CN1548958A - 丙型肝炎病毒抗体桥式双抗原夹心elisa检测法 - Google Patents

丙型肝炎病毒抗体桥式双抗原夹心elisa检测法 Download PDF

Info

Publication number
CN1548958A
CN1548958A CNA031261469A CN03126146A CN1548958A CN 1548958 A CN1548958 A CN 1548958A CN A031261469 A CNA031261469 A CN A031261469A CN 03126146 A CN03126146 A CN 03126146A CN 1548958 A CN1548958 A CN 1548958A
Authority
CN
China
Prior art keywords
antigen
protein
hcvag
antibody
enzyme
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CNA031261469A
Other languages
English (en)
Other versions
CN100401067C (zh
Inventor
李晨阳
李玉林
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Henan Bioengineering Technology Research Center
Zhengzhou Kelong Bioengineering Co., Ltd.
Original Assignee
Zhengzhou Kelong Bioengineering Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Zhengzhou Kelong Bioengineering Co Ltd filed Critical Zhengzhou Kelong Bioengineering Co Ltd
Priority to CNB031261469A priority Critical patent/CN100401067C/zh
Publication of CN1548958A publication Critical patent/CN1548958A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN100401067C publication Critical patent/CN100401067C/zh
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明涉及一种丙型肝炎病毒(Hepatitis C virus简称HCV)抗体检测方法。属疾病诊断领域中血清(浆)中抗体的ELISA检测方法。通过基因工程方法或化学偶联方法将HCV抗原(简称HCVAg)与一段肽或蛋白质(桥蛋白)进行连接，桥蛋白可与和其有亲和力的酶标记物进行反应，HCVAg抗原通过桥蛋白与酶标记物可形成HCV抗原－桥蛋白－酶标记物的复合物，实现HCVAg的间接酶标记，与包被抗原一起可以对血清(浆)中的HCVAb进行双抗原夹心法ELISA检测。

Description

丙型肝炎病毒抗体桥式双抗原夹心ELISA检测法
本发明涉及双抗原夹心法检测血清(浆)中抗体时标记抗原的制备方法及标记方法。属疾病诊断领域中血清(浆)中抗体的ELISA检测方法。
已知酶联免疫固相分析(ELISA)双抗原夹心法检测抗体时，标记抗原需进行酶标记，普遍使用的方法是：将标记抗原的游离氨基与酶被活化后的醛基进行偶联反应，或通过双功能基团如戊二醛将标记抗原和酶的游离氨基进行偶联反应形成共价结合的酶标抗原，酶标抗原与包被抗原组成双抗原夹心法试剂，可以对血清(浆)中的IgG、IgM同时进行检测，其优点是：一、灵敏度高，血清(浆)不需稀释或稀释倍数少(通常只需1∶1或1∶2稀释)；二、检出率高，IgM通常在感染早期出现，可实现早期诊断，缩短检测的窗口期；三、特异性强，与间接ELISA相比，包被与标记抗原全为特异性的抗原，可减少非特异性反应。目前用该方法制备的商品化试剂盒有乙肝表面抗体双抗原夹心法ELISA试剂、人类免疫缺陷病毒抗体(I+II型)双抗原夹心法ELISA试剂等。
但是，到目前为止，HCVAb的酶免检测仍然使用间接ELISA法，酶标记物为酶标抗人IgG或酶标抗人IgM，其主要原因是HCV核心区抗原富含赖氨酸和精氨酸(提供游离氨基的氨基酸)，如果按HCVAg∶酶＝1∶1的比率进行标记，HCVAg与酶的偶联位置绝大多数发生在HCVAg的核心区，而不是象其它抗原那样随机分布，酶与HCVAg核心区的游离氨基结合后形成空间位阻，妨碍HCVAg核心区抗原决定簇与其相对应的这一部分抗体结合，而HCVAg核心区又是HCVAg的优势抗原决定簇，这样，直接标记HCVAg组成的双抗原夹心法HCVAb ELISA检测试剂通常会漏检HCVAg核心区抗体阳性标本，而HCVAb间接ELISA试剂本身又有不可克服的缺点：首先，灵敏度低，因为酶标记物为酶标抗人IgG或酶标抗人IgM，为了避免人IgG或IgM非特异性吸附，血清(浆)标本必须1∶10或1∶20以上进行稀释，反应灵敏度与不需稀释血清(浆)标本的双抗原夹心法比自然低10～20倍，容易造成漏检；第二，特异性差，即使血清(浆)经过1∶10～1∶20稀释，个别标本中的IgG或IgM仍对包被反应板有非特异性吸附或对包被反应板中的杂蛋白有特异性吸附。而抗人IgG或抗人IgM酶标对特异性吸附的HCV抗体和其它方式吸附的人IgG或IgM无分辩能力，必然造成一部分假阳性；第三，一般情况下不能或不方便使用一套试剂同时检测IgG和IgM，目前商品化HCVAb间接ELISA法检测试剂盒绝大多数只检测IgG，这样有可能造成一部分单独IgM阳性标本的漏检。
本发明的目的是：研制出HCVAb双抗原夹心法ELISA试剂替代间接ELISA试剂，克服间接ELISA法灵敏度低、特异性差及IgG、IgM不能同时检出的弊端。
本发明是这样实现的：通过基因工程方法或化学偶联法获得一种融合蛋白，该融合蛋白由两部分组成：一部分是HCVAg，可与血清(浆)中HCVAb特异性反应，一部分是一段肽或蛋白质，称之为桥蛋白，桥蛋白种类繁多，可以是某种抗原(或抗原决定簇)，也可以是某种配基。对桥蛋白的抗体或配体进行辣根过氧化物酶(HRP)或碱性磷酸酶等标记可形成酶标记物。由于抗原与抗体之间，配体与配基之间有亲和力，桥蛋白与HCVAg为融合蛋白，通过一步或多步反应，可形成HCVAg-桥蛋白-酶标记物的复合物，实现HCVAg的间接标记，克服直接标记造成的HCVAg核心区抗体漏检的缺点，上述复合物与HCV包被抗原一起可组成HCVAb双抗原夹心法ELISA检测试剂。
本发明的积极效果：
一、灵敏度高：血清(浆)标本不稀释或仅需1∶1、1∶2稀释，比间接ELISA灵敏度提高十倍左右。
二、缩短窗口期：IgM、IgG可同时检测，IgM一般出现在感染的早期或病毒繁殖活动期，一般比IgG早出现7至10天，双抗原夹心法可提高7至10天检出感染者。
三、特异性强：由于包被抗原和桥式标记抗原均是特异性的，间接ELISA一些不可避免的非特异性标本绝大多数可被排除，提高临床诊断的准确度。
四、社会效益好：我国目前HCV感染率在1％～2％，即有上千万HCV携带者，HCVAb是临床用血或血液制品必检项目之一。由于间接ELISA固有弊端的存在，即使经过了HCVAb间接ELISA的检测，临床输血(或血液制品)造成的输血后丙型肝炎仍时有发生。双抗原夹心法可极大地减少这部分丙型肝炎。
以上详述了本发明的原理、目的、实现路径和积极意义，由于抗原(或抗原决定簇)与对应抗体，配基与对应配体种类极其繁多，甚至在理论上无穷无尽，以以下实例详述本发明：
一、包被抗原的获得：
含有HCVAg的基因克隆到pET-22b(+)(美国Novagen公司产品)表达质粒中，命名为pET-22b/HCV，将pET-22b/HCV转化大肠杆菌BL21(DE3)，涂布含氨苄青霉素的LB平板，37℃生长，待菌斑长出后，挑取单个克隆接种于含氨苄青霉素的LB培养基试管中，37℃，200rpm生长过夜。第二天，1∶100接种于新鲜含氨苄青霉素的LB培养基中，37℃生长到OD600＝0.6～0.9之间。按终浓度0.5mmol/L加入1mol/L IPTG，37℃200rpm，诱导4小时，5000rpm，4℃离心10分钟，菌体反复冻融三次，超声波破碎。10000rpm，4℃离心10分钟，弃上清，沉淀为包涵体，包涵体用含1％的Triton-X100洗涤一次，离心同上，用适量pH8.0 0.02mol/L PB 8mol/L尿素缓冲液溶解包涵体，离心同上，用pH8.00.02mol/L PB 8mol/L尿素缓冲液平衡CM纤维素离子交换柱，已溶解的包涵体过柱，HCVAg被吸附，用含0.1mol/L NaCl pH8.0 0.02mol/L PB 8mol/L尿素的缓冲液洗涤除去杂蛋白，用含0.5mol/L NaCl pH8.0 0.02mol/L PB8mol/L尿素的缓冲液洗脱，Ni-金属亲和柱用0.5mol/L NaCl pH8.0 0.02mol/LPB 8mol/L尿素的缓冲液平衡，合并CM柱洗脱的HCVAg，上Ni-亲和柱，用含25mmol/L咪唑的0.5mol/L NaCl pH8.0 0.02mol/L PB 8mol/L尿素缓冲液洗涤去除杂蛋白；用含100mmol/L咪唑的0.5mol/L NaCl pH8.00.02mol/LPB 8mol/L尿素缓冲液洗脱获得纯HCVAg，用适量pH8.0 0.02mol/LPB 8mol/L尿素缓冲液稀释至0.5mg/ml，-20℃冻存。
二、桥蛋白——铁硫氧还蛋白(trx)的获得
pET-32a(美国Novagen公司产品)转化BL21(DE3)，涂布含氨苄青霉素的LB平板，37℃生长，待菌斑长出后，挑取单个克隆于含氨苄青霉素的LB培养基试管中，37℃，200rpm生长过夜。第二天，1∶100接种于新鲜含氨苄青霉素LB培养基中，37℃生长到OD600＝0.6～0.9之间。按终浓度0.5mmol/L加入1mol/LIPTG，37℃200rpm，诱导4小时，5000rpm，4℃离心10分钟，用pH8.00.02mol/L PB 0.5mol/L NaCl缓冲液将菌体洗涤一次，离心同上，菌体反复冻融三次，超声波破碎，离心后上清过Ni-金属亲和柱，用含50mmol/L咪唑的pH8.00.02mol/L PB 0.5mol/L NaCl缓冲液洗涤去除杂蛋白，用含100mmol/L咪唑的pH8.0 0.02mol/L PB 0.5mol/L NaCl缓冲液洗脱获得纯铁硫氧还蛋白trx，分装后-20℃冻存。
三、HCVAg-trx融合蛋白的获得
含有HCVAg的基因克隆到pET-32a(美国Novagen公司产品)中，转化BL21(DE3)，涂布含氨苄青霉素的LB平板，37℃生长，待菌斑长出后，挑取单个克隆于含氨苄青霉素的LB培养基试管中，37℃，200rpm生长过夜。第二天，1∶100接种于新鲜含氨苄青霉素LB培养基中，37℃生长到OD600＝0.6～0.9之间。按终浓度0.5mmol/L加入1mol/L IPTG，37℃200rpm，诱导4小时，5000rpm，4℃离心10分钟，用pH8.0 0.02mol/LpB 0.5mol/L NaCl缓冲液将菌体洗涤一次，离心同上，菌体反复冻融三次，超声波破碎，离心后上清过Ni-金属亲和柱，用含50mmol/L咪唑的pH8.0 0.02mol/LPB 0.Smol/L NaCl缓冲液洗涤去除杂蛋白，用含100mmol/L咪唑的pH8.0 0.02mol/LPB 0.5mol/L NaCl缓冲液洗脱获得纯HCVAg-trx融合蛋白，分装后-20℃冻存。
四、羊抗trx抗体的制备
纯化后的trx对生理水透析后，取0.2mg与等体积福氏完全佐剂混和，用乳化器完全乳化，背部皮下多点免疫5Kg左右山羊一只，三周后，改用福氏不完全佐剂，0.4mg trx背部皮下再次免疫，第二次免疫4周后，取2mg trx耳静脉加强免疫，10天后从耳静脉取血，免疫扩散法测抗体效价，若效价大于32，则从颈动脉采血，获得trx多抗血清，若效价小于32，两周后再用同剂量trx加强免疫，直至获得满意效价。
五、羊抗trx IgG的辣根过氧化物酶(HRP)的标记
羊抗trx多抗血清用50％、33％硫酸铵盐析二次，沉淀对0.01mol/LpH8.00.1mol/L NaCl透析，用DE52离子交柱纯化，获得纯抗trx IgG，将抗trx IgG浓缩至5-6mg/ml，对pH9.5 0.01mol/L碳酸缓冲液(CB)透析过夜，按IgG∶HRP＝1.5∶1质量比，取适量HRP，用高碘酸钠法将HRP活化后，对1mmol/LpH4.0醋酸缓冲液透析过夜。第二天，按IgG∶HRP＝1.5∶1质量比将IgG和活化后的HRP混和，用适量pH9.5 0.2mol/L CB调整混合物pH＝9.2，用pH＝9.5 0.01mol/LCB调整体积至IgG反应浓度等于2.0mg/ml，25℃暗处反应2小时，然后将反应混匀物降至4℃，按1mg HRP加入51ul的量加入0.1mol/L NaBH4，4℃反应2小时终止连接反应。装透析袋对pH7.0 0.02mol/L PB 0.2mol/L NaCl透析48小时，中间每6小时换液一次。透析完成后加入等体积甘油混匀，-20℃存放，即获得羊抗trx-IgG-HRP酶标记物。
六、桥式双抗原夹心法检测HCV Ab
0.5mg/ml的HCVAg 1∶1000用pH9.5 0.05mol/L CB稀释，100ul/孔加入酶标反应板，4℃包被过夜，第二天，洗涤液(pH7.0 0.01mol/L PB 0.1mol/L NaCl0.1％tween-20)洗板一次，按115ul/孔加入含5％小牛血清的pH7.0 0.01mol/LPB封板，4℃封闭过夜，然后吸净封板液，37℃干燥2小时，加干燥剂封装于铝箔袋中，包被完毕。检测时在包被反应孔中先加入50ul pH7.0 0.01mol/L PB0.1mol/L NaCl的PBS，然后加入50ul待检血清、阴性、阳性对照，37℃温育20分钟，用洗涤液洗板五次，拍干，用pH7.0 PBS 1∶500稀释0.5mg/mlHCVAg-trx，100ul/孔加入反应板，37℃温育20分钟，洗板同前，拍干后加入1∶3000用含20％小牛血清PBS稀释的羊抗-trx-IgG-HRP，37℃温育20分钟，洗板同前，加入显色剂A、B液各1滴，37℃显色10分钟，显色剂A含H2O2，显色剂B含TMB，显色完成后，每孔加入1滴2mol/L H2SO4终止反应，用酶标仪在450nm波长读取结果，OD450nm≥2.1×阴性对照OD平均值者为阳性，OD450nm＜2.1×阴性对照平均值为阴性。

Claims (1)

  1. 一种丙型肝炎病毒抗体酶联免疫检测方法，其特征是标记抗原为融合蛋白，融合蛋白由HCVAg和桥蛋白通过基因工程方法或化学偶联方法连接而成，桥蛋白是一段肽或蛋白质，与酶标记物具有亲和力，桥蛋白具有抗原(或抗原决定簇)或配基性质，酶标记物是通过酶标记桥蛋白的抗体或配体而获得的。HCVAg可以通过桥蛋白与酶标记物形成如下复合物：HCVAg—桥蛋白—酶标记物，从而实现HCVAg的间接酶标记，复合物与包被HCVAg一起，可实现对血清(浆)中的抗体进行双抗原夹心法ELISA检测。
CNB031261469A 2003-05-09 2003-05-09 丙型肝炎病毒抗体桥式双抗原夹心elisa检测法 Expired - Fee Related CN100401067C (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CNB031261469A CN100401067C (zh) 2003-05-09 2003-05-09 丙型肝炎病毒抗体桥式双抗原夹心elisa检测法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CNB031261469A CN100401067C (zh) 2003-05-09 2003-05-09 丙型肝炎病毒抗体桥式双抗原夹心elisa检测法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN1548958A true CN1548958A (zh) 2004-11-24
CN100401067C CN100401067C (zh) 2008-07-09

Family

ID=34321871

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CNB031261469A Expired - Fee Related CN100401067C (zh) 2003-05-09 2003-05-09 丙型肝炎病毒抗体桥式双抗原夹心elisa检测法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN100401067C (zh)

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2006081718A1 (fr) * 2005-02-02 2006-08-10 Peng Cui Kit et procede de detection d'anticorps anti-virus de l'hepatite c (vhc)
CN100573151C (zh) * 2006-01-28 2009-12-23 中国人民解放军第四军医大学 麦芽糖结合蛋白或谷胱甘肽s转移酶的定量检测方法
CN101196518B (zh) * 2006-12-07 2011-11-02 北京科美东雅生物技术有限公司 丙型肝炎病毒抗体化学发光法诊断试剂盒及其制备方法
CN102321179A (zh) * 2011-08-10 2012-01-18 杭州培乐生物技术有限公司 一种丙型肝炎病毒重组蛋白及基因序列
CN102955032A (zh) * 2012-10-16 2013-03-06 武汉康苑生物医药科技有限公司 酶联免疫分析法直接标记抗原检测丙型肝炎病毒抗原抗体及检测试剂盒
CN104697988A (zh) * 2015-02-10 2015-06-10 深圳市新产业生物医学工程股份有限公司 检测丙型肝炎病毒抗体的试剂盒及其检测方法和应用
CN106769928A (zh) * 2016-12-14 2017-05-31 中国医学科学院医学生物学研究所 轮状病毒抗原elisa定量检测方法

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR940000755B1 (ko) * 1990-02-16 1994-01-29 유나이티드 바이오메디칼 인코오포레이티드 Hcv에 대한 항체 검출, hcv 감염의 진단 및 백신으로서의 그 예방에 특히 적합한 합성 펩티드

Cited By (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2006081718A1 (fr) * 2005-02-02 2006-08-10 Peng Cui Kit et procede de detection d'anticorps anti-virus de l'hepatite c (vhc)
WO2006081701A1 (fr) * 2005-02-02 2006-08-10 Peng Cui Kit de detection de l'anticorps du vhc et procede de preparation de celui-ci
US7658930B2 (en) 2005-02-02 2010-02-09 Peng Cui Kit for detecting the antibody of HCV and its preparing method
CN101160413B (zh) * 2005-02-02 2010-12-29 深圳市菲鹏生物股份有限公司 一种丙型肝炎病毒抗体检测试剂盒及检测方法
CN100573151C (zh) * 2006-01-28 2009-12-23 中国人民解放军第四军医大学 麦芽糖结合蛋白或谷胱甘肽s转移酶的定量检测方法
CN101196518B (zh) * 2006-12-07 2011-11-02 北京科美东雅生物技术有限公司 丙型肝炎病毒抗体化学发光法诊断试剂盒及其制备方法
CN102321179A (zh) * 2011-08-10 2012-01-18 杭州培乐生物技术有限公司 一种丙型肝炎病毒重组蛋白及基因序列
CN102321179B (zh) * 2011-08-10 2013-03-13 杭州培乐生物技术有限公司 一种丙型肝炎病毒重组蛋白及基因序列
CN102955032A (zh) * 2012-10-16 2013-03-06 武汉康苑生物医药科技有限公司 酶联免疫分析法直接标记抗原检测丙型肝炎病毒抗原抗体及检测试剂盒
CN104697988A (zh) * 2015-02-10 2015-06-10 深圳市新产业生物医学工程股份有限公司 检测丙型肝炎病毒抗体的试剂盒及其检测方法和应用
CN106769928A (zh) * 2016-12-14 2017-05-31 中国医学科学院医学生物学研究所 轮状病毒抗原elisa定量检测方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN100401067C (zh) 2008-07-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN105319373B (zh) 基于磁性分离和量子点标记的人呼吸道合胞病毒快速检测方法和试剂盒
JPH0751598B2 (ja) Ｈｔｌｖ‐１感染検出用合成ペプチド抗原
CN101477126A (zh) 一种丙型肝炎病毒抗原抗体联合检测的方法
CN102305859B (zh) 检测猪繁殖与呼吸综合征病毒的活毒抗体试剂盒
CN110261616A (zh) 一种丙型肝炎病毒检测试剂盒
US20030129587A1 (en) Antigen/antibody specificity exchanger
EP1328811B1 (en) Hcv mosaic antigen composition
CN105319359B (zh) 人肺炎链球菌量子点免疫层析检测卡及其制备方法和应用
CN101403759A (zh) 蓝舌病病毒抗原的elisa检测方法及试剂盒
CN100401067C (zh) 丙型肝炎病毒抗体桥式双抗原夹心elisa检测法
CN1580772A (zh) Sars病毒抗体双抗原夹心elisa检测法
CA1341014C (en) Hcg peptides for use in antibody purification procedures
CN107955070A (zh) 一种改进的重金属铜人工抗原的合成方法及nota在制备重金属铜人工抗原试剂中的用途
CN102749446A (zh) 一种肺炎衣原体IgM抗体胶体金法检测试剂盒及其制备方法
CN116794306A (zh) 一种基于胶体硒法检测口腔粘膜渗出液中梅毒螺旋体、丙型肝炎病毒抗体的试剂盒
CN103558386B (zh) ELISA检测融合蛋白rMBP‑NAP的方法
CN101377494B (zh) 一种检测结核抗体的化学发光免疫分析试剂盒及其制备方法
CN105753982B (zh) 抗人肺炎链球菌fam1家族PspA蛋白抗体及应用该抗体的免疫层析试剂盒
ES2344926T3 (es) Antigeno sintetico para la deteccion de anticuerpos inmunoreactivos con el virus vih.
CN114316037A (zh) 一种O型口蹄疫病毒结构蛋白的抗体m19、制备方法及应用
CN101852802A (zh) 一种一步检测鸡新城疫和传染性支气管炎病毒的试纸条
CN101285838A (zh) 检测羊泰勒虫病的elisa诊断试剂盒及其制备方法
JPH04505623A (ja) イムノアッセイにおいて利用するためのシステインチオール保護ペプチド
CN104502588A (zh) 检测犬瘟热病毒IgG抗体的ELISA试剂盒及其制备方法
CN105277714B (zh) 基于磁性分离和量子点标记的人副流感病毒快速检测方法和试剂盒

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C41 Transfer of patent application or patent right or utility model
TA01 Transfer of patent application right

Effective date of registration: 20060127

Address after: 4-3-32, new apartment, No. 12, agricultural road, Jinshui Road, Jinshui District, Henan, Zhengzhou

Applicant after: Li Chenyang

Co-applicant after: Zhengzhou Kelong Bioengineering Co., Ltd.

Co-applicant after: Henan Bioengineering Technology Research Center

Address before: 4-3-32, new apartment, No. 12, agricultural road, Jinshui Road, Jinshui District, Henan, Zhengzhou

Applicant before: Li Chenyang

Co-applicant before: Zhengzhou Kelong Bioengineering Co., Ltd.

C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant
C17 Cessation of patent right
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee

Granted publication date: 20080709