CN1230443C - 血栓成像用的放射性标记化合物 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及一种血栓成像用的放射性标记化合物，包括一个环肽，其分子量低于10,000道尔顿，并与血小板糖蛋白IIb/IIIa受体相结合且能抑制人的富含血小板血浆中血小板的聚集作用，当浓度大于0.3μM至1μM时，其抑制率为50%(IC50)，其中该环肽包含序列-Amp-Gly-Asp-。

Description

血栓成像用的放射性 标记化合物
本申请是1995年6月1日提交的、申请号为95194303.30-4、题目为“血栓成像用的放射性标记化合物”的分案申请。
                       发明的背景
发明的领域
本发明涉及闪烁照相成像剂与生成该成像剂的方法。具体而言，本发明涉及的是一种可用放射性锝-99m(Tc-99m)标记的试剂以及制备这种试剂的方法和试剂盒，以及用这种放射性标记的试剂对哺乳动物体内的血栓形成部位进行成像的方法。
现有技术的描述
血栓形成和血栓栓塞尤其是深部静脉血栓形成(DVT)与肺栓塞(PE)是常见的临床病症，这些病症具有很高的发病率和死亡率。据统计，在美国，每年大约有5百万居民要经历一次或多次DVT病症，而且每年有50多万肺栓塞病例发生，其结果导致每年10万人的死亡率(J.Seabold，Society ofNuclear Medicine Annual Meeting 1990)。同样据统计，90％以上的肺栓塞起因于下肢的DVT。如果尽早使用抗凝剂，则该抗凝剂疗法便能有效地治疗这些疾病。然而这种治疗法有危险性(如内出血)，以致阻碍了非必要预防工作的应用。比较先进的干扰血栓形成的技术，如应用重组的组织纤维蛋白溶酶原激活剂或链激酶，这可以在紧急情况下运用，不过这些技术运用时有着更大的危险性。而且，这些技术在临床上的有效运用要求进攻血栓的部位是可以鉴定的，以便对治疗作用进行监测。
由于上述这些原因，体内血栓快速定位法非常受欢迎且优选使用无损伤性的方法。现时鉴定DVT部位的方法是静脉造影术和与之相对照的加强性B超。选择哪种方法应取决于血栓的预测部位。不过，这两种方法均使病人感觉不舒服，而且前一种方法是损伤性的。此外，这两种方法对许多病例是不适用的或产生不正确的鉴定结果。
现时诊断PE的方法包括X-光胸透、心电图(EKG)、动脉氧压、肺活量(最大吸气量和最大呼气量)以及肺血管造影术。除了最后一种无损害方法之外，其它的方法均不能提供确切的诊断结果。
在核医学领域里，可以确定某些病灶的部位或大致确定其范围。其方法是内服少量的放射性标记的示踪化合物(称作放射性示踪物或放射性药物)，然后检测其分布情况。检测这些放射性药物的方法一般称为成像术或放射性成像术。
放射性成像术中所使用的多种放射性核素包括67Ga、68Ga、99mTc(Tc-99m)、111In、123I、125I和169Yb。其中，优选的Tc-99m和111In为单光子发射的放射性核素，优选的68Ga为正电子发射的放射性核素。优选Tc-99m是因为它不发射α或β粒子射线而发射大约140KeV的γ射线，而且半衰期为6小时以及用钼-99/锝99m发生器能就地即刻很方便地得到它。
γ射线示踪物内服后，优先与血栓的某个组分而不是其它组织进行特异性结合，这样便能进行外闪烁照相成像，确定与血栓相结合的示踪物的位置从而确定血栓的位置。血栓是由血细胞(高活化的血小板)陷于交联的血纤维蛋白中形成的。活化的血小板是非常好的血栓成像的目标物，因为活化的血小板在循环血中(包含未活化的血小板)通常是不存在的。
活化的血小板在其细胞表面表达GPIIb/IIIa受体。这种受体的正常配体为血纤维蛋白(Plow等，1987，Perspectives in Inflammation，Neoplasia andVascular Cell Biology，PP.267-275)。不过，已经研制了一些合成性的小分子类似物(可能但并不一定是肽)可以和这种受体结合(实例包括Klein等，1992，美国专利5,0136,069和Egbertson等，1992，欧洲专利申请EPA0478328A1)。在这些合成性分子中尽管许多只以低的亲合力结合，但其它分子却具有较高亲合力(参阅Egbertson等，ibid)。
现有技术中，人们开始尝试用放射性示踪物来成像血栓。这些包括用111In或99mTc标记的自体固有的血小板和用123I与125I标记的纤维蛋白原(后者用γ闪烁探针检测，优于γ照相)。用于标记血栓的其它一些放射性标记物包括血纤维蛋白溶酶、纤维蛋白溶酶原激活剂、肝素、纤维结合蛋白、纤维蛋白片段E1以及抗纤维蛋白和抗血小板的单克隆抗体(参阅Knight，1990，Sem.Nucl.Med. 20：52-67)。
现有技术中，一些化合物具有与血小板GPIIb/IIIa受体相结合的能力。
Ruoslahti和Pierschbacher，美国专利4,578,079，描述了序列为X-Arg-Gly-Asp-R-Y的肽，其中X和Y为H或一种氨基酸，R为Thr或Cys，这种肽能够与血小板相结合。
Ruoslahti和Pierschbacher，美国专利4,792,525，描述了序列为Arg-Gly-Asp-X的肽，其中X是Ser、Thr或Cys，这种肽能够与血小板相结合。
Klein等，1992，美国专利5,086,069公开了与GPIIb/IIIa受体相结合的鸟嘌呤衍生物。
Pierschbacher等，1989，PUT/US88/04403公开了构象上被限制的包含RGD的肽，用来抑制细胞在培养基上的附着。
Nutt等，1990，欧洲专利申请90202015.5公开了作为血纤维蛋白原受体拮抗剂的环状RGD多肽。
Nutt等，1990，欧洲专利申请90202030.4公开了作为血纤维蛋白原受体拮抗剂的环状RGD多肽。
Nutt等，1990，欧洲专利申请90202031.2公开了作为血纤维蛋白原受体拮抗剂的环状RGD多肽。
Nutt等，1990，欧洲专利申请90202032.0公开了作为血纤维蛋白原受体拮抗剂的环状RGD多肽。
Nutt等，1990，欧洲专利申请90311148.2公开了作为血纤维蛋白原受体拮抗剂的环肽。
Nutt等，1990，欧洲专利申请90311151.6公开了作为血纤维蛋白原受体拮抗剂的环肽。
Ali等，1990，欧洲专利申请90311537.6公开了作为血纤维蛋白原受体拮抗剂的环肽。
Barker等，1991，PCT/US90/03788公开了用来抑制血小板聚集的环肽。
Pierschbacher等，1991，PCT/US41/02356公开了作为血纤维蛋白原受体拮抗剂的环肽。
Duggan等，1992，欧洲专利申请92304111.5公开了血纤维蛋白原受体拮抗剂。
Garland等，1992，欧洲专利申请92103861.8和92108214.5公开了作为血小板聚集抑制剂的苯甲酰胺衍生物。
Bondinell等，1993，国际专利申请PCT/US92/0546公开了二环的血纤维蛋白原拮抗剂。
Blackburn等，国际专利申请PCT/US92/0878，公开了非肽性整合抑制剂，与GPIIb/IIIa受体特异性结合。
Egbertson等，1992，欧洲专利申请0478328A1公开了酪氨酸衍生物，与GPIIb/IIIa受体结合具有高亲合力。
Ojima等，1992，204th Meeting，Amer.Chem.Soc.Abst.44公开了抑制血小板聚集的合成性的多支链的RDGF肽。
Hartman等，1992，J.Med.Chem. 35：4640-4642描述了酪氨酸衍生物，与GPIIb/IIIa受体结合具有高亲合力。
用来成像血栓的放射性标记的肽在现有技术中已见报导。
Stuttle，1990，PCT/GB90/00933公开了包含3～10个氨基酸的放射性标记的肽，肽序列为精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸(RGD)，能够与体内RGD结合部位相结合。
Rodwell等，1991，PCT/US91/03116公开了“分子识别单元”与“效应物区域结构”相结合的轭合物。
现有技术中，放射性标记肽的螯合剂的使用以及用Tc-99m来标记肽的方法在共同待批的美国专利申请07/653,012、07/807,062、07/871,282、07/886,752、07/893,981、07/955,466、08/019,864、08/073,577、08/210,822、08/236,402和08/241,625中公开了。另外，现有技术中用闪烁照相成像肽来成像血栓的放射性标记肽在共同待批的美国专利申请07/886,752、07/893,981和08/044,825以及国际专利申请PCT/US92/00757、PCT/US92/10716、PCT/US93/02320、PCT/US93/03687、PCT/US93/04794、PCT/US93/05372、PCT/US93/06029、PCT/US93/09387、PCT/US94/01894、PCT/US94/03878和PCT/US94/05895中公开了。这些文献在此均引用作为参考。
被放射性标记物标记的分子要求体积小(以便增强血液和背景组织的清晰度)、是合成的(以便实施常规化生产，并容易验收)、高亲合力、和特异性结合。这些分子用方便易得的放射性标记核素(优选Tc-99m)来进行标记从而对体内的血栓进行成像。为了满足技术上的需要，本发明提供了一些合成性小分子化合物，这些化合物可与活化的血小板GPIIb/IIIa受体结合并且被一些方便易得的放射性同位素标记，该放射性同位素优选Tc-99m、111In和68Ga。
                         发明概述
本发明提供了一些放射性标记的(优选Tc-99m、111In和68Ga)合成性小分子化合物，与GPIIb/IIIa受体结合具有高亲合力，可作为闪烁照相成像剂对体内血栓进行无损伤成像。因此本发明提供了闪烁照相血栓成像剂，即放射性标记的试剂。具体而言，本发明提供了制备血栓成像剂的试剂，这种试剂用锝-99m(Tc-99m)、111In和68Ga进行标记，其中优选用Tc-99m。本发明中每一试剂都包括一特异性结合物，包括肽但并不只限于肽，它与血小板糖蛋白IIb/IIIa(GPIIb/IIIa)受体结合具有高亲合力，而且与放射性标记的复合物共价结合。
我们已经发现，为达到最佳成像效果，该试剂必须能够与GPIIb/IIIa受体结合且具有足够高的亲合力以致能够抑制腺苷二磷酸(ADP)诱导的人体内血小板的聚集作用。用血小板聚集作用的标准测定法来测定(参见，下文实施例3)，当试剂以不超过1μM的浓度存在时，其抑制率可达50％。
运用小分子化合物具有显著的商业效益。该化合物的分子量优选少于1000道尔顿。这种小分子化合物很容易生产。而且它们很可能不具有“致免疫性”，并且能够很快地从脉管系统中清除掉，这就使得血栓成像更快更好。相反，大的分子如抗体片段或其它生物合成的肽，其分子重量超过10,000道尔顿，生产成本高，而且很可能具有“致免疫性”以及从血液中清除掉的速度较慢，这样就不利于体内血栓的快速诊断。
本发明也提供了一些试剂，其中特异性结合物为线性或环状的肽，具有4～100个氨基酸的氨基酸序列，分子量不超过约10,000道尔顿。
另一方面，本发明提供了制备血栓成像剂用的试剂，它能够被放射性标记从而能够对哺乳动物体内的血栓进行成像。这种试剂含有一种特异性结合的化合物，它能够与血小板GPIIb/IIIa受体特异性结合，而且与Tc-99m的复合部分共价结合，该部分的化学式为：
                           I
                C(pgp)s-(氨基酸)-C(pgp)s
其中C(pgp)s是被保护的半胱氨酸，(氨基酸)是任何不含硫羟基的初级α-或β-氨基酸。在优选的实施方案中，该氨基酸为甘氨酸。
另一个实施方案中，本发明提供了一种制备血栓成像剂的可被放射性标记的试剂，用来对哺乳动物体内的血栓进行成像。它包括一种特异性结合化合物，它与血小板GP(IIb/IIIa)受体特异性结合而且与Tc-99m的复合部分(含一个单一的硫羟基)共价结合，其结构式：
                            II
                A-CZ(B)-{(C(R1R2)}n-X
其中A为H、HOOC、H2NOC、(氨基酸或肽)-NHOC、(氨基酸或肽)-OOC或R4；B为H、SH或NHR3、-N(R3)-(氨基酸或肽)或R4；R1、R2、R3和R4各自为H或者直链、支链或环状的低级烷基；n为0、1或2；其中(肽)为含有2～10个氨基酸的肽；而且：(1)B为-NHR3或-N(R3)-(氨基酸或肽)时，X为SH和n为1或2；(2)X为NHR3或-N(R3)-(氨基酸或肽)时，B为SH和n为1或2；(3)B为H或R4时，A为HOOC、H2NOC、(氨基酸或肽)-NHOC、(氨基酸或肽)-OOC，X为SH和n为0或1；(4)A为H或R4时，当B为SH，则X为-NHR3、或-N(R3)-(氨基酸或肽)，和当X为SH时则B为NHR3或-N(R3)-(氨基酸或肽)；(5)X为H或R4时，A为HOOC、H2NOC、(氨基酸或肽)-NHOC、(氨基酸或肽)-OOC和B为SH；(6)Z为甲基时，X为甲基，A为HOOC、H2NC,(氨基酸或肽)-NHOC、(氨基酸或肽)-OOC和B为SH以及n为0；(7)B为SH和X为SH时，n不为0；以及其中硫羟基部分为还原形式并其中氨基酸为任何不含硫羟基的初级α-或β-氨基酸。
在本发明这方面的一些具体实施方案中，放射性标记的复合物的通式为：
IIa.-(氨基酸)1-(氨基酸)2-{A-CZ(B)-{C(R1R2)}n-X}，
IIb.-{A-CZ(B)-{C(R1R2)}n-x}-(氨基酸)1-(氨基酸)2，
IIc.-(初级α，ω或β，ω-二氨基酸)-(氨基酸)1-{A-CZ(B)-{C(R1R2)}n-X}，或
IId.-{A-CZ(B)-{C(R1R2)}n-X)-(氨基酸)1-(初级α、β-或β、γ-二氨基酸)
其中(氨基酸)1和(氨基酸)2各自为任何天然的、被修饰的、被取代的或被改变的不含硫羟基的α-或β-氨基酸；A为H、HOOC、H2NOC、(氨基酸或肽)-NHOC、(氨基酸或肽)-OOC或R4；B为H、SH或NHR3、-N(R3)-(氨基酸或肽)或R4；Z是H或R4；X为SH或NHR3，-N(R3)-(氨基酸或肽)或R4；R1、R2、R3和R4各自为H或者直链、支链或环状的低级烷烃；n为整数，可为0、1或2；(肽)为含有2～10个氨基酸的肽；而且：(1)B为-NHR3或-N(R3)-(氨基酸或肽)时，X为SH和n为1或2；(2)X为-NHR3或-N(R3)-(氨基酸或肽)时，B为SH和n为1或2；(3)B为H或R4时，A为HOOC、H2NOC、(氨基酸或肽)-NHOC、(氨基酸或肽)-OOC和X为SH以及n为0或1；(4)A为H或R4时，当B为SH则X为-NHR3或-N(R3)-(氨基酸或肽)以及当X为SH时则B为-NHR3或-N(R3)-(氨基酸或肽)；(5)X为H或R4时，A为HOOC、H2NOC、(氨基酸或肽)-NHOC、(氨基酸或肽)-OOC和B为SH；(6)Z为-CH3时，X为-CH3，A为HOOC、H2NOC、(氨基酸或肽)-NHOC、(氨基酸或肽)-OOC和B为SH以及n为0；以及(7)B为SH时，X为SH和n不为0；其中硫羟基都为还原态形式。
在另一个实施方案中，本发明提供了一种制备血栓成像剂的可被放射性标记的试剂，用来对哺乳动物体内的血栓进行成像。它包括一个特异性结合化合物，与血小板GPIIb/IIIa受体特异性结合而且与放射性标记的复合部分共价结合。其通式：
Figure C0212228300091
特异性结合化合物
(出于本发明的目的，放射性标记的结合部分的结构是指以吡啶甲酸(Pic)为基础的部分)；
特异性结合化合物
(出于本发明的目的，放射性标记的结合部分的结构是指以吡啶甲胺(Pica)为基础的一些部分)；其中X为H或保护基；(氨基酸)为不含硫羟基的初级α-或β-氨基酸；放射性标记的复合部分与特异性结合化合物共价结合，而且这种放射性标记的复合部分与放射性标记物都是电中性的。在一个优选的实施方案中，该氨基酸为甘氨酸，X为乙酰氨基甲基保护基团。另一个优选的实施方案中，特异性结合化合物通过一种氨基酸(最优选甘氨酸)与放射性标记的复合部分共价结合。
另一种实施方案中，本发明提供了一种制备血栓成像剂的可被放射性标记的试剂，用来对哺乳动物体内的血栓进行成像。它包括一个特异性结合化合物，该化合物与血小板受体GPIIb/IIIa特异性结合，而且与一个双氨基双硫羟基的放射性标记的复合部分共价结合。本发明这一实施方案中的这种双氨基双硫羟基部分是选自以下这组通式的结构：
其中每个R5分别为H、CH3或C2H5；每个(pgp)s分别为硫羟基保护基或H；m、n和p分别为2或3；A为直链或环状的低级烷基、芳基、杂环基、或者它们的组合或取代的衍生物；X为特异性结合倾化合物。
其中每个R5分别为H、低级烷基(含1～6个碳)、苯基或者被低级烷基或烷氧基取代的苯基；m、n和p分别为1或2；A为直链或环状的低级烷基、芳基、杂环基或者它们的组合或取代的衍生物；V为H或CO-(氨基酸或肽)；R6为H、(氨基酸)或肽或特异性结合的化合物；条件为如果V为H，则R6为氨基酸或肽或特异性结合的化合物；如果R6为H，则V为氨基酸或肽或特异性结合的化合物，其中(氨基酸)是任何一个不含硫羟基的初级α-或β-氨基酸。(出于本发明的目的，具有这些结构的放射性标记结合部分称为“BAT”部分)。在一个优选的实施方案中，特异性结合化合物可通过一个氨基酸(优选甘氨酸)与放射性标记的复合部分共价结合。
在上述提及的一些优选的实施方案中，特异性结合化合物为一个含有4～100个氨基酸的肽。该放射性标记物最优选的实例为锝-99m。
本发明提供的一些试剂可以制备成其中特异性结合化合物或放射性标记的复合部分是与一个多价连接部分共价连接的形式。本发明中这种多价连接部分至少包括2个相同的连接官能团，能够与特异性结合化合物或标记的复合部分共价结合。优选的连接官能基团为一级或二级胺、羟基、羧酸基或活泼的硫羟基。在优选的实施方案中，这些多价连接部分包括二琥珀酰亚胺基甲基醚(BSME)、4-(2，2-二甲基乙酰基)苯甲酸(DMAB)、三(琥珀酰亚胺基乙基)胺(TSEA)、三(乙酰氨基乙基)胺、二-(乙酰氨基乙基)醚、二-(乙酰氨基甲基)醚、N-{2-(N′，N′-二(2-琥珀酰亚胺基乙基)氨基乙基)}-N6，N9-二(2-甲基-2-巯丙基)-6，9-二氮杂壬酰胺(BAT-BS)、α，∈-二乙酰基赖氨酸、赖氨酸和1，8-二-乙酰氨基-3，6-二氧杂辛烷。
在本发明的优选实施方案中，所述特异性结合肽是一个环肽，该环肽包含序列-Amp-Gly-Asp-；更优选的是，特异性结合肽包括下式的环肽结构域：
Figure C0212228300111
其中A是亲脂的D-α-氨基酸，或N-烷基-L-α-氨基酸或L-脯氨酸；X是含有能够带正电荷的侧链的L-α-氨基酸；和R各自分别为H、低级烷基或低级烷氧基烷基；进一步优选的是其中A是D-酪氨酸或D-苯丙氨酸，和X为L-(S-(3-氨基丙基)半胱氨酸或L-4-脒基苯丙氨酸。
本发明也包括闪烁照相成像剂，该成像剂是本发明的试剂与Tc-99m、111In和68Ga(优选Tc-99m)的复合物。本发明也包括对本发明的该试剂进行放射性标记而得到这种闪烁照射成像剂的方法。本发明提供的用Tc-99m放射性标记的复合物可通过本发明提供的一些试剂和Tc-99m在还原剂存在下进行反应而形成。优选的还原剂包括(但不限于)连二亚硫酸根离子、二价锡离子和二价铁离子。本发明的复合物也可以通过本发明提供的一些试剂与一个预还原的Tc-99m复合物进行配体交换而形成。
本发明也提供了用于制备Tc-99m放射标记的闪烁照相成像剂的试剂盒。这些试剂盒包括一个密闭的管形瓶，瓶内放入预定量的本发明试剂和用Tc-99m对该试剂进行放射性标记的足够量的还原剂。
本发明提供了肽的体外化学合成法来制备本发明的肽试剂。在一个优选的实施方案中，肽是用固相肽合成法来合成的。
本发明提供了Tc-99m放射性标记的闪烁照相成像剂的使用方法，通过体内γ-射线闪烁照相来对哺乳动物体内的血栓进行显影。这种方法包括服用有效剂量的Tc-99m标记的本发明试剂和监测Tc-99m标记物发射的γ射线从而确定哺乳动物体内的血栓部位。
下面将对某些优选的实施方案和权利要求进行较为详尽的描述，从中可使本发明中特别优选的实施方案得以充分体现。
附图的简要说明
图1说明了用本发明的Tc-99m放射标记的肽对病人大腿的深部静脉血栓进行闪烁照相成像的情况。
图2说明了用本发明的Tc-99m放射标记的肽对病人腓肠的深部静脉血栓进行闪烁照相成像的情况。
发明的详细描述
本发明提供了一些试剂，包括肽试剂，用来制备对哺乳动物体内血栓进行成像的放射性标记的血栓成像剂。这种试剂包括一个放射性标记的结合部分，其与特异性结合化合物共价结合。该特异性结合化合物能与血小板受体GPIIb/IIIa相结合，从而能够抑制血浆(含丰富的血小板)中的血小板的聚集。当试剂浓度不超过1μM时，抑制率达50％即IC50＝1μM。出于本发明的目的，这种所谓血栓成像剂是指本发明的实施方案中包含的一种特异性结合化合物，该化合物是与放射性标记的复合部分共价结合并用放射性核素(优选Tc-99m、111In和68Ca，最优选Tc-99m)经过放射标记的。
我们以前已发现，为了获得最佳成像效果，本发明所公开的成像试剂必须能够与血小板受体GPIIb/IIIa受体相结合而且具有高亲合力，从而在标准测定法中(见实施例3)当浓度达0.3μM时(IC50≤0.3μM)抑制了腺苷二磷酸(ADP)诱导的血小板的聚集作用。本发明在美国专利申请08/044,825和国际专利申请PCT/US94/03878中公开了。这两者的公开文本在此均全面引用作参考。
我们现已发现，使用象本发明中所公开的IC50≤1μM的放射性标记的闪烁照相成像剂能够得到高质量的体内闪烁照相成像图。
用Tc-99m标记是本发明的一个优点，因为这个同位素的核和放射活性，能使它制得理想的闪烁照相成像剂。这个同位素具有140Kev的单光子能和6γ时的半衰期，而且很容易通过99Mo-99mTc发生器来制得。本发明的另一个优点是，优选的放射性核素(Tc-99m、Ga-67、In-111)与现有技术中已知的其它核素(125I)相比都是无毒的。
本发明提出的Tc-99m复合部分和与这些部分共价结合的化合物包含一个与硫羟保护基{(pgp)s}共价结合的硫羟基。这些硫羟保护基可以是相同的或不相同，并且可以(但不限于)下列这些：
-CH2-芳基(芳基是苯基或者烷基或烷氧基取代的苯基)；
-CH-(芳基)2，(芳基是苯基或者烷基或烷氧基取代的苯基)；
-C-(芳基)3，(芳基是苯基或者烷基或烷氧基取代的苯基)；
-CH2-(4-甲氧基苯基)；
-CH-(4-吡啶基)(苯基)2；
-C(CH3)3；
-9-苯基芴基
-CH2NHCOR(R是不取代的或取代的烷基或芳基)；
-CH2-NHCOOR(R是非取代的或取代的烷基或芳基)；
-CONHR(R是非取代的或取代的烷基或芳基)；
-CH2-S-CH2-苯基
优选的保护基为-CH2-NHCOR，其中R是含1～8个碳原子的低级烷基、苯基或者低级烷基、羟基、低级烷氧基、羧基或低级烷氧基羰基取代的苯基。最优选的保护基为乙酰胺基甲基。
本发明每个特异性结合肽的实施方案含有一个氨基酸序列。本发明中所称的氨基酸倾向于包括所有的L-和D-、初级α-或β-氨基酸，天然的和非天然的。本发明提供的特异性结合肽其氨基酸序列如下所示但并不只限于此(下面肽中除了另外注明之外氨基酸均为L-氨基酸)
CH2CO.YD.Apc.GDC  GGG
CH2CO.YD.Apc.GDC  KG
CH2CO.YD.Apc.GDC  GG
CH2CO.YD.Apc.GDC
CH2CO.YD.Apc.GDC  K
CH2CO.YD.Amp.GDC
CH2CO.YD.Amp.GDC  K
和O-(4-哌啶基)丁基酪氨酸。
本发明中特异性结合肽可以体外化学合成。而且在肽合成器上一般可以很方便地制得。在体外化学合成过程中，利用本领域技术人员已知的技术能合成本发明的肽，其中放射性标记的结合部分与肽共价结合。特异共价结合位点能确定，这是在合成过程中与特异性结合部分共价结合的这种肽的优点。
在肽的合成期间，本发明的放射性标记的结合部分可引入到特异性靶肽上。包含吡啶甲酸的{(Pic-)，如Pic-Gly-Cys(保护基)-}的放射性标记复合部分可以通过作为在该合成中的最后一个残基(即氨基端)而合成出来。另外，包含吡啶甲酸的放射性标记的结合部分可以与赖氨酸的∈-氨基共价结合而得到。例如，αN(Fmoc)-Lys-∈N{Pic-Gly-Cys(保护基)}，它可位于肽链的任何部位。这一序列的优点是提供了一个容易结合到靶肽中的模式。
同样，包含吡啶甲胺(Pica)的放射性标记的结合部分{-Cys(保护基)-Gly-Pica}，在肽合成期间，可以通过包含{-Cys(保护基)-Gly-}序列的肽链羧基端而合成出来。当肽从该树脂上解离后，该羧基端被活化了可与吡啶甲胺偶联。这种合成路线要求活性的侧链功能基必须被保护从而在连接吡啶甲胺时不参于反应。
下面实例中提供了包含Pic-Gly-Cys和-Cys-Gly-Pica螯合剂的小分子合成肽的例子。本发明指出，事实上这些螯合物可以和任何能够与体内血栓特异性结合的肽相结合，结果产生了Tc-99m放射性标记的肽，为中性复合物。
本发明也提供了一些与Tc-99m标记的双胺双硫羟螯合剂(BAT)相结合的特异性结合的小分子合成肽。本发明指出，这些螯合剂可以与任何能够和体内血栓特异性结合的肽相结合，结果产生了一种Tc-99m放射性标记的肽，为中性复合物。在下面实施例中提到了包含BAT螯合剂作为放射性标记部分的合成性小分子肽的例子。
在形成本发明试剂的锝复合物过程中，该锝复合物(优选高锝酸盐)是在还原剂存在下与该试剂进行反应。优选的还原剂为连二亚硫酸根离子、亚锡离子和亚铁离子；最优选还原剂为氯化亚锡。合成这种复合物的方法是用一个试剂盒，它含一个密闭的管形瓶，瓶内装有预定量的要被标记的本发明试剂和足够量的还原剂，用Tc-99m对该试剂进行标记。另外，这种复合物也可以通过本发明的试剂与预先形成的锝复合物以及已知作为转移配体的另一化合物一起进行反应而制得。这种过程就是配体交换过程，在现有技术中是已知的。这种标记的复合物可以通过使用转移配体(如酒石酸盐、柠檬酸盐、葡糖酸盐或甘露糖醇)来形成。本发明中有用的Tc-99m高锝酸盐包括一些碱性金属盐如钠盐、胺盐或低级烷基胺盐。
在优选的实施方案中，提供了制备锝标记的试剂的试剂盒。将适量试剂置入管形瓶里，瓶中含足够量的还原剂(如氯化亚锡)以便用Tc-99m对该试剂进行标记；还包括适量的上述转移配体(如酒石酸盐、柠檬酸盐、葡糖酸盐或甘露糖醇)；以及一些传统的药用佐剂；如调节渗透压的药用盐、缓冲剂和防腐剂等类似物。该试剂盒中的组分可以为液体状态、冷冻状态或干燥状态。在优选的实施方案中，试剂盒的这些组分为冷冻干燥的形式。
本发明的放射性标记的血栓成像试剂在下边实例4所描述的那样，可以这样合成出来：在一个管形瓶里加入适量Tc-99m和Tc-99m复合物，然后在合适的反应条件下进行反应。
本发明提供的放射性标记的闪烁照相成像剂具有合适量的放射性。在形成Tc-99m放射性复合物时，溶液的放射活性浓度一般优选在0.01mCi/mL～100mCi/mL之间。
本发明提供的血栓成像剂在被Tc-99m标记之后可用来对哺乳动物体内的血栓进行成像。根据本发明，Tc-99m标记的试剂的给药量为注射一个单位剂量。本发明中提供的Tc-99m标记的试剂可以通过任何一种传统的静脉注射介质(如盐水或血浆)来进行静脉注射。一般来说，给药的单位剂量的放射活性约0.01mCi～约100mCi，优选的放射活性范围为1mCi～20mCi。每单位剂量注射的溶液约0.01mL～10mL。静脉注射给药后几分钟便能进行体内血栓成像。不过，如果需要的话，在放射性标记的肽试剂被注入病人体内之后可在1小时或更长时间之后进行血栓成像。在大多数情况下，将所注射的足够剂量的药在特定区域累积起来，然后在约0.1小时内成像并拍摄一些闪烁照相图片。根据本发明，为了诊断的目的，任何传统的闪烁照相成像的方法都可以使用。
相关领域的技术人员也认识到，血栓通常在动脉硬化斑块中出现；整合受体(可与本发明中的闪烁照相试剂相结合)可在某些肿瘤中出现；另外，这种整合受体在感染部位，与伴随或刺激白细胞定位的细胞粘连过程有关。由此认识到，闪烁照相成像剂作为一种成像剂还具备另一个用途，即用来成像GPIIb/IIIa受体的表达部位，包括动脉硬化斑块、肿瘤和感染部位。
在下述的实例中将更全面地说明制备和标记这些复合物的方法。这些实例对上述方法及其有用结果的某些方面进行了说明。这些实施例是举例而不是对本发明进行限制。
                        实施例1
                       固相肽合成法
固相肽合成(SPPS)的合成量为0.25毫摩尔(mmol)，合成仪为“应用性生物系统模型431A肽合成仪”，用9-芴基甲氧基羰酰基(Fmoc)进行氨基-端保护，与双环己基碳化二酰亚胺/羟基苯并三唑或2-(1H-苯并三唑-1-基)-1，1，3，3-四甲基脲六氟磷酸酯/羟基苯并三唑(HBTV/HOBT)进行偶联，然后加入邻-羟基甲基苯氧基甲基聚苯乙烯(HMP)树脂与C-端羧酸结合，或用Rink酰胺树脂与C-端酰胺结合。连接树脂的产物用一种溶液将其脱开，该溶液组成为三氟乙酸或50/50三氯乙酸/二氯甲烷，含或不含水、苯硫基甲烷、乙二硫醇、和三乙基硅烷，它们的比例为100/5/5/2.5/2，室温下进行，时间为1.5～3小时。
条件合适的话，在N-端引入乙酰基。其方法是用20％v/v乙酸酐在NMP(N-甲基吡咯烷基二壬烷酮)中对结合在树脂上的肽的N-端游离的氨基进行处理，时间为30分钟。在SPPS过程中制备支链肽涉及到从赖氨酸的α-和∈-氨基(Nα(Fmoc)Nε(Fmoc)-赖氨酸)开始的肽链合成。条件合适的话，可引入2-氯乙酰基和2-溴乙酰基，在SPPS合成过程中，使用合适的2-卤代乙酸作为最后一个残基被偶联上；或对结合在树脂上的N端游离氨基用2-卤代乙酸/二异丙基碳化二亚胺/N-羟基琥珀酰亚胺或2-卤代乙酸酐/二异丙基乙基胺在NMP中进行处理。条件合适的话，对HPLC纯化的2-卤代乙酰化的肽进行环化反应。溶液浓度为0.1～1.0mg/mL，pH＝8，含或不含磷酸盐、碳酸氢盐或0.5～1.0mM的EDTA，搅拌0.5～48小时，然后用乙酸酸化，冷冻干燥和HPLC纯化。条件合适的话，Cys-Cys二硫键进行环合。用等分的0.006M K3Fe(CN)6溶液对前体半胱氨酸游离的巯基肽进行处理，直至有稳定的黄色沉淀析出来。溶液浓度为0.1mg/mL，缓冲体系pH＝7。过量的氧化剂用过量的半胱氨酸进行还原处理，所得混合物进行冷冻干燥和HPLC纯化。
条件合适的话，将肽上的巯基氯乙酰化衍生成硫醚。其方法是：用含单一巯基的肽，在浓度为2～50mg/mL、溶剂为水/乙腈或THF或DMF，pH＝10条件下，与适量(例如0.5mol当量制备二聚物，0.33mol当量制备三聚物)的氯乙酰基多价连接物进行反应，时间为0.5～24小时。然后用乙酸进行中和，蒸干，而且如果需要的话，用10mL TFA和0.2mL三乙基硅烷净化剂进行脱保护，时间为30～90分钟。溶液浓缩后用乙醚重结晶，所得产品用制备型HPLC纯化。
条件合适的话，制备BSME加成物。方法是：用含单一巯基的肽(在50mM磷酸钠缓冲液中的5～50mg/mL浓度，pH7～8)与在乙腈中预溶解的0.5mol当量的BMME(双-马来酰亚胺甲基醚)在室温下进行1～18小时反应。然后将溶液浓缩并用HPLC纯化产品。
条件合适的话，制备TSEA加成物。用含单一巯基的肽(在DMF中的浓度为10～100mg/mL或在50mM的磷酸钠(pH8/乙腈或THF中的浓度为5～50mg/mL)，与在乙腈或DMF中预溶解的0.33mol等当量的THFA(三(2-马来酰亚胺基)胺；如美国专利08/044,825所公开的那样，参考文献中引用)进行反应，加或不加1mol等当量的三乙醇胺，室温搅拌约1～18小时，所得的包含加成物的反应混合物进行浓缩然后用HPLC进行纯化。
条件合适的话，制备BAT-BS加合物。用含单一巯基的肽(在50mM磷酸钠(pH8)/乙腈或THF中的浓度为2～50mg/mL)和在乙腈或THF中预溶解的0.5mol等当量的BAT-BM(N-{2-(N′，N′-二(2-马来酰亚胺基-乙基)氨基乙基)}-N9-(叔-丁氧基羰基)-N6，N9-二(2-甲基-2-三苯基甲基巯基丙基)-6，9-二氮壬烷酰胺；如美国专利08/044,825所公开的那样，参考文献中引用)进行反应，室温搅拌约1～18小时，溶液蒸干，用10mLTFA和0.2mL三乙基硅烷对(BAT-BS)-肽轭合物进行1小时脱保护处理，溶液浓缩，产品用乙醚重结晶，然后用HPLC纯化。
肽的粗产品用制备型高效液相色谱(HPLC)进行纯化。使用的柱子为一个Waters Dalta Pak C18的柱子，用0.1％三氟乙酸水溶液(用乙腈进行极性改变)进行梯度洗脱。洗脱液蒸去乙腈，然后冷冻干燥。每一个产品用快原子轰击质谱(FABMS)和电子散射质谱(ESMS)进行鉴定。
                      实施例2
               用Tc-99m标记的一般方法
在实施例2中，0.1mg肽试剂样品溶于0.1mL水中或50mM的磷酸钾缓冲液或0.1M的碳酸氢钠缓冲液中或10％羟基丙基环糊精(HPLD)中。每一种缓冲液pH值为5～10。组建一个Glucoscan管形瓶(E.I.Dupont deNemours，Inc.，Wilmington，DE)来制备Tc-99m葡糖酸盐。其方法是：管形瓶内加入1.0mL Tc-99m高锝酸钠(放射活性达200mCi)，然后室温静置15分钟。25μL的Tc-99m葡糖酸盐加入到肽试剂中，反应温度为室温或100℃，时间为5～30分钟，然后用0.2μm滤器进行过滤。
Tc-99m标记的肽的纯度由HPLC的使用条件决定。其使用条件：一个Waters Deltapure RP-18，5μ，150mm×1.9mm的分析柱，装载每一个放射性标记的肽；洗脱时溶剂流动速度为1mL/min；进行梯度洗脱，溶剂从10％溶剂A(0.1％CF3COOH/H2O)到40％溶剂B90(0.1％CF3COOH/90％CH3CN/H2O)整个洗脱时间为20分钟。
Tc-99m标记的肽的纯度由HPLC的使用条件(见表1附注)决定。放射性组分通过连有积分记录仪的连机放射性检测器进行检测。在这些条件下，Tc-99m葡糖酸盐和Tc-99m高锝酸盐在1～4分钟之间被洗脱下来，而放射性标记的肽被洗脱下来的时间长得多。
下表介绍了根据实施例1所描述的方法来制备Tc-99m标记肽的一些成功的例子。
                                                        表1
肽 FABMSMH + 放射化学试剂产率％) *     HPLCR T (min) **
CH 2 CO.Y D RGDCCAcmGCAcm酰胺 1057     972     10.0，10.4，10.62
CH 2 CO.Y D RGDCGGCAcmGCAcm酰胺 1171     992     13.52
CH 2 CO.Y D .Apc.GDCGGGCAcmGCAcm酰胺 1233     1004     17.1，18.12
GRGDVRGDFKCAcmGCAcm酰胺 1510     972     16.2，16.82
GRGDVRGDFCAcmGCAcm酰胺 1382     942     16.42
CH 2 CO.Y D .Apc.GDCGGCAcmGCAcmGGFDPRPG.NH2 1845     904     16.6，16.92
( CH 2 CO.Y D Apc.GDCGGCAcmGCAcmGGC.酰胺)2-BSME 30202     984     9.32
( CH 2 CO.Y D .Apc.GDCGGCAcmGCAcmGGC.酰胺)3-TSEA 4596     994     9.2，11.65
( CH 2 CO.Y D Apc.GDCGGCAcmGCAcmCGC.酰胺)2-(BAT-BS) 34092     983     10.35
CAcmGCAcmRRRRRRRRRGDV 2100     1002     2.43***
( CH 2 CO.Y D Apc.GDCKGCAcmGCAcmGGC.酰胺)2-BSME 3163a     984     9.65
( CH 2 COY D .Amp.GDCGGCAcmGCAcmGGC酰胺)2-(CH2CO)2K(N∈-K)GC酰胺 3357a     998     4.66
( CH 2 COY D .Amp.GDCKGCG酰胺)2-(CH2CO)2K(N∈-K)GC酰胺 2573a     998     4.86
( CH 2 COY D .Apc.GDCGGCAcmGCAcmGGC酰胺)2(CH2CO)2-K(N∈-K)GC酰胺 3298a     963     12.04
*角标是指如下一些标记条件：
1、将肽溶解在50毫摩尔磷酸钾缓冲液(pH7.4)中并在室温下标记。
2、将肽溶解在50毫摩尔磷酸钾缓冲液(pH7.4)中并在100℃下标记。
3、将肽溶解在水中并在室温下标记。
4、将肽溶解在水中并在100℃下标记。
5、将肽溶解在50毫摩尔磷酸钾缓冲液(pH6.0)中并在100℃下标记。
6、将肽溶解在50毫摩尔磷酸钾缓冲液(pH5.0)中并在室温下标记。
7、将肽溶解在50∶50的乙醇/水的混合液中并在100℃下标记。
8、将肽溶解在0.9％的氯化钠溶液中并在室温下标记。
**HPLC方法：
一般方法：溶剂A           ＝0.1％CF3COOH/H2O
          溶剂B70        ＝0.1％CF3COOH/70％CH3CN/H2O
          溶剂B90        ＝0.1％CF3COOH/90％CH3CN/H2O
          溶剂流速＝1毫升/分钟
Vydak柱＝带有防护柱的Vydak218TP54RP-18，5μ×220毫米×4.6毫米分析柱
Brownlee柱＝Brownlee Seri-5RP-18，5μ×220毫米×4.6毫米分析柱
Waters柱＝Waters Delta-Pak C18.5微米，150毫米×39毫米分析柱
Waters 2柱＝Waters Nova-Pak C18.5微米，100毫米×8毫米径向压缩柱
方法1：Brownlee柱     100％A至100％B70，10分钟
方法2：Vydak柱        100％A至100％B90，10分钟
方法3：Vydak柱        100％A至100％B70，10分钟
方法4：Waters柱       100％A至100％B90，10分钟
方法5：Waters柱       100％A至100％B90，10分钟
方法6：Waters2柱      100％A至100％B90，10分钟
***用十二烷磺酸钠聚乙酰胺凝胶电泳分析法进行鉴定
氨基酸单字母缩写见G.Zubay，Biochemistry(2d.ed.)，1988(MacMillen Publishing；NewYork)P.33；划线表明在被连结的取代氨基酸之间的硫羟键的形成，肽通过每一个肽中的未保护的半胱氨酸残基的游离巯基与BSH、ETAC、BSME、TSEA、(BAT-BS)或包含(CH2CO)-的连接物相结合；AC＝乙酰基；BZ＝苯甲酰基；Pic＝甲代吡啶基(吡啶-2-羰基)；Acm＝乙酰氨基甲基；Mob＝4-甲氧基苄基；Apc＝L-(S-(3-氨基丙基)半胱氨酸)；Hly＝高赖氨酸；FD＝D-苯基丙氨基酸；YD＝D-酪氨酸；ma＝2-巯基乙酸；mmp＝2-巯基-2-甲基丙酸；BAT＝N6，N9-二(2-巯基-2-甲基丙基)-6，9-二氮壬酸；ETAC＝4-(O-CH2CO-Gly-Gly-Cys。酰胺基)乙酰苯基丙酮；BAT-BS＝N-{2-N′，N′-二(2-琥珀酰亚胺基乙基)氨基乙基}-N5，N9-二(2-巯基-2-甲基丙基)-6，9-二氮壬杂酰胺；BSME＝二-琥珀酰亚胺基甲基醚；TSEA＝三-(2-琥珀酰亚胺基乙基)胺；NES＝N-乙基琥珀酰亚胺；BSH＝1，6-二-琥珀酰亚胺基己烷；Amp＝4-脒基苯基丙氨酸。a＝由电子散射质谱(ESMS)进行鉴定。
                           实施例3
                     血小板聚集抑制试验
血小板聚集作用的研究基本上是按照Zucker(1989，Methods in Enzymol.169：117-133)所描述的方法开展的。大体上，血小板凝集抑制试验是用人的新鲜血小板富集的血浆(含300,000血小板/毫升)加入或不加入一般公认的抑制血小板凝集的化合物进行的。加入二磷酸腺苷溶液(直至最终浓度为10～15mmol)可诱导血小板凝集作用，可由Bio/Data凝集仪(Bio/Data Corp.，Horsham，PA)检测控制。血小板聚集作用抑制剂的浓度范围从0.1～500μg/mL。血小板凝集作用降低50％时所需的抑制剂浓度(定义为IC50)可在“抑制剂的浓度-血小板凝集程度”曲线图上测出。RGDS多肽的抑制曲线可通过每一批血小板试验绘出。
这些实验结果列于表II。在表II中，试验的化合物如下(RGDS为阳性对照)：
      P47＝  AcSYGRGDVRGDFKCAcmGCAcm
      P97＝  GRGDVRGDFKCAcmGCAcm酰胺
      P32＝  CAcmGCAcmRRRRRRRRRGDV
      P143＝ CH 2 CO-Y D RGDCGGCAcmGCAcm酰胺
      P245＝ CH 2 CO-Y D .Apc.GDCGGCAcmGCAcmGGFDPRPG酰胺
      P63＝  AcSYGRGDVRGDFKCTCCA
      P98＝  GRDGVRGDFCAcmGCAcm酰胺
      P81＝  CH 2 CO-Y D RGDCCAcmGCAcm酰胺
      P154＝ CH 2 CO-Y D ApcGDCGGGCAcmGCAcm酰胺
      P381＝( CH 2 CO-Y D ApcGDCKGCAcmGCAcmGGC-酰胺)2-BSME
      P317＝( CH 2 CO-Y D ApcGDCGGCAcmGCAcmGGC-酰胺)3-TSEA
      P246＝ CH 2 CO-Y D ADcGDCGGCAcmGCAcmGGC-酰胺
      P357＝( CH 2 CO-Y D ApcGDCGGCAcmGCAcmGGC-酰胺)2-(BAT-BS)
      P667＝( CH 2 COY D .Apc.GDCGGCAcmGCAcmGGC酰胺)2(CH2CO)2K(N∈-
K)GC酰胺
      P747＝( CH 2 COY D .Amp.GDCGGCAcmGCAcmGGC酰胺)2(CH2CO)2K(N∈-
K)GC酰胺
      P748＝( CH 2 COY D .Amp.GDCKGCG酰胺)2(CH2CO)2K(N∈-K)GC酰胺
(氨基酸的单字母缩写见G.Zubay，Biochemistry(2d，ed.)，1988(MacMillen Publishing；New Yrok)P.33；AC＝乙酰基；Acm＝乙酰胺基甲基；Apc＝L-(S-(3-氨基丙基)半胱氨酸；YD＝D-酪氨酸；BSME＝双-琥珀酰亚胺基甲基醚；TSEA＝三-(琥珀酰亚胺基乙基)胺；(BAT-BS)＝N-{2-(N′，N′-二(2-琥珀酰亚胺基乙基)氨基乙基}-N6，N9-二(2-甲基-2-巯基丙基)-6，9-二氮杂壬酰胺；多肽通过每一个肽中的未保护半胱氨酸残基的游离巯基与BSME、TSEA、(BAT-BS)或者包含(CH2CO)-的连接物相结合。(…)2K代表括弧部分与赖氨酸的每个氨基(即α-氨基和侧链氨基)之间的共价结合。(Ns-K)代表赖氨酸残基的∈-氨基上而不是通常所指的α-氨基上的共价结合。
           表II
  肽     IC 50 (μM) **  血块/血 *P357    0.079          6.3±3.45P667    0.081          5.9，5.02P682    0.130          4.01P317    0.036          3.8±2.23P381    0.035          2.5P154    0.30           2.0±0.53P246    0.85           4.4±1.8
  P143    1.3            1.4P97     8              1.0P98     15             1.7P63     19             1.7P47     23             1.0P81     25             1.8±0.63P32     26             1.2±0.24
1n＝1；2n＝2；2n＝3；4n＝4；5n＝9
*对DVT犬模型注射每一种Tc-99m标记的试剂，约4小时后的(股静脉血栓中的注射剂量的百分数％)/(血液中注射剂剂量的百分数％)的比例。
**在腺苷二磷酸(ADP)诱导下，人的血浆(富含血小板)中血小板的聚集作用降低50％时的试剂浓度。
这些结果表明：作为闪烁照相成像剂，IC50≤约1μM的化合物比IC50约大于1μM的化合物更有效。
                       实施例4
               体内深部静脉血栓闪烁照相成像
已开展的一系列实验包括了对本发明中的闪烁照相成像剂中一个具体实例(P280)进行试验性的临床研究。P280化学结构：
( CH 2 CO.Y D ApcGDC GGCAcm GCAcm GGC.酰胺)2-BSME
这些实验进行时选用了9个病人(男6人，女3人)，年龄30～60岁，体重63～100Kg。每一个病人都呈现深度静脉血栓的临床病症，而且经过体检，超声波检查和/或与之相对照的静脉造影术的诊断确证。
供研究的每一个病人，均给以静脉注射时约含0.25mg多肽的10-20mCiTc-99m标记的P280。4小时后，用一个装有高分辨的准直管的广角γ照相机进行闪烁照相显影。γ照相显影在注射的同时便开始进行。注射后1小时，2小时和4小时，先后获得一些显影图片。
这些研究的结果在图1和图2中给以显示了。图1显示了大腿下部血管中的血栓部位，图2显示了小腿血管中的血栓的部位。在每一个图中，血栓定位部位用一个箭头标示出来了。除了迅速有效地显示深部静脉血栓的部位外。这些闪烁照相成像剂还可以迅速地从血液中清除掉，从而使得血循环中的残留剂量约低于10％的注射剂量。与动物研究相一致的是，至少有60-70％的注射剂量被肾脏清除掉了。血栓成像在注射后15～30分钟就已很明显，并在注射后4～24小时仍保持一定的可见度。与深部静脉血栓临床诊断密切相关的血栓造影术在上述提及的传统临床诊断方法基础上做出，供研究的9个病人中8个病人的血栓显影效果很好。那个未能被显影的病人其血栓临床表现期较长(42天)，这种血栓很可能已静止，从而使得血小板在其表面不能再周转。最后，在这些病人中均未发现Tc-99m标记的P280有毒性或其它不良反应。
这些结果表明，本发明中的这种闪烁照相成像剂代表了一种用于人体内深部静脉血栓显影的安全而有效的诊断试剂。
应该指出的是，前面所陈述的重点在于本发明中某些特定的具体实施方案；另外，所有被改进的或改换的类似物均属本发明范围之内，如下边所附的权利要求中所陈述的那样。

Claims (4)

1.一种环肽，其分子量低于10,000道尔顿，并与血小板糖蛋白IIb/IIb受体相结合且能抑制人的富含血小板血浆中血小板的聚集作用，当0.3μM＜浓度≤1μM时，其抑制率为50％(IC50），其中该环肽包含序列-Amp-Gly-Asp-。
2.一种权利要求1的环肽，其中所述环肽具有通式：
其中  A为亲脂的D-α-氨基酸，或N-烷基-L-α-氨基酸或L-脯氨酸；和
每一个R分别为H、低级烷基或低级烷氧基烷基。
3.权利要求1的环肽，其中所述环肽的结构式为：
CH2CO.YD.Amp.GDC                 或
CH2CO.YD.Amp.GDCK.
4.一种化合物，结构式为：CH2CO-YDAmpGDCKGCG酰胺。
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