CN1733898A - 酵母拮抗菌C.laurentii的真空冷冻干燥制品及其制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了酵母拮抗菌C.laurentii的一种真空冷冻干燥制品及其制备方法。该真空冷冻干燥制品,是收集经培养24-48h的酵母拮抗菌C.laurentii的菌体,将其用保护剂制成浓度为5×108-5×109个细胞/mL的菌悬液,孵育1-2h,再进行真空冷冻干燥后得到的产品;所述保护剂为质量百分含量为5-10%的葡萄糖、蔗糖、醋酸钠、脱脂奶粉或谷氨酸钠水溶液。用本发明的方法制备的酵母拮抗菌C.laurentii真空冷冻干燥制品具有较高的生物活性,活菌率可达80%。本发明制备工艺简单、成本低廉,具有工业化生产的可行性,将在酵母拮抗菌C.laurentii及其它微生物的保藏及其相关产品的制备中发挥巨大作用。
Description
技术领域
本发明涉及微生物的真空冷冻干燥制品及其制备方法,特别是涉及酵母拮抗菌C.laurentii的一种真空冷冻干燥制品及其制备方法。
背景技术
目前保持酵母菌生活力的方式主要有:传代培养保藏、液体石蜡低温保藏、斜面低温保藏、半固体穿刺保藏、液氮冷冻保藏和真空冷冻干燥保藏等(Ashwood-Smith MJ.Preservation of microorganisms by freezing,freeze-drying and desiccation.In:Ashwood-Smith M J(Eds).Low Temperature Preservation in Medicine andBiology.Tunbridge Wells:Pitman Medical,1980,pp219-252.;李钟庆 编 微生物菌种保藏技术.北京:科学出版社,1989,pp19-28)。由于真空冷冻干燥保藏法具有保藏期长、可避免其它杂菌污染、便于运输和易于实现商品化生产等优点,因而成为目前保存细菌、酵母菌真菌孢子及霉菌最有效、成功的方法之一(李华,骆艳娥,刘延琳.真空冷冻干燥微生物的研究进展.微生物学通报,2002,29:78-82)。然而,并非所有的微生物都适合于真空冷冻干燥保存,既使能采用真空冷冻干燥保存的微生物,其存活率也可能低于0.1%(Benny J F,Hennebert G L.Viability andstability of yeast cells and filamentous fungus spores during freeze drying:effects of protectants and cooling rates.Mycologia,1991,83:805-815.)。据报道,影响微生物真空冷冻干燥效果的因素主要包括:悬浮液浓度、预冻速度、保护剂的种类和浓度以及复水方式等(Bozoglu T F,Ozilgen M,Bakir U.Survivalkinetics of lactic acid starter cultures during and after freez drying.EnzmymeMicrobial Technology,1987,9:531-537.;Champage C P,Gardner N,Brochu E,Beaulier Y.The freeze-drying of lactic acid bacteria:a review.Can.Inst.Sci.Technol.J.,1991,24:118-126)。为了获得理想的真空冷冻干燥效果,需要筛选有效地制备方式及其保护剂。但目前国内外尚未见有对酵母拮抗菌Cryptococcuslaurentii(C.laurentii)真空冷冻干燥方式效果的报道。
研究表明:酵母拮抗菌C.laurentii对葡萄、桃、苹果、冬枣、甜樱桃等果实的主要采后病害均具有明显抑制效果(刘海波,田世平,秦国政,徐勇.罗伦隐球酵母对葡萄采后病害的拮抗效果.中国农业科学,2002,35:831-835.;林丽,田世平,秦国政,徐勇.两种拮抗酵母菌对桃果实贮藏期间主要病害的防治效果.中国农业科学,2003,36:1535-1539.);可以耐受低温、低氧和高二氧化碳等果实采后的主要贮藏条件(Qin G Z,Tian S P.Biocontrol of postharvest diseases of jujube fruitby Cryptococcus laurentii combined with a low dosage of fungicides underdifferent storage conditions.Plant Dis.,2004a,88:497-501.),能够与鉬酸铵、碳酸氢钠、水杨酸以及低剂量的杀菌剂(Qin et al.,2004a)配合使用(WanY K,Tian S P,Qin G Z.Enhancement of biocontrol activity of yeasts by addingsodium bicarbonate or ammonium molybdate to control postharvest disease ofjujube fruits.Lett.Appl.Microbiol.,2003,37:1-5.),并能在采前田间喷施(Tian S P,Qin G Z,Xu Y.Survival of antagonistic yeasts under field conditionsand their biocontrol ability against postharvest diseases of sweet cherry.Postharvest Biol.Technol.,2004a,In press.),具有良好的应用前景。
发明内容
本发明的目的是提供一种酵母拮抗菌C.laurentii的真空冷冻干燥制品。
本发明所提供的酵母拮抗菌C.laurentii的真空冷冻干燥制品,是收集经培养24-48h的酵母拮抗菌C.laurentii的菌体,将其用保护剂制成浓度为5×108-5×109个细胞/mL的菌悬液,孵育1-2h,再进行真空冷冻干燥后得到的产品;所述保护剂为质量百分含量为5-10%的葡萄糖、蔗糖、醋酸钠、脱脂奶粉或谷氨酸钠水溶液。
所述酵母拮抗菌C.laurentii的培养条件为;按2%的接种浓度将酵母拮抗菌C.laurentii接种于专用培养基中,在25℃,200rpm下振荡培养;所述专用培养基的配方为:柠檬酸40,大豆蛋白胨15,硫酸镁1.23,氯化钙0.56,单位:gL-1。
菌悬液的浓度优选为5×108个细胞/mL,孵育时间优选为2h,保护剂优选为质量百分含量为5%的脱脂奶粉水溶液。
本发明的第二个目的是提供一种上述酵母拮抗菌C.laurentii的真空冷冻干燥制品的制备方法。
本发明所提供的酵母拮抗菌C.laurentii的真空冷冻干燥制品的制备方法,是收集经培养24-48h的酵母拮抗菌C.laurentii的菌体,将其用保护剂制成浓度为5×108-5×109个细胞/mL的菌悬液,孵育1-2h,再进行真空冷冻干燥后得到酵母拮抗菌C.laurentii的真空冷冻干燥制品;所述保护剂为质量百分含量为5-10%的葡萄糖、蔗糖、醋酸钠、脱脂奶粉或谷氨酸钠水溶液。
在上述制备方法中,所述酵母拮抗菌C.laurentii的培养条件为;按2%的接种浓度将酵母拮抗菌C.laurentii接种于专用培养基中,在25℃,200rpm下振荡培养;所述专用培养基的配方为:柠檬酸40,大豆蛋白胨15,硫酸镁1.23,氯化钙0.56,单位:gL-1。
菌悬液的浓度优选为5×108个细胞/mL,孵育时间优选为2h,保护剂优选为质量百分含量为5%的脱脂奶粉水溶液。
所述真空冷冻干燥条件可采用一般的微生物制品的真空冷冻干燥条件,如干燥温度-45℃,真空度0.54mPa,干燥时间24h。
本发明首先通过正交实验确定影响酵母拮抗菌C.laurentii真空冷冻干燥效果的主要因子,并在此基础上深入探讨不同生长阶段和保护剂对冷冻干燥制品的生活力的影响,得到酵母拮抗菌C.laurentii真空冷冻干燥的有效地制备方法。用本发明的方法制备的酵母拮抗菌C.laurentii真空冷冻干燥制品具有较高的生物活性,活菌率可达80%。本发明制备工艺简单、成本低廉,具有工业化生产的可行性,将在酵母拮抗菌C.laurentii及其它微生物的保藏及其相关产品的制备中发挥巨大作用。
附图说明
图1为鉴定不同保护剂对酵母拮抗菌C.laurentii真空冷冻干燥效果的影响的实验结果
图2为鉴定不同保护剂对酵母拮抗菌C.laurentii真空冷冻干燥制品货架期(0℃,3月)影响的的实验结果
图3为鉴定不同保护剂对酵母拮抗菌C.laurentii真空冷冻干燥制品0℃贮藏3月后细胞膜完整性与活性氧产生影响的实验结果
具体实施方式
下述实施例中如无特别说明均为常规方法。
实施例1、
一、酵母拮抗菌C.laurentii菌种的保存、活化及其发酵培养
1、菌种的分离及保存
从苹果果实表面分离获得酵母拮抗菌C.laurentii菌种,置于甘油中-20℃保存(刘海波,田世平,秦国政,徐勇.罗伦隐球酵母对葡萄采后病害的拮抗效果.中国农业科学,2002,35:831-835)。
2、菌种的活化
从-20℃中保存的甘油管中吸取少量菌液,在NYDA培养基(葡萄糖10,大豆蛋白胨5,牛肉膏1,酵母提取物7.5,琼脂18,单位:gL-1)铺板并在28℃下培养,72h后取少量生长良好的酵母拮抗菌接种在NYDB培养基(葡萄糖10,大豆蛋白胨5,牛肉膏1,酵母提取物7.5,单位:gL-1)中进一步活化,铺板,并在NYDA培养基上分离单菌落。
3、菌种的培养
挑取单菌落接入C.laurentii的专用培养基(柠檬酸40,大豆蛋白胨15,硫酸镁1.23,氯化钙0.56,单位:gL-1)中(1000mL三角瓶中含200mL培养液),振荡培养(25℃,200rpm)12-18h。
4、发酵培养
以2%接种浓度将步骤3培养的菌种接种到120L发酵罐(含80L培养液)中,在相同条件下进行扩大培养。
二、影响酵母拮抗菌C.laurentii真空冷冻干燥效果的因素分析实验
采用四因素,三水平的正交实验L9(43),确定不同培养时间、悬浮液浓度、保护剂种类以及孵育时间对酵母拮抗菌C.laurentii真空冷冻干燥效果的影响,找到酵母拮抗菌真空冷冻干燥效果的最主要因素,以便进一步确定对其进行真空冷冻干燥的方式。正交实验L9(43)所选用的不同因素与水平的设计如表1所示,以酵母拮抗菌Rglutinis为对照:
表1 影响酵母拮抗菌C.laurentii与R.glutinis真空冷冻干燥效果的正交实验L9(34)
的因素与水平
因素和水平 | 培养时间(h) | 酵母菌悬液的浓度(个细胞/mL) | 孵育时间(h) | 保护剂(5%) |
123 | 244872 | 1×1085×1085×109 | 123 | 海藻糖葡萄糖水 |
具体实验方法为:用步骤一的方法对酵母拮抗菌C.laurentii进行培养,每种菌设三个不同的发酵培养时间(24、48和72h),培养结束后,离心收集菌体,将菌体用无菌水冲洗3次,再按表1所示将经不同时间培养的菌体用不同保护剂配成不同
浓度的菌悬液,孵育不同时间后,置于-18℃冰箱中冷冻,24h后将冷冻样品放入冷冻干燥机(FD-1型,北京博医康公司)中干燥。干燥温度为-45℃,真空度0.54mPa,干燥时间为24h。干燥结束后立即加入无菌水复水,并进行1/10,1/100,1/1000,1/10000梯度稀释,铺板,28℃培养2d,统计菌落数。实验数据采用一般正交分析的方法进行(Montagomery,D C.Design and analysis of experiments,4th ed.NewYork:Wiley,1996,pp 627-631),实验结果如表2所示:
表2不同培养时间、菌悬液浓度,孵育时间和保护剂对酵母拮抗菌C.laurentii冷冻
干燥效果的正交实验结果及直观分析表
实验组号 | 培养时间(h) | 酵母菌悬液的浓度(个细胞/mL) | 孵育时间(h) | 保护剂(5%) | 存活率(%) |
123456789 | 242424484848727272 | 1×1085×1085×1091×1085×1085×1091×1085×1085×109 | 123231312 | 海藻糖葡萄糖水水海藻糖葡萄糖葡萄糖水海藻糖 | 0.2722.555.031.440.7022.487.111.551.35 |
K1 aK2K3k1 bk2k3Rc | 18.5716.416.679.288.213.345.95 | 5.8816.5319.242.948.279.626.68 | 16.2016.898.568.108.454.284.17 | 1.5534.765.350.7717.382.6716.61 |
aKj A=∑存活率Aj.实验数据为三个重复实验的平均值
bki A=Ki A/2.实验数据为三个重复实验的平均值
cRi A=最大(ki A)-最小(ki A).实验数据为三个重复实验的平均值
表2数据表明,各因素对C.laurentii冷冻干燥效果的影响大小依次为:保护剂种类>菌悬液浓度>酵母菌培养时间>保护剂孵育时间,在实验的四个因子中,保护剂种类对酵母拮抗菌C.laurentii真空冷冻干燥效果的影响最大。
对各因素不同水平之间的均值进行比较,结果表明酵母拮抗菌C.laurentii的真空冷冻干燥效果在酵母菌培养24-48h内差别不大,酵母菌悬浮液浓度也只有从1×108个细胞/mL提高到5×108个细胞/mL时影响较大,保护剂孵育时间在1-2h内对冷冻干燥的影响不大。因此初步确定C.laurentii的真空冷冻干燥条件为:酵母菌培养时间24-48h,悬浮液浓度为5×108-5×109个细胞/mL,孵育时间2h。由于保护剂种类对冷冻干燥效果的影响最大,同时考虑到不同因素之间也可能存在相互作用,在此基础上,在下述实施例中进一步鉴定培养时间和保护剂的种类及浓度对酵母拮抗菌C.laurentii冷冻干燥效果的影响。
实施例2、不同保护剂对酵母拮抗菌真空冷冻干燥制品生活力的影响
将用实施例1中所用方法分别培养24h和48h的酵母拮抗菌C.laurentii菌液离心,收集沉淀,无菌水冲洗3次。将沉淀分别用不同浓度的保护剂(葡萄糖、乳糖、蔗糖、海藻糖、柠檬酸钠、醋酸钠、脱脂奶粉和谷氨酸钠)悬浮,以无保护剂的水为阴性对照,以酵母菌经24h和48h培养后的培养液为对照,使最终菌悬液浓度为5×108个细胞/mL,室温孵育1-2h后,放入-18℃冰箱中冷冻24 h,然后将冷冻样品放入FD-1型冷冻干燥机中干燥,干燥温度-45℃,真空度0.54mPa,时间24h。
干燥结束后将样品取出,一部分立即用无菌水复水至冷冻干燥前的体积,采用稀释平板法计数,考察不同保护剂对酵母菌冷冻干燥后存活率的影响。另一部分冷冻干燥样品用离心管包装、密封,0℃下贮藏3个月后,再用无菌水复水,稀释平板法计数,以鉴定不同冷冻干燥条件对酵母拮抗菌冷冻干燥制品货架期的影响。
对不同保护剂筛选单因素实验的部分数据利用SPSS软件分析,通过ANOVA方式,采用邓肯式多重差异分析(Duncan’s multiple range tests)方法对处理之间的差异性在P<0.05水平上进行分析。实验结果如图1所示,表明冷冻干燥后,仅以无菌水悬浮的酵母菌C.laurentii存活率在3.9-5.1%之间,其中酵母菌培养24h后的存活率较高。而以培养液悬浮细胞时,无论培养24h还是48h,C.laurentii冷冻干燥后的活菌率均在0.5%以下。
酵母拮抗菌C.laurentii冷冻干燥后的存活率也因保护剂的种类和浓度不同而有明显差异。在四种糖中,只有葡萄糖和蔗糖对C.laurentii的保护作用比较明显,两者均为当保护剂浓度为10%、培养时间24h时的效果最好,即便如此,拮抗菌C.laurentii冻干后的存活率也只有46.8%和31.8%。而以乳糖和海藻糖处理的酵母菌存活率均低于15%。在三种钠盐中,柠檬酸钠的作用效果较差;5%醋酸钠和谷氨酸钠、培养48h时的效果较好,活菌率分别达到33.9%和28.2%。脱脂奶粉对酵母拮抗菌C.laurentii同样具有较好的保护作用,在5%脱脂奶粉的保护下,培养48h时酵母菌冻干后的存活率达到80%。
酵母菌C.laurentii的不同生长阶段受到保护剂的浓度效应影响很大。培养24h时,增加葡萄糖和蔗糖浓度均能显著提高C.laurentii的存活率,而海藻糖浓度从5%提高到10%时C.laurentii的活菌数反而显著降低。酵母菌培养48h后,除葡萄糖外,增加保护剂浓度均显著降低酵母拮抗菌C.laurentii的冷冻干燥效果。
同样,酵母拮抗菌C.laurentii的不同生长阶段对其冷冻干燥效果的影响也因保护剂的种类和浓度不同而有明显差异。以谷氨酸钠和脱脂奶粉为保护剂时,延长培养时间均能显著提高C.laurentii的存活率,而且不同浓度的保护剂均是如此。而以葡萄糖和海藻糖为保护剂时,酵母拮抗菌C.laurentii的存活率均随着培养时间延长而显著降低。
实施例3、不同保护剂对酵母拮抗菌C.laurentii的冷冻干燥制品耐贮性的影响
实施例2获得的酵母拮抗菌C.laurentii冷冻干制品在0℃下贮藏3个月后,各处理的拮抗菌C.laurentii冷冻干燥样品的存活率都大幅度下降(图2)。在酵母拮抗菌C.laurentii培养时间为24h时,3个月后所有处理的冻干制品存活率都降至3%以下。酵母菌培养48h时,除了乳糖、海藻糖和乙酸钠三种保护剂的不同浓度冻干制品活菌率均低于1%外,其它保护剂在浓度为5%时,存活率为8-19%之间,而保护剂浓度为10%时,存活率则降至0.8-6.7%之间。
实施例4、不同保护剂对酵母拮抗菌C.laurentii冷冻干制品细胞膜完整性与活性氧的影响
用活细胞荧光标记法测定实施例2获得的酵母拮抗菌C.laurentii冷冻干制品的细胞膜完整性与活性氧产生。结果如图3所示Bright Field(明场)为所有细胞总数,PI标记的细胞为红色(膜系统破坏),H2DCFDA标记的细胞呈绿色(产生ROS),双染料(Integrated,用PI,H2DCFDA共同标记)标记的细胞为黄色(正在死亡)。A:脱脂奶粉(5%),48h;B:脱脂奶粉(10%),48h;C:脱脂奶粉(5%),24h;D:无菌水。Bar,20μm。),表明在0℃下贮藏3个月后,对培养48 h的C.laurentii而言,以5%脱脂奶粉为保护剂的冻干样品中大多数酵母菌的细胞膜保持完整,提高脱脂奶粉浓度(10%)则能促进酵母菌细胞膜的破坏,但两种处理中均有部分细胞能够产生ROS(图3A,B)。缩短酵母菌培养时间(24h)同样能提高C.laurentii中PI(+)的细胞比例,冻干制品于0℃贮藏3个月后几乎所有细胞均被PI染色,而无法检测到产生ROS的细胞(图3C),这与不加保护剂的处理相差不大(图3D)。不同处理之间的这些差异与利用平板稀释法得到的结果基本一致。
Claims (9)
1、一种酵母拮抗菌C.laurentii的真空冷冻干燥制品,是收集经培养24-48h的酵母拮抗菌C.laurentii的菌体,将其用保护剂制成浓度为5×108-5×109个细胞/mL的菌悬液,孵育1-2h,再进行真空冷冻干燥后得到的产品;所述保护剂为质量百分含量为5-10%的葡萄糖、蔗糖、醋酸钠、脱脂奶粉或谷氨酸钠水溶液。
2、根据权利要求1所述的酵母拮抗菌C.laurentii的真空冷冻干燥制品,其特征在于:所述酵母拮抗菌C.laurentii的培养条件为;按2%的接种浓度将酵母拮抗菌C.laurentii接种于专用培养基中,在25℃,200rpm下振荡培养;所述专用培养基的配方为:柠檬酸40,大豆蛋白胨15,硫酸镁1.23,氯化钙0.56,单位:gL-1。
3、根据权利要求1或2所述的酵母拮抗菌C.laurentii的真空冷冻干燥制品,其特征在于:所述保护剂为质量百分含量为5%的脱脂奶粉水溶液。
4、根据权利要求1或2所述的酵母拮抗菌C.laurentii的真空冷冻干燥制品,其特征在于:所述菌悬液的浓度为5×108个细胞/mL,孵育时间为2h。
5、一种权利要求1所述的酵母拮抗菌C.laurentii的真空冷冻干燥制品的制备方法,是收集经培养24-48h的酵母拮抗菌C.laurentii的菌体,将其用保护剂制成浓度为5×108-5×109个细胞/mL的菌悬液,孵育1-2h,再进行真空冷冻干燥后得到酵母拮抗菌C.laurentii的真空冷冻干燥制品;所述保护剂为质量百分含量为5-10%的葡萄糖、蔗糖、醋酸钠、脱脂奶粉或谷氨酸钠水溶液。
6、根据权利要求4所述的制备方法,其特征在于:所述酵母拮抗菌C.laurentii的培养条件为;按2%的接种浓度将酵母拮抗菌C.laurentii接种于专用培养基中,在25℃,200rpm下振荡培养;所述专用培养基的配方为:柠檬酸40,大豆蛋白胨15,硫酸镁1.23,氯化钙0.56,单位:gL-1。
7、根据权利要求5或6所述的制备方法,其特征在于:所述保护剂为质量百分含量为5%的脱脂奶粉水溶液。
8、根据权利要求5或6所述的制备方法,其特征在于:所述菌悬液的浓度为5×108个细胞/mL,孵育时间为2h。
9、根据权利要求5或6所述的制备方法,其特征在于:所述真空冷冻干燥条件为:干燥温度-45℃,真空度0.54mPa,干燥时间24h。
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