdroje asimilovatelného uhlíku a dusíku podle vynálezu, jehož podstata spočívá v tom, že se kultivace provádí v tekuté živné půdě, obsahující jako základní zdroje živin krmnou pšeničnou mouku, sušené mléko, sladinu a kvasnice nebo kvasničný extrakt, při teplotě 30 až 40 °C, s výhodou při 36 až 38 °C, za vzdušnění 33 až 40 % obj. vzduchu/min v růstové fázi mikroorganismu a 48 až 55 % obj. vzduchu/min v produkční fázi vztaženo na objem živné půdy, po ukončené kultivaci se z vyfermentované půdy oddělí biomáza, filtrát se za sníženého tlaku zahustí na 20 až 30 % původního objemu a z koncentrátu se odstraní balasty srážením rozpustnou vápenatou solí, s výhodou chloridem vápenatým, nebo organickým s vodou mísitelným rozpouštěddlem, s výhodou ethanolem, při teplotě 30 až 40 °C, s výhodou 35 až 38 °C, a při hodnotě pH
5,3 až 6,5, s výhodou 5,6 až 6,2, načež se získaný koncentrát, je-li to žádoucí, zpracovává na suchý produkt, například rozprašovacím sušením.
V literatuře jsou popisovány různé způsoby izolace mikrobiálního syřidlá,' závislé na druhu použitého produkčního mikroorganismu a na složení kultivačního média. Izolace a čištění produktu z kultivačního média je možné různými způsoby a je zásadně ovlivněno požadavkem na čistotu a kvalitu preparátu, popřípadě i tím, zda finální produkt má být kapalný nebo pevný. Jsou popisovány převážně srážecí metody při izoelektrickém bodě, popřípadě v kyselé oblasti pH s přídavkem solí. Další případné čištění se obvykle provádí na iontoměničích, gelovou filtrací, dialýzou a frakčním srážením.
Při studiu různých způsobů izolace s přihlédnutím ke kvalitě konečného produktu bylo zjištěno, že při daném složení fermentační půdy se. optimálního výsledku izolace dosáhne po oddělení biomážy produkčního mikroorganismu, zahuštěním supernatantu, frakčním srážením rozpustných bílkovin a .odstraněním nerozpustných ba.lastních látek a vápenatých solí kyselin za definované hodnoty pH a teploty, přičemž účinná látka zůstává v roztoku, který po případné konzervaci a filtraci představuje finální produkt, tj. vysoce stabilní mikrobiální syřidlo. Jako nejvýhodnější se ukázalo frakční srážení chloridem vápenatým, na druhém místě bylo srážení ethanolem.
Bližší podrobnosti způsobu podle vynálezu jsou patrny z příkladů provedení, které tento způsob pouze ilustrují, ale nijak neomezují.
Příklad 1
Kulturou kmene Bacillu? subtilis, vyrostlou na šikmém nasopeptonovém agaru při 37 °C za dobu 4 až 5 dní a pak uloženou v chladničce při 5°C, se pomocí kličky zaočkuje 80 ml půdy v 750 ml Erlenmayerově baňce, jež má toto složení (v % hmot.):
krmná pšeničná mouka 8,0
zahuštěná sladina 5,2
odtučněné sušené mléko 1,25
kvasničný extrakt
nebo sušené kvasnice 0,6
pH se neupravuje, po sterilizaci má hodnotu kolem 6,0. Sterilizuje se při 120°C 30 minut. Sušené mléko se jako 10% roztok sterilizuje zvlášť při 120’C 20 minut a po sterilizací se přidává do půdy. Do kultivačních baněk se rozděluje po 8Ó ml. Kultivuje se na reciproké třepačce o 95 kyvech/min, s výchylkou 9 cm. Vzorky pro stanovení šýřivé aktivity se odebírají po 24 hodinách. Maximálních hodnot se dosahuje v 72. hodině a dále se již nemění. Tímto postupem se dosáhne produkce exoproteáz sýřivou aktivitou okolo 4000 SRN a obsahu 75 % hmot. neutrální proteázy. Příklad 2
Kultivace za týchž podmínek a na téže půdě jako v příkladu 1, pouze objem půdy v kultivační baňce se sníží na 40 ml (zvýšená aerace). Produkce měřená sýřivou aktivitou je 4500 SRN a obsah neutrální proteázy se sníží na 38 % hmot.
P ř ř k I a d 3
Kulturou kmene jako v příkladu 1 se zaočkuje půda tohoto složení (v % hmot.):
krmná pšeničná mouka 3,0
zahuštěná sladina 5,2
odtučněné sušené mléko 2,0
kvasnicový extrakt nebo
sušené kvasnice 0,3
Příprava a sterilizace půdy, očkování a kultivace a stanovení sýřivé aktivity je stejné jako v příkladu 1. Maximální produkce se dosáhne v 72. hodině kultivace, sýřivé aktivity 4200 SRN a obsahu 75 % hmot. neutrální proteázy.
Příklad 4
Kultivace a půda jako v příkladu 3, pouze objem půdy v kultivačních baňkách se sníží , na 40 ml. Produkce měřená sýřivou aktivitou je 4200 SRN a podíl neutrální proteázy se sníží až na 30 % hmot.
P ř í k I a d 5
Pro kultivaci v 5 m3 tanku se v prvním stupni použije 24 hod. staré vegetativní inokulum (16 baněk po 80 ml), vyrostlé na půdě podle příkladu 1, jímž se naočkuje 100 litrů půdy ve 250litrovém očkovacím tanku. Půda má toto složení (v % hmot.)
krmná pšeničná mouka 8,0
zahuštěná sladina 5,2
odtučněné sušené mléko 1,25
sušené kvasnice 0,6
směs sojového a silikonového
oleje (6:1) 0,2
pH se neupravuje, po sterilizaci má hodnotu 5,8 až 6,2. Sterilizuje se 40 minut při 120 °C. Sušené mléko se sterilizuje zvlášť jako 10% roztok 20 minut při 120 °C. Očkovací tank se očkuje 0,5 % vegetativního inokula připraveného : kultivací v baňkách na reciproké třepačce (96 kyvů/min, s výchylkou 9 cm) po dobu 24 h při 37 °C. V očkovacím tanku se kultivuje při 37°C± 1°C, vzdušnění 100 l/min a míchání 200 obr./min po dobu 24 h. Odpěňování není nutné. Po ukončené kultivaci se získaným inokulém v množství 100 I na196604 očkuje 2500 I půdy (stejného složení jako v očkovacím tanku) v 5 m3 produkčním tanku. Kultivace probíhá při 37°C ± 1 °C a míchání 300 obr./min. Do 16 hodiny se vzdušní 1000 l/min, od 16 hod. 1400 l/min. Pokud je nutno odpěňovat, používá se směsi sójového a silikonového oleje (6:1). Sýřivá aktivita se sleduje obvykle po 6., 24., 30., 36. a 42. hodině. Kultivace je ukončena mezi 30. až 42. hodinou, kdy sýřivá aktivita dosáhne maxima a již se dále nemění.
Přikládá
2500 I fermentované půdy, připravené podle příkladu 5, o aktivitě kolem 4000 SRN, se ochladí na teplotu 15 “C a po přídavku 5 kg krystalického chloridu vápenatého se oddělí produkční biomáza na sedimentační odstředivce. Získaný supernatant se vakuově zahustí na filmové odparce na objem 650 litrů, přidá se 16,2 kg chloridu vápenatého, po rozpuštění se upraví pH na hodnotu 6,0 a koncentrát se zahřívá na teplotu 37 °C po dobu 2 hodin. Po ochlazení koncentrátu na 15 °C se vyloučený kal oddělí na sedimentační odstředivce a získaný, téměř čirý filtrát se po přídavku 18 g eugenolu a 18 g thymolu zfiltruje přes bakteriální filtr a rozplní. Účinnost takto připraveného tekutého produktu jě 20 000 SRN. Výtěžek izolace (vztaženo na obsah účinné látky ve fermentované půdě) je 70 %. Stejného výsledku bylo dosaženo při zpracování fermentační půdy složení jako v příkladu 3.
Příklad 7
130 I koncentrátu po zahuštění na filmové odparce z příkladu 5 se smíchá se 40 I ethanolu a po 1 hodině mírného míchání při teplotě 35 °C se vyloučený sediment odfiltruje na rotačním vakuovém filtru, filtrát se zahustí ve vakuové oběhové odparce na objem 90 I, ochladí na 15“C a zfiltruje přes bakteriální filtr. Získaný tekutý preparát má účinnost 28 000 SRN, výtěžek izolace je 72 %.
Příklad 8
I tekutého produktu z příkladu 6 se usuší na laboratorní rozprašovací sušárně při teplotě 120/ /75 °C. Získá se 0,32 kg pevného preparátu ve výtěžku 51 %.
P ř í k I a d 9
I tekutého preparátu z příkladu 7 se rozmíchají se 2 I methanolu, po oddělení vyloučených balastních látek odstředěním se ze získaného supernatantu vysráží další přísadou 1,6 až 1,8 I methanolu produkt, který se odfiltruje, promyje 100 ml methanolu, pak 100 ml izopropanolu a vysuší ve vakuu. Získá se 72,5 g suchého produktu o účinnosti 500 000 SRN ve výtěžku 65 °/0.
PŘEDMĚT

Claims (1)

  1. Způsob výroby mikrobiálního syřidla na bázi exoproteáz s vysokým obsahem neutrální proteázy, kultivací mikroorganismu Bacíllus subtilis za aerobních podmínek v tekuté živné půdě obsahující zdroje asimilovatelného uhlíku a dusíku, vyznačující se tím, že se kultivace provádí v tekuté živné půdě obsahující jako základní zdroje živin krmnou pšeničnou mouku, sušené mléko, sladinu a kvasnice nebo kvasničný extrakt, při teplotě 30 až 40°C, s výhodou při 36 až 38 °C, za vzdušnění 33 až 40 % objemových vzduchu/min v růstové fázi mikroorganismu a 48 až 55 % objemových/min
    VYNÁLEZU v produkční fázi, vztaženo na objem živné půdy, po ukončené kultivaci se z vyfermentované půdy oddělí biomáza, filtrát se za sníženého tlaku zahustí na 20 až 30 % původního objemu a z koncentrátu se odstraní balasty srážením rozpustnou vápenatou solí, s výhodou chloridem vápenatým, nebo organickým, s vodou mísitelným rozpouštědlem, s výhodou ethanolem, při teplotě 30 až 40 °C, s výhodou 35 až 38 °C, a při hodnotě pH 5,3 až 6,5 s výhodou 5,6 až 6,2, načež se získaný koncentrát popřípadě zpracovává na suchý produkt, například rozprašovacím sušením.
CS765577A 1977-11-21 1977-11-21 Způsob biologického čištění odpadních vod, zejména ze zemědělské velkovýroby a zařízení k provádění tohoto způsobu CS196604B1 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS765577A CS196604B1 (cs) 1977-11-21 1977-11-21 Způsob biologického čištění odpadních vod, zejména ze zemědělské velkovýroby a zařízení k provádění tohoto způsobu

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS765577A CS196604B1 (cs) 1977-11-21 1977-11-21 Způsob biologického čištění odpadních vod, zejména ze zemědělské velkovýroby a zařízení k provádění tohoto způsobu

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS196604B1 true CS196604B1 (cs) 1980-03-31

Family

ID=5426098

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS765577A CS196604B1 (cs) 1977-11-21 1977-11-21 Způsob biologického čištění odpadních vod, zejména ze zemědělské velkovýroby a zařízení k provádění tohoto způsobu

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS196604B1 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4312948A (en) Enzymic microbiological process for producing optically active aminoacids starting from hydantoins and/or racemic carbamoyl derivatives
IE893482L (en) The glycosidase inhibitor salbostatin, process for its¹preparation, and its use
US8119371B2 (en) Process for the preparation of polymyxin B employing (PAENI) Bacillus polymyxa
IL34956A (en) Production of lipase
US4141790A (en) Process for the preparation of 7-amino-cephem compounds using mold fungi
CS196604B1 (cs) Způsob biologického čištění odpadních vod, zejména ze zemědělské velkovýroby a zařízení k provádění tohoto způsobu
RU2157843C1 (ru) ШТАММ БАКТЕРИЙ BACILLUS CEREUS B 3б ГКМ ВИЗР № 98 ДЛЯ ОКИСЛЕНИЯ УГЛЕВОДОРОДОВ НЕФТИ И НЕФТЕПРОДУКТОВ
JPS61247396A (ja) ゲニステインの製造法
US4060455A (en) Process for the microbial production of L-serine using pseudomonas Sp. DSM 672
JPS5863388A (ja) ホスホリパ−ゼdの製造法
SI9600120A (en) New and improved fermentative procedure for the production of clavulanic acid and its salts
SU539538A3 (ru) Способ получени метаболита "а 27 106
RU2092559C1 (ru) Способ получения белковой биомассы
RU2054479C1 (ru) Способ получения комплекса амилолитических и протеолитических ферментов
RU2158302C2 (ru) Питательная среда для роста бифидо- и лактобактерий
JPS6319158B2 (cs)
SU1482946A1 (ru) Способ получени копропорфирина Ш
CH650797A5 (fr) Procede microbiologique de production de narasine.
SU1316239A1 (ru) Способ получени протеолитических ферментов
RU2078812C1 (ru) Способ получения азотсодержащего компонента питательной среды
RU2084528C1 (ru) Способ получения антибиотика канамицина
SU1711788A1 (ru) Способ культивировани молочнокислых или пропионовокислых бактерий
SU1440914A1 (ru) Питательна среда дл выращивани мицели дереворазрушающих грибов в глубинной культуре
SU283950A1 (cs)
SU1377290A1 (ru) Штамм бактерий ALcaLIGeNeS FaecaLIS, используемый дл очистки сточных вод от 2-хлор-цис,цис-муконовой кислоты