CN1225556C - 编码人成骨蛋白-1的重组核酸及其用途 - Google Patents

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CN1225556C CNB021109753A CN02110975A CN1225556C CN 1225556 C CN1225556 C CN 1225556C CN B021109753 A CNB021109753 A CN B021109753A CN 02110975 A CN02110975 A CN 02110975A CN 1225556 C CN1225556 C CN 1225556C
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王皓
李春澍
王一栋
刘庆法
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Abstract

本发明提供了一种编码人成骨蛋白-1的重组核酸,能够实现在哺乳动物,尤其是CHO细胞中的高表达。本发明还提供了包含该重组编码核酸的载体、宿主细胞。本发明还提供了一种利用人成骨蛋白-1的重组核酸治疗骨损伤包括开放性骨折的方法。

Description

编码人成骨蛋白-1的重组核酸及其用途
                             技术领域
本发明涉及编码人成骨蛋白-1的重组核酸及其表达。
                             背景技术
OP-1(osteogenic protein-1)即成骨蛋白-1,是BMP即骨形态发生蛋白家族中的成员。有些文献中称之为BMP-7。人OP-1的cDNA编码NQEALR肽段。人OP-1(hOP-1)的cDNA含有一个1293bp的开放读框,编码431个氨基酸的hOP-1蛋白。在编码的第一个蛋氨酸后面分别为疏水性信号肽段、前体肽段和成熟肽段。成熟肽具7个Cys,形成三个链内二硫键,两成熟肽单体通过一个链间二硫键形成二聚体。成熟肽单体有一个位点被糖基化。信号肽段、前体肽段参与OP-1表达的胞内翻译后加工过程,这些加工过程只在真核细胞发生。在原核系统表达OP-1很难得到活性产物,国内外文献尚未见到成功报道。OP-1已经在CHO、COS-1和昆虫细胞中成功表达出有活性的成熟蛋白(Sampath TK,Maliakal JC,Hauschka PV,Jones WK,Sasak H,Tucker RF,White KH,Coughlin JE,Tucker MM,Pang RH,et al.J Biol Chem 1992 Oct5;267(28):20352-62)。而且,上述表达所用仅限于OP-1的天然序列,至今尚为有关人工优化的报道。
OP-1具有广泛的生理功能,对骨骼、眼、肾、脑的发育起着重要调节作用[JenaN,Martinseisdedos C,Mccue P,et al.Exp cell Res,1997,230:28-37.]。尤其是,OP-1在诱导骨组织和肾组织形成方面起重要作用。至今已有大量报道证实OP-1有助于骨及软骨组织缺损的修复,显示了良好的临床应用前景。骨折的治疗常使用大量的骨移植以诱发缺损处的愈合,自体或异体骨移植是最常被使用的方法,但各有其使用上的限制。目前已知当利用自体或异体骨移植治疗片段骨缺损,BMP蛋白能促进骨愈合。
但是,人们始终需要不断提高目的蛋白例如OP-1蛋白的表达量,这对于科研和进一步的产业化应用无疑具有巨大的潜在价值。
                             发明内容
本发明的目的在于提供一种编码hOP-1的重组核酸,能够实现在哺乳动物,尤其是CHO细胞中的高表达。
本发明的目的还在于提供用于实现以上目的的载体。
本发明的目的还在于提供用于实现以上目的宿主细胞。
为了实现以上目的,本发明提供了一种编码hOP-1的重组核酸,其序列如SEQ ID NO:1所示。
本发明的重组核酸可用多种方法获得,其中包括,以公开的天然序列(例如的Genbank登录号XM-030620)为模板进行定点诱变;或根据本发明给定的序列进行全合成。这些都已是本领域的常规技术。而且,核苷酸序列的鉴定也是本领域的常规技术,在现有文献中多有记载。因此,根据本发明给定的核苷酸序列,本领域技术人员不难结合现有技术制备得到本发明的编码hOP-1的重组核酸。
本发明还提供一种载体,其中含有本发明编码hOP-1的重组核酸。在本领域中,通过适当的克隆技术,将目的核酸片段插入合适的载体以实现保存,扩增和/或表达等目的,已是一般常规技术。合适载体的选择取决于克隆目的,载体容量,与宿主细胞的相容性,酶切位点等多种因素,本领域技术人员不难根据具体情况做出适当选择。可用以本发明的载体例如但不限于pMSG,pGEM,pET15b,pET32b(Invitrogen公司产品)等。
本发明还提供了一种细胞,包含本发明编码hOP-1的重组核酸,所述核酸处于与所述细胞相容的表达系统中。所述细胞选自哺乳动物细胞,尤其是CHO细胞。所述宿主细胞可以通过常规转染或转化而获得所述核酸。挑选与宿主细胞相容的表达载体已是本领域的常规技术,结合大量已有文献,不难做出此类选择。
从后文实施例中可以看出,本发明编码hOP-1的重组核酸显著提高了hOP-1蛋白在宿主细胞内的表达,最大提高可达6.3倍。
                           附图说明
图1为用于构建本发明表达载体的pMSG载体。
                          具体实施方式
编码hOP-1的重组核酸及其制备
本发明对hOP-1的编码核酸进行了重组设计,所得人工序列如SEQ ID NO:1所示。用DNAstar软件的MegAlign功能将本发明人工序列与发表的hOP-1基因的编码区的DNA序列(自GeneBank登录号XM_030620)进行比较,发现两者有175个碱基的差异,均匀分布在整个编码区。
有多种方法可获得序列已知的聚核苷酸,这些都已是本领域的常规技术。例如,本发明的人工序列可通过长链PCR合成来制备(参见Chrisostomos Prodromouand Larurence H.Pearl,1992,Protocol:Recursive PCR:a novel technique for totalgene synthesis,Protein Engineering,5:827~829.)。具体的说,参照该文献所述,根据本发明的人工序列设计重叠PCR引物,从序列的5′至3′,包括正向引物F1-18(SEQ ID NO:2-19),及反向引物B1(SEQ ID NO:20)。其中,为了进行后续操作,在第一正向引物F1的5′端增加保护性碱基及NheI位点,即ctc gctagc;同理,在反向引物B1的5′端增加保护性碱基及位点Xho I cat ctcgag。合成引物(上海生化公司)并用PEGA纯化,在无菌水中制备成500ng/μL的储备液。
在如下PCR体系中进行反应:F1和B1终浓度100ng/μL,其余片段为20nM/μL,1X PCR反应缓冲液,1.5mM MgCl2,200nM的dNTPs,Pfu DNA聚合酶10U。反应程序为:94℃,预变性5分钟;主循环为:94℃变性1分钟,55℃1分钟,72℃5分钟,循环30次;72℃,后延伸5分钟。
上述PCR完毕后,在1%琼脂糖电泳上鉴定合成产物。割取1300bp左右的明显条带,用Promega公司的凝胶回收试剂盒进行回收。
人工序列的鉴定
取5微升如上制备的本发明重组DNA,与1微升pGEM-T easy载体(Promega产品)混合,加入2微升10X连接缓冲液(Promega产品)和1微升NEB的T4 DNA连接酶,充分混合后在16℃反应10小时以上。按常规方法用所得重组载体转化大肠杆菌DH5a菌株,经蓝/白斑筛选获得阳性克隆。酶切鉴定确认带有目的插入片段的克隆,在ABI377全自动测序仪上对其进行双向测序。确认序列与本发明设计的SEQ ID NO:1完全相符。该克隆在本发明中命名为:pGEM/rhOP-1,其中的“r”表示重组。
天然hOP-1基因的制备
为了进行后文表达水平比较试验,另制备天然hOP-1基因。
取新鲜胎盘组织200mg(上海长海医院提供),剪碎后在液氮中研磨至极细,立即加入2ml TRIZOL匀浆(购自Invitrogene公司),按厂家说明书提取总RNA。所提总RNA在1.5%琼脂糖电泳上鉴定完整性,28sRNA、18sRNA两条标志带完整清晰,表明所需的RNA没有降解。
根据已经发表的hOP-1 DNA序列(GenBank登录号:XM_030620)设计引物,其中引物F(SEQ IN NO:21)设计在ORF上游6~20bp,并引入以斜体表示的HindIII位点。引物R(SEQ IN NO:22)中引入以斜体表示的BamHI位点:
引物F:5 GC AAGCTTAGCGCGTAGAGCCG 3
引物R:5 TA GGATCCCTAGTGGCAGGCC 3
合成上述引物(上海生工公司)并进行PAGE纯化。采用反转录试剂盒(Promega公司),将以上提取的总RNA以随机六核苷酸引物反转录成单链cDNA模板。对反转录模板用引物F和引物R扩增hOP-1完整基因。具体扩增条件为:50微升反应体系,其中包含1X PCR反应缓冲液,引物F和引物R的浓度均为100pM,镁离子1.5mM,模板cDNA浓度为100微摩尔,含5U Pfu DNA聚合酶(购自NEB公司)。扩增程序为:预变性:94℃2分钟;主循环:94℃1分钟,58℃1分钟,72℃2.5分钟,共30个循环;后延伸:72℃5分钟。平行进行5管扩增以获取足量的扩增产物。以上扩增产物在1%琼脂糖电泳上进行鉴定。发现有一分子量约1kb的单一条带,与预期大小相符。用凝胶回收试剂盒(Bio101产品),按照产品说明书,进行凝胶回收,得到纯化的DNA。
按照产品说明书,将上述所得纯化DNA插入pGEM-T载体(Promega产品),获得重组DNA。然后,用上述重组DNA按常规操作转化大肠杆菌DH5a菌株,通过蓝/白斑筛选获得阳性克隆。挑选阳性克隆进行酶切鉴定,确认带有目的插入片段的转化克隆。在ABI377全自动测序仪上对所得阳性转化克隆进行双向测序,确认与已知hOP-1天然基因序列完全一致。该克隆在本发明中命名为:pGEM/hOP-1。
hOP-1基因天然序列与人工序列的表达及比较
用常规方法抽提前述天然hOP-1基因克隆pGEM/hOP-1和编码hOP-1的重组核酸克隆pGEM/rhOP-1的DNA。分别用Nhe I和Xho I进行双酶切。在0.8%琼脂糖电泳上进行分离,各切取分子量约1.3kd左右的带后用Promega公司的凝胶回收试剂盒回收该片段,即天然和重组hOP-1 DNA。
将上述回收的天然和重组DNA连接到pMSG表达载体(购自Pharmacia公司)的Nhe I/Xho I位点上,获得含天然hOP-1基因的表达载体pMSG/hOP-1和含本发明重组hOP-1基因的载体pMSG/rhOP-1。
用购自Invitrogene公司的转染试剂盒,按照说明书,采用脂质体法,用以上所得表达载体转染CHO细胞。转染后的CHO细胞经连续3个月的霉酚酸筛选,其浓度从0.05uM到10uM,每两周增加一次浓度,每次霉酚酸的用量约为前一次的2倍,具体视细胞生长情况而定。
挑选阳性克隆进行细胞培养,培养基为15%胎牛血清(Gibco)+RPM1640/DEME;37℃,5%CO2培养箱中培养72小时进行扩增。然后用极度稀释法进行单克隆化。用ELISA方法检测培养物上清液中的表达量,其中,一抗为鼠抗人OP-1单抗(购自深圳晶美公司),二抗为HRP标记的兔抗鼠单克隆抗体(购自华美生物工程公司)。测定结果:含天然hOP-1基因的CHO克隆最高表达强度为22.13mg/μL;含本发明编码hOP-1的重组核酸即工序列的CHO克隆最高表达强度则高达139.43mg/μL,是天然基因表达强度的6.3倍。由此证明,本发明编码hOP-1的重组核酸与天然hOP-1基因相比,显著提高了其在CHO细胞中的表达。
hOP-1表达产物的生物活性鉴定
将CHO细胞株pMSG/hOP-1和pMSG/rhOP-1分别接种在50ml RPMI1640培养基,37℃,5%CO2培养箱中进行培养。7日后取25ml细胞培养液,500RPM离心10分钟取上清。
将上述两种来源培养上清分别置于Millipore Microcon MW15000的离心浓缩管中,5000rpm离心30分钟,使其浓缩10倍左右。然后,以1∶5、1∶10、1∶20、1∶50、1∶100的稀释比加入成骨细胞MC3T3-E1细胞培养基(GIBCO BRL公司产品V0743)中。
将500μl上述加有不同浓度OP-1上清液的成骨细胞MC3T3-E1细胞培养基加入到96孔板中,每种浓度6个孔。以不加OP-1上清液的成骨细胞MC3T3-E1细胞培养基作为阴性对照。然后在每个孔中加入20微升细胞密度为1×106细胞/ml的成骨细胞MC3T3-E1,37℃培养72小时后取50微升细胞测定碱性磷酸酶(AP)活性。活性测定用NBT/BCIP法进行显色反应,在酶标仪上读取495nm处的光吸收。结果如下:
Figure C0211097500071
从上述结果可以看出,无论是rhOP-1,还是rhHOP-1,其表达产物都有显著的刺激成骨细胞AP表达的能力。由于AP水平是成骨细胞分化指征之一,说明我们获得的含rhHOP-1细胞株能够表达有生物活性的OP-1蛋白。其中,rhHOP-1上清液具有更高的生物活性,因为其表达强度较高。
                         序列表
<110>上海中信国健药业有限公司
<120>编码人成骨蛋白-1的重组核酸及其用途
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Claims (5)

1.一种编码人成骨蛋白-1的重组核酸,其序列为SEQ ID NO:1。
2.一种载体,其中包含权利要求1所述的重组核酸。
3.一种细胞,包含权利要求1所述的重组核酸,所述重组核酸处于与所述细胞相容的表达系统中。
4.根据权利要求3所述的细胞,选自哺乳动物细胞。
5.根据权利要求4所述的细胞,它是CHO细胞。
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