CN1956656A - 植物发芽抑制剂及其使用方法 - Google Patents

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Abstract

本发明提供一种新型植物发芽抑制剂,该抑制剂对栽培作物不会带来任何不良影响,而且没有产生环境污染的危险,此外,仅使用非常少的量就可以发挥出优异的效果。该抑制剂以绿青腐菌属菌类在木质部中产生的色素或绿青腐菌属菌类的菌体中含有的色素作为有效成分。在该植物的发芽期对植物的生长区域散布本发明的植物发芽抑制剂,抑制该植物发芽,阻止根茎组织的形成。

Description

植物发芽抑制剂及其使用方法
技术领域
本发明涉及新型植物发芽抑制剂、使用该抑制剂的植物生长控制方法、选择性的生长控制方法以及草坪管理方法。
背景技术
人们都知道以前为了能够抑制植物的球根、块茎、苗等发芽或生长,并可以长时间贮藏,要进行放射线照射、冷却等处理。另外也可以用化学物质进行处理来抑制发芽或生长。
到目前为止已经提出了以下一些方案,例如,对栽培作物施用咪唑啉酮农药抑制发芽生长的方法(JP6-157210A)、以碳数12~22的脂肪酸作为有效成分的种子发芽抑制剂(JP6-345606A)、含有中链或长链醇、醚油和菜子油甲酯的发芽抑制剂(JP8-500367A)、由属于德氏霉菌(Drechslera)属的微生物生产的芥子类固醇构成的发芽或生育抑制剂(JP7-69987A)、将沸石粉末和液体醇封入到非透水性且具有通气性袋内的发芽抑制剂(JP8-40806A)、将植物种子浸渍到表没食子儿茶精酸酯(epigallocatechin gallate)溶液中抑制发芽的方法(JP10-178817A)、对于吸油量为100ml/100g以上的无机矿物添加了具有抑制杂草发芽作用的植物干馏液的杂草发芽抑制剂(JP2000-86418A)、在桧叶油中添加了具有表面活性的植物油的具有抑制发芽作用的水性组合物(JP2000-290119A)、在食用醋中配合寡糖类和植物萃取成分的具有抑制发芽作用的植物活力剂(JP2001-64112A)、以从水稻稻壳或麦类种子壳的萃取物得到的苯乙烯衍生物或萜烯类为有效成分的作物发芽抑制剂(JP2002-255707A以及JP2002-255710A)和以双丙酮醇作为有效成分的作物发芽抑制剂(JP2002-255708A)等。
可是,对于稻米、小麦、玉米、大豆这样的谷类、菠菜、油菜、萝卜、芜箐、卷心菜以及白菜这样的蔬菜等作为食品提供的栽培作物,由于担心环境污染或对人体有不良影响,所以对于栽培作物期望尽可能不伤害生物的发芽抑制剂的出现。
发明内容
本发明鉴于上述情况,目的在于提供在对栽培作物不产生任何不良影响,以及不用担心环境污染,而且使用非常少量就可以起到很好效果的新型发芽抑制剂。
本发明人等首先发现在阔叶树的倒木中产生的、成为使倒木腐朽并着色为青绿色的原因的绿青腐菌属(Chlorociboria属)菌类产生的色素对藻类表现出生长抑制作用,提出了以该色素为有效成分的植物生长抑制剂,进一步深入研究,结果表明该色素对很多植物都表现出很好的发芽抑制作用。本发明正是根据这一见解形成的发明。
即本发明提供一种植物发芽抑制剂,该抑制剂以绿青腐菌属菌类在木质部中产生的色素或绿青腐菌属菌类菌体中含有的色素为有效成分;一种植物组织形成控制方法,其特征在于,在该植物的发芽期对植物的生长区域散布上述植物发芽抑制剂,抑制该植物发芽,阻止根茎组织形成;以及一种植物栽培方法,其特征在于,对至少2种植物共生区域散布上述植物发芽抑制剂,利用各植物发芽条件的差异,选择性地阻止所期望的栽培植物以外的植物根茎组织的形成。
以下对本发明进行详细说明。
本发明的植物发芽抑制剂的有效成分是由绿青腐菌属菌类在木质部中产生的色素或该菌体中含有的色素。该色素可以通过水或有机溶剂或水-有机溶剂混合溶液等从上述的木质部中萃取分离,优选通过加压热水萃取分离而获得。
或者是通过目前已众所周知的液体培养基的培养法或通过使液体培养基含浸在锯末中的培养法对绿青腐菌属菌进行培养,使其生产色素,然后使用水或有机溶剂或水-有机溶剂混合溶液从培养基成分中萃取,或使水或有机溶剂或水-有机溶剂混合溶液等挥发成分蒸发,或通过选择使用适当的分离柱使产生的色素吸附在该分离柱上来获得色素。
作为该绿青腐菌属的菌,例如Chlorociboria aeruginosa、Chlorociboriaaeruginascens、Chlorociboria omnivirens等。
上述加压热水萃取分离通过以含有绿青腐菌属菌类产生的色素的木质部、或绿青腐菌属菌类作为原料,优选使用其粉末形态,通过气体或液体状态的热水进行萃取,除去腐朽成分或易溶性成分后,用加压热水、优选用添加碱的加压热水有选择地萃取分离色素。然后根据需要可再向上述处理得到的色素水溶液中添加酸,对色素进行沉淀析出分离处理并纯化。
为了更好地进行加压热水萃取分离,可将适当粉碎的含有上述色素的木质部原料或菌体原料填充到用原料不会流出的筛网等罩住的萃取容器内,使该容器与开放压力下100~140℃、优选120~135℃的热水接触,首先萃取除去腐朽成分或来自绿青腐菌属菌类的菌体的易溶性成分。进行该处理时,如果使用温度超过140℃的热水,则色素有可能分解,而使用不足100℃的热水时,溶解力降低,不能有效进行萃取。该处理在萃取溶液的颜色达到透明时结束。
接下来向萃取容器内的萃取残留物中添加比100℃高的温度、优选120~135℃的加压热水,再进行萃取。此时施加的压力设定为能使热水变成完全液体状态那样的蒸汽压以上、优选0.5~2MPa左右。通过该加压热水可以萃取难溶性的色素,通过向加压热水中添加少量的碱、例如氢氧化钠或氢氧化钾那样的碱金属氢氧化物或氢氧化镁、氢氧化钙那样的碱土类金属氢氧化物等可以使萃取速度大幅度提高。
作为上述碱金属氢氧化物或碱土类金属氢氧化物等的添加量,选择加压热水的碱浓度为0.001~0.1N(规定浓度)范围。该碱浓度如果超过0.1N,导致连应当被除去的半纤维素那样的残留成分也被萃取,结果有用的色素的纯度降低,而如果不到0.001N,其添加效果不明显,不能获得萃取速度的明显提高。
由于通过该加压热水萃取处理可得到含有色素的水溶液,接着,向该溶液中添加酸使水溶液的pH处于3以下,就会使色素沉淀析出。这样析出的色素如果通过通常的过滤法或离心分离法回收、干燥,就可以得到期望的固体粉末色素。
该色素在紫外线或可见光线的照射下会由蓝色变为紫色,同时植物发芽抑制效果提高。
本发明的发芽抑制剂由于只要含有作为有效成分的该色素即可,所以其使用的形态可以是绿青腐菌属菌类的菌体本身,也可以是培养绿青腐菌属菌的培养基、例如液体培养基等,也可以是使绿青腐菌属的菌繁殖的原木或将该原木通过裁断、切断、粉碎等加工处理得到的木质材料,例如锯末等。
本发明的植物发芽抑制剂可以按照上述有效成分以0.001~2kg/ha、优选0.005~1.0kg/ha、特别优选0.01~0.5kg/ha的比例施用。施用时最好是制成液剂散布或制成粉剂散布。
本发明的植物发芽抑制剂可以通过以下方法制备:将上述色素负载到适当的载体上,根据需要添加表面活性剂,通常制备成含有0.01~99质量%,优选0.5~85质量%、特别优选10~50质量%的上述色素的组合物。而在施用时,根据施用的场所,可稀释到有效成分含量为0.001~5质量%。
作为上述载体,可以使用液体载体或固体载体中的任一种。作为液体载体的例子,可以举出,水、醇类(例如甲醇、乙醇、2-甲氧基乙醇、异丙醇、丙二醇以及二甘醇)、酮类(例如丙酮、甲乙酮)、烃类(例如、苯、甲苯、二甲苯、环己烷和甲基萘)、酯类(例如乙酸乙酯、乙酸丁酯)、醚类(例如二烷、异丙醚和二甘醇单乙醚)、酰胺类(例如甲基甲酰胺、二甲基甲酰胺和二甲基乙酰胺)等。
作为固体载体的例子,如粘土类(例如高岭土、酸性白土、硅藻土、合成水合氧化硅以及膨润土)、滑石类、其它的无机矿物(例如云母、白垩、绿坡缕石、海泡石、珍珠岩、碳酸钙、石英粉末、活性碳、二氧化硅以及水合二氧化硅)、硅酸盐、木质磺酸盐、化学肥料(例如硫铵、氯化铵、磷酸铵、尿素)、有机物(例如(糖)甘蔗、树皮末、烟草茎末)等微粉末或粒状物。
这样的载体无论是天然的还是合成来源的都可以,另外也可以是改质的天然材料。
散布或分散于水中来使用的湿润性粉末可以通过将粒状形体的上述色素与粒状载体混合,或通过将溶解或分散于液体的上述色素喷雾到粒状载体上,将湿润剂和分散剂混合,再将该混合物进行微粉碎来制备。气雾剂(aerosol)用的组合物可以通过将上述色素与喷射剂、例如二氯氟甲烷这样的多卤化烷烃根据情况不同可与溶剂混合来制备。
根据需要使用的表面活性剂可以是阴离子表面活性剂、阳离子表面活性剂或非离子表面活性剂中的任一种。作为阴离子表面活性剂,例如可以使用磷酸与脂肪族醇羟乙基酯的单或二酯、或上述酯的盐、脂肪族醇硫酸盐,例如十二烷基硫酸钠、羟乙基化的脂肪族醇硫酸盐、羟乙基化烷基酚硫酸盐、木质素硫酸盐、石油磺酸酯、烷基芳基磺酸盐例如烷基苯基磺酸盐或低级烷基萘磺酸盐、磺酸化萘甲醛缩合物的盐、磺酸化酚甲醛缩合物的盐、或更复杂的磺酸盐、例如氨基磺酸盐,例如油酸与N-甲基牛磺酸的磺酸化缩合物、二烷基磺酸基琥珀酸盐例如二辛基琥珀酸的磺酸钠等。
作为非离子表面活性剂,例如可以使用脂肪族酯、脂肪族醇、脂肪族酰胺或烷基取代的酚与环氧乙烷的缩合产物、多价醇醚的脂肪酸酯例如山梨糖醇酐脂肪酸酯、这样的酯与环氧乙烷的缩合产物例如聚氧亚乙基山梨糖醇酐脂肪酸酯、环氧乙烷与环氧丙烷的嵌段共聚物、乙炔性乙二醇例如2,4,7,9-四甲基-5-癸炔-4,7-二醇、羟乙基化乙炔性乙二醇等。
作为阳离子表面活性剂,例如可以使用烷基和/或芳基取代的季铵化合物,例如十六烷基三甲基溴化铵、羟乙基化脂肪族叔胺等。
优选的表面活性剂是羟乙基化烷基醇硫酸盐、木质素磺酸盐、烷基芳基磺酸盐、磺酸化萘甲醛缩合物的盐、磺酸化酚甲醛缩合物的盐、钠·油酸基N-甲基牛磺酸盐、二烷基磺酸基琥珀酸盐、烷基酚基羟乙基酯、脂肪族烷基羟乙基酯等。
本发明的植物发芽抑制剂与通常的农药同样,可以制备成乳剂、水合剂、悬浊剂、干流动剂(dry flowable)、流动剂(flowable)、熏烟剂、烟雾剂、微型胶囊剂等形状。
此时,可以配合粘结剂、分散剂、稳定剂等助剂,作为这样的辅助剂,可以举出,例如、酪蛋白、明胶、多糖类(例如、淀粉、阿拉伯树胶、纤维素衍生物)、木质素衍生物、膨润土、糖类、合成水溶性高分子(例如聚乙烯醇、聚乙烯基吡咯烷酮以及聚丙烯酸类)、PAP(酸性磷酸异丙酯)、BHT(2,6-二-叔丁基-4-甲酚)、植物油、矿物油、脂肪酸或其酯类等。
本发明的植物发芽抑制剂,可以广泛适用于单子叶植物、双子叶植物、裸子植物等任一种植物。作为其使用形态,适合于对于植物种子或地下茎植物的保存、特别是适合于防止栽培植物的种子、商店销售的蔬菜、水果的种子和地下茎在保存或运输中发芽使得商品价值降低。
作为可适用于本发明的植物发芽抑制剂的植物,例如、萝卜、芜箐、胡萝卜、洋葱、牛蒡、山药、葱、韭菜、菠菜、茼蒿菜、油菜、西兰花、卷心菜、白菜、水芹、鸭儿芹、荷兰芹、紫苏、芹菜、青梗菜、包芯芥、塌菜(Brassicachinensis var.rosularis)、雪里蕻、红菜苔、油菜心、西红柿、青椒、茄子、小青辣椒、辣椒、南瓜、黄瓜、冬瓜、蚕豆、芽菜、青豌豆、青刀豆、毛豆、大豆、小豆、落花生、芝麻、荞麦、水稻、小麦、大麦、玉米、甘蔗、核桃、粟子、银杏、柿子、枇杷、梨、葡萄、蜜柑、西瓜、柠檬、日本夏橙、杏、木瓜、枣、乌饭树、橄榄等,特别适用于那些种子流通时。
此外,也适用于藕、甘薯、马铃薯、芋头、大蒜、姜、薤、阳藿、笋、魔芋等。
为了施用本发明的植物发芽抑制剂,可以将这些植物的种子或地下茎浸渍于含有该发芽抑制剂的水或有机溶剂或水-有机溶剂溶液,或将该发芽抑制剂水溶液涂布或喷到植物的种子或地下茎上。
本发明的植物发芽抑制剂还可以散布在植物的生长区域,抑制在该区域发生的各种植物的发芽,防止该植物育成之后出现的任何不妥之处。例如可以防止在铺筑的道路的花砖的接缝、混凝土壁面等生长具芒碎米莎草或蘑菇等杂草之后导致强度下降,损坏外观。
另外本发明的植物发芽抑制剂可以散布到至少2种植物的共生区域,利用各植物发芽条件的差异,用于选择性地阻止所要的栽培植物以外的植物的根茎组织的形成。
作为这种情况的植物,有单子叶植物、双子叶植物和裸子植物,作为单子叶植物的例子,如芒、柳叶箬、大画眉草、虉草、硬质早熟禾、小糠草、米芒、米田茅、日本乱子草、Hakonechloa macro、拌粮草、牛鞭草(Hemarthriasibirica)、荩草、淡竹叶、短毛野青茅、雀稗、糠稷、结缕草(Zoysia japonica)、日本莠竹、米茅(Melica nutans)、黄花茅、囊颖草、白茅、狼尾草、看麦娘、棒头草、狗尾草、金色狗尾草、球米草、早熟禾、扭鞘香茅(Cymbopogon tortilisvar.goeringii)、
Figure A20058001018500081
草(Beckmannia syzigachne)等禾本科植物或具芒碎米莎草、湖瓜草、Scirpus yagara、菅茅(Carex)、莹蔺、茸球藨草、Carex morrowii等莎草科植物。
此外也适用于兰科、灯心草科、椰子、糖棕、油棕、棕榈、聂帕榈等棕榈科植物、孟宗竹、龟甲竹、刚竹、金明竹、淡竹、人面竹、业平竹、唐竹、四方竹等竹亚科植物,并不限定于这些。
作为双子叶植物,有双子叶植物/离瓣花类和双子叶植物/合瓣花类,例如悬铃叶苎麻、咬人荨麻、蟒草(Elatostema umbellatum var.majus)、透茎冷水花等荨麻科植物、美国石竹、瞿麦等石竹科植物、红蓼、蓼草、樱蓼、长鬃蓼、八字蓼、Persicaria aestiva、酸模、刺蓼、荞麦、大黄、蓼蓝等蓼科植物、乌头、附子、细叶乌头、Aconitum japonicum var.montanum、日本山地乌头、毛茛、Ranunculus extorris、小毛茛(Ranunculus silerifolius)、石龙芮等毛茛科植物、地榆、粉花绣线菌草、假升麻、小米空木、蔷薇、草莓、苹果、梨等蔷薇科植物、窄叶野豌豆、毛果野豌豆、Amphicarpaea bracteatasubsp.edgeworthii、鸡眼菜等豆科植物、合欢亚科植物、云实亚科植物、蚕豆亚科植物、虎耳草、白耳菜、Cardiandra alternifolia、黄小枝、大字草等虎耳草科植物、Pteridophyllum racemosum、夏天无、博落廻、白屈菜、棣堂花草、萝卜草、Raphanus sativus var.raphanistroides等罂粟科植物、油菜、荠菜、Arabis stelleri var.japonica、野萝卜等十字花科植物、堇菜科植物、长籽柳叶菜、月见草、南方露珠草、柳兰、丁香蓼等柳叶菜科植物、五风草植物、远志科植物、马兜铃科植物、伞形科植物、凤仙花科植物、葫芦科植物、景天科植物、藤黄科植物、商陆科植物、小檗科植物、锦葵科植物、五加科植物、报春花科植物、龙胆植物、Rubia argyi、Pseudopyxis depressa、Galium spurium var.echinospermon、白花蛇舌草那样的茜草科植物、唇形科植物、爵床科植物、紫草科植物、玄参科植物、桔梗科植物、刺儿菜、齿缘苦荬菜、黄鹌菜、兰草、蒲公英、田中凤毛菊、天名精、华泽兰、天一枝黄花、魁蒿、辣子草、日本飞蓬、石胡荽、关苍术、苦菜、山莴苣、马兰、蓍草、东风草、柳叶旋复花、稻槎菜、下田菊、Aster rugulosus、Inula ciliaris、Aster arenarius、Chrysanthemum pacificum、Senecio pierotii、金沸草、蹄叶橐吾、Crepidiastrum platyphyllum、大吴风草等菊科植物、萝藦、Cynanchumascyrifolium、Cynanchum caudatum、Cynanchum paniculatum、等萝藦科植物、败酱科植物、鹿蹄草科植物、川续断科植物、百合科植物、鸢尾科植物、杨柳亚科植物和Populoides亚科植物等杨柳植物、日本山毛榉、桴栎、槲、栎等壳斗科植物、桦木科植物、榆科植物、桑科植物、木兰科植物、樟植物、蔷薇科植物、豆科植物、悬铃木科植物、虎耳草科植物、金缕梅科植物、槭科植物、无患子植物、漆树科植物、清风藤科植物、七叶树科植物、卫矛科植物、黄杨科植物、冬青植物、五加科植物、山茱萸科植物、桑寄生科植物、Aucubaceae、杜鹃花科植物、山茶科植物、桃金娘科植物、红树、使君子科植物、胡桃科植物、胡颓子科植物、瑞香科植物、大戟科植物、虎皮楠科植物、鼠李科植物、杨梅科植物、云叶科植物、昆栏树科植物、檀香科植物、大风子科植物、桱柳科植物、旌节花科植物、木犀科植物、野茉莉科植物、紫金牛科植物、忍冬科植物、紫草科植物、茄科植物、玄参科植物、茜草科植物、马鞭草科植物、岩梅科植物等等,但并不限定于这些。
作为裸子植物,如松科植物、杉科植物、罗汉松科植物、红豆杉科植物,但不限定于这些植物。
本发明的植物发芽抑制剂也可以用于除去在栽培区域的栽培作物以外的杂草,作为这样的栽培作物,如水稻、小麦、大麦、玉米、甘蔗、洋葱、山药、葱、韭菜、芋头、大蒜、姜、薤、百合、阳藿等单子叶植物以及萝卜、芜箐、胡萝卜、牛蒡、菠菜、茼蒿菜、油菜、西兰花、卷心菜、白菜、水芹、鸭儿芹、荷兰芹、紫苏、芹菜、青梗菜、包芯芥、塌菜、雪里蕻、红菜苔、油菜心、西红柿、青椒、茄子、小青辣椒、辣椒、南瓜、黄瓜、冬瓜、蚕豆、芽菜、青豌豆、青刀豆、毛豆、大豆、小豆、落花生、芝麻、荞麦、藕、甘薯、马铃薯等双子叶植物。不过只要是可用作栽培作物的,对此并没有限定。
另外,作为杂草的例子,有上述以外的单子叶植物和双子叶植物。
为了使本发明的植物发芽抑制剂用于上述那些用途,可以将含有这样的植物发芽抑制剂的水性剂或粉剂以所定浓度散布或喷雾到共生区域或栽培区域。也可以预先使其浸透到栽培区域的土壤中。
另外,本发明的植物发芽抑制剂也可用于草坪的管理。
此时结缕草由于具有强大的生育力,因此,草坪例如高尔夫球场的草坪必须对夏天生长的结缕草进行多次剪草来控制其叶长度的作业。而为了除去结缕草间长出的杂草,必须散布除草剂,通常这样的除草剂由于使用有毒的化合物,因此造成环境污染,成为社会问题。
然而如果使用本发明的植物发芽抑制剂,由于在抑制结缕草的过度生长的同时,又可阻止结缕草以外的杂草的生长,所以可以高效地进行草坪的管理。
另外,对裸子植物例如松树进行盆栽时,如果在修剪的枝切口涂布上本发明的植物发芽抑制剂,或在地表上散布本发明的发芽抑制剂,或使本发明的发芽抑制剂以任意形态存在于土壤中,可以长时间防止发芽,因此可以整理成所希望的树形。
即使将本发明的植物发芽抑制剂适用于植物进行发芽处理时,只要除去该植物发芽抑制剂,仍可以与未处理的植物同样使其发芽。
附图说明
图1示出含有不同浓度色素的青首萝卜种子和不含有色素的青首萝卜种子发芽状态的图。
图2示出在实施例1和2中,14个或7个种子和2个或1个对照用种子平均的叶条长度和色素浓度关系的曲线图。
图3示出含有不同浓度色素的水稻种子和不含有色素的水稻种子发芽状态的图。
具体实施方式
以下通过实施例,说明实施本发明的最佳方式,但本发明并不受这些例子的任何限定。
参考例1
将含有绿青腐菌产生的色素的木质材粉碎做成试料,将7g该试料装入其不会流出并用烧结过滤片罩住两端的萃取部中,然后使130℃的热水在压力开放下,以10ml/分钟速度流过萃取部40分钟后,再使0.01摩尔/升浓度的氢氧化钠水溶液在2MPa下以10ml/分钟的流量流过,进行约2小时的色素萃取。向这样得到的浓的蓝色色素水溶液中添加少量的3.5质量%盐酸,将pH调整到3以下,使色素成分析出,过滤后得到固体状色素。已知作为绿青腐菌产生的色素的主要成分是盘菌木素,可用于本发明的色素也包括其它的色素。
实施例1
(1)试验培养基的制备
溶液A:依次将165g的NH4NO3、190g的KNO3、17g的KH2PO4、620mg的H3BO3、2.23g的MnSO4·4H2O、860mg的ZnSO4·4H2O、83mg的KI、25mg的Na2·MoO4·2H2O、2.5mg的CuSO4·5H2O和2.5mg的CoCl2·6H2O溶于1.5升蒸馏水中后,加蒸馏水最终配成总量2升。
溶液B:将44g的CaCl2·2H2O溶解于蒸馏水中,配成总量为1升。
溶液C:将37g的MgSO4·7H2O溶解于蒸馏水中,配成总量为1升。
溶液D:将2.78g的FeSO4·7H2O和3.73g的Na2-EDTA溶解于蒸馏水中,配成总量为1升。
将上述的20ml的溶液A、10ml的溶液B、10ml的溶液C和10ml的溶液D与30g蔗糖和500ml蒸馏水混合后,加蒸馏水,将总量配成1升,将pH调整到5.7~5.8,加琼脂10g制备试验培养基。
(2)双子叶植物种子的发芽
对于加有蛭石的塑料制培养瓶(Kirin Brewery Co.,Ltd.制、商品名“Agripot”)在高压釜中于120℃下进行20分钟无菌化处理并将经无菌化处理的上述试验培养基按照每份50ml分装,使它们分别含有5×10-5g/升、2.5×10-4g/升、5×10-4g/升、2.5×10-3g/升、5×10-3g/升、1×10-2g/升以及2×10-2g/升浓度的色素。
然后在清净工作台上,在上述每个培养瓶播种14个青首萝卜种子[用0.1质量%氯化汞(II)处理1分钟后,用流水和无菌水清洗],将培养瓶用铝箔包起,于人工气象机中保持在22℃使其发芽。发芽后立刻除去铝箔,用植物栽培用荧光灯照射16小时后,置于暗处8小时,反复进行该循环,连续培育14天。
图1示出与不含有色素的对照比较,各浓度的发芽状态。图中a、b、c、d、e、f和g分别表示在5×10-5g/升、2.5×10-4g/升、5×10-4g/升、2.5×10-3g/升、5×10-3g/升、1×10-2g/升和2×10-2g/升的色素浓度下的发芽状态,h表示对照的发芽状态。而图2中A表示14个种子平均叶条的长度(cm)与色素浓度(g/升)的关系的曲线。
实施例2
向与实施例1中使用的同样的培养瓶中加入蛭石,对在实施例1的(1)制备的试验培养基与实施例1同样进行无菌化处理后,按照每份80ml进行分装,然后使它们分别含有5×10-5g/升、2.5×10-4g/升、5×10-4g/升、2.5×10-3g/升、5×10-3g/升、1×10-2g/升以及2×10-2g/升浓度的色素。
然后,在每一个培养瓶中播种7个水稻种子,与实施例1同样进行培养。
上述得到的各浓度的发芽状态与不含有色素的对照进行比较的结果如图3所示。图中a、b、c、d、e、f和g分别表示在5×10-5g/升、2.5×10-4g/升、5×10-4g/升、2.5×10-3g/升、5×10-3g/升、1×10-2g/升和2×10-2g/升的色素浓度下的发芽状态,h表示对照的发芽状态。
而图2中B表示7个种子平均叶条的长度(cm)与色素浓度(g/升)的关系的曲线。
实施例3
使30个萝卜种子充分膨润后,喷洒参考例1中得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液,置于平皿(Petri dish)上的脱脂棉上,在人工气象机中光照射下观察发芽,但经过6个月后也没有看到发芽。
实施例4
向30个萝卜种子喷洒参考例1得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液后进行干燥后的种子在1年过后置于平皿中用水弄湿的脱脂棉上,在人工气象机中光照射下观察发芽,但经过6个月后也没有看到发芽。
比较例1
将喷洒了参考例1中得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液后进行了干燥的30个萝卜种子于水中洗2小时,除去色素,置于平皿中用水弄湿的脱脂棉上,在人工气象机中光照射下观察发芽,看到30个萝卜种子全部发芽。
因此,即使是用色素进行了发芽抑制处理的萝卜种子,如果除去该色素,就可以与未处理的种子同样发芽。
实施例5
使30个西兰花(ブロツコリ一)种子充分膨润后,喷洒参考例1中得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液,置于平皿中的脱脂棉上,在人工气象机中光照射下观察发芽,但经过6个月后也没有看到发芽。
实施例6
向30个西兰花种子喷洒参考例1得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液后进行干燥。1年过后将这些种子置于用水弄湿并放入平皿的脱脂棉上,在人工气象机中光照射下观察发芽状态,但经过6个月后也没有看到发芽。
比较例2
向30个西兰花种子喷洒参考例1得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液后进行干燥。然后用流水冲洗2小时,将色素洗掉,将这些种子置于平皿内经水弄湿的脱脂棉上,于人工气象机中进行光照射,1周后看到30个种子全部发芽。
因此,即使用色素进行了发芽抑制处理的西兰花种子,只要除去该色素也可以与未处理的种子同样使其发芽。
实施例7
使20个蚕豆种子浸泡于水中充分膨润后,喷洒参考例1中得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液,置于平皿中的湿脱脂棉上,在人工气象机中光照射下观察发芽状态,经过6个月后也没有看到发芽。
实施例8
向20个膨润了的蚕豆种子喷洒参考例1得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液后进行干燥、保存。1年过后将这些种子置于平皿中用水弄湿的脱脂棉上,在人工气象机中光照射下观察发芽状态,经过6个月后也没有看到发芽。
比较例3
向20个蚕豆种子喷洒参考例1中得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液后进行干燥,然后用流水冲洗2小时,将色素洗掉,置于平皿内用水弄湿的脱脂棉上,于人工气象机中进行光照射,同时观察发芽状态,1周后看到20个种子全部发芽。
因此,即使用色素进行了发芽抑制处理的蚕豆种子,只要除去该色素也可以与未处理的种子同样使其发芽。
实施例9
将20个玉米种子浸入水中,充分膨润后,喷洒参考例1中得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液,置于平皿中的湿脱脂棉上,在人工气象机中光照射下观察发芽状态,经过6个月后也没有看到发芽。
实施例10
向20个膨润的玉米种子喷洒参考例1得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液后干燥,保存。1年过后将这些种子置于平皿中用水弄湿的脱脂棉上,在人工气象机中光照射下观察发芽状态,经过6个月后也没有看到发芽。
比较例4
向20个膨润的玉米种子喷洒参考例1得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液并干燥后,用流水冲洗2小时,将色素洗掉,置于平皿内用水弄湿的脱脂棉上,于人工气象机中进行光照射,同时观察发芽状态,1周后看到所有种子全部发芽。
因此,即使用色素进行了发芽抑制处理的玉米种子,只要除去该色素也可以与未处理的种子同样使其发芽。
实施例11
将30个西瓜种子浸入水中充分膨润后,喷洒参考例1中得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液,置于平皿中用水弄湿的脱脂棉上,在人工气象机中光照射下观察发芽状态,经过6个月后也没有看到发芽。
实施例12
向30个西瓜种子喷洒参考例1得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液,干燥后保存。1年过后将这些种子置于平皿中用水弄湿的脱脂棉上,在人工气象机中光照射下观察发芽状态,但经过6个月后也没有看到发芽。
比较例5
向30个西瓜种子喷洒参考例1得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液后进行干燥。然后用流水冲洗2小时,将色素洗掉,将这些种子置于平皿内经水弄湿的脱脂棉上,于人工气象机中进行光照射,同时观察发芽状态,1个月后所有的种子都发芽了。
因此,即使用色素进行了发芽抑制处理的西瓜种子,只要除去该色素也可以与未处理的种子同样使其发芽。
实施例13
向20个栗子种子喷洒参考例1中得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液,干燥后置于平皿中用水弄湿的脱脂棉上,在人工气象机中光照射下观察发芽状态,经过6个月后也没有看到发芽。
实施例14
向20个栗子种子喷洒参考例1得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液,干燥后保存。1年过后将这些栗子种子置于平皿上用水弄湿的脱脂棉上,在人工气象机中光照射下观察发芽状态,经过6个月后也没有看到发芽。
比较例6
向30个栗子种子喷洒参考例1得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液后进行干燥。然后用流水冲洗2小时,将洗掉了色素的栗子种子置于平皿内经水弄湿的脱脂棉上,于人工气象机中进行光照射,观察发芽状态,1个月后看到所有的栗子种子都发芽了。
因此,即使用色素进行了发芽抑制处理的栗子种子,只要除去该色素也可以与未处理的种子同样使其发芽。
实施例15
切1个马铃薯,准备10个马铃薯试验片,然后向各个试验片喷洒参考例1中得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液,干燥后置于平皿中用水弄湿的脱脂棉上,在人工气象机中光照射下观察发芽状态,经过6个月后也没有看到发芽。
实施例16
切1个马铃薯,准备10个马铃薯试验片,然后向各个试验片喷洒参考例1中得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液,干燥保存。经过6个月后将这些试验片置于平皿内用水弄湿的脱脂棉上,在人工气象机中光照射下观察发芽状态,经过6个月后也没有看到发芽。
比较例7
向切1个马铃薯准备的10个马铃薯试验片喷洒参考例中得到的色素的2×10-2g/升浓度水溶液后,干燥。然后将经流水冲洗2小时洗掉色素的试验片置于平皿内经水弄湿的脱脂棉上,于人工气象机中进行光照射观察发芽状态,1个月后看到所有的试验片都发芽了。
因此,即便用色素进行了发芽抑制处理的马铃薯,只要除去该色素也可以与未处理的马铃薯同样使其发芽。
实施例17
将藕在冬季收获,保存在湿的绿青腐菌繁茂的木材腐朽材的锯末中,观察发芽状态,1年过后也完全没有看到发芽。
实施例18
将笋在春季收获,保存在湿的绿青腐菌繁茂的木材腐朽材的锯末中,观察发芽状态,1年过后都没有看到发芽,用菜刀切的笋的断面仍保持原有的新鲜状态。
实施例19
将10棵盆栽用的黑松(植物体的全质量约1kg)按照每组5棵,分成A组和B组两组,将(A)组中黑松的一棵一棵地栽到填充了5kg繁殖有绿青腐菌的腐朽材的锯末和20kg一般的旱田用土的5个钵中,而(B)组黑松一棵一棵地栽到没有添加繁殖有绿青腐菌的腐朽材锯末而是填充了25kg一般的旱田用土的5个钵中,于屋外在自然环境下照射日光,观察生长状态。
结果(B)组的黑松植物体的量不断增大,3年后1棵的平均植物体量达到约5kg,在树根处茂盛长出芒草这样的单子叶植物和荠菜这样的双子叶植物的杂草,而与此相反,(A)组的黑松还不到1.3kg以上,而且无论单子叶植物还是双子叶植物的杂草完全没有看到。
实施例20
准备10棵盆栽用的黑松(植物体的全质量约1kg),10棵夹竹桃(植物体的全质量约1kg),将5棵裸子植物黑松和5棵双子叶植物夹竹桃作为(A)组,按照各1棵栽到填充了5kg繁殖有绿青腐菌的腐朽材的锯末和20kg一般的旱田用土的5个钵中,照射日光,观察生长状态。
另外将剩下的5棵裸子植物黑松和5棵双子叶植物夹竹桃作为(B)组,按照各1棵栽到不加繁殖有绿青腐菌的腐朽材的锯末,而是填充了25kg一般的旱田用土的5个钵中,照射日光,观察生长状态。
结果,(B)组的盆栽用黑松和夹竹桃其质量增加,3年后前者1棵平均植物体质量达到约3kg,而后者也达到约4kg,与实施例19同样,在树根部茂盛长出芒草这样的单子叶植物和荠菜这样的双子叶植物的杂草,而与此相反(A)组的黑松和夹竹桃,前者约为1.3kg、而后者约为1.5kg,而且无论是单子叶植物还是双子叶植物的杂草都没有看到。
实施例21
在1000升水中溶解50g参考例1得到的色素,制备散布用植物发芽抑制剂溶液。
接下来,用割草机对单子叶植物和双子叶植物杂草茂盛的住宅地用的宅地200m2进行除去杂草作业后,向其中的100m2按照100ml/m2的比例散布上述的植物发芽抑制剂溶液。2个月后,采取从杂草切断面长出的茎条部分,进行计量,散布了植物发芽抑制剂溶液的区域的茎条部分的质量大约为没有散布植物发芽抑制剂溶液的剩下的100m2的约1/5。
实施例22
在6月末用可插3垅的载人水稻插秧机将长到15cm的水稻苗在200m2水田的A区和同样的200m2水田的B区进行插秧。对于A区200m2水田每月4次,直至9月按照100ml/m2的比例散布与实施例21使用的同样的植物发芽抑制剂溶液。
此后,水稻生长顺利,在该A区的水田中完全没有长出稗、萤蔺、双穗雀稗等杂草。在B区都没有散布植物发芽抑制剂,水稻生长虽然顺利,但在水稻株间长出大量的稗、萤蔺、双穗雀稗等杂草。
实施例23
在11月末,在200m2旱地的A区和同样的200m2旱地的B区,按照每个田埂成2列那样播种小麦。对于A区的200m2旱地,按照干燥菌丝体浓度1g/升,错开小麦苗列,直到3月散布3次绿青腐菌的培养液。
之后,小麦生长顺利,在该A区的旱地中小麦的列和株间的间隔中都没有长出通常发生的具芒碎米莎草、苦菜、小巢菜、窄叶野豌豆、野燕麦等杂草。而在B区的旱地中没有散布植物发芽抑制剂溶液。在该旱地虽然小麦的生长顺利,但在小麦的列和株间的间隔长出大量的具芒碎米莎草、苦菜、小巢菜、窄叶野豌豆、野燕麦等杂草。
实施例24
6月末将大豆种子播种在200m2旱地的A区和同样的200m2旱地的B区。2周后大豆种子发芽,长到约5cm高后,向A区的200m2旱地,按照100ml/m2的比例,直到9月散布4次与实施例21使用的同样的植物发芽抑制剂,散布时避开大豆苗。
之后大豆生长顺利。在A区,石胡荽、苦菜、具芒碎米莎草、芒、拌粮草、日本莠竹等杂草都没有长出,但在没有散布植物发芽抑制剂溶液的B区,在大豆的株间长出很多石胡荽、苦菜、具芒碎米莎草、芒、拌粮草、日本莠竹等杂草。
实施例25
6月末将小豆种子播种在200m2旱地的A区和200m2旱地的B区。2周后,小豆种子发芽,长到约5cm高后,向A区的200m2旱地按照100ml/m2的比例,直到9月散布4次与实施例21使用的同样的植物发芽抑制剂溶液,散布时避开小豆苗。
之后,小豆生长都很顺利。在A区的小豆中完全没有长出石胡荽、苦菜、具芒碎米莎草、芒、拌粮草、日本莠竹等杂草,然而在没有散布植物发育抑制剂溶液的B区的小豆的株间长出大量的石胡荽、苦菜、具芒碎米莎草、芒、拌粮草、日本莠竹等杂草。
实施例26
将40cm×40cm的结缕草苗10块中的5块结缕草作为A组,剩下的5块作为B组,在各个结缕草苗上放置30个蒲公英种子、30个芒草种子,然后置于旱地土壤中,对于A组按照1周1次,100ml/m2的比例散布与实施例21使用的同样植物发芽抑制剂溶液,每日浇水,观察结缕草的生长和蒲公英种子发芽、芒草种子发芽和它们的生长状况。对于B组,不散布植物发芽抑制剂溶液,只是每日浇水,观察结缕草的生长和蒲公英种子发芽、芒草种子发芽和它们的生长状况。
1个月后,在A组没有观察到结缕草的生长和蒲公英的种子发芽以及芒种子的发芽,但在B组,结缕草生长,就从40cm×40cm的结缕草苗床端长出的新芽来说,显示出50cm左右的结缕草新芽平均每一块长出10棵那样的生长活性。而B组的蒲公英种子和芒草种子发芽,生长显著。
实施例27
对于结缕草密生生长的草坪的一部分20m2,用剪草机对结缕草进行剪割后,向其中的10m2播种蒲公英种子100个和芒草种子100个,每隔1周按照100ml/m2的比例散布与实施例21使用的同样的植物发芽抑制剂溶液。另外,对于剩下的10m2,同样播种100个蒲公英种子和100个芒草种子,不散布植物发芽抑制剂溶液,就那样放置。
2个月后,前者没有观察到蒲公英和芒草的种子发芽和生长,而在后者中,蒲公英的种子中约80个发芽生长,芒草种子也有约70个发芽生长。之后,割草机和剪草机剪下的前者的植物体的全质量与后者相比非常少,只是后者的1/10。
参考例2
将黑鳉(ヒメガタ,Oryzlas latipes var.)40条(雄20条、雌20条)分为2组(每组雄10条、雌10条),将一组于色素盘菌木素(1×10-2g/升)水溶液中饲养,另外一组在生长用绿青腐菌的菌丝,并被腐蚀而染成蓝色的木材存在下的水中饲养。经过1周后也没有看到黑鳉有什么异常。
由此可知绿青腐菌产生的色素在其使用浓度下对生物体没有任何危害。
工业实用性
本发明的植物发芽抑制剂可以抑制植物的发芽,阻止根茎组织的形成,可以长时间地保存种子或根茎。另外,本发明的植物发芽抑制剂在2种以上植物的共生区域,可有选择地抑制栽培作物以外的杂草的发芽,省去了除草作业。
因此,本发明的植物发芽抑制剂可用于蔬菜或水果的种子或地下茎的保存,防止可在栽培用作物的栽培区域以及铺筑的道路、庭院、空地生长的杂草的发生等。

Claims (7)

1.一种植物发芽抑制剂,该抑制剂以绿青腐菌属菌在木质部中产生的色素或绿青腐菌属菌的菌体中含有的色素作为有效成分。
2.一种植物组织形成控制方法,其中,在该植物的发芽期对植物的生长区域散布权利要求1所述的植物发芽抑制剂,抑制该植物发芽,阻止根茎组织的形成。
3.一种植物栽培方法,其中,对于至少2种植物的共生区域散布权利要求1所述的植物发芽抑制剂,利用各植物发芽条件的差异,有选择地阻止所要栽培植物以外的植物的根茎组织的形成。
4.权利要求3所述的植物栽培方法,其中植物是从单子叶植物、双子叶植物和裸子植物中选出的至少2种植物。
5.权利要求3所述的植物栽培方法,其中共生区域是作为栽培作物的单子叶植物与作为杂草的单子叶植物或双子叶植物或其二者的共生区域。
6.权利要求3所述的植物栽培方法,其中共生区域是作为栽培作物的双子叶植物与作为杂草的单子叶植物或双子叶植物或其二者的共生区域。
7.一种草坪管理方法,其中,对结缕草的生长区域,散布权利要求1所述的植物发芽抑制剂,在防止结缕草的过度生长的同时,也防止结缕草以外的杂草的产生。
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