CN1258589C - 分离双能肝祖细胞的方法 - Google Patents

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Abstract

建立了获得富含肝祖细胞的细胞混合物的方法，包括产生多种类型细胞混合物悬液的方法，以及筛选那些经典MHC I类抗原阴性和ICAM-1抗原阳性的细胞。非经典MHC I类抗原的弱或微弱表达可被用来进一步富集肝祖细胞。此外，祖细胞可以因具有一定水平的侧向散射而被选择，这是粒度或细胞质滴的测定法，祖细胞比非实质细胞如造血细胞高，比成熟的实质细胞如肝细胞低。而且，分离的祖细胞的后代可以表达甲胎蛋白和/或白蛋白和/或CK19。如此分离的肝祖细胞可以无性繁殖地生长，即一整群后代可以来自一个细胞。祖细胞克隆在培养中具有成堆或成团聚集的生长特征。这些分离肝祖细胞的方法可应用在包括人的任何脊椎动物。预期肝祖细胞群可用于细胞治疗、生物人工肝脏、基因治疗、开发疫苗、以及众多的毒理学、药理学和药剂学项目和研究。

Description

分离双能肝祖细胞的方法
1.技术领域
本发明涉及区分肝细胞和造血细胞的新的细胞表面标记物。特别是，本发明涉及用独特的表现型分离双能肝祖细胞的方法，包括经典的主要组织相容性复合体(MHC)I类抗原阴性的细胞、细胞间粘附分子1(ICAM-1)阳性的细胞、以及非经典MHC I类抗原微弱阳性的细胞。此外，本发明涉及通过本发明方法产生的肝祖细胞和肝干细胞。
2.背景技术
在哺乳动物组织中识别多潜能祖细胞群对于临床和商业目的都是重要的，对理解发育过程和组织内环境平衡也是重要的。祖细胞群是基因治疗、细胞移植和生物人工器官组织工程的理想靶标(Millar，A.D.1992 Nature 357，455；Langer，R.和Vacanti，J.P.1993 Science260，920；Gage，F.H.1998 Nature 392，18)。
从对造血干细胞(Spangrude等人.1988 Science 241，58)、神经干细胞(Davis，A.A.，和Temple，S.1994 Nature 372，263；Stemple，D.L.，和Anderson，D.J.1992 Cell 71，973)和表皮干细胞(Jones，P.H.，和Watt，F.M.1993 Cell 73，713)的研究中，很容易地看到存在组织特异的、“决定的”干细胞或具有高度生长潜能和/或多种潜能的祖细胞，它们每一个都已经采用该组织适用的特定方法被克隆地识别。这些祖细胞被认为是负责正常的造血、神经和表皮组织内环境平衡和严重创伤后再生反应的细胞(Hall，P.A.，和Watt，F.M.1989 Development106，619)。
尽管肝脏通常是静止的组织不需快速的更新，但哺乳动物的成年肝脏在广泛的肝毒性损伤或部分肝切除后，具有巨大的恢复能力(Fishback，F.C.1929 Arch.Pathol.7，955)；(Higgins，G.M.，和Anderson，R.M.1931 Arch.Pathol.12，186)。最近通过连续的移植实验检测得到的来自小鼠的数据已被阐明，提示成年实质细胞具有几乎无限的生长潜能(Overturf等人，1997 Am.J.Pathol.151，1273)；(Rhim，J.A.等人，1994 Science 263，1149)。这些实验利用限制该能力的不均一肝细胞群来证实在成年实质细胞、成年实质细胞亚群和/或非实质细胞(即祖细胞)中观察到的生长潜能。此外，研究显示没有胆管上皮分化的证据，因为所用的宿主是白蛋白—尿激酶转基因的，或在另外的情况下是酪氨酸分解酶缺陷的；两种类型的宿主都具备选择肝细胞系的条件。因此，该实验不能检测双能细胞群。
数个组织学研究确定来自妊娠中期胚胎的早期肝细胞具有分化成胆管上皮以及成熟肝细胞的发育性双向潜能(Shiojiri，N.1997Microscopy Res.Tech.39，328-35)。肝脏发育始于腹侧前肠内胚层，在内胚层上皮与发生心脏的中胚层接触后即刻开始(Douarin，N.M.1975 Medical Biol.53，427)；(Houssaint，E.1980 CellDiffer.9，269)。在小鼠，肝脏定型发生在第8胚胎日(E)。最初阶段的肝脏发育以在内胚层诱导血清白蛋白和甲胎蛋白mRNAs而显现，且在形态学改变之前(Gualdi，R.等人，1996 Genes Dev.10，1670)。在小鼠妊娠期的E 9.5天，特化的细胞在那时增殖并以索状方式穿入原始横隔的间叶组织中，形成肝原基。尽管肝脏体积在那时显著地增加，但体积增加主要地是由于造血细胞，该细胞在小鼠E10天转移至胎肝(Houssaint，E.1981 Cell Differ.10，243)，并影响肝细胞使之显示成极其扭曲和不规则的形状(Luzzatto，A.C.1981 Cell TissueRes.215，133)。有趣的是，最近来自基因定向突变小鼠的数据显示，许多基因的损伤在E12至E15期间引起致死性肝衰竭、凋亡和/或实质细胞坏死(Gunes，C.等人，1998 EMBO J.17，2846；Hilberg，F.等人，1993Nature 365，1791；Motoyama，J.等人，1997 Mech.Dev.66，27；Schmidt，C.等人，1995 Nature 373，699)。特别地，应激活化的级联(Ganiatsas，S.等人，1998.Proc.Natl.Acad Sci.USA 95，6881；Nishina，H.等人，1999Development 126，505)或抗凋亡级联(Beg，A.等人，1995 Nature376，167；Li，Q.等人，1999 Science 284，321；Tanaka，M.等人，1999.Immunity 10，421)之一部分的基因破坏可以引起严重的肝发育损害，没有造血作用，尽管有广泛的失活基因表达。不清楚是否肝细胞对发育应激刺激固有地敏感，或是特定的胎肝微环境本身引起这种破坏性作用(Doi，T.S.等人，1999.Proc.Natl.Acad.Sci.USA 96，2994)。另一方面，成年肝脏的基本结构有赖于最初围绕门静脉的胆管上皮柱的出现(Shiojiri，N.1997 Microscopy Res.Tech.39，328)。免疫组织化学上，肝内胆管上皮细胞分化的第一个信号是表达胆管特异的细胞角蛋白(CK)。CK蛋白，即上皮细胞的胞浆中间丝(IF)蛋白，是由多基因家族编码的并以组织和分化特异的方式表达(Moll，R.等人，1982Cell 31，11)。CK19是最显著的胆管标记物之一，因为成年肝细胞完全不表达CK19，而成年胆管上皮细胞表达此蛋自。只有CK8和CK18从早期肝细胞到成年肝细胞均表达(Moll，R.等人，1982 Cell 31，11)。在大鼠发育的E15.5天，相对于小鼠的E14天，胆管前体细胞被CK18和CK8抗体均重染，一些胆管前体细胞表达CK19。随着发育的进程，成熟的胆管逐渐表达CK19外还表达CK7，并丧失白蛋白的表达(Shiojiri，N.等人，1991 Cancer Res.51，2611)。尽管早至E13天的大鼠肝细胞被认为是同质的群体，但仍然要看是否所有的早期肝细胞可以分化成胆管上皮细胞系，以及它们的结局是任何确定的。确定性种系标记研究，如采用逆转录酶病毒载体者，还没有对肝细胞进行，而且对于确定任何双能肝祖细胞所必需的纯系生长条件尚未确定。
对于纯系生长分析，一个主要障碍是造血细胞的过度生长，这妨碍了观察肝细胞离体扩张的能力。因此，必须使用一个肝细胞群富集步骤。尽管能够在胎肝中分离造血细胞的表面标记物已经被详细研究(Dzierzak，E.等人，1998 Immunol.Today 19，228-36)，但用于肝祖细胞者仍然缺少详细说明，因为该研究仍处于初期阶段(Sigal，S.等人，1994 Hepatology 19，999)。因此，通常用于成体肝细胞的离体增殖条件可引起其去分化，并丧失组织特异的功能如表达白蛋白(Block，G.D.等人，1996 J.Cell Biol.132，1133)。只有在没有血清且有限定的激素、生长因子和/或某些细胞外基质成分的混合物存在的情况下培养的肝细胞中，合成组织特异的mRNAs和转录后完全调节组织特异基因的能力发生一些改善(Jefferson，D.M.等人，1984，Mol.Cell.Biol.4，1929；Enat R，等人，1984，81，1411)。但是，增殖的胎肝细胞在体内仍然表达这些血清蛋白。
除肝祖细胞外，许多种属的胎肝含有造血祖细胞。造血祖细胞和造血细胞在其表面上表达主要组织相容性(MHC)抗原。MHC的命名尚未完全标准化。因此，经典的MHC I类抗原也可以被称作MHC Ia类或MHC IA类。相似地，非经典的MHC I型抗原也可以被称作MHC Ib类或MHC IB类。
在对MHC抗原的工作中，颁授给Chappel的美国专利5,679,340要求保护通过结合抗体到两个抗原决定簇上修饰包括MHC的细胞表面抗原。相反，Chappel没能说明MHC和其它抗原可被用来分离祖细胞。
其它人已试图在体外培养肝细胞。颁授给Naughton等人的美国专利5,510,254要求保护：肝细胞培养依赖于生物相容性的三维结构而非活物质。因此，对于无人工结构的培养条件并为要生长和培养的肝祖细胞提供该条件，这样的要求并未被满足。另外，对具有生物潜在的分化能力的肝祖细胞的克隆方法也未被满足，其中的细胞应当适合于用作生物人工肝的组成部分、检测肝毒性和药物开发，以及其它应用。
颁授给Naughton等人的美国专利5,559,022要求保护结合曙红Y的肝补充细胞，曙红Y是用作鉴定“补充细胞”的染料。美国专利5,559,022没有使用已很好确定的用于鉴定肝补充细胞的标记物，也未提供纯系生长补充细胞的方法，也没有提供用于分离活的肝补充细胞的标记物。因此，分离和培养具有许多肝祖细胞基本特征的细胞的方法尚未建立，这些基本特征包括表达特异性标记和分化成肝细胞或胆管细胞的潜能。同样地需要纯系生长肝祖细胞的方法。纯系生长对清楚和严格的区分和鉴定多能肝祖细胞是很重要的。
本发明者认识到，培养成熟肝细胞如肝细胞，而非更有用的肝祖细胞，是不完全的。他们仔细地确定了肝祖细胞的分离参数和纯系生长需要的条件。祖细胞和选择、培养祖细胞的方法有许多用途，包括在治疗肝衰竭患者的医疗实践中的应用、在毒物评价中的应用和在药物评价中的应用。
3.发明概述
本发明涉及分离肝双能祖细胞的方法，该细胞不表达经典的MHC I类抗原(MHC Ia类抗原)，但表达ICAM抗原或ICAM-1抗原。此外，肝双能祖细胞可以选择性地表达含经典MHC I类单态抗原决定簇的非经典MHC I类抗原(MHC Ib类抗原)。可以使用来自几种组织的祖细胞，包括但不限于肝脏。因此，本发明涉及分离肝祖细胞的方法，该细胞是经典MHC I类阴性，可选择地ICAM-1阳性。同样地，本发明涉及分离祖细胞的方法，通过移除表达经典MHC I类阳性的表现型细胞，分离的祖细胞是ICAM-1阳性而经典MHC I类阴性表达的表现型。非经典MHC I型的微弱表达可被用来进一步分离祖细胞。优选地，本发明涉及分离和克隆肝多能祖细胞的方法。肝多能祖细胞可以是任何脊椎动物种属的，包括鱼类、两栖类、爬虫类、鸟类和哺乳动物类，更优选哺乳动物。更优选地，肝多能祖细胞来自灵长动物、猪、大鼠、兔、狗或小鼠。最优选地，多能祖细胞来自人类。最非常优选方法产生的肝祖细胞是双能肝祖细胞。因此，双能肝祖细胞或其后代可以分化成肝细胞或胆管细胞。
富含祖细胞的细胞群可以通过首先获取脊椎动物细胞悬液的方法来获得。然后，以任一顺序连续地，或基本同时地，从细胞悬液中移除表达至少一个MHC Ia类抗原和ICAM抗原的细胞，以提供富含祖细胞的细胞混合物。相同地，富含肝祖细胞的脊椎动物胚胎干细胞混合物可以如下获得：提供脊椎动物胚胎干细胞，培养胚胎干细胞以得到胚胎干细胞后代，分离表达ICAM抗原且不表达MHC Ia类抗原的胚胎干细胞后代。
所有通过物理的、免疫学的分离方法和本领域已知的细胞培养方法均包括在本发明中。特异地分离的方法包括免疫分离法。免疫分离法可以是与标记的抗体相互作用后的流式细胞仪法。免疫分离法也包括用抗体的亲合方法，抗体结合到磁珠、可生物降解的小珠、不可生物降解的小珠、平底表面包括平皿上，以及这些方法的组合。
此外，肝祖细胞和双能干细胞及其后代可以选择地表达其它表现型，包括但决不限于甲胎蛋白，白蛋白，较来自胎肝的造血细胞更高的侧向散射，或如细胞堆积的生长方式。
肝脏干细胞是可能表达或不表达甲胎蛋白或白蛋白的细胞，但产生表达甲胎蛋白和白蛋白或胆管标记物如CK19的细胞。
本发明还涉及鉴定祖细胞，优选肝祖细胞的方法，通过将肝细胞与探测MHC I类表现型和ICAM-1表达的工具接触，并识别那些群体中不表达经典的MHC I类抗原的细胞。同样地，可以检测祖细胞的其它标记物或肝表现型，如甲胎蛋白。
本发明另外涉及肝干细胞和祖细胞及其后代，以经典的MHC I类阴性而ICAM-1阳性表现型为特征，这些细胞可以选择性地表达其它表现型，包括但决不限于非经典的MHC I类微弱阳性，较造血细胞祖细胞更高的侧向散射，或细胞堆积的生长方式。后代可以表达甲胎蛋白、白蛋白或CK19。如此分离的肝干细胞和祖细胞后代可以保留亲代的表现型，并选择地可以形成和表达另外的表现型。特别地，后代细胞可以选择地表达肝细胞表现型和胆管细胞表现型。在其它特征中，肝细胞表现型以表达白蛋白为特征。在其它特征中，胆管细胞表现型以表达CK19为特征。
肝祖细胞的组合物、其后代、或祖细胞和其后代的组合，也可以包括以下特征的细胞：弱表达至少一个MHC Ib类抗原，较非实质细胞在流式细胞仪中具有更高的侧向散射，并表达包括甲胎蛋白、白蛋白、CK19或其组合的多肽。该组合物可以来自内胚层或骨髓。在此组合物中，内胚层组织可以是肝脏、胰腺、肺脏、肠、甲状腺、性腺、或它们的组合。
4.附图简述
图1A-1C是来自15天胚胎大鼠肝脏的肝细胞系的特征。
图2A-2F是在滋养细胞上的集落形成试验。
图3A-3X是成体肝细胞的各种肝细胞系上，大鼠细胞表面抗原的表达。
图4A1-4D4描绘了E13胚胎大鼠肝脏的表现型分析。
图5A-5D是在没有和存在EGF的情况下，肝细胞集落的特征。
图6A-6B描绘了在RT1A1-肝细胞上诱导CK19的表达。
图7是在STO5滋养细胞上肝细胞集落形成的图解说明。
5.优选实施例的详细说明
本发明是分离祖细胞的方法和含祖细胞的组合物。在一个实施例中，本发明是鉴定、分离和纯系生长肝干细胞和肝祖细胞的方法。该方法涉及将来自内胚层组织如肝脏的混合细胞群与对ICAM和经典的MHC I类抗原特异的抗体接触，前者如ICAM-1，是粘附蛋白；后者是表征造血细胞和其它大多数有核细胞的抗原，但在肝干细胞和祖细胞表面上是基本不存在的。细胞可以来自任何内胚层组织，包括但不限于肝脏、胰腺、肺脏、肠、甲状腺、性腺，或来自肝脏，或来自整个生物体。任何分离肝干细胞和其它早期肝祖细胞的方法都是可接受的，包括以亲合力为基础的相互作用如亲合力淘选、与补体或流式细胞仪联合的免疫外科。流式细胞仪分离也可以根据中等水平的抗原表达，如非经典的MHC I类抗原。然而，更优选的实施例中，该方法另外涉及选择显示相对高的侧向散射(SSC)的细胞，SSC是依赖于细胞粒度或胞浆液滴数量的参数，是肝细胞的特征。肝祖细胞的SSC高于其它非实质细胞如造血细胞或胎肝中的基质细胞，但低于成熟的实质细胞如成体肝脏中的细胞。此外，其它在甲胎蛋白(AFP)阳性祖细胞上表达的标记物如CD34、CD38、CD14、和/或CD117，可以被用来分离双能祖细胞。同样地，可以使用移除非肝祖细胞的其它标记物，包括但不限于红血细胞抗原(如在人肝脏红血细胞上的血型糖蛋白A)、免疫球蛋白Fc受体、MHC II类抗原、ABO型标记物、CD2、CD3、CD4、CD7、CD8、CD9、CD11a、CD11b、CD11c、CD15、CD16、CD19、CD20、CD28、CD32、CD36、CD42、CD43、CD45、CD56、CD57、CD61、CD74、CDw75。另外，本领域已知的其它技术可以被用作该方法的一部分用于分离祖细胞，包括但不限于：消融技术包括激光消融，密度分离，沉降率分离包括区带离心，细胞洗脱，选择性粘附，使用四唑盐的分子称量包括细胞称量，体积筛，选择性繁殖，选择性代谢抑制包括使用细胞毒素，以及多因素分离。
在本发明的一个优选实施例中，祖细胞从胚胎、儿童、青少年、或成人中获得。
本发明的一个优选实施例是，肝细胞在无血清、补充了激素的已知成分的培养基中选择性生长。更优选地，肝细胞在使用了一层滋养细胞层的培养物中选择性生长，那些滋养细胞是成纤维细胞或其它中胚层细胞衍生体。滋养细胞优选人、非人灵长类、猪、大鼠或小鼠的滋养细胞，但任何哺乳动物类、鸟类、爬虫类、两栖类、或鱼类的滋养细胞都是可接受的。尽管来自新生儿和成体组织的滋养细胞是可接受的，但滋养细胞为胚胎细胞是更优选的实施例。而更优选的实施例是，滋养细胞可以被克隆并因能够支持肝干细胞和祖细胞而被选择。本发明还要更优选的实施例是，肝干细胞和祖细胞在纯系生长条件下被培养，因而使之鉴定为肝细胞并以纯系来源的群体扩张。
本发明的一个优选实施例包括经典MHC I类阴性和ICAM-1阳性的哺乳动物肝祖细胞。双色分类法是分离双能细胞的方便方法：ICAM-1阳性和经典MHC I类阴性是确定这些细胞的两个参数。ICAM-1阳性细胞群包括造血细胞、间叶细胞、和成熟肝细胞。表达程度依细胞状态而相当不定(例如，活化或静息状态的细胞是不同的)。经典MHC I类抗原在从干细胞到成熟细胞的所有有核造血细胞上和在成熟肝细胞上表达(尽管成熟肝细胞较造血细胞表达少)。在大鼠胎肝中，经典MHC I类阴性的细胞包括：双能肝祖细胞、无核的成熟红细胞、和未确定的细胞群。此外，这些细胞可以表达非经典MHC I类。而且，祖细胞的后代可以表达甲胎蛋白、白蛋白、或CK19，还可以具有细胞在相互的顶部成堆生长，即簇样生长的生长特性。
本发明的实施例是，分离的祖细胞具有分裂和产生后代的能力。进一步优选的是，祖细胞能够超过大约10个有丝分裂周期。还要更优选的是，后代细胞是祖细胞或肝细胞和胆管细胞。此发明优选的实施例是，分离的肝干细胞和祖细胞通过选择性应用表皮生长因子(EGF)定型为肝细胞或胆管细胞系。
在优选的实施例中，该方法涉及选择另外表达甲胎蛋白和与甲胎蛋白特异性抗体结合的细胞。在另一个优选的实施例中，该方法涉及选择另外合成白蛋白和与白蛋白特异性抗体结合的细胞。
此发明还要更优选的实施例是，分离的干细胞和祖细胞被用作体外肝脏的组成成分。此发明更进一步优选的实施例是，含有分离的干细胞和祖细胞及其后代的体外肝脏被用来支持肝功能不全或衰竭患者的生命。
本发明公开了离体扩张肝祖细胞所需的特定培养条件，这里以来自胎儿的细胞为例。发明者选择了STO小鼠胚胎细胞亚系，它被证明作为滋养细胞是理想的。滋养细胞与新的、无血清、激素限定的培养基(HDM)联合应用。该组合使发明者能够从E15天大鼠的肝脏建立多种大鼠胎肝细胞系，而没有细胞的恶性转化。发明者公开了应用肝细胞系和HDM-STO共培养体系，以进行体外集落形成试验(CFA)来确定从肝脏组织新鲜分离的肝祖细胞的纯系生长潜能。当CFA与通过已确定的流式细胞仪图表分选的细胞结合时，可显示双能肝祖细胞。例如，来自E13天大鼠肝脏的具有高度生长潜能的祖细胞，相对于E11.5天的小鼠，其表现型是经典MHC I类(大鼠的RT1A区)阴性、OX18(MHCI类抗原上的单态抗原决定簇)微弱阳性、和ICAM-1阳性。RT1A阴性和OX18微弱阳性表现型相当于非经典MHC I类(MHC Ib类)微弱阳性。本发明公开的EGF影响祖细胞集落的生长及其成为肝细胞或胆管上皮细胞的结局。
6.实施例
                        术语表
经典MHC I类抗原。尽管在造血细胞上有最高的表达，此主要组织相容性抗原组通常主要在所有有核细胞上发现。此抗原也被认为是MDHC Ia类。经典MHC抗原的名称是种属的功能，例如在人类，MHC抗原被称为HLA。表3提供了几个种属中经典MHC抗原的名称。
非经典MHC I类抗原。这组主要组织相容性抗原组，也被认为是MHC Ib类，甚至在一个种属内也可以不同。非经典MHC抗原的名称依种属而不同，见例如表4。
ICAM。细胞间粘附分子-1(CD54)是膜糖蛋白和免疫球蛋白超家族的成员。ICAM-1的配体是β2-整合素、LFA-1(CD11a/CD18)和Mac-1(CD11b/CD18)。此分子对于白细胞附着内皮也是重要的。此外，ICAM-1在白细胞外渗中发挥作用。术语ICAM-1被用来命名哺乳动物中发现的这些分子的形式。术语ICAM或ICAM-1样被用来命名非哺乳类脊椎动物中的类似物和功能相关蛋白。
大批量去除操作(Debulking)。大批量去除操作(Debulking)是从细胞悬液中移除主要细胞群的步骤。在胎肝中，主要的非肝系细胞是红血细胞、巨噬细胞、单核细胞、粒细胞、淋巴细胞、巨核细胞、造血祖细胞和基质细胞。
微弱阳性。在荧光活化的细胞分选中，发射光的强度与荧光染料结合的连接在细胞上的免疫球蛋白分子数量成比例，依次与所研究的细胞表面抗原密度成比例。由于每个细胞的抗原表面密度或细胞内密度的范围可以从几个至数十万个，可以测到大范围的荧光强度。微弱阳性(或微弱)值是经验确定的，介于带有许多抗原的亮荧光细胞和特定抗原低表达的暗细胞的强度之间。强度也可以按照圈定(gate)或强度间隔来确定。微弱阳性表现型是抗原弱表达的特征。该表现型也被描述为弱或低表达。
纯系生长。在细胞培养中，纯系生长是单一原始细胞的反复有丝分裂，形成来自一个亲代细胞的细胞克隆。细胞克隆可以扩张形成细胞集落或簇。纯系生长也指支持单一细胞存活和有丝分裂的必要条件。这些条件通常包括丰富和复杂的基本营养培养基，不含血清，含有特定的生长因子和激素，限定化学特性的细胞外基质基层，和/或提供一种或多种生长因子、激素或基质成分的共培养细胞。
富集术语。术语“移除”是指分离、选择和留出以保留或丢弃。因此，可以通过意图是保留或丢弃的几种方法中选择任一种从混合细胞群中移除基质细胞。术语“分离”是指分开一大群细胞并分别保存。因此，可以从祖细胞和非祖细胞的混合细胞群中分离祖细胞。术语“纯化”是指分离除去不需要的成分。
簇样生长。肝祖细胞经常具有与众不同的特性，即细胞分裂并保持相互接近。祖细胞形成簇，其中一个细胞在另一个细胞上堆积。三维体积堆积细胞中的细胞邻近滋养细胞或其它祖细胞。细胞簇也称为P-集落或P-型集落，与细胞单层不同。
下面的实施例是本发明的举例说明，但本发明决不限于这些特殊实施例中。本领域的普通技术人员在这些实施例中会发现实现此发明的方法。而且，本领域的普通技术人员会认识到，大量替代的实施例在本发明的范围内。
6.1.肝干细胞和肝祖细胞的制备和分析
大鼠。从Charles River Breeding Laboratory(Wilmington，MA)获得怀孕的Fisher 344大鼠。为同步妊娠，动物在下午放在一起，观察到栓子的早晨被指定为0天。雄性Fisher 344大鼠(200-250g)被用于成体肝细胞。
从胚胎15天的肝脏建立肝细胞系。制备妊娠15天的胎肝。通过用0.05％胰蛋白酶和0.5mM EDTA或10单位/ml嗜热菌蛋白酶(Sigma，St.Louis，MO)和100单位/ml脱氧核糖核酸酶I(Sigma)在37℃孵育肝脏获得了单细胞悬液。细胞铺在Ficoll-paque(PharmaciaBiotech，Uppsala，Sweden)上，以450g进行梯度密度离心15min。将底部组分的细胞接种进组织培养皿中，对thl120-3和rter6或rhel4321，培养皿分别用17mg/ml IV型胶原蛋白(CollaborativeBiomedical Products，Bedford，MA)或12μg/ml层粘连蛋白(Collaborative Biomedical Products)被覆。无血清激素限定培养基，HDM，是Dulbecco改良Eagle培养基和Ham F12(DMEM/F12，GIBCO/BRL，Grand Island，NY)的1∶1混合物，其中添加了20ng/ml EGF(Collaborative Biomedical Products)、5μg/ml胰岛素(Sigma)、10-7M地塞米松(Sigma)、10μg/ml铁饱和的转铁蛋白(Sigma)、4.4×10-3M烟酰胺、0.2％牛血清白蛋白(Sigma)、5×10-5M 2-巯基乙醇(Sigma)、7.6μeq/l游离脂肪酸、2×10-3M谷氨酰胺(GIBCO/BRL)、1×10-6M CuSO4、3×10-8M H2SeO3和抗生素。给出的每个浓度是培养基中的终浓度。培养4周后，胰蛋白酶消化的细胞在滋养层上培养，滋养细胞是丝裂霉素C处理的STO小鼠胚胎成纤维细胞系(American Type Culture Collection，Rockville MD)。Thl120-3、rter6和rhel4321是从胎肝细胞的三个独立标本中克隆的并用HDM保存在STO滋养细胞上。在细胞系建立后，所有细胞培养物的EGF浓度减至10ng/ml。
E13胎肝的游离。胎肝被切碎，置入冰冷的含10mM HEPES、0.8mMMgSO4和1mM EGTA(pH7.4)的无Ca++HBSS中。肝脏用0.2％IV型胶原酶(Sigma)和16.5单位/ml嗜热菌蛋白酶(Sigma)的HBSS溶液粉碎，HBSS用10mM HEPES、0.8mM MgSO4和1mM CaCl2制备。在37℃孵育10min后，细胞悬液用0.025％胰蛋白酶和2.5mM EDTA(Sigma)消化10min。然后，通过添加1mg/ml胰蛋白酶抑制剂(Sigma)抑制胰蛋白酶。最终，用200单位/ml脱氧核糖核酸酶I(Sigma)处理细胞。在所有实验中，每个肝脏获得了3-5×105个细胞。
成体肝细胞的分离。进行两步肝灌注法分离肝细胞。灌注后，以50g离心细胞1min两次以浓缩大的实质细胞。用台盼蓝排除法检测细胞活力＞90％。
细胞粘附试验。用0.3至10μg/ml的纤维连接蛋白(Collaborative Biomedical Products)、层粘连蛋白和IV型胶原包被的96孔微滴板(Corning，Cambridge，MA)评价细胞与其的粘附。通过200g 15min的Percoll(Pharmacia Biotech)梯度密度离心移除STO细胞后，3×104的肝细胞系、thl120-3、rter6和rhel4321在每孔内用HDM培养10小时。冲洗两次移除飘浮细胞后，添加含有四唑盐WST-1(Boehringer Mannheim，Indianapolis，IN)的新鲜培养基以检测变化的粘附细胞的数量。4小时后，根据生产厂商的方案测定吸光率。
STO亚系。来自ATCC的100个亲代STO细胞，在100mm培养皿中，用含10％热灭活胎牛血清、2×10-3M谷氨酰胺、5×10-5M 2-巯基乙醇和抗生素补充的DMEM/F12，培养7天。选择4个亚克隆以根据细胞形态和生长速度进一步鉴定。尽管在4个亚克隆中进行了rter6.的CFA，其中之一，STO6，在丝裂霉素C处理后不再与培养板附着。用Dr.J.M.Adama，The Walter and Eliza Hall Institute of MedicalResearch惠赠的pEF-Hlx-MClneo或pEF-MClneo转染一个亚克隆STO5。用DOSPER脂质体转染试剂(Boehringer Mannheim)在Nde I位点向细胞内导入线性质粒。G418选择后，分离6个克隆。三个克隆的每一个都用CFA分析。
集落的免疫组化染色。培养板在甲醇—丙酮(1∶1)中室温固定2min，冲洗并用含20％山羊血清(GIBCO/BRL)的Hanks平衡盐溶液(HBSS)4℃阻断。对甲胎蛋白和白蛋白的双免疫组化，培养板用抗大鼠白蛋白抗体(ICN Biomedicals，Costa Mesa，CA)孵育，接着用得克萨斯红结合的抗兔IgG(Vector laboratories，Burlingame，CA)和FITC结合的抗大鼠甲胎蛋白多克隆抗体(NordicImmunology，Tilburg，Netherlands)孵育。为双标记白蛋白和CK19，抗CK19单克隆抗体(Amersham，Buckinghamshire，England)和FITC结合的抗小鼠IgG(Caltag，Burlingame，CA)被用来代替抗甲胎蛋白抗体。
流式细胞仪分析。细胞在FACScan(Becton-Dickinson，MountainView，CA)上分析，并用Moflow流式细胞仪(Cytomation，FortCollins，CO)分类。来自E13胎肝的细胞悬液用含20％山羊血清(GIBCO/BRL)和1％硬骨鱼明胶(Sigma)的HBSS在冰上孵育，以防止非特异的抗体结合。冲洗后，细胞用FITC结合的抗大鼠RT1Aa，b，l抗体B5(Pharmingen，San Diego，CA)和PE结合的抗大鼠ICAM-1抗体1A29(Pharmingen)重悬浮。在一些实验中，细胞用生物素化抗大鼠单态MHC I类抗体OX18(Pharmingen)染色，然后用抗生物素蛋白链菌素—红670(GIBCO/BRL)第二次染色以进行三重染色。所有染色都用冰冷的含10mM HEPES、0.8mM MgSO4、0.2mM EGTA和0.2％BSA(pH7.4)的无Ca++HBSS进行。建立的三个肝细胞系被胰蛋白酶化，并通过Percoll密度梯度离心分馏以去除滋养细胞。大鼠肝癌细胞系FTO-2B和大鼠肝上皮细胞系WB-F344以及成体肝细胞被染色，以与胎肝细胞系比较。细胞系分别由Dr.R.E.K.Fournier，Fred Hutchinson CancerResearch Center，Seattle，WA和Dr.M.-S.Tsao，University of NorthCarolina，Chapel Hill，NC惠赠。细胞用FITC结合的B5、.OX18，PE结合的1A29或抗FITC结合的大鼠整合素β1抗体Ha2/5(Pharmingen)阻断和染色。FITC结合的抗小鼠IgG被用于OX18。三个胎肝细胞系的细胞悬液用生物素化抗小鼠CD98染色，随后用抗生物素蛋白链菌素—红670以及抗大鼠单克隆抗体(moAb)二次染色以控制出小鼠细胞群。
肝细胞系、分选的细胞和成体肝细胞的CFA。肝细胞系以每9.6cm2500细胞分三份铺于丝裂霉素C处理的STO滋养细胞层上，使用与维持每个细胞系相同的HDM。在铺板之前，细胞被胰蛋白酶消化，并通过Percoll密度梯度离心分馏以去除滋养细胞。培养物孵育10至14天，每隔一天换一次培养基。然后进行甲胎蛋白和白蛋白的双重免疫荧光染色。通过集落形态，P或F型，以及甲胎蛋白和白蛋白的表达分析集落，每孔100个集落。用Diff-Quick(Baxter，McGaw Park，IL)染色集落以计算每孔的集落数。在初步分选的细胞和成体肝细胞的CFA中，铺置的细胞数量按所描述的进行改变。作为另一个较小的修改，培养时间延长到14至17天之间，且地塞米松的浓度增至10-6M。所有其它的步骤如上进行。在成体肝细胞的CFA中，少量肝细胞块没有在制备后从细胞悬液中去除。因此，可能从细胞块中产生不确定数量的集落。对分选细胞上胆管分化的CFA，在存在或缺少EGF的每个培养物中，在第5天进行集落的白蛋白和CK19双重免疫荧光染色。在培养的第5天，超过一个CK19+细胞的任何集落被计算为CK19+集落。在第10和15天，含有多簇两个CK19+细胞或一簇超过三个CK19+细胞的集落被计算为CK19+集落。每孔大约计算100个集落。每个点代表来自三重染色簇的均数±标准差。
6.2用激素限定培养基使用小鼠胚胎细胞滋养层产生和鉴定大鼠胎肝细胞系
尝试对大鼠E15肝细胞进行单纯长期培养以观察胎肝细胞能够体外维持和扩张产生后代的时间。经过梯度密度离心取出造血单核细胞后，胎肝细胞在被覆IV型胶原或层粘连蛋白的培养皿中用HDM培养(见实例6.1)。细胞良好地存活4周以上。但在IV型胶原或层粘连蛋白被覆的新培养皿上继代培养并不能继续扩张。当丝裂霉素C处理的STO胚胎小鼠成纤维细胞系被用作继代培养的滋养层时，可生长出许多细胞集落。从4个独立的实验中最终建立了几个稳定的肝细胞系。
在克隆细胞系之前，在连续生长的细胞群中进行甲胎蛋白和白蛋白的免疫组织化学分析。两种蛋白，甲胎蛋白和白蛋白被用作标记物来证实这些细胞群来自肝细胞系。有形成细胞团趋势的细胞群，称为P-集落，具有强烈表达的甲胎蛋白和白蛋白，而另一个集落则产生扁平的单层，称为F-集落，甲胎蛋白表达减少，不表达白蛋白。胚胎小鼠成纤维细胞，STO，未显示对两种抗体的任何反应性。为了进一步分析，根据P型或F型集落的形态学标准从不同的实验中选择出三个克隆肝细胞系(图1A-1C)。Rhel4321(图1A)主要由成堆的小细胞组成，P型集落，而thl120-3(图1C)则仅形成扁平单层的F型集落。Rter6(图1B)是这两种类型的中间表现型。有趣的是，rter6的不均一性在经过扁平集落的三轮连续克隆后仍然可观察到。为了观察来自rhel4321和rter6中单个细胞的集落的不均一性，细胞在STO成纤维细胞上，以每9.6cm2(6孔板的一个孔)500个细胞的密度培养10至14天。然后根据其形态学和甲胎蛋白和白蛋白的表达来确定集落的特性。图2A-2F显示了结果。在细胞系rhel4321(图2B)和Rter6(图2C)中以及克隆前的初始细胞群中(图2A)，几乎所有的P型集落强烈地表达甲胎蛋白，而F型集落细胞则不表达。而且，甲胎蛋白和白蛋白的强烈表达仅在P型集落中观察到。克隆肝细胞系的形态学差异与P型集落的百分比相关(图2B和图2C)。在rter6和rhel4321的CFA中P型集落的百分比分别为33.3％(±8.6％SD)和65.7％(±4.0％SD)。计数每孔的总集落数目以计算纯系生长的效率(集落效率)。Rter6和rhel4321的效率分别为45.7％(±1.3％SD)和36.4％(±1.1％SD)。thl120-3细胞沿着其外侧缘互相紧密贴附，使制备单细胞悬液很困难。但是，thl120-3细胞并不产生堆积的集落(图1C)。
下一步，检测每种细胞系粘附细胞外基质(ECM)特定成分的偏嗜，因为小鼠肝细胞与这些ECM蛋白如层粘连蛋白、IV型胶原和纤维连接蛋白的粘附在不同发育期中是改变的。而IV型胶原在thl120-3(图1C)的贴附中是最有效的，类似于在成体肝细胞中的发现，而对rter6(图1B)和rhel4321(图1A)的效果次之。层粘连蛋白对于rthl4321的贴附是最有效的支持物(图1A)。这种偏嗜类似于小鼠胎肝细胞的原代培养(Hirata等人，1983)。总之，甲胎蛋白和白蛋白在P型集落中的保守表达，以及rthl4321与层粘连蛋白的优先粘附，表明产生P型集落的细胞群与肝脏祖细胞更确实地相关。
6.3为集落形成实验分离STO亚克隆：肝脏祖细胞实验
为了形成CFA系统以鉴定具有高度生长潜能的双能肝脏祖细胞，培养系统必须能够在克隆接种密度下支持细胞扩张，并保留重要的原始肝脏功能。白蛋白和甲胎蛋白是早期肝脏发育的最显著标记物中的两个。P型集落的优化培养条件应该是最佳的，因为P型，但不是F型集落在纯系扩张过程中维持甲胎蛋白和白蛋白的表达。因此，就其支持rter6的P型集落对STO亚克隆进行了比较。这些克隆中的一个，STO5，较任何其他亚系和亲代细胞系更支持P型集落形成(图2D)。Rhel4321的CFA也证实了STO5较亲代STO是更有效的滋养层(图2E)。小鼠H1x基因产物，在来自E10.5的内衬消化道的间充质细胞中表达，对胎肝细胞扩张是重要的。尽管H1x基因的mRNA表达在所有STO亚克隆中被分析，但在亚克隆间其表达没有显著的差异(数据未显示)。而且，在STO5中，小鼠H1x的稳定转染体并不引起集落形成实验的改善(图2F)。但是转染体中的一个克隆被用来进行进一步实验，因为该转染体在相对高的代数时，更稳定地持久维持STO5的原始形态学。
6.4采用表面抗原标记物和集落形成实验从E13胎肝中鉴定肝脏祖细胞
肝细胞生成和大量的血细胞生成可同时存在于胎肝中。到目前为止，血细胞生成祖细胞的抗原性全貌已经被广泛的分析，而对于早期肝脏祖细胞的研究仍然处于起步阶段。肝脏细胞的抗原性全貌可采用在本研究中建立的三种肝细胞系来进行分析，它们是成体肝癌细胞系(FTO-2B)，来自成年大鼠肝脏的上皮细胞系(WB-F344)，和新鲜分离的成体肝细胞(图3A-3X)。与FTO-2B，WB-F344和成体细胞相比，大部分未成熟的胎肝细胞系，rhel4321的表达图谱是非常独特的，因为它没有经典的MHC I类(RT1A1)的表达(图3A)。细胞系thl120-3在RT1A1(图3I)，OX18(pan-MHC I类)(图3J)和ICAM-1(图3K)的表达图谱上类似于rhel4321，而rter6则具有非常高的RT1A1(图3E)和OX18(图3F)的表达。另外，来自一个不同实验中的另一个细胞系，与rhel4321(图1A-1D)具有相同的形态学，也是RT1A1-，OX18dull，和ICAM-1+。整合素b1的表达在所有细胞系中是相似的，而RT1Aa，b，l和ICAM-1的表达图谱在它们中则是独特的。成体肝细胞的抗原性全貌是RT1A1+(图3U)，OX18+(图3V)和ICAM-1+(图3W)。因此，在成年大鼠中，所有的骨髓细胞除了成熟的红细胞外都强烈的表达MHC I类分子，胎肝细胞群可根据MHC I类的表达从造血细胞群中分离出来。来自大鼠E13肝脏的细胞悬液用抗RT1A1和ICAM-1抗体进行染色。图4A1至4A2显示了RT1A1和ICAM-1的双色染色图谱。为了确定哪个组分中含有肝细胞群，5个组分(图4B-1至4B-5)通过荧光活化的细胞分选进行分离，然后通过CFA选择纯系生长潜能。图4B-1至4B-5代表了经过分选后5个组分重新分选的结果。肝细胞集落，通过白蛋白和甲胎蛋白的表达来确定，在形态学上也是可以区分的，可以对每孔中肝细胞集落的数目进行计数。大多数肝细胞集落可在圈定RT1A1dull和ICAM-1+(表1，图4B-2，即圈定2)中被检测出来，P型集落的频率为75.6％(±4.9％SD)。圈定1(图4B-1)显示了更少数目的集落，其他的片段含有可忽略数目的具有集落形成能力的细胞。在圈定1和2中，甲胎蛋白和白蛋白两者的表达可在所有肝细胞集落中被证实。来自圈定2细胞的一些集落较其他的更大。为了详细研究肝细胞上MHC I类的表达，用RT1A1，ICAM-1，和OX18的三色染色进行侧向散射(SSC)作为另一个参数来进行细胞分级分离。侧向散射(SSC)，细胞粒度的反射图，是一个从造血细胞中分离肝细胞的有用参数，因为胎肝细胞在早至妊娠E11时就含有脂滴。图4C-1至4C-5显示圈定2含有最多数目的集落形成细胞。基于SSC圈定R2，对应于圈定2的种群明显显示为RT1A1-和OX18dull表现型(图4C-1至4C-5和图4D-1至4D-4)。CFA证实了R4较圈定2能够吸附更多的集落形成细胞(表1)。这些结果表明来自E13大鼠肝脏的RT1A1-，OX18dull，和ICAM-1+种群是产生甲胎蛋白+和白蛋白+集落的肝细胞。对于rhel4321细胞发现了相同的抗原性全貌(图3A至3D)。
表1.根据RT1A和ICAM-1的表达来自分选的E13胎肝中肝细胞集落的频率
  圈定12345   接种的细胞(每孔)1000500500050005000   肝细胞集落(每孔)8.7±4.0136.3±4610.0±7.96.3±0.65.0±1.0   集落形成的效率(％)0.87270.130.130.10
  R3R4   1000500   7.0±2.6269.3±9.8   0.7054
在含有STO5h1x上的形成集落的培养物表明来自E13胎肝的每个组分的细胞数目。肝细胞集落的数目是从三重染色的培养物中建立的(均数±SD)。集落形成效率表示了接种进行培养，在经16天培养后形成可被分析的集落的细胞的百分比。
6.5 E13肝细胞和成体肝细胞的不同生长需求
从E13肝脏中分选出来的肝细胞的生长需求采用已确定的STO5滋养层和HDM进行研究。EGF很长时间被认为是一个成体肝细胞的有效生长因子。因此，要研究EGF对分选的肝细胞的集落形成的效果。RT1A1-OX18dull，ICAM-1+肝细胞的集落大小在缺乏EGF时变得更大，而成体肝细胞仅在EGF存在的情况下能生成集落(图5A)。而且，来自成体肝细胞的集落形态学是经典的F型，而所有的RT1A1-肝细胞不需要EGF就可产生P型的集落。但是，在缺少EGF的情况下集落效率略有下降(图6A)。有趣的是，缺少EGF的培养条件主要支持两种类型的P-集落，P1和P2。尽管在培养的第12天，大多数集落是P2类型，但准确区分两种类型是很困难的，因为它们中的一些集落并没有经典的形态学。这些结果表明胎肝细胞和成体肝细胞在生长需求以及RT1A1(图3和4)的表达和集落形态学上具有本质上的不同。
培养3周后，当生长看上去达到最大程度时，评价RT1A1-，OX18和ICAM-1的表达。如在图5B至5D中所示，RT1A1的表达并未被诱导，而OX18的表达则减少。ICAM-1的水平没有改变。而且，单个集落的平均细胞数可从回收的细胞数目，大鼠肝细胞的百分比和集落效率进行计算。估计的细胞数可达3至4×103(表2)。这表明在这种培养条件下单个细胞形成的集落平均可分裂大约11-12次。
表2.在单个肝细胞集落中计算的细胞数
  接种的细胞数   接种密度(细胞/厘米2)   培养时间(天)   回收的细胞数   大鼠细胞的百分比(％)   集落效率(％)   单个集落中的平均细胞数目
  500   18   18   1.5×106   58   41   4.2×103
  40004000   5151   2120   6.0×1064.0×106   9069   4421   3.1×1033.3×103
在图4C-5中从R4中分选的细胞培养在60mm或100mm培养皿中的STO5h1x滋养层细胞上。在培养细胞指定时期后，回收细胞并计数总细胞数目。根据大鼠ICAM-1和小鼠CD98的表达从流式细胞仪分析中计算大鼠细胞的百分比。集落效率表明了接种培养能形成集落的细胞的百分比。来自三重染色培养物的数据(均数)是从平行进行的试验中获得。
在单个集落中细胞的平均数目＝(回收的细胞数×大鼠细胞百分比/100)/接种细胞数×集落效率/100)
6.6 RT1A1-肝脏祖细胞中双能性的证据
在大鼠E13妊娠中，肝细胞被认为是双能的祖细胞，可产生成熟的肝细胞和胆管上皮细胞。但是，在本发明的发现之前，还没有直接的证据证明这两种转归是否来自单个细胞。为了确定是否RT1A1-OX18dull ICAM-1+胎肝细胞可在这种培养系统中分化成为胆系细胞，这些集落用抗CK19作为胆管上皮细胞的特定标记物进行染色。CK19在大鼠胎肝的15.5天后表达在胆管上皮祖细胞上，此时在细胞上白蛋白的表达消失了。分选的RT1A1- ICAM-1+细胞在存在或缺少EGF的情况下进行培养，它们的转归在培养5天后用CK19和白蛋白的表达进行监测。第一个5天后，在用EGF处理的培养物中CK19+集落消失了，而少量含有CK19+细胞的集落出现在缺少EGF的培养物中(图6a至6b)。尽管CK19表达的密度很微弱，CK19+细胞显示了白蛋白的表达降低。在培养的第10天，如图6a至6b中显示，一些集落明显仅表达CK19或白蛋白，其他则有双重阳性表达。在单个集落中CK19+和白蛋白+细胞的图谱是相反的。双重阳性集落和CK19单阳性集落的数目在缺少EGF时仍然是更高的(图6a)。在EGF存在时，许多集落在第10天仅含有白蛋白+细胞(图6b)。最后，在缺少EGF的第15天时，双重阳性集落的百分比达到近100％(图6a)。总之，在培养过程中EGF极大程度地抑制了CK19+集落的出现(图6b)。这些结果表明来自E13胎肝的RT1A1-，0X18dull和ICAM-1+细胞可朝向胆系细胞分化，其转归在体外受EGF影响(图7)。
6.7 采用ICAM抗体和经典的MHC I类抗原决定簇的抗体分离人和非人的肝前体细胞(precursor)。
经典的MHC I类抗原的分子结构和生物学功能在脊椎动物中是高度保守的，ICAM抗原也是一样。但是，MHC抗原在无脊椎动物中并未发现。MHC抗原是脊椎动物种属中最广泛研究的分子。尽管对ICAM抗原的信息了解有限，但在许多哺乳动物如人，小鼠和大鼠中ICAM抗原的生物学功能是保守的。到目前为止，ICAM-1互补DNA已经在人，黑猩猩，小鼠，大鼠，狗和牛中被克隆。从序列的数据中得出结论，在所有种属中分子结构是高度保守的。因此，通过在特定种属中选择ICAM-1特异的抗体和根据下表设计的I类MHC抗原的抗体，可分离富集肝祖细胞的细胞群。
表3.主要组织相容性抗原-术语
 种属   大鼠   小鼠   人
 MHC   RT1   H-2   HLA
 经典的MHC I类非经典的MHC I类   AC/E，M   K，D，LTL，Q，M   A，B，CE，F，G，H，J，X
OX18可识别大鼠MHC I类抗原的一个单态抗原决定簇。因此，抗体可识别非经典的MHC I类以及经典的MHC I类。非经典的MHC I类位点的确切数目在任何物种中都是不确定的，因为在同一物种的个体中它是可变的。因此，未来在这些物种的亚群中可能会发现作为一个非经典的MHC I类的新的位点。
本发明的一个实施例是一个预测肝祖细胞的表现型的方法。这种特征在多种物种的关键细胞表面标记物的表格中可被说明。
表4.根据本发明，肝祖细胞的标记物
 种属   大鼠   小鼠   人
 经典的MHC I类   RT1A-阴性   H-2K阴性和/或H-2D阴性和/或H-2L阴性   HLA-A阴性和/或HLA-B阴性和/或HLA-C阴性
 非经典的MHCI类   C/E和/或M微弱阳性   TL和/或Q和/或M微弱阳性   E，F，G，H，J，和/或X微弱阳性
  ICAM-1   阳性   阳性   阳性
6.8大鼠双能肝祖细胞的特性和与成体肝细胞的比较
表5.大鼠细胞的细胞表面和内部标记物
  标记物   双能肝脏细胞   成体肝细胞**
  来自新分离细胞的数据
  ICAM-1   +   +
  CD90(Thy-1)   -   -
  CD44H   +   -*
  MHC I类(RT1A1)   -   +
  OX18   微弱   +
  来自培养细胞的数据
  甲胎蛋白   +   +在大多数集落的几个细胞中
  白蛋白   +EGF：许多细胞阳性-EGF：较少细胞阳性   +
  CK19   +EGF：很少细胞阳性-EGF：许多是阳性的   -***
EGF＝表皮细胞生长因子，当加入至培养条件时，似乎可以驱使细胞向肝细胞系分化，并可阻断胆系细胞的发育。缺乏EGF，可自发地向胆系和肝细胞系分化。
*其他报道已经显示成体肝细胞和成体胆管上皮是CD44E(Cruishank SM等人，J Clin Pathol 1999 52：730-734)和CD 90(Gordon G等人，American Journal of Pathology 157：771-786)阴性的。
**成体肝细胞是可在上述的特定条件下通过在培养中增生性生长而增殖的细胞。
***CK19在体内并不在成体肝细胞上表达。但是，在成体肝细胞的任何培养中，可以观察到一个或两个细胞表达CK19，但培养条件没有明显的诱导性，在阳性和阴性细胞之间没有形态学的差别。这与胎肝的体内观察和在肝脏双能细胞培养物和其他胎肝细胞中的观察相反。
6.9人胎肝细胞的抗原表现型
人胎肝细胞用CD14的抗体进行染色。通过HLA(ABC)对比CD14的双色细胞分选可鉴定出几种细胞群。这些种群包括指定为R2的组别，该组的特征是中等HLA染色，无CD14染色，另一个指定为R3的组别，其特征是很高的CD14染色和很高的HLA染色。当用甲胎蛋白染色时，R3细胞是甲胎蛋白阳性的，R2含有两种亚群，其中仅有一个对AFP能够染色。
6.10使用包括非经典的MHC I类、甲胎蛋白、白蛋白和CK19的表达标记物的抗体进一步分离人肝前体细胞。
为了选择单态抗原决定簇，细胞悬液用与HLA I类单态抗原决定簇抗体交联的荧光素孵育。本领域的专业技术人员将能理解其他的荧光染料也可用来代替荧光素，包括但不限于若丹明和得克萨斯红。作为一种可选择的方法，间接免疫荧光可用来标记细胞。即，荧光标记可与针对产生一抗种属的免疫球蛋白的抗体交联。细胞样品通过高通量荧光激活的细胞分选采用多种市售或定制的细胞分选仪器来进行分选。对标记的抗单态抗原决定簇有中等或微弱荧光的肝祖细胞可被选择出来。
采用抗CD44H抗体通过分选肝细胞悬液，也可很方便的制备富集大鼠肝祖细胞的组合物。显示有很高的侧向散射水平的肝细胞也表达CD44H和甲胎蛋白。特别的是，表达甲胎蛋白的细胞也表达较高水平的CD44H。相反，具有低水平侧向散射的肝细胞并不表达更高水平的CD44。
显示有高水平侧向散射的肝细胞在甲胎蛋白表达方面并没有显示有CD90依赖性的特性。但是，显示低水平的侧向散射的细胞在甲胎蛋白表达方面显示有CD90依赖性的差异。特别的是，表达甲胎蛋白也表达更高水平的CD90。
作为一种可选择的方法，多态抗原决定簇的特异抗体，包括但不限于，HLA-A2，HLA-B27和HLA-Bw22被用来鉴定和分离肝祖细胞。
而且，非经典的HLA I类抗原特异抗体，包括HLA-G，HLA-E和HLA-F，用来鉴定和分离表达该抗原的肝祖细胞。
很显然这些方法可很容易的适用于非哺乳动物肝祖细胞。
6.11采用高通量亲合性分离方法，使用包括甲胎蛋白、白蛋白、非经典的MHC I类和CK19的表达标记物的抗体进一步分离人肝前体细胞
分离的步骤以图解的形式表示如下：
            分离人肝前体细胞的图解
通过物理的方法和/或酶消化从人组织中制备单细胞悬液
                       ↓
使用裂解液进行大批量去除操作以去除红细胞
                       ↓
反向去除表达高水平经典的MHC I类HLA-A，B，和/或C的非肝祖细胞群
                       ↓
分离表达ICAM-1的肝前体细胞
                       ↓
通过微弱表达包括HLA-E，F，G，H，J，X的非经典的MHC I类抗原进一步分离肝前体细胞
                       ↓
通过与非实质细胞相关的高侧向散射，表达甲胎蛋白，白蛋白或CK19的后代的产量，或纯系生长潜能，或几种步骤的组合来进一步分离肝前体细胞
大批量去除操作和消除红细胞成分的其他方法可很方便的使用，这些方法也可减少一些基质细胞群。这些方法包括以Percoll梯度来进行分离，采用血型糖蛋白A，CD45或两者的抗体来进行特异的耗竭。而且，这些方法包括沉降速度，以密度梯度分离而不是Percoll，如Ficoll，区带离心和细胞淘析。通过这些方法，红细胞，多倍体肝细胞.造血细胞和基质细胞可被去除。
ICAM-1阳性和经典的MHC I类抗原阴性的细胞群的分离可进一步采用其他标记物的特征，这些标记物包括鉴定肝祖细胞的非经典的MHCI类。另外，这些祖细胞的后代用胞质蛋白如甲胎蛋白和/或白蛋白的抗体标记，这些标记物很长时间以来被认为是肝祖细胞的特征。甲胎蛋白和白蛋白是肝祖细胞已知标记物中的代表，不能用来选择活细胞，因为用这些蛋白标记细胞需要增加细胞的通透性，该过程可破坏细胞的活力。但是来自细胞群的细胞样品可进行甲胎蛋白，白蛋白和细胞角蛋白的检测。因此，可以推断整个细胞群的特征。但细胞表面标记物(如ICAM-1阳性，OX18弱阳性，经典的MHC I类阴性)和采用胞质标记物甲胎蛋白，白蛋白或CK19表示的纯系生长能力之间的高相关性证明活细胞可采用单独使用表面标记物选择的方法来分离。
6.12采用侧向散射进一步分离人肝前体细胞。
侧向散射就其本身来说，不能用来鉴定细胞的类型如肝前体细胞。但它作为其他选择方法的辅助方法确实非常有用的，这些选择方法如针对标记物的荧光激活细胞分选。对于由给定标记物如经典的MHC I类，鉴定的群体，可以通过其侧向散射特性来详细确定一个亚群(见图4c)。
认识到这一点是很重要的：成熟的肝细胞是高度粒状的(显示非常高的侧向散射)；肝祖细胞在粒度上是中等的；非实质细胞群较肝前体细胞粒度更少。在来自胎儿组织的细胞中，几乎完全包括非实质细胞和肝祖细胞，肝祖细胞具有最高的粒度。肝祖细胞通过流式细胞仪作为中等粒度的细胞群被选择出来。
在富集人肝祖细胞的组合物也可采用CD14抗体结合人类的MHC，HLA的抗体，通过分选肝细胞悬液很方便地被制备。所有免疫选择的方法都是同样可应用的。作为一个特殊的实例，流式细胞仪被用来分离细胞：表达相对中等量水平HLA，不表达CD14的细胞指定为R2，表达相对高水平HLA和相对高水平CD14的细胞指定为R3。通过甲胎蛋白的表达R2细胞进一步被定性为具有两个亚群。R3细胞被进一步定性为仅含有表达甲胎蛋白的细胞。
6.13通过血型糖蛋白A或CD45抗体阴性选择，去除非肝祖细胞。
通过使用单克隆抗体(人的血型糖蛋白A)将肝祖细胞和红细胞分离开；如果没有单克隆抗体，可使用红细胞抗原的多克隆抗血清。表达普通白细胞抗原(CD45)的细胞也可表达经典的MHC I类抗原。因此，由于存在不存在的情况，所以CD45不是一个可用来鉴定啮齿类动物肝祖细胞的抗原，但可用作通过经典的MHC I类进行的阴性选择的替代或补充。
6.14肝癌的确定和对治疗的反应
我们用来鉴定肝祖细胞的标记物包括非经典的HLA I类抗原，ICAM-1和甲胎蛋白，可用来定性肝癌，以便更好的确定对癌症的成功治疗行为。一般来说，癌症是干细胞和早期的祖细胞群的转化株。但这些转化株经常保留了其正常对应细胞株的抗原标记物的表达。肝癌可被这些抗原标记物辨别，可以以很明确的方式来确定癌症对肿瘤治疗方法的反应(如化疗药物、放射和辅助治疗)。
6.15 确定和选择胚胎干细胞
在此描述的标记物和选择的方法学也可用于鉴定胚胎干细胞(ES)分化的某种转归。ES细胞正在逐渐流行成为万能干细胞，用来重建任何组织。但是，过去的研究中将ES细胞注射至组织中可导致肿瘤，有些是恶性的。ES细胞在临床上应用的仅有方式是分化成决定的干细胞，然后注射这些决定的干细胞。因此胚胎干细胞在可允许增殖形成后代的培养条件下维持在细胞培养中。ES后代在与经典的MHC I类和ICAM-1抗原的抗体孵育后进行流式细胞仪分析。满足肝祖细胞标准的ES后代在细胞培养中继续传代。我们已经鉴定的标记物可用来确定一种已决定干细胞的肝细胞转归。
6.16与基因治疗一起使用
在此鉴定的肝祖细胞的标记物可用来鉴定基因治疗的细胞群。目前，基因治疗经常对靶向成熟细胞群不太准确或不太理想。目前基因治疗主要的成功是离体的造血祖细胞群中的基因治疗。因此，可使用采用我们的方法分离的肝决定干细胞和祖细胞来进行肝的离体基因治疗。涉及“靶向的可注射的载体”的基因治疗也可通过集中在这种靶向肝祖细胞而得到改善。以这种方法，可改善天生的代谢障碍，包括血友病，呼吸链复合体I缺陷，苯丙酮尿症，半乳糖血症，肝肾酪氨酸血症，遗传性果糖不耐症，威尔逊病，血色素沉着症，内质网贮积病，I型高草酸尿症，3β-羟基-δ5-C27-类固醇脱氢酶缺陷，糖原贮积病(包括葡萄糖-6-磷酸酶，葡萄糖-6-磷酸酶易位酶，脱分支酶，肝磷酸化酶和磷酸化酶-b-激酶缺陷)，脂肪酸氧化或转移缺陷(包括有机酸尿症，酰基-CoA脱氢酶缺陷)，卟啉症和胆红素尿苷二磷酸盐葡萄糖醛酸转移酶。
肝祖细胞可如下用来进行基因治疗：
苯丙酮尿症(PKU)是一种肝脏苯丙氨酸羟化酶(PAH)缺陷引起的常染色体退行性疾病。PAH用四氢生物喋呤作为辅因子催化苯丙氨酸转化为酪氨酸。PKU患者显示严重的智力低下，由于体液中苯丙氨酸的量增加导致皮肤、毛发和眼睛低色素沉着。尽管严格的饮食限制可明显降低血清苯丙氨酸水平，减少并发症，但即使在青年或早期成年期，经常可导致智力和行为能力的下降。基因治疗技术是一种PKU饮食治疗的可替代方法。PKU的突变体小鼠Pahenu2的发育可加速尝试这种方法的效果。到目前为止，已经开发了三种不同的载体系统，重组腺病毒，逆转录病毒和DNA/蛋白复合体。由于对重组病毒的宿主免疫反应，腺病毒介导的基因转移的效果在注射后仅持续很短的时期。尽管重组逆转录病毒和DNA/蛋白复合体可在体外有效的转导PAH缺陷肝细胞，但这种离体方法的临床应用基本上是受限制的，因为能成功的再种植至肝脏的细胞数目很少。采用高生长潜能的肝祖细胞可消除上述提及的问题。
        采用自体肝祖细胞的离体基因治疗的图解
从PKU患者中分离肝祖细胞(或为实验性研究，从PAH缺陷小鼠Pahenu2中分离)
                       ↓
用人PAH cDNA和新霉素抗性基因转导细胞，以通过病毒或非病毒法G418选择。
                       ↓
与G418一起在含有新霉素抗性基因的滋养层细胞上离体扩张细胞7-14天。
                       ↓
用分散酶收获细胞。这种链霉蛋白酶对滋养层细胞无效。因此，仅有含PAH cDNA和新霉素抗性的肝祖细胞可从培养物中被收获。
                       ↓
将细胞通过门静脉或脾输入至宿主的肝脏中。
6.17双能肝祖细胞在细胞治疗中的用途
肝衰的大鼠模型被用来评价异源性细胞移植治疗。肝衰模型的制备是通过手术去除大约70％的肝脏，并结扎胆总管，实验组中为10只雄性大鼠(体重125至160g)。10只年龄和性别相匹配的大鼠作为假手术组进行同样的麻醉，中线剖腹手术，并对肝脏进行操作，但不结扎胆总管，也不进行肝脏切除术。
如上所述制备富集肝前体细胞的细胞群。简言之，12只大鼠仔胚胎(胚胎第14天)的肝脏被无菌去除，切碎，在无钙镁的1mM EDTA的Hank缓冲溶液，pH 7.0中漂洗，然后在含有0.5mg/ml胶原酶的Hank缓冲溶液中孵育多达20分钟，产生近似的单细胞悬液。
采用上述方法的任何一种来制备双能肝祖细胞。
在肝切除术或假手术后第3天，实验组和假手术对照组的大鼠在腹部作5毫米的切口以暴露脾脏。在实验组和假手术对照组动物每组随机选择一半注射01.1ml双能肝祖细胞组合物直接进入脾脏。所有的切口均用手术钉闭合。给予不同组动物的细胞数目是大约103高达至大约1010，特别是103，104，105，106，107，108，109和1010。免疫抑制剂，环孢素A，1mg/kg体重，每天腹膜内给药。在肝脏切除术或假肝脏切除术前两天和在手术后3，7，17和28天监测血清胆红素，γ谷氨酰转移酶和丙氨酸转氨酶的活性。在同一天记录体重，水耗量，和嗜睡的目测。在肝脏切除术后28天，处死所有存活的动物进行脾脏和肝脏的组织学评价。
上述实施例已经仅仅为举证的目的进行了详述，并不是要限制本发明的范围或实施方案。其他未特别描述的实施方案对本领域的普通专业技术人员应该是很显然的。然而这些其他的实施方案被认为是在本发明的范围和精神之内的。因此本发明完全仅由所附的权利要求所限制。

Claims (12)

1.一种含双能肝祖细胞的组合物，该祖细胞表达一个或多个细胞间粘附分子ICAM-1抗原，不表达主要组织相容性复合体(MHC)Ia类抗原，其中所述的双能肝祖细胞具有分化能力。
2.权利要求1中的组合物，其中所述的肝祖细胞表达一个或多个MHC Ib类抗原。
3.权利要求2中的组合物，其中所述的MHC Ib类抗原被弱表达。
4.权利要求1中的组合物，其中所述的肝祖细胞在流式细胞仪上的侧向散射小于成熟实质细胞的侧向散射。
5.权利要求1中的组合物，其中所述的肝祖细胞在流式细胞仪上的侧向散射位于非实质细胞和成熟实质细胞的侧向散射之间。
6.权利要求1中的组合物，其中所述的肝祖细胞能够分裂并产生后代。
7.权利要求6中的组合物，其中所述的肝祖细胞具有纯系生长的能力。
8.权利要求7中的组合物，其中所述的纯系生长需要细胞外基质。
9.权利要求6中的组合物，其中所述的后代以堆积的簇状生长。
10.权利要求6中的组合物，其中所述的后代表达甲胎蛋白、白蛋白、CK19、或它们的组合。
11.权利要求6中的组合物，其中所述的后代是肝细胞或胆管细胞。
12.权利要求11中的组合物，其中所述的肝细胞或胆管细胞另外表达可用来选择或鉴定特定亚群的细胞粘附分子。
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