CN1502630A - 一种o6-甲基鸟嘌呤-dna甲基转移酶的单克隆抗体,其制备方法及检测试剂盒 - Google Patents

一种o6-甲基鸟嘌呤-dna甲基转移酶的单克隆抗体,其制备方法及检测试剂盒 Download PDF

Info

Publication number
CN1502630A
CN1502630A CNA021513805A CN02151380A CN1502630A CN 1502630 A CN1502630 A CN 1502630A CN A021513805 A CNA021513805 A CN A021513805A CN 02151380 A CN02151380 A CN 02151380A CN 1502630 A CN1502630 A CN 1502630A
Authority
CN
China
Prior art keywords
monoclonal antibody
antibody
mgmt
cell
hybridoma
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CNA021513805A
Other languages
English (en)
Inventor
章扬培
任会明
由英
季守平
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Institute of Field Blood Transfusion Chinese Academy of Military Medical Sciences
Original Assignee
Institute of Field Blood Transfusion Chinese Academy of Military Medical Sciences
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Institute of Field Blood Transfusion Chinese Academy of Military Medical Sciences filed Critical Institute of Field Blood Transfusion Chinese Academy of Military Medical Sciences
Priority to CNA021513805A priority Critical patent/CN1502630A/zh
Publication of CN1502630A publication Critical patent/CN1502630A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

本发明涉及一种特异性结合O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶KRTTLDSPLGKLE(C)序列的单克隆抗体以及分泌该单克隆抗体之杂交瘤细胞系CGMCC 0827。本发明还涉及制备本发明所述单克隆抗体的方法,以及所述单克隆抗体用于制备鉴定样品中O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶的水平检测试剂盒的用途。本发明还涉及利用所述试剂盒检测待测样品中O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶水平的方法。

Description

一种O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶的 单克隆抗体,其制备方法及检测试剂盒
技术领域
本发明涉及一种由保藏号为CGMCC 0827的杂交瘤细胞分泌,且特异性结合O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶(MGMT)上KRTTLDSPLGKLE(C)序列的单克隆抗体。本发明还涉及分泌特异性结合O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶上的表位KRTTLDSPLGKLE(C)的单克隆抗体之杂交瘤细胞系CGMCC 0827。本发明还涉及一种制备本发明所述单克隆抗体的方法,以及所述单克隆抗体用于制备鉴定样品中O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶的水平检测试剂盒的用途。本发明进一步涉及一种利用所述试剂盒检测待测样品中O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶水平的方法。
发明背景
恶性肿瘤长期以来一直是威胁人类健康和生命的主要疾病之一。手术、化疗、放疗是目前治疗恶性肿瘤的三种主要手段,其中以化疗最为常用,在治疗恶性肿瘤过程中发挥重要的作用。
众所周知,化疗面临的最大问题是克服耐药性问题。具体的说,由于患者的具体情况不同,往往存在个体差异,即在化疗过程中不同患者对同一种化疗剂会呈现不同的反应,因而治疗效果差异很大。现阶段临床医生主要是凭经验根据肿瘤的类型和恶性程度等指标为患者选择化疗药物,制定化疗方案,在化疗之前往往无法预见选择的药物是否有效,因而有很大的盲目性。
如何根据病人的具体情况选择化疗药物、提高药物对肿瘤的杀伤作用,使医生在治疗之前就能预见到化疗效果,做到胸有成竹、对症下药,是临床化疗中最迫切希望解决的问题。揭示肿瘤耐药的分子机理是解决肿瘤预见性化疗难点的关键环节。
作为化疗过程中常用化疗药之烷化剂中的一种,亚硝脲类药物(常用的有嘧啶亚硝脲,双氯乙基亚硝脲,环氯乙基亚硝脲,链脲菌素等)因其具有高度脂溶性,容易通过血脑屏障等的优点,是治疗脑瘤的首选药物,并常用于其他各种肿瘤的化疗,如恶性肿瘤的脑脊髓转移,白血病,何杰森氏病,淋巴瘤,肺癌,乳腺癌,恶性黑色素瘤,胃癌,直肠癌,食管癌,及网状细胞肉瘤等。
亚硝脲类药物对肿瘤细胞的杀伤是通过在肿瘤细胞内释放出活泼的烷化基团,攻击靶分子,造成DNA损伤。其中最严重的损伤是DNA鸟嘌呤碱基第6位氧原子烷基化,产生O6-烷基鸟嘌呤-DNA,可进一步引起碱基错配、DNA链断裂和链间交联,最终导致肿瘤死亡。研究发现细胞中O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶能够修复亚硝脲药物造成的DNA烷基化损伤,从而对抗亚硝脲的杀伤作用,使肿瘤细胞对亚硝脲药物产生耐药性。
1987年,本发明人领导的课题组开始进行甲基转移酶与肿瘤预见性化疗关系的研究。通过一系列的细胞和动物实验,证实肿瘤细胞中MGMT水平决定其对亚硝脲药物的耐药性。研究发现,患者的MGMT蛋白水平与临床化疗效果密切相关,肿瘤细胞MGMT蛋白水平越低,使用亚硝脲治疗,病人肿瘤明显缩小、治愈率高,反之,MGMT蛋白水平越高,使用亚硝脲治疗效果不好。可见,检测MGMT蛋白水平对预见亚硝脲化疗效果,实现个体化治疗具有重要意义。
令人遗憾的是,国内外较多采用的检测肿瘤细胞MGMT活性之同位素示踪法具有明显的缺陷:需新鲜组织,无法分辩癌旁组织和肿瘤组织的MGMT活性;而且价格高,操作复杂,费时,原材料需进口,会造成同位素污染,难以在临床上推广应用。
使用单克隆抗体检测MGMT的研究一直没有能够用于临床。美国Brent研究组用SDS聚丙烯酰胺凝胶纯化技术获得变性的MGMT蛋白,在此基础上制备单克隆抗体,所产生的抗体只能识别用SDS变性的MGMT,因而不适合用于分析肿瘤细胞中的MGMT蛋白(Proceedings ofThe American Association for Cancer Research,1989;30:486;CancerRes.1990;50:58-61;Cancer Communications.1989;1:323-327)。大约在同时,美国Yarosh(Cancer Research.1988;29:1)等试图用部分纯化并在玻璃滤膜上变性的MGMT制备抗体。虽然制备的抗血清能在Western印迹实验中识别MGMT,但不能识别细胞中有活性的MGMT,也未实际应用。
1991年美国的Pegg等尝试用合成多肽生产MGMT多克隆抗体。所获6个抗血清能在Western印迹实验中与MGMT结合。但均不能与活性蛋白结合(Carcinogenesis.1991;12(9):1671-1677;Carcinogenesis,1991;12(9):1679-1683)。Bigner/Brent研究组用MGMT氨基酸序列中不同部位的合成肽片段生产MGMT多克隆抗体。他们用了三个亲水片段和一个活性中心Cys残基附近的片段。四种多抗都能够与失活的(甲基化的)MGMT结合,两个能够用于Western印迹试验,只有1个能够与活性蛋白结合。因不同动物对抗原的反应不一样,多克隆抗体很难用于商业化的肿瘤标本检测(Cancer Res.1991;51:3339-3344)。
1995年Yarosh等,采用温和的方法制备MGMT蛋白,用所得具有转移酶活性的MGMT制备单克隆抗体,结果表明所制备的MGMT单克隆抗体不仅能够与无活性的MGMT反应,而且能与细胞内有活性的MGMT反应。1992年新加坡的Li等用重组的人MGMT免疫动物生产单克隆抗体,可用于检测MGMT活性(Cancer Res.1992;33:547),所生产的单克隆抗体有很好的特异性,不与鼠的MGMT交叉反应。
目前,国内外尚无用MGMT主要抗原表位合成多肽,免疫小鼠生产MGMT单克隆抗体的报道,更无用此方法生产出可与有活性MGMT反应的单克隆抗体的报道。也未见利用所述单克隆抗体制备的临床使用的检测试剂盒。
本发明人通过分析确定及化学合成MGMT优势抗原表位,制备出抗人MGMT单克隆抗体。本发明人进一步利用所述单克隆抗体制备MGMT检测试剂盒。所得检测试剂盒具有操作简单、快速,特异性好,无污染等优点,可准确诊断肿瘤细胞MGMT蛋白表达水平,指导临床对MGMT活性不同的肿瘤,采取不同的化疗方案,提高疗效,减轻病人痛苦和经济负担。
发明内容
本发明的一个方面,公开了一种O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶的单克隆抗体或其具有特异性结合O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶的生物活性的片段,其特征在于所述单克隆抗体由保藏号为CGMCC0827的杂交瘤细胞分泌,其特异性结合O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶上KRTTLDSPLGKLE(C)序列。
本发明的又一方面涉及一种杂交瘤细胞系,其分泌特异性结合O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶上KRTTLDSPLGKLE(C)序列的单克隆抗体,所述杂交瘤细胞系具有保藏号CGMCC 0827。
本发明的再一方面,涉及一种制备本发明所述单克隆抗体的方法,其包括:
1)化学合成KRTTLDSPLGKLE(C)肽;
2)将1)中所得肽与钥孔血蓝蛋白结合制备半抗原;
3)由所得抗原免疫动物,通过杂交瘤技术,得到杂交瘤细胞
4)培养所述杂交瘤细胞,制备本发明所述单克隆抗体。
本发明还涉及本发明所述单克隆抗体用于制备鉴定样品中O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶的水平检测试剂盒的用途。
本发明还涉及一种鉴定样品中O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶的水平之免疫组织化学检测试剂盒,其中含有诊断有效量的本发明所述单克隆抗体,还含有用于免疫组织化学反应的缓冲液、二抗、底物、染液。
本发明进一步涉及一种检测待测样品中O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶水平的方法,包括:
1)在能够使所述待测样品中与本发明所述单克隆抗体发生相互作用的条件下,使待测样品与本发明所述单克隆抗体相接触足够发生相互作用的一段时间;
2)加入能够与本发明所述单克隆抗体发生相互作用的第二抗体,使二者在足够发生相互作用的条件下相互作用足够的时间,
3)加入针对第二抗体的检测试剂,以检测样品中MGMT的水平。
具体的,由公开的文献报道可知(Pegg AE,Wiest L,Mummert C,Stine L,Dolan ME.,Carcinogenesis.1991;12(9):1671-1677),MGMT之mRNA全长约950bp,编码207个氨基酸,MGMT蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO:1所示。
事实上,本领域技术人员知晓,本发明所述O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶也常常称为O6-烷基鸟嘌呤-DNA烷基转移酶。
根据抗原和抗体结合的原理,一个好的抗体应能够与天然抗原表面的表位特异的结合。Pegg等人(Carcinogenesis,vol:12(9),1679-1683,1991)研究表明,上述MGMT氨基酸序列中仅有氨基酸残基1-11的表位具有理想的抗原抗体结合性质。
依据多肽的亲水性和表面可能性的数值越高,说明其越可能位于MGMT蛋白的表面,而抗原指数则反映多肽作为抗原决定簇的可能性的理论,本发明人采用DNA star软件分析MGMT蛋白的空间结构,特别是分析其氨基酸序列的抗原指数、亲水性和表面的可能性三个指标。通过对上述三个指标的综合考虑,发现除所述MGMT蛋白质上KRTTLDSPLGKLE(8-20)和HEGHRLGKPGLGGS(171-184)、KGAGATSGSPPAGRN(193-207)三个肽段外,其余部分作为抗原决定簇的可能性很小。通过进一步对这三个肽段进行量化分析发现,它们的抗原相对指数为80%,80%和100%,相对亲水性为67%,100%和68%,表面可能性相对值为100%,40%和75%,若将三个指标相乘,综合比较这三肽段的作为抗原决定簇的综合指数分别为0.536,0.32和0.51。由此,本发明人出人意料的发现,所述MGMT蛋白上的表位中KRTTLDSPLGKLE(8-20)的表位具有最好的抗原抗体特异性结合特性。
因此,本发明人通过化学合成方法制备所述表位,并依照参照Harlow和Lane(1988)Antibodies:A laboratory Manual,CSH Press;Goding(1996)Monoclonal Antibodies:Principles and Practice,Academic Press以及特别是Kohler和Milstein(1975)Nature 256:495-497中所述的方法,采用所得半抗原偶联钥孔血蓝蛋白免疫Balb/c小鼠,利用所述小鼠脾细胞与SP2/0骨髓瘤细胞融合,制备杂交瘤细胞,进而利用ELISA法筛选,得到本发明所述单克隆抗体。
本领域技术人员知晓,还可利用所述半抗原通过免疫多种不同的哺乳动物制备抗血清,所述哺乳动物包括但不限于:大鼠、小鼠、兔、山羊、绵羊、猪、驴、马等。
本发明的一个方面,公开了一种O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶的单克隆抗体或其具有特异性结合O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶的生物活性的片段,其特征在于所述单克隆抗体由2002年10月29日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(CGMCC),保藏号为CGMCC-0827的杂交瘤细胞分泌,其特异性结合O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶上的表位KRTTLDSPLGKLE(C)。
在本发明的一个实施方案中,本发明人选择KRTTLDSPLGKLE为半抗原,与钥孔血蓝蛋白交联后,免疫BABL/c小鼠,制备杂交瘤。
在本发明的一个实施方案中,本发明人通过杂交瘤技术制备得到了保藏号为CGMCC 0827的杂交瘤,其可分泌特异性结合MGMT之KRTTLDSPLGKLE序列的单克隆抗体。
本发明进一步涉及一种检测细胞中O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶水平的免疫学方法。所述免疫学方法包括但不限于:放射免疫分析、酶联免疫吸附分析(ELISA)、夹心式免疫分析、免疫沉淀、荧光免疫分析等。
本发明的一个方面,公开了一种检测待测样品中中O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶水平的方法,包括:
1)在能够使所述待测样品与本发明所述单克隆抗体发生相互作用的条件下,使待测样品与所述单克隆抗体相接触足够发生相互作用的一段时间;
2)加入能够与本发明所述单克隆抗体发生相互作用的第二抗体,使二者在足够发生相互作用的条件下相互作用足够的时间,
3)加入针对第二抗体的检测试剂,以检测样品中MGMT的水平。
本发明所述的检测方法中,待测样品可以是例如:对于实体瘤患者,可以是诸如:来自患者肿瘤组织的活检物、组织切片等,对于非实体瘤患者,可以是诸如:来自患者的血清、淋巴液、尿液等。在本发明的一个具体实施方案中,使用来自患者的组织切片。
所述单克隆抗体与样品发生相互作用的条件,依据检测方法的不同而不同。
在本发明的一个具体实施方案中,采用碱性磷酸酶抗碱性磷酸酶(APAAP)方法,通过测定经碱性磷酸酶标记的羊抗鼠IgG,检测待测样品中与本发明所述单克隆抗体结合的O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶水平。本领域技术人员知晓,在一个具体实施方案中,所述碱性磷酸酶抗碱性磷酸酶方法可具体如下实施:采用碱性磷酸酶免疫小鼠,制备抗碱性磷酸酶单克隆抗体,将碱性磷酸酶与抗碱性磷酸酶单克隆抗体按适当比例混合,制备碱性磷酸酶与抗碱性磷酸酶抗体复合物(即:APAAP复合物)。采用羊抗鼠IgG抗血清作为桥联抗体,其一个Fab臂与APAAP复合物结合,另一个Fab臂与第一抗体结合,最后加底物显色,显微镜观察结果。
在本发明的又一具体实施方案中,采用ELISA方法(Sambrook,J.,等人,分子克隆:实验指南,第2版,Cold Spring Harbour LaboratoryPress),通过测定辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠IgG,检测待测样品中与本发明所述单克隆抗体结合的O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶水平。具体的,检测方法中包括如下步骤:
(1)包被酶联板:用50mM碳酸盐缓冲液(pH9.5)将抗MGMT多抗血清或纯化抗体稀释成一定浓度,每孔100μl,4℃过夜。10mMPBS-0.05%Tween 20(pH7.4)洗三遍.
(2)封闭已包被的酶联板:用10%的小牛血清封闭包被的酶联板,100μl/孔,37℃,30分钟.
(3)在酶联板上加待测血清或体液100μl/孔,37℃,1小时,10mMPBS-0.05%Tween 20(pH7.4)洗三遍.
(4)在酶联板上加合适浓度MGMT单克隆抗体,100μl/孔,37℃,1小时,10mM PBS-0.05%Tween 20(pH7.4)洗三遍.
(5)加辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠第二抗体50μl/孔,37℃30分钟.10mM PBS-0.05%Tween 20(pH7.4)洗三遍。
(6)加辣根过氧化物酶底物溶液50μl/孔,37℃,显色15分钟
(7)加2N H2SO4 50μl/孔终止反应.
(8)测定OD490值
本领域技术人员知晓,对于固相反应检测而言,可以将本发明所述单克隆抗体固定于固相载体,也可以将待测样品固定于固相载体上。反应通常在室温下进行一段时间,检测过程中需要洗涤不与本发明所述单克隆抗体结合的样品的步骤。
对于液相反应而言,通常可以向处在特定缓冲体系中的待测样品直接加入本发明所述单克隆抗体,然后在适于抗原抗体发生相互作用的温度下,例如室温下,反应一段时间。
本发明所述第二抗体的选择取决于本发明单克隆抗体的来源。本领域技术人员知晓,如何根据单克隆抗体的来源选择相应的第二抗体。本发明所述第二抗体可以是放射性同位素标记的,包括但不限于使用选自:32p、125I、S、2H等;也可以是非放射性同位素标记的,包括但不限于使用选自:辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶、生物素、链霉亲和素等标记。本发明所述检测方法中使用的检测剂,取决于检测过程使用的第二抗体的标记物。本领域技术人员知晓如何选择合适的检测试剂。
本发明所述单克隆抗体能够用于测定待测样品中MGMT水平。所述MGMT水平的高低和变化可为临床上化疗方案的确定提供参考。事实上,本领域技术人员知晓,也可以使用本发明所述单克隆抗体的Fab片段测定样品中MGMT的水平,只要其特异性结合MGMT上的14肽KRTTLDSPLGKLE。因此,可以构建具有不同来源的抗体恒定区之嵌合抗体,以构建用于检测MGMT的抗体。
本发明还涉及本发明所述单克隆抗体用于制备鉴定样品中O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶的水平检测试剂盒的用途。
本发明还涉及一种鉴定样品中O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶的水平之检测试剂盒,其中含有诊断有效量的本发明所述单克隆抗体。任选的,所述检测试剂盒中还含有用于检测所述抗原抗体反应的检测剂和缓冲液,以及使用说明。
本领域技术人员知晓,所述“诊断有效量”的单克隆抗体是指具有适当的稀释度且能够与待测样品发生足以检测的相互作用的量的单克隆抗体。依据抗体制备的情况不同,以及检测的方法不同,本领域技术人员知晓在制备试剂盒的过程中,通过与阳性标准品的反应,选取不同的稀释度。通常,不同批次制备的单克隆抗体要经过效价测定,然后确定工作浓度,优选的,单克隆抗体原液制品稀释比范围在1∶5到1∶80之间。
在本发明的又一实施方案中,公开了一种采用APAAP检测系统组装成的免疫组织化学MGMT检测试剂盒,其中包含诊断有效量的用于与待测抗原结合的本发明所述单克隆抗体(即第一抗体),以及用于检测第一抗体与待测抗原结合的第二抗体,和用于免疫组织化学反应的缓冲液、与用于检测所选第二抗体的底物和显色液。其中所述第二抗体(羊抗鼠IgG)起桥联作用,其中一个Fab段连接第一抗体,另一个Fab段连接抗碱性磷酸酶抗体与碱性磷酸酶形成的复合物(APAAP),通过APAAP复合物中的碱性磷酸酶催化底物显色,以鉴定相应抗原物质。下面结合具体实施例进一步阐明本发明。
实施例
实施例1
O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶单克隆抗体的制备
1.杂交瘤细胞株制备程序
1.1合成半抗原多肽
采用Novabiochem公司生产的Novasyn KR树脂,使用固相合成法(参见,潘和平等人,“鲑鱼降钙素及其类似物的合成”,中国生物化学与分子生物学报,第14卷第4期1998年8月463-466)合成人甲基转移酶关键抗原表位的14肽(C)KRTTLDSPLGKLE,其中在氨基末端加一半胱氨酸,以提供巯基,用于连接载体蛋白KLH。合成多肽纯度在90%以上。
1.2半抗原多肽与载体蛋白交联
选择钥孔血蓝蛋白作为半抗原载体。按照(Sambrook,J.,等人,分子克隆:实验指南,Cold Spring Harbor Laboratory Press,第二版,856页)中所述方法,首先将载体蛋白与MBS连接,形成MBS/KLH连接物。纯化后,MBS/KLH与含Cys的合成肽交联。载体蛋白N端和Lys侧链提供氨基,合成肽提供游离的-SH。
1.3免疫动物
选取6~8周龄雌性BALB/c小鼠,用100μg抗原/只免疫2个月以上。第一次免疫加福氏完全佐剂,第二次以后加福氏不完全佐剂,前三次免疫间隔时间为3周,第三次以后每2周腹腔注射一次。融合前3天,取鼠尾静脉血,间接ELISA法测定效价,选择效价最高的小鼠腹腔加强免疫一次。
1.4细胞融合
1.4.1.免疫脾细胞的制备
BALB/c小鼠加强免疫三天后,处死,无菌状态下取出脾脏,去表面包膜及脂肪,剪碎,加GKN溶液制成单细胞悬液。去除大的团块后,离心,用GKN洗涤并重悬脾细胞,计活细胞数。
1.4.2 SP2/0骨髓瘤细胞的处理:
取指数生长期的SP2/0细胞,离心,用GKN洗一次。悬浮于GKN溶液中,计活细胞数.
1.4.3免疫脾细胞与SP2/0骨髓瘤细胞的融合
将SP2/0骨髓瘤细胞与免疫脾细胞按1∶5比例混合均匀,离心,尽量倒净上清。37℃水浴中,加入50%聚乙二醇(MW1450)进行细胞融合。加入GKN溶液洗涤,用HAT选择性培养液重悬,加入到96孔细胞培养板,在CO2的孵箱中培养。第四天换新培养液,并根据细胞生长情况更换培养液。第七天开始观察杂交瘤细胞生长情况,当细胞生长至显微镜视野一半时,用ELISA的方法检测上清抗体活性的高低.
1.5分泌抗人MGMT单克隆抗体杂交瘤细胞的筛选
采用ELISA法筛选抗人MGMT抗体的杂交瘤细胞。用碳酸盐缓冲液稀释合成多肽,加入到96孔板中,4℃过夜。用PBS-T缓冲液(组成成分为:1.PBS-T配方:800ml蒸馏水中溶解8g NaCl,0.2g KCl,1.44gNa2HPO4,0.24g KH2PO4,用HCl调节pH至7.4,加1ml Tween-100,加水定容到1L,室温保存。)洗三遍。用10%的小牛血清于37℃封闭30分钟,加杂交瘤细胞上清37℃、反应1小时,PBS-T洗三遍,加碱性磷酸酶标记的羊抗鼠第二抗体37℃反应30分钟,PBS-T洗三遍。加底物溶液(0.2M Tris液,50ml;0.1N盐酸,40ml;MgCl2·6H2O,0.2g;左旋咪唑,2mg;1%叠氮钠,5ml;调PH至8.3,加水至100ml)37℃、显色15分钟,加2N H2SO4终止反应,测定OD490值。
1.6杂交瘤细胞的克隆化
用有限稀释法(Kohler G和C.Milstein.,1975,Nature 256:495)对阳性孔的杂交瘤细胞进行多次亚克隆,使分泌单克隆抗体的杂交瘤细胞单克隆化,从而使其能分泌均一的单克隆抗体,同时也避免了不分泌抗体的杂交瘤细胞过度生长而使分泌抗体的杂交瘤细胞丢失。反复克隆化至所有单个克隆的阳性率为100%,选取阳性强的克隆扩大培养,大量冻存作为原始细胞库。部分细胞连续传代培养3个月以上,观察杂交瘤细胞分泌抗体的稳定性。
2.细胞库
由融合细胞、一次亚克隆、二次亚克隆及体外连续培养3个月以上稳定分泌抗体的三次亚克隆细胞组成原始细胞库。取原始细胞库中三次亚克隆的杂交瘤细胞株全面检定,大量培养冻存,建立主细胞库。取主细胞库的细胞大量培养,经抗体活性及支原体复查合格后,冻存,每批不少于20管,建成工作细胞库。每次生产时取1管复苏,用于制备腹水抗体。
3.杂交瘤细胞鉴定
3.1抗体分泌稳定性
强阳性单克隆细胞株(C9D10)扩大培养,取部分细胞以生理盐水调整浓度为2×106/ml。接种于小鼠腹腔,细胞数为1×106/只。约7~10天形成腹水,至腹水增多,腹部特别膨隆时,处死小鼠,取腹水,离心后取上清并测腹水效价。另取部分细胞连续传代培养3个月后,同样条件小鼠腹腔接种,取腹水,并测腹水效价。二次ELISA测定结果均达到1×106。采用APAAP法测定腹水与4株MGMT阳性质控肿瘤细胞的反应,效价均达到1∶100。结果表明细胞株抗体分泌稳定性好。
3.2杂交瘤细胞染色体分析
杂交瘤细胞传代培养36~48小时后加入秋水仙素,继续培养4~6小时,然后收集细胞。加入已预温到37℃的0.075M KCl悬浮细胞。置37℃水浴15~20分钟作低渗处理;细胞用甲醇/冰醋固定液三次固定后,悬浮在固定液中,4℃过夜。离心、去上清,留少许固定液将细胞悬浮、混匀后滴在刚从冰水中取出的载玻片上,吹散,通过火焰数次,自然干燥。10%Giemsa染色液染色10~20分钟,用水洗去染液,自然干燥。镜下观察杂交瘤细胞的染色体核型,显微拍照。BALB/c小鼠脾细胞染色体数目为40条。SP2/0细胞的平均染色体数目为60条左右。杂交瘤细胞平均染色体数目为94条左右,接近SP2/0细胞和脾细胞染色体数目之和,证明杂交瘤细胞是由SP2/0细胞和小鼠脾细胞融合而来。
4抗人MGMT单克隆抗体的大量制备
4.1获取抗人MGMT单克隆抗体腹水
选取10周龄BALB/C小鼠(军事医学科学院实验动物中心提供),接种细胞前10~20天,预先腹腔注射Pristane 0.5ml/只。收集处于对数生长期的杂交瘤细胞,以生理盐水调整细胞浓度至2×106/ml,腹腔接种杂交瘤细胞,接种数为1×106个/只,约7~10天形成腹水,至腹水形成增多,使得腹部特别膨隆时,处死小鼠,取腹水,离心后取上清并测腹水效价,分装,-20℃冻存备用。
4.2抗人MGMT单克隆抗体亚型的鉴定
采用双向免疫扩散法,对杂交瘤腹水进行免疫球蛋白亚型的鉴定。用1%琼铺制琼脂板,待琼脂凝固后,用打孔器在上面打出梅花形的小孔,过火焰封底;将抗小鼠IgG1、IgG2a、IgG2b、IgG3、IgA及IgM抗血清加入中心孔,将腹水倍比稀释后加入周边孔,37℃放置24h。结果单克隆抗体腹水仅与抗小鼠IgG1抗血清有明显的沉淀线,说明杂交瘤细胞分泌的抗体为IgG1亚类。
4.3抗人MGMT单克隆抗体的纯化
4.3.1硫酸铵沉淀法初步提纯。
腹水于4℃、10000rpm离心10分钟,取上清,按1∶1比例加入0.01MPBS(pH7.2)混匀,搅拌下加入饱和硫酸铵使成50%饱和度,25℃作用30分钟。4℃10000rpm离心15分钟,弃上清。沉淀用适量0.01M PBS(pH7.2)溶解,加入饱和硫酸铵使成33%饱和度,25℃作用30分钟。4℃10000rpm离心15分钟,弃上清。沉淀用适量0.02M PBS(pH7.0)溶解,备用。
4.3.2 Protein G-Sepharose亲和层析
用Pharmacia Biotech.公司的AKTA FPLC蛋白层析仪对单克隆抗体进行亲和纯化。先以3倍柱体积的0.02M PBS(pH7.0)冲洗HiTrapProtein G层析柱(1ml)填料中的乙醇,随即以5倍柱体积的0.02MPBS(pH7.0)平衡层析柱。将2ml硫酸铵初步纯化的抗体溶液加入层析柱。用5倍柱体积的0.02M PBS(pH7.0)冲洗层析柱,当紫外线检测器出现IgG洗脱峰时,迅速用已加入60-100μl 0.05M Tris-HCl缓冲液(pH9.5)的离心管收集。最后用5倍体积的0.02M PBS(pH7.0)冲洗平衡层析柱。将纯化的抗体分装,-20℃保存。
4.4抗体纯度及浓度测定
将单克隆抗体腹水、硫酸铵沉淀后抗体及经Protein G-Sepharose亲和层析后抗体按常规方法进行SDS-PAGE电泳。抗体腹水中含大量杂蛋白;硫酸铵沉淀后电泳图谱呈现清蛋白、抗体重链和轻链三条带;亲和层析后抗体的电泳图谱呈现二条区带,为抗体的轻链和重链,  分子量约为22.8KD和53.1KD。经扫描测定,亲和层析后抗体纯度达98%以上。将20毫升单克隆抗体腹水提纯后,用PBS调整至原体积,以PBS为空白对照,测定抗体溶液的OD280nm值,计算抗体浓度为1.0mg/ml。
4.5单克隆抗体特异性鉴定
采用ELISA法测定所得单克隆抗体只与合成多肽抗原特异结合,而与KLH不发生结合。
采用免疫印迹反应(Western Blot),测定单克隆抗体与MGMT抗原的反应性,将MGMT抗原按常规SDS-PAGE后,转移到硝酸纤维素膜,以进口抗体为对照,按文献方法(Sambrook,J.,等人,分子克隆:实验指南,Cold Spring Harbor Laboratory Press,第二版,888页)进行检测,结果均与MGMT抗原发生特异性结合。
实施例2带有本发明所述单克隆抗体的检测试剂盒
I)采用APAAP法检测的试剂盒
1.试剂盒组份:
①抗人MGMT单克隆抗体液(BSA,10g;1%叠氮钠,10ml;抗人MGMT单克隆抗体,10ml;0.1M PBS(Ph7.2-7.4)配至100ml  3.0ml/瓶     1瓶
②专用封闭液(组成成分:0.01MPBS(7.2~7.4)80ml;过碘酸,0.1g;小牛血清,10ml;1%NaN3,10ml)  3.0ml/瓶     1瓶
③第二抗体(羊抗鼠IgG抗血清:BSA,10g;1%叠氮钠,10ml;羊抗鼠IgG抗血清(购自军事医学科学院基础医学研究所),10ml;0.1M PBS(pH7.2-7.4)配至100ml  3.0ml/瓶     1瓶
④酶APAAP复合物(购自军事医学科学院基础医学研究所)  3.0ml/瓶     1瓶
⑤底物(坚固红TR盐,购自SIGMA公司,产品号为F2768)  50mg/瓶      1瓶
⑥底物缓冲液(0.2M Tris液,50ml;0.1N盐酸,40ml;MgCl2 6H2O,0.2g;左旋咪唑,2mg;1%叠氮钠,5ml;调pH至8.3,加水至100ml  8.0ml/瓶     1瓶
⑦苏木精复染液(苏木精,1g;钾明矾,50g;柠檬酸,1g;水合氯醛,50g;碘酸钠0.2g;H2O至1000ml  8.0ml/瓶     1瓶
⑧防脱片剂(多聚赖氨酸,1g,加水至100ml)  1.0ml/瓶     1瓶
⑨封片剂(颗粒明胶,15g;甘油,100g;加蒸馏水至100ml)  8.0ml/瓶     1瓶
2.检测试剂盒特异性测定
MGMT阳性质控细胞的选定
国外Neo Markers公司生产的MGMT(DNA修复酶)Ab-1(MT3.1)鼠单克隆抗体选用Molt-4、Raji、HeLaCCL2、Rh18(或HT-29)、CCRF-CEM细胞株作为阳性质控细胞,根据国内可以获得细胞株的实际情况,以及我们自己以前的实验结果,选定了Molt-4(T淋巴母细胞)、Raji(B淋巴母细胞)、HeLa S3(宫颈癌)以及中国人肝癌细胞系SMMC-7721共4株细胞作为MGMT阳性质控细胞。
4株MGMT阳性质控细胞特征如下:
                     Molt-4    Raji   HeLa S3   SMMC-7721
MGMT活性(pmol/mg)     1.53     1.19    1.10       0.72
ACNU D10(μg/ml)*     135      108     114        77
BCNU D10(μg/ml)*     183      178     164        137
*D10:杀伤90%细胞的药物剂量,表示细胞对药物的耐药性。
MGMT阳性质控肿瘤细胞标本的制备:
取指数生长期的肿瘤细胞,用生理盐水洗涤一遍后,用生理盐水悬浮细胞,调节细胞浓度为1×106/ml,离心涂片,用丙酮固定,备用。
抗人MGMT单克隆抗体特异性检定
用进口抗体Ab-1 MT3.1作为对照,经检测进口抗体及自制抗体对4株MGMT阳性细胞的特异性反应一致,均呈强阳性(++)反应,符合率为100%。
效价测定
取纯化的抗人MGMT单克隆抗体,按1∶10、1∶20、1∶40、1∶60、1∶80和1∶100的比例稀释,用APAAP法测定4株MGMT阳性质控肿瘤细胞涂片与不同工作浓度抗人MGMT单克隆抗体的反应性,确定最佳抗体工作浓度为1∶40。
第二抗体(羊抗鼠IgG)稀释度的确定
用抗人MGMT单克隆抗体工作液作第一抗体。按1∶10、1∶20、1∶40、1∶60的比例稀释羊抗鼠IgG抗血清(购自军事医学科学院微生物流行病研究所),作为第二抗体,用APAAP方法检测与4株MGMT阳性质控肿瘤细胞的反应强度,发现从1∶60开始显色强度减弱。第二抗体在37℃放置9天后,用同样方法检测其与MGMT阳性质控肿瘤细胞的反应强度,发现用1∶20稀释度的染色结果呈++,高于1∶20稀释度的染色结果呈+,确定最佳抗体工作浓度为1∶20
酶复合物的鉴定
酶复合物工作液(购自军事医学科学院基础医学研究所),在37℃放置9天后,替换APAAP试剂盒中的酶复合物,用经检定合格的抗人MGMT单克隆抗体和APAAP试剂盒检测MGMT阳性质控肿瘤细胞,染色结果++为合格,低于++为不合格。
底物缓冲液的鉴定:
取配制好的底物缓冲液(0.2M Tris液,50ml;0.1N盐酸,40ml;MgCl2·6H2O,0.2g;左旋咪唑,2mg;1%叠氮钠,5ml;调pH至8.3,加水至100ml)5ml,37℃放置9天,物理检查无沉淀、变色。代替APAAP试剂盒中的底物缓冲液,用经检定合格的抗MGMT单克隆抗体和APAAP试剂盒检测MGMT阳性质控细胞标本,染色结果++为合格。
碱性磷酸酶底物的检定:
坚固红TR盐,按10mg/瓶分装,将一瓶分装好的底物放37℃放置9天,代替APAAP试剂盒中的底物,用经检定合格的抗MGMT单克隆抗体和APAAP试剂盒检测MGMT阳性质控细胞标本,染色结果++为合格。
II)采用ELISA法之检测试剂盒
采用ELISA法之检测试剂盒,适用于检测血液和组织液中MGMT的水平,其组成如下:MGMT单克隆抗体;羊抗鼠IgG抗血清;包被缓冲液;洗涤缓冲液;反应终止液;底物缓冲液;和显色底物
上述试剂具体配制如下:
包被缓冲液:(0.05M pH9.6碳酸盐缓冲液;Na2CO3 1.59克,NaHCO3,2.93克,加蒸馏水至1000ml);
洗涤缓冲液:(KH2PO4,0.2克;KCl,0.2克;Na2HPO4.12H2O,2.9克;NaCl,8.0克;Tween-20,0.5ml;加蒸馏水至1000ml);
终止液:(2N H2SO4,H2SO4,21.7ml;加蒸馏水至200ml);
底物缓冲液
A液:柠檬酸21.14克溶于1000ml蒸馏水中
B液:Na2HPO4.12H2O 28.4克溶于1000ml蒸馏水中
取A液24.3ml、B液25.7ml混合加蒸馏水至100ml。
底物:四甲基联本胺(TMB)1毫克溶于1毫升无水乙醇底物配制临用前取TMB0.5ml、底物缓冲液4.5ml、3%的双氧水50μl混合备用。
实施例3本发明所述检测试剂盒的稳定性
1试剂盒37℃加速破坏试验
将连续生产的三批试剂盒置于37℃孵箱中,分别于第1、3、5、7、9天取出,以37℃保存0天的试剂盒为对照,用5例阳性参考品和例阴性参考品检测。检测结果表明,三批产品在37℃放置1天至9天后,检测结果与对照组一致,阳性参考品符合率和阴性参考品符合率均为100%,敏感性和特异性符合产品质量标准要求。按阿雷尼厄斯方程推导,试剂盒在37℃中,每稳定一天相当于4℃保存1.6个月,37℃下9天相当于4℃下保存14个月。
2试剂盒4℃稳定试验
将连续生产的三批试剂盒置于4℃冰箱中,分别于0天、2、4、6、8、10、12、14个月取出,用5例阳性参考品和5例阴性参考品检测,以4℃保存0天的试剂盒为对照,观察产品的稳定性。结果说明,检测试剂盒4℃保存2、4、6、8、10、12、14个月后,检测结果与对照组一致,阳性参考品符合率和阴性参考品符合率均为100%,敏感性和特异性符合产品质量标准要求。
10例参考品的选定
序号      标本号       肿瘤类型        MGMT分析
 P1       31914        胶质瘤            ++
 P2       33554        恶性黑色素瘤      ++
 P3       35277        质瘤              ++
 P4       34239        胶质瘤            ++
 P5       35293        肝细胞癌          ++
 N1       31925        非何杰金氏淋巴瘤  -
 N2       35443        小细胞肺癌        -
 N3       33126        非何杰金氏淋巴瘤  -
 N4       206084       小细胞肺癌        -
 N5       205040       胃腺癌            -
实施例4.临床使用本发明所述检测试剂盒的检测及结果
将本发明所述MGMT检测试剂盒用于临床检测,证明试剂盒对诊断肿瘤细胞中MGMT蛋白水平的特异性强,灵敏性好,操作简便、快速。
具体地,临床上共分析了1175名经确诊为肿瘤病人的病理标本,其中包括:头颈部肿瘤、肠癌、乳腺癌、胃癌、食道癌、生殖系肿瘤、肝癌、泌尿系统肿瘤、软组织肿瘤、甲状腺癌、脑癌和其他肿瘤等。用统一判定标准分析上述肿瘤标本的MGMT蛋白表达水平:显微镜下观察,在肿瘤细胞核或浆内有粉红色着色颗粒的为阳性。其中呈强着色、着色细胞>30%的为强阳性(++);着色细胞在10%~30%为阳性(+);着色程度很弱,不易判断或阳性细胞<10%的为可疑(±);无着色细胞的为阴性(-)。
在1175例检测的病理标本中,强阳性(++)290例,占24.68%;阳性(+)517例,占44.00%;可疑(介于阴性与阳性之间,±)188例,占16.00%;阴性(-)180例,占15.32%。各临床考核结果显示,MGMT检测试剂盒特异性好,灵敏度高,检测结果可靠、操作简单方便、为临床合理使用亚硝脲药物提供了准确的、具有预见性的依据,对提高肿瘤化疗水平有重要意义。
序列表
<110>中国人民解放军军事医学科学院野战输血研究所
<120>一种06-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶的单克隆抗体,其制备方法及诊断试剂盒
<130>idc020039
<160>1
<170>PatentIn version 3.1
<210>1
<211>205
<212>PRT
<213>人
<400>1
Met Asp Lys Asp Cys Glu Met Lys Arg Thr Thr Leu Asp Ser Pro Leu
1               5                   10                  15
Gly Lys Leu Glu Leu Ser Gly Cys Glu Gln Gly Leu His Glu Ile Lys
            20                  25                  30
Leu Leu Gly Lys Gly Thr Ser Ala Asp Ala Val Glu Val Pro Ala Pro
        35                  40                  45
Ala Ala Val Leu Gly Gly Pro Glu Pro Leu Met Gln Cys Thr Ala Trp
    50                  55                  60
Leu Asn Ala Tyr Phe His Gln Pro Glu Ala Ile Glu Glu Phe Pro Val
65                  70                  75                  80
Pro Ala Leu His His Pro Val Phe Gln Glu Ser Phe Thr Arg Gln Val
                85                  90                  95
Leu Trp Lys Leu Leu Lys Val Val Lys Phe Gly Glu Val Ile Ser Tyr
            100                 105                 110
Gln Gln Leu Ala Ala Leu Ala Gly Asn Pro Lys Ala Ala Arg Ala Val
        115                 120                 125
Gly Gly Ala Met Arg Gly Asn Pro Val Pro Ile Leu Ile Pro Cys His
    130                 135                 140
Arg Val Val Cys Ser Ser Gly Ala Val Gly Asn Tyr Ser Gly Gly Leu
145                 150                 155                 160
Ala Val Lys Glu Trp Leu Leu Ala His Glu Gly His Arg Leu Gly Lys
                165                 170                 175
Pro Gly Leu Gly Gly Ser Ser Gly Leu Ala Gly Ala Trp Leu Lys Gly
            180                 185                 190
Ala Gly Ala Thr Ser Gly Ser Pro Pro Ala Gly Arg Asn
        195                 200                 205

Claims (10)

1.一种O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶的单克隆抗体或其具有特异性结合O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶的生物活性的片段,其特征在于所述单克隆抗体由保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会,保藏号为CGMCC 0827的杂交瘤细胞分泌,其特异性结合O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶上的KRTTLDSPLGKLE(C)序列。
2.一种杂交瘤细胞系,其分泌特异性结合O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶上的表位KRTTLDSPLGKLE(C)的单克隆抗体,所述杂交瘤细胞系具有保藏号CGMCC 0827。
3.一种制备权利要求1所述单克隆抗体的方法,其包括:
1)化学合成KRTTLDSPLGKLE(C)肽;
2)将1)中所得肽与钥孔血蓝蛋白(KLH)结合制备抗原;
3)由所得抗原免疫动物,通过杂交瘤技术,得到杂交瘤细胞
4)培养所述杂交瘤细胞,制备权利要求1所述单克隆抗体。
4.权利要求1所述抗体用于制备鉴定样品中O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶的水平检测试剂盒的用途。
5.一种鉴定样品中O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶的水平之检测试剂盒,其中含有诊断有效量的权利要求1所述单克隆抗体,还任选的含有用于免疫组织化学检测的缓冲液、第二抗体、底物和/或染液。
6.权利要求5所述的检测试剂盒,其中含有诊断有效量的权利要求1所述单克隆抗体,还含有用于APAAP法检测的缓冲液、第二抗体、底物和/或染液。
7.权利要求5所述的检测试剂盒,其中含有诊断有效量的权利要求1所述单克隆抗体,还含有用于ELISA法检测的缓冲液、第二抗体、底物和/或染液。
8.一种检测待测样品中O6-甲基鸟嘌呤-DNA甲基转移酶水平的方法,包括:
1)在能够使所述待测样品与权利要求1所述单克隆抗体发生相互作用的条件下,使待测样品所述单克隆抗体接触足够发生相互作用的一段时间;
2)加入能够与权利要求1所述单克隆抗体发生相互作用的第二抗体,使二者在足够发生相互作用的条件下相互作用足够的时间,
4)加入针对第二抗体的检测试剂,以检测样品中MGMT的水平。
9.权利要求8所述的检测方法,其中采用APAAP法。
10.权利要求8所述的检测方法,其中采用ELISA法。
CNA021513805A 2002-11-21 2002-11-21 一种o6-甲基鸟嘌呤-dna甲基转移酶的单克隆抗体,其制备方法及检测试剂盒 Pending CN1502630A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CNA021513805A CN1502630A (zh) 2002-11-21 2002-11-21 一种o6-甲基鸟嘌呤-dna甲基转移酶的单克隆抗体,其制备方法及检测试剂盒

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CNA021513805A CN1502630A (zh) 2002-11-21 2002-11-21 一种o6-甲基鸟嘌呤-dna甲基转移酶的单克隆抗体,其制备方法及检测试剂盒

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN1502630A true CN1502630A (zh) 2004-06-09

Family

ID=34234395

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CNA021513805A Pending CN1502630A (zh) 2002-11-21 2002-11-21 一种o6-甲基鸟嘌呤-dna甲基转移酶的单克隆抗体,其制备方法及检测试剂盒

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN1502630A (zh)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102707060A (zh) * 2012-05-31 2012-10-03 杭州师范大学 一种检测mgmt活性的化学发光检测试剂盒及检测方法
CN102798717A (zh) * 2012-06-15 2012-11-28 杭州师范大学 一种o6-甲基鸟嘌呤-dna甲基转移酶活性检测方法
JP2015500208A (ja) * 2011-11-25 2015-01-05 フラウンホーファー−ゲゼルシャフト ツル フェルデルング デル アンゲヴァンテン フォルシュング エー ファウFraunhofer−Gesellschaft zur Foerderung der angewandten Forschung e.V. Snap/clipタグを検出するためのモノクローナル抗体
CN105779403A (zh) * 2016-03-30 2016-07-20 苏州偲聚生物材料有限公司 用于检测血清中mgmt抗体的多肽,检测器件和检测试剂盒

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2015500208A (ja) * 2011-11-25 2015-01-05 フラウンホーファー−ゲゼルシャフト ツル フェルデルング デル アンゲヴァンテン フォルシュング エー ファウFraunhofer−Gesellschaft zur Foerderung der angewandten Forschung e.V. Snap/clipタグを検出するためのモノクローナル抗体
CN102707060A (zh) * 2012-05-31 2012-10-03 杭州师范大学 一种检测mgmt活性的化学发光检测试剂盒及检测方法
CN102707060B (zh) * 2012-05-31 2015-05-20 杭州师范大学 一种检测mgmt活性的化学发光检测试剂盒及检测方法
CN102798717A (zh) * 2012-06-15 2012-11-28 杭州师范大学 一种o6-甲基鸟嘌呤-dna甲基转移酶活性检测方法
CN102798717B (zh) * 2012-06-15 2014-11-26 杭州师范大学 一种o6-甲基鸟嘌呤-dna甲基转移酶活性检测方法
CN105779403A (zh) * 2016-03-30 2016-07-20 苏州偲聚生物材料有限公司 用于检测血清中mgmt抗体的多肽,检测器件和检测试剂盒

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN1960756A (zh) 细胞介导的细胞毒作用证明细胞膜表面表达cd63
EP2105447A1 (en) Avian-derived antibody capable of binding specifically to human hmgb1, immunological determination method for human hmgb1, and immunological determination reagent for human hmgb1
CN109734803A (zh) 抗人myo抗体及其在检测试剂盒中的应用
CN1896102A (zh) 抗HBsAg单克隆抗体
CN1056186C (zh) 一种对人体过氧化锰歧化酶的单克隆抗体,其制备方法及其应用
CN105713091B (zh) 抗人crp抗体及其应用
RU2008152009A (ru) Моноклональные антитела против аннексина а3 для обнаружения карциномы простаты
Ezzatifar et al. Large scale generation and characterization of anti-human IgA monoclonal antibody in ascitic fluid of BALB/c mice
CN1687134A (zh) 幽门螺杆菌HpaA和ureB单克隆抗体、免疫测定法和诊断试剂盒
KR20190055741A (ko) bPAG1에 특이적으로 결합하는 항체 및 이의 용도
CN1502630A (zh) 一种o6-甲基鸟嘌呤-dna甲基转移酶的单克隆抗体,其制备方法及检测试剂盒
EP2700650B1 (en) Monoclonal antibodies which specifically recognize human liver-carboxylesterase 1, hybridoma cell lines which produce monoclonal antibodies, and uses thereof
KR100967588B1 (ko) 한우 경제형질 개선을 위한 근육발달시기 관련 바이오 마커단백질
JPWO2006085441A1 (ja) Adamts13活性検定用抗体及び活性検定方法
CN1888057A (zh) 杂交瘤细胞株及其产生的抗人α-半乳糖苷酶A单克隆抗体
CN1195229C (zh) 一种检测孕激素受体水平的生物试剂及免疫组化方法
CN106198989B (zh) 检测前列腺特异抗原与α1‑抗糜蛋白酶复合物的试剂盒
CN1772766A (zh) 抗细胞凋亡相关乙酰胆碱酯酶单克隆抗体及其用途
CN107043752A (zh) 杂交瘤细胞株及基于杂交瘤细胞株的抗crh抗体n‑d19及其检测方面的应用
CN1831120A (zh) 杂交瘤细胞株及其产生的抗人肝素酶单克隆抗体
JPS63240797A (ja) モノクローナル抗体、その製法およびそれを含有する診断薬
KR20070059373A (ko) Ndrg2 단백질에 대한 단일클론항체 및 단백질 칩을이용한 정량 측정법
CN105949312B (zh) 抗人pct抗体及其应用
CN105949309B (zh) 抗人c-反应蛋白抗体及其应用
CN109721655A (zh) 抗人肌红蛋白抗体及其在检测试剂盒中的应用

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C02 Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001)
WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication