CN1606570A

CN1606570A - 一种适合于高效表达的融合蛋白及其生产方法

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Publication number: CN1606570A
Application number: CN03801765.2A
Authority: CN
Inventors: 陆怡; 高鑫; 崔大敷; 张友尚; 黄阳滨; 孙九如; 李江; 费俭
Original assignee: SHANGHAI NEW MEDICINE RES AND; Shanghai Newsummit Biopharma Co Ltd; Shanghai Yizhong Biotechnology Co Ltd
Current assignee: SHANGHAI NEW MEDICINE RES AND; Shanghai Newsummit Biopharma Co Ltd; Shanghai Yizhong Biotechnology Co Ltd
Priority date: 2003-06-03
Filing date: 2003-06-03
Publication date: 2005-04-13
Anticipated expiration: 2023-06-03
Also published as: WO2004106525A1; US7795384B2; CN1298742C; AU2003244053A8; AU2003244053A1; US20080045695A1

Abstract

本发明提供了一种适合于高效表达的新型融合蛋白及其生产方法。该融合蛋白结构式是：A－C1－K－(B－C2－K)n－D，其中A为上游肽，C1和C2各自独立地是长度为20－40氨基酸且序列中不含Lys的短肽；K是Lys；B是接头；D是下游肽；n为3－30的整数。该融合蛋白能在宿主细胞内高效、稳定地表达。表达产品的纯化、酶切工艺简便，可以高效地生产短肽，具有很高的产业化价值。

Description

一种适合于高效表达的融合蛋白及其生产方法技术领域

本发明涉及了基因工程领域。更具体地，本发明涉及一种适合于高效表达的融合蛋白及其生产方法。该融合蛋白特别适合高效生产不含赖氨酸的短肽。背景技术

毕赤酵母和大肠杆菌这两种表达系统的适合表达的产物的分子量均在 5到 200KD左右。对于分子量在 1到 5KD的短多肽，或者不能表达，或者虽能表达，但通常情况下都存在表达量偏低的问题。

此外，低分子量的短肽表达产物还存在不易进行检测的问题。对于常规的

SDS-PAGE电泳来说，常用分子量标准的分子量就在 14到 65KD。短肽的分子量在检测范围之外 (SDS-PAGE电泳凝胶的浓度最高为 20%左右，此浓度下检测的分子量线性范围在 10到 40KD), 因此容易跑出凝胶而流失，无法得到准确的检验结果。

许多常见病可用短肽进行治疗。例如，糖尿病肾病 (DN)是糖尿病患者常见的慢性并发症之一，并已成为终末期肾病 (ESRD)的主要原因。约 35%的 1型糖尿病患者和 15%的 2型糖尿病患者最终将发展为糖尿病肾病。胰岛素原 C肽是胰岛 P细胞分泌的由 31个氨基酸组成的多肽。研究已表明，胰岛素原 C肽具有改善糖尿病远期并发症 (包括糖尿病肾病)的作用。此外，研究还表明， C肽单独应用或与胰岛素联合应用，可以减少肾小球细胞外基质积聚导致系膜扩张。 C肽的这一作用是其治疗糖尿病微血管病变包括糖尿病肾病的主要机制。因此在胰岛素中等控制糖代谢情况下，联合 c肽治疗可以更明显改善糖尿病肾病的发生和发展。鉴于糖尿病患者人数众多，因此 C肽等短肽药物的需求是很大。

目前国际市场上短肽类药物多为化学合成，价格昂贵。因此，迫切需要工艺简单、成本低廉的大规模生产短肽的基因工程方法。

多拷贝是一种提高短肽表达水平的有效手段。构建多拷贝基因可以表达较大分子量的融合蛋白，达到高效表达和易检测的目的。，

对于高效表达的多拷贝融合蛋白或其编码基因，必须处理好以下问题：（a> 目的基因 (或目的蛋白）的选择；（b).长度 (即拷贝数)；（c).连接接头，所述自勺连接包括融合蛋白与表达质粒的连接、目的蛋白单体之间的连接、信号肽选择等；（d). 表达后的酶切等。不恰当的选择都会影响表达水平，甚至使融合蛋白不能表达。

一种常见的方法是将多拷贝的短肽与分子量较大的肽 (约 10-20KD)融合，从而使表达的融合蛋白能稳定地在宿主细胞中存在。这种方法的缺点是，所需的短肽在融合蛋白中所占比例较小，因此效率不够高。此外，与 GST等形成的融合蛋白在纯化时多一步酶切和纯化，工艺较复杂。

另一种理想的方法是将在多拷贝的短肽的上游和下游添加长度较短的上游序列和下游序列，这样可以显著提高短肽在融合蛋白中所占比例。但是目前用这种方法的所构建的融合蛋白大多不稳定，难以获得大量的表达产物。

因此，本领域迫切需要开发一种高效、稳定表达多拷贝短肽的方法。发明内容

本发明的目的就是提供一种高效、稳定表达多拷贝短肽的方法。

本发明的另一目的是提供有关的融合蛋白、载体和宿主细胞。在本发明的第一方面，提供了一种融合蛋白，其结构式是：

A-Cl-K- (B-C2-K) n-D 其中 A为丽匪 HHRSK (SEQ ID NO： 4)，

C1和 C2各自独立地是长度为 20-40氨基酸且序列中不含 Lys的短肽；

K是 Lys;

B是 AGSK (SEQ ID NO: 5)；

D是长度为 3- 15个氨基酸且前 3个氨基酸为 AGS的下游肽； n为 3- 30的整数。在另一优选例中，所述的 C1和 C2是相同的，更佳地 C1和 C2都是胰岛素原 C肽。在另一优选例中，所述的 C1和 C2是不同的，且两者的长度相差 8-10个氨基酸。在另一优选例中，所述的 C1和 C2选自：胰岛素原 C肽、 α-人心房钠尿肽、乙肝前 S1抗原肽。

在另一优选例中，所述融合蛋白具有 SEQ ID N0: 2或 3所示的氨基酸序列。在本发明第二方面，提供了一种 DNA分子，它编码本发明上述的融合蛋白。在本发明第三方面，提供了一种表达载体，它含有本发明上述的 DNA分子。在本发明的第四方面，提供了一种宿主细胞，它含有本发明所述的表达载体，或者在其基因组中整合有本发明所述的 DNA分子。较佳地，所述的宿主细胞是毕赤酵母或大肠杆菌。

在本发明的第五方面，提供了一种融合蛋白的生产方法，包括步骤- (_a)培养本发明所述的宿主细胞，从而表达所述的融合蛋白；

(b)分离融合蛋白。

在本发明的第六方面，提供了一种生产短肽的方法，包括步骤-

(c)用胰蛋白酶和羧肽酶 B酶切本发明所述的融合蛋白，产生短肽 C1和 C2;

(d)分离短肽 C1和 C2。

较佳地，在所述的方法，所述的 C1和 C2是相同的，都是胰岛素原 C肽。附图说明

图 1.毕赤酵母表达人胰岛素原 c肽融合蛋白质粒构建图。

图 ₂.毕赤酵母表达人胰岛素原 C肽融合蛋白 SDS-PAG.E电泳图。泳道 a: 分子量标准（从上到下分子量为 96KD、 66KD、 43KD、 31KD、 20. 1KD、 14. 4KD)； b : 空白对照； c : 培液上清（C肽融合蛋白）。

图 3.大肠杆菌表达人胰岛素原 C肽融合蛋白 SDS-PAGE电泳图（摇瓶鉴定）。泳道 a、 b、 c、 d分别表示诱导时间为 0小时、 1小时、 2 小时和 3小时（其中目的蛋白含量分别是： 0%， 11. 47%, 11. 88%, 12. 36%)； e: 分子量标准（从上到下分子量为 96KD、 66KD、 43KD、 31KD、 20. 1KD、 14. 4KD)；

图 4. 毕赤酵母发酵表达人胰岛素原 C肽融合蛋白 SDS-PAGE电泳图。泳道 a: 分子量标准（从上到下分子量为 96KD、 66KD、 43KD、 31KD、 20.亂 14. 4KD)； b.诱导前； c-g: 诱导 8、 16、 24、 32、 48hr。

图 5.大肠杆菌发酵表达人胰岛素原 C肽融合蛋白 SDS-PAGE电泳图。泳道 a、 b、 c、 d分别表示诱导时间为 0小时、 1小时、 2 小时和 3小时（其中目的蛋白含量分别是： 0%， 24. 87%, 27. 89%, 30. 33%)； e : 分子量标准（从上到下分子量为 96KD、 66KD、 43KD、 31KD、 20. 1KD、 14. KD) ₀

图 6显示了酶切后 C肽的 HPLC分析结果。

图 7显示了纯化后 C肽的 HPLC分析结果。具体实施方式

本发明人经过广泛而深入的研究发现，在多拷贝短肽上游添加上游肽 MHHHHHHRSK (SEQ ID 1^0 : 4)所形成的 - 1-1^(8-€2-1¾11-0的结构结合了多种优势，可以使融合蛋白在毕赤酵母或大肠杆菌中高效表达。在此基础上完成了本发明。融合蛋白的结构

本发明融合蛋白为非天然的形式，整个融合蛋白中各元件线性连接且结构上一般不存在二硫键，因此融合蛋白呈线形结构，没有空间折叠，易被各种蛋白酶酶切。

(i)上游肽

在本发明通式为 A-Cl-K-(B-C2-K)n-D的融合蛋白中，对稳定高效表达起关键作用的元件是上游肽 A，即 MHHHHHHRSK (SEQ ID NO : 4)。它使得含多拷贝元件 Cl-K-(B-C2-K)n的融合蛋白不仅能够表达，而且能够稳定存在于宿主细胞中。此外，由于上游元件的很短，因此融合蛋白中目的蛋白的比例很高。 (ii)短肽

在本发明融合蛋白中， C1和 C2各自独立地是长度为 10-40氨基酸的短肽。由于在将融合蛋白切割为短肽时，使用针对碱性氨基酸如赖氨酸 (Lys)的酶 (如胰蛋白酶、羧肽酶 B等），因此 C1和 C2的序列中不可含有碱性氨基酸如 Lys和 Arg。合适的例子包括胰岛素原 C肽 (31aa)、 α-人心房钠尿肽 (28aa)、乙肝前 SI抗原肽 (28aa)等。

C1和 C2可相同，也可不同。当两者相同时，融合蛋白被切割后就形成长度为 20 - 40氨基酸的所需的短肽，以及长度为 4- 15氨基酸的接头、上游肽和下游肽。由于长度不同，因此可以方便地纯化出短肽。一种优选情况是 C1和 C2都是胰岛素原 C 肽。

当 C1和 C2不同时，两者的长度宜相差 8- 10个氨基酸，以便在切割后将 C1和 C2 分离开。当然，如果 C1和 C2是可以联用的两种短肽，那么就不一定需要将两者分开，此时 C1和 C2可以没有长度差异。

在本发明融合蛋白中， n为 3-30的整数，较佳地， n为 5-25的整数，更佳地为 8-15的整数。此时，融合蛋白的分子量约为 6-60KD, 适合毕赤酵母和大肠杆菌表达系统。当然，对于其他适合表达系统， n的上限可以超过 20，例如 25， 30, 35， 40甚至更高。

(iii)接头 '

在本发明融合蛋白中， B为接头。接头的长度通常为 4-10个氨基酸。长度越短，则短肽在融合蛋白中的比例越高，而且短肽与接头的长度差越大从而更有利于分离，因此短接头更适用于本发明。此外，接头的羧基端应为 Lys或 Arg。一种优选的接头是 AGSK (SEQ ID N0: 5)。 (iv)下游肽

在本发明融合蛋白中， D是下游肽，其作用是与下游肽之前的 Lys—起提供羧肽酶的酶切位点。有时，下游肽的编码序列还可提供用于克隆操作的限制性位点。

下游肽是可有可无的。当8为4631( (3£0 ]1^0 : 5)时， D宜为长度 3- 15个氨基酸，且前 3个氨基酸为 AGS的下游肽。合适的例子包括（但并不限于）： AGSLNSLGRPRINS (SEQ ID NO： 6)、 AGSLNSP (SEQ ID NO： 7)。融合基因、载体和宿主细胞的构建

在本发明中，一旦确定了融合蛋白的序列，则融合基因、载体和宿主细胞的构建都可按常规方法进行。适用于本发明的载体和宿主细胞没有特别限制。

通常，先根据本发明融合蛋白的氨基酸序列设计出编码 DNA。较佳地，可根据选用的宿主细胞如毕赤酵母或大肠杆菌，进行密码子优化。

然后，选择表达载体，如毕赤酵母系统的 pPIC9或 pPIC9K，或大肠杆菌系统的 pET30(a)等，并且根据选定的载体，设计酶切位点。

接着，全合成所设计的融合蛋白编码序列，酶切后克隆入表达载体。

最后，用常规方法将表达载体转染毕赤酵母或转化大肠杆菌，经过抗性筛选等方法，就可获得高表达的宿主细胞。融合蛋白的生产和纯化

对于转化的表达融合蛋白的宿主细胞，可用常规方法和条件进行培养，从而表达出融合蛋白，并用常规方法 (如盐析方法、离心、分子筛层析、吸附层析、离子交换层析、 HPLC等)进行分离纯化。

以毕赤酵母培养与表达为例，合适的培养基包括 (但并不限于)以下培养基：

一种优选的摇瓶培养条件是：挑取 YPD平板上的单克隆，以 BMGY为摇瓶培养液，培养至 OD₆。。2-20，加入 1%浓度甲醇诱导表达，诱导 24小时后，培液上清的目的蛋白浓度可达到 50-200mg/L。

为了中试和大规模生产，需要对 P.Pastoris工程细胞的中试表达与表达条件进行优化。中试发酵指的是发酵罐发酵。优选的生产条件如下：

1.对于培养基的选择而言，发酵罐发酵时可选择低盐培养基，也可在低盐培养基基础上进行一定更改，但所含离子成份与低盐培养基相似。

2. 就温度的控制而言，发酵及诱导温度保持在 25-31 °C。

3. 就诱导期的 pH值而言，诱导期 pH控制在 4-8，较佳地为 pH5-7。

4. 就溶氧 (DO)的控制而言 DO控制在 20-90%。溶氧的维持可以用氧气 /空气混合气体的通入来解决。

5. 就补料的流加而言，补料种类宜包括甘油、甲醇、葡萄糖等糖原，可单独补料或混合补料。

6. 就 ΡΤΜ (混合微量元素)的量：起始培养阶段 PTMi的量为 l-4ml/L培液，在补料阶段加入量为 2-20ml/L补料。

7.就诱导期甲醇浓度而言，常规诱导浓度都可用于本发明，通常甲醇浓度控制在 0.5-2%。

8.就诱导时间而言，通常为 10-100小时，较佳地为 20-60小时。短肽单体的制备

本发明的融合蛋白是制备短肽单体的优良原料。经过酶切和分离，就可得到短肽单体。

通常，所用的酶是针对碱性氨基酸的酶，如胰蛋白酶、羧肽酶 B等。酶切的方法可用二步法，即先酶切形成带 K的短肽 (如 C1K或 C2K), 再将 K切除，得到短肽单体。也可使用单步法，即用双酶混合酶切，直接获得短肽单体。

酶切的条件没有特别限制，可采用常规条件。例如

融合蛋白浓度是 0.1-100m_g/ml，较佳地 l-50mg/ml;

酶与蛋白比例是 1 : 10-1： 5000, 较佳地， 1： 50-1： 500；

酶切温度是 15-35°C，较佳地 20-30°C ;

酶切 ρΗ是 5.0-10.0，较佳地 6.0-9.0;

缓冲体系是磷酸盐缓冲液、醋酸盐缓冲液、 Tris、或碳酸盐缓冲液，缓冲液浓度 10-200mM;

酶切时间是 1-50小时，较佳地 1-10小时。对于酶切混合物，可用常规技术 (如阳离子交换层析、阴离子交换层析、凝胶过滤层析、疏水层析、反相层析、亲和层析等)纯化短肽单体。优选方法是将酶切后的样品进行离子交换层析、疏水层析和反相层析。

对于制备的短肽单体，可用常规方法将其制成相应的制剂。例如当短肽是胰岛素原 C肽时，可在纯化后的原液加入适当辅料，如 1-10%甘露醇 (或蔗糖、乳糖等)稳定剂，同时还可添加表面活性剂、抗氧化剂等保护剂，及适当缓冲液，分装，制成 C肽水溶液剂，或者冷冻抽干，制成 C肽的注射用粉针剂。本发明的主要优点在于- i. 表达量高且稳定；

ii. 短肽 (如人胰岛素原 C肽）的产量高；

iii. 制备方法简单，易纯化所以成本低；

iv. 目的蛋白若用真核细胞表达系统-毕赤酵母进行表达，与哺乳动物有较强同源性，产生的毒副作用较少。下面结合具体实施例，进一步阐述本发明。应理解，这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法，通常按照常规条件，例如 Sambrook等人，分子克隆：实验室手册（New York : Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989)中所述的条件，或按照制造厂商所建议的条件。

实施例 1毕赤酵母表达人胰岛素原 C肽融合蛋白-工程细胞的构建方法在本实施例中，选择 C1 = C2 =胰岛素原 C肽， n= 8。 1 . 融合蛋白全长氨基酸序列为：

顧 HHHHHRSKEAEDLQVGQVELGGGPGAGSLQPLALEGSLQKAGSKEAEDLQVGQVELGGGPG AGSLQPLALEGSLQKAGSKEAEDLQVGQVEL6GGPGAGSLQPLALEGSLQKAGSKEAEDLQVGQVEL GGGPGAGSLQPLALEGSLQKAGSKEAEDLQVGQVELGGGPGAGSLQPLALEGSLQKAGSKEAEDLQV GQVELGGGPGAGSLQPLALEGSLQKAGSKEAEDLQV6QVEL6GGPGAGSLQPLALEGSLQKAGSKEA EDLQVGQVEL6GGPGAGSLQPLALEGSLQKAGSKEAEDLQVGQVELGGGPGAGSLQPLALEGSLQKA GSLNSLGRPRINS (SEQ ID NO : 2)

2. 构建

根据 SEQ ID N0 : 2 , 并根据毕赤酵母密码子偏爱性，全合成该融合蛋白的基因序列 (两端加上 EcoRI位点），如 SEQ ID N0 : 1所示，其中， 0RF为第 25- 1056 位，并且在该序列下游立刻是终止密码子。

将该基因克隆到 PUC19中测序验证后，用 EcoRI酶切，克隆入待同样用 EcoRI 酶切的质粒 pPIC9(Invitrogen公司）。然后，转化、整合入毕赤酵母 (P.Pastoris)GS1 15(Invitrogen公司）的染色体，通过点杂交筛选出多拷贝整合的转化细胞，进而筛选出工程细胞 (图 1)。工程细胞可以是快速利用甲醇型 0Vhit⁺;)或慢速利用甲醇型 (Muf；)。

3. 表达

经过筛选，最后得到高效表达株 (经检验，其基因拷贝整合数 20个）。

BMGY培养液摇瓶试验表明，诱导 24小时后，培养上清目的蛋白占总蛋白 50% 以上，表达水平 lOOug/ml以上 (图 2)。根据其消耗甲醇的速度，判断此工程细胞株为 Mut+。实施例 2毕赤酵母表达人胰岛素原 C肽融合蛋白-工程细胞的构建方法在本实施例中，选择 C1 = C2 =胰岛素原 C肽， n= l l。

该与实施例 1相同的方法构建第二种融合蛋白，不同点仅在于下游肽 D不同。 .

MHHHHHHRSKEAEDLQVGQVELGGGPGAGSLQPLALEGSLQKAGSKEAEDLQVGQVELGGGPG AGSLQPLALEGSLQKAGSKEAEDLQVGQVELGGGPGAGSLQPLALEGSLQKAGSKEAEDLQVGQVEL GGGPGAGSLQPLALEGSLQKAGSKEAEDLQVGQVELGGGPGAGSLQPLALEGSLQKAGSKEAEDLQV GQVELGGGPGAGSLQPLALEGSLQKAGSKEAEDLQVGQVELGGGPGAGSLQPLALEGSLQKAGSKEA EDLQVGQVELGGGPGAGSLQPLALEGSLQKAGSKEAEDLQVGQVELGGGPGAGSLQPLALEGSLQKA GSKEAEDLQVGQVELGGGPGAGSLQPLALEGSLQKAGSKEAEDLQVGQVELGGGPGAGSLQPLALEG SLQKAGSKEAEDLQVGQVELGGGPGAGSLQPLALEGSLQKAGSLNSP (SEQ ID NO : 3) 经过筛选，也得到高效表达株 (经检验，其基因拷贝整合数 20个)。 BMGY 培养液摇瓶试验表明，诱导 24小时后，培养上清目的蛋白占总蛋白 50%以上，表达水平 100ug/ml以上。根据其消耗甲醇的速度，判断此工程细胞株为 Mut+。实施例 3毕赤酵母表达人胰岛素原 C肽融合蛋白-工程细胞的构建方法在本实施例中，比较了毕赤酵母表达人胰岛素原 C肽融合蛋白的几种方案。方案 1是实施例 1。

方案 2中融合蛋白的结构是：（His) ₆-Lys- C肽- Lys- C肽- Lys。

方案 3中融合蛋白的结构与实施例 1基本相同，不同点仅在于 n=4。

结果表明，方案 2表达目的产物得到的量很低，难以检测出来。这表明，

6His的上游肽以及连接肽的设计形成一个有利于高表达和分泌的构象。方案 3 - 得到了所需的表达蛋白。 · 实施例 4.大肠杆菌表达人胰岛素原 C肽融合蛋白-工程细胞的构建方法选择合适的表达载体和宿主菌系统：表达载体质粒 pET-30a(+)来自

Novagen公司，受体菌为大肠杆菌 BL21 (DE3)。

实施例 1中的融合蛋白基因序列经查证没有大肠杆菌特别稀有的密码子，将该基因克隆到 PUC19中测序验证后，克隆入表达载体 pET-30a(+)中。测序确认没有表达框改变后，转化入大肠杆菌 BL21 (DE3)，获得工程菌。

接种确证的工程菌株于 10mL LB (卡那霉素浓度为 lOO g/mL)培养液中，在

37Ό , 250rpm条件下培养至 0D麵 =0. 5- 1. 0，此时细胞处于对数生长期；无菌条件下加入 IPTG至终浓度为 lmM，继续在 37°C， 250rpm条件下诱导表达， 3小时后取样， SDS - PAGE检测，在 41KD处有目的蛋白表达（图 3) 。实施例 5.毕赤酵母表达人胰岛素原 C肽融合蛋白的中试发酵

实施例 1所得的毕赤酵母工程细胞用以下方法发酵：

NBS BioFlo 3000发酵罐（5L) :

1. 种子液： BMGY培养基

2. 发酵培养基：低盐发酵培养基

3. 发酵培养阶段：

温度： 30 °C

H: 5. 0

DO : ^30%

甲醇诱导前湿细胞重： 88g/L

4. 发酵诱导阶段- 温度： 30 °C

pH: 6. 5

DO : ^20%

甲醇补料中？！^量 1 Oml/L

甲醇诱导结束湿细胞重： 257g/L

在培养阶段后期，甘油被耗尽后流加甲醇进行诱导，整个诱导过程甲醇浓度控制在 0. 5- 1%，诱导时间 20- 50 小时。

诱导 48小时后，人胰岛素原 C肽融合蛋白表达量占发酵上清液总蛋白 47%，表达量达 lmg/ml (用改良 Lowry法测）（图 4) 。实施例 6大肠杆菌表达人胰岛素原 C肽融合蛋白的中试发酵

实施例 4所得的大肠杆菌工程细胞用以下方法发酵：

NBS BioFlo 3000发酵罐（5L) :

1.种子液： LB培养基

2. 发酵培养基： M9培养基（3. 5L)

3. 发酵培养阶段- 温度： 37 V

pH: 7. 0

DO : 80%

诱导前 0D_6Q。： 1. 52

4. 发酵诱导阶段：

温度： 35 V

pH: 6. 5

DO : 50%

葡萄糖补料中微量元素母液（PTM)的量： 10ml/L

IPTG诱导结束 0D謹： 5. 72

在培养阶段后期， 0D漏上升到 1. 5左右，一次性加入 IPTG进行诱导。 IPTG 终浓度为 lmM。整个诱导过程通过流加葡萄糖补料来控制在 pH在 6. 9到 7. 2范围内，诱导时间 3 小时。

· 诱导 3小时后，离心，得到 25. 7克菌体。人胰岛素原 C肽融合蛋白表达量占发酵菌体总蛋白 35%，蛋白含量为 1. 02mg/ml (用改良 Lowry法测）。目的蛋白总量为 1. 25克，表达量达 0. 357g/L发酵液（图 5)。实施例 7.毕赤酵母表达人胰岛素原 C肽融合蛋白一酶切

实施例 5所得的毕赤酵母工程细胞表达产物上清经初步纯化，进行单步法酶切，酶切条件如下：

所用的酶： TPCK-胰蛋白酶 (Sigma)、羧肽酶 B(Sigma公司）

缓冲体系 10mM PB(pH7.4)

C肽融合蛋白与 TPCK-胰蛋白酶比例 200: 1(W/W)

C肽融合蛋白与羧肽酶 B 比例 200: 1(W/W)

酶切温度： 25 Ό

酶切时间： 6小时。酶切得到的 C肽经 HPLC分析， HPLC鉴定条件如下：

C18分析柱 Φ 4. 6*250mm

λ ： 230nm

缓冲液 A: 0. 1%TFA 缓冲液 B: 0. 08%TFA 70%乙腈

0-5min 0% 缓冲液 B

5-10min 30% 缓冲液 B

10-30min 60% 缓冲液 B

30-3 lmin 100% 缓冲液 B 结果如图 6所示，酶切的主要产物的保留时间为 27± lmin，与 C肽单体的保留时间相符，这表明酶切后产生了 C肽单体。实施例 8.酶切产物纯化

实施例 7所得的酶切产物经过纯化，具体条件如下：

层析介质： Q-Sepharose FF (Pharmacia)

缓冲液 A: 10mM PB 缓冲液 B: lOmMPB + 1M NaCl

梯度： 0-100% 缓冲液 B 20柱体积

流速： 60cm/h

将实施例 7所得的酶切产物超滤或是透析以脱盐和去少部分杂质。然后，将此样品上样，上样完毕后用缓冲液 A冲洗至 UV基线平稳，而后使用线形梯度，用 20CV使 8%从0- 100。在 20%B浓度左右出现样品，分管收集。样品回收率达到 60%以上，纯度达到 95%以上。

由于此样品盐浓度较高，将收集的样品使用 G- 50 Sephadex脱盐，使用缓冲液 A为缓冲液，样品回收率在 90%以上， HPLC纯度在 98%以上（图 7)。

样品经鉴定，其序列与天然人胰岛素原 C肽完全相同，证实获得的是人胰岛素原 C肽。实施例 9 纯化产物的制剂

对实施例 8中获得的纯化后原液加入 10%甘露醇，分装，冷冻抽干，制成 C 肽的注射用粉针剂。经稳定性试验表明，该粉针剂稳定。经活性测定表明，本发明方法制得的人胰岛素原 C肽的活性与标准品相同。工业实用性

综上所述，通过毕赤酵母等表达系统来表达本发明的融合蛋白，其优点在于：高表达、高稳定，而且制得的融合蛋白经简单酶切和分离后即可 C肽等短肽单体。本发明方法使工艺复杂程度大大降低，产率得到较大提高，特别适合大规模生产 C肽等短肽。在本发明提及的所有文献都在本申请中引用作为参考，就如同每一篇文献被单独引用作为参考那样。此外应理解，在阅读了本发明的上述讲授内容之后，本领域技术人员可以对本发明作各种改动或修改，这些等价形式同样落于本申请所附权利要求书所限定的范围。

Claims

权利要求

1. 一种融合蛋白，其特征在于，其结构式是：

A-Cl-K- (B-C2-K) n-D

其中 A为匪 HHHHHRSK (SEQ ID NO : 4)，

CI和 C2各自独立地是长度为 20- 40氨基酸且序列中不含 Lys的短肽；

K是 Lys;

B是 AGSK (SEQ ID NO : 5)；

D是长度为 3-15个氨基酸且前 3个氨基酸为 AGS的下游肽；

n为 3- 30的整数。
2. 如权利要求 1所述的蛋白，其特征在于，所述的 C1和 C2是相同的。
3. 如权利要求 1所述的蛋白，其特征在于，所述的 C1和 C2是不同的，且两者的长度相差 8- 10个氨基酸。
4.如权利要求 1所述的蛋白，其特征在于，所述的 C1和 C2选自：胰岛素原 C肽、 α-人心房钠尿肽、乙肝前 S1抗原肽。
5. 如权利要求 1所述的蛋白，其特征在于，具有 SEQ ID N0 : 2或 3所示的氨基酸序列。
6. —种 DNA分子，其特征在于，它编码权利要求 1所述的融合蛋白。
7. 一种表达载体，其特征在于，它含有权利要求 6所述的 DNA分子。
8. —种宿主细胞，其特征在于，它含有权利要求 7所述的表达载体，或者在其基因组中整合有权利要求 6所述的 DNA分子。
9. 如权利要求 8所述的宿主细胞，其特征在于，所述的宿主细胞是毕赤酵母或大肠杆菌。
10. 一种融合蛋白的生产方法，其特征在于，包括步骤：

(a)培养权利要求 6所述的宿主细胞，从而表达所述的融合蛋白；

(b)分离融合蛋白。
11. 一种生产短肽的方法，其特征在于，包括步骤：

(c)用胰蛋白酶和羧肽酶 B酶切权利要求 1所述的融合蛋白，产生短肽 C1和

C2 ;

(d)分离短肽 C1和 C2。