CN118126891A - 一株贝莱斯芽孢杆菌c5、菌发酵液及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一株耐盐促生的贝莱斯芽孢杆菌C5、菌发酵液及其应用，该贝莱斯芽孢杆菌C5，其保藏编号为CGMCC No 27764。还公布了一种微生物菌剂和一种微生物肥料，本发明的贝莱斯芽孢杆菌C5对植物耐盐碱地生长具有显著作用；本发明的贝莱斯芽孢杆菌C5可以作为微生物菌剂、微生物肥料等的活性成分，用于促进植物生长、缓解盐碱地对植物生长的影响。本发明的贝莱斯芽孢杆菌C5为植物内生菌，在植物中的应用环保有效，制备方法简单，适合推广化生产应用，克服了研发微生物菌肥的菌种存在着效果不稳定、功能单一、资源有限等问题。
Description
技术领域
本发明涉及微生物技术领域，特别涉及一株耐盐促生的贝莱斯芽孢杆菌C5、菌发酵液及其应用。
背景技术
目前，全球盐碱地的累计覆盖面积已经高达9.5亿hm2，占世界平均地表所含覆盖总面积的10％左右，并且每年仍以125万hm2左右的速度在持续增加，因此，土壤盐碱化问题已成为当下全球最严重的环境问题之一。就我国而言，现在我国盐渍土的面积约为9913万hm2，主要分布在我国的23个省、市、自治区的平原、盆地和沿海地区。且我国种植主要粮食作物小麦和玉米的分布图与这些盐碱地地区重叠较多
土壤含盐量过高是限制农作物生长发育和产量的重要非生物逆境，全球范围内近20％的灌溉土壤受盐碱侵蚀。由土壤盐碱化导致的产量损失约占水稻、玉米和小麦等作物产量损失的70％。我国的东部沿海以及西北和东北等地有大面积的盐渍化土壤，化学肥料的长期大量施用使土壤生态环境进一步恶化。盐渍化土壤的改良利用是农业生产中亟需解决的问题。
随着我国农业向着绿色、高质量发展，质量兴农、绿色兴农和品牌强农战略逐渐成为我国农业发展的主旋律，作为绿色新型投入品和优先支持发展的生物制品，微生物肥料及其产业得以迅速的发展和壮大。微生物肥料具有以盐适种、生态优先、用养结合和提质增效的优点，是一条可复制可推广的盐渍化土地科学高效利用的特色路子。微生物菌剂是一种新兴的生物改良方式，与传统方式相比具有明显的安全、高效、环保的优势。微生物菌剂通过发挥耐盐性土壤微生物的多种功能直接改善植物在盐碱地中的根际不良生长环境，有效缓解土壤盐渍化胁迫对作物生长的不良影响，大大改善盐碱盐渍化土壤肥力。其中微生物菌肥改良作为一种新兴的生物改良措施，因其环保、生态效益高等优点而极具潜力。但目前用于研发微生物菌肥的菌种存在着效果不稳定、功能单一、资源有限等问题，筛选出高效稳定的多功能菌种并研发出一款耐盐促生微生物菌肥具有重要的意义与应用价值。
然而当前微生物菌肥(菌剂)的开发存在很多问题，菌肥的开发核心是优良的促生或者拮抗菌株，目前核心菌株的缺少是主要问题，菌株的功能性比较单一，而且菌株的稳定性较差，其与作物的作用机理也不清楚等等问题。
因此筛选新型优良耐盐、促生菌株亟待解决，现有技术有待进一步发展。
发明内容
本发明旨在解决上述问题，提供了一株耐盐促生的植物内生菌贝莱斯芽孢杆菌C5、菌发酵液及其应用。
植物内生促生菌株能与植物建立和谐共生关系，是指在植物生命周期内存在于植物体中的非致病性的微生物。内生菌不会对宿主产生不利影响，在植物病害控制、次生代谢物合成、植物生长调节和抗逆性等方面发挥着重要作用。内生菌与宿主植物存在长期的共生关系。一方面，内生菌通过吸收水分养分、诱导产生激素、铁载体和抗菌次生代谢物、调节脯氨酸含量、提高抗氧化酶活性等一系列措施促进植物生长，提高植物抗逆性和抗病性；另一方面，植物通过木质化影响内生细菌和真菌的发育过程和多样性并改变内生菌的代谢功能，加速内生菌在宿主植物体内定殖。
具体的，本发明提供的技术方案如下：
第一方面，本发明提供一株贝莱斯芽孢杆菌，其为贝莱斯芽孢杆菌C5，其保藏编号为CGMCC No 27764。贝莱斯芽孢杆菌C5于2023年7月3日保藏于：中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏编号为CGMCC No 27764，地址为：北京市朝阳区北辰西路1号院3号，请求保藏单位为青岛农业大学。
第二方面，本发明还提供一种利用第一方面所述的贝莱斯芽孢杆菌C5制备的菌发酵液。
第三方面，本发明还提供一种利用第一方面所述的贝莱斯芽孢杆菌C5制备的活性提取物。
第四方面，本发明还提供了一种用于培养如权利要求1所述的贝莱斯芽孢杆菌的发酵培养基，包括以下成分：NaCl 10g/L、蛋白胨5g/L、酵母提取物10g/L。
第五方面，本发明还提供了一种如第一方面所述的贝莱斯芽孢杆菌的培养方法，取菌株C5种子液以5％的接种量接种于20mLLB培养基中，28℃、160r/min培养20h。
第六方面，本发明提供了一种微生物菌剂，所述微生物菌剂包括如第一方面所述的贝莱斯芽孢杆菌C5、第二方面所述的菌发酵液和/或第三方面所述的活性提取物。
进一步的，所述微生物菌剂还包括其他与贝莱斯芽孢杆菌C5发挥互补作用或协同作用的其他菌种。
第七方面，本发明还提供了一种微生物肥料，所述微生物肥料包括如第一方面所述的贝莱斯芽孢杆菌C5、第二方面所述的菌发酵液和/或第三方面所述的活性提取物。
进一步的，所述微生物肥料还包括其他与贝莱斯芽孢杆菌C5发挥互补作用或协同作用的其他菌种。
第八方面，本发明还提供了如第一方面所述的贝莱斯芽孢杆菌C5、如第二方面所述的菌发酵液、如第三方面所述的活性提取物、如第六方面所述的微生物菌剂、如第八方面所述的微生物肥料在植物耐盐胁迫和/或促生长中的应用。所述植物可以为玉米、辣椒、烟草、番茄等。
本发明具有如下有益效果：
1、本发明筛选得到了一株耐盐促生的贝莱斯芽孢杆菌C5，其保藏编号为CGMCC No27764；对于促进植物生长、缓解盐碱地对植物的生长具有显著效果；
2、本发明的贝莱斯芽孢杆菌C5对植物耐盐碱地生长具有显著作用；
3、本发明的贝莱斯芽孢杆菌C5可以作为微生物菌剂、微生物肥料等的活性成分，用于促进植物生长、缓解盐碱地对植物生长的影响；
4、本发明的贝莱斯芽孢杆菌C5为植物内生菌，在植物中的应用环保有效，制备方法简单，适合推广化生产应用，克服了研发微生物菌肥的菌种存在着效果不稳定、功能单一、资源有限等问题。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案，下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍。显而易见地，下面描述中的附图仅仅是本发明的一种实施例，对于本领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动的前提下，还可以根据提供的附图引伸获得其它的实施附图。
图1：本发明的菌株C5促生功能鉴定图；
图2：本发明的菌株C5形态学观察结果示意图；
图3：本发明的菌株C5革兰氏染色结果示意图；
图4：本发明的菌株C5芽孢染色结果示意图；
图5：本发明的菌株C5基因扩增产物示意图；
图6：本发明的菌株C5的16srDNA进化树示意图；
图7：本发明的菌株C5耐盐性鉴定曲线图；
图8：本发明的菌株C5耐盐性检测平板实验示意图；
图9：本发明的菌株C5发酵液对玉米种子发芽率及发芽势影响结果示意图；
图10：本发明的不同稀释倍数C5发酵液对烟草幼苗耐盐促生功能检测示意图；
图11：本发明的菌株C5发酵液对烟草幼苗盐胁迫下抗氧化酶活性的影响。
具体实施方式
下面将结合本发明实施例中的附图，对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例，以下实施例只是为了举例说明本发明，而非以任何方式限制本发明的范围。基于本发明中的实施例，本领域技术人员在没有作出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。本发明所使用的实验方法如无特殊说明，均为常规方法。本发明所用的材料、试剂等，如无特殊说明，均可从商业途径得到。此外，本发明中所使用的其它术语，除非有另外说明，一般具有本领域普通技术人员通常理解的含义。
实施例1：植物内生细菌的分离
从山东东营盐碱地选取生长良好的作物材料，低温保存运回实验室进行微生物的分离和筛选。首先将作物的根或茎部切段进行冲洗、超声波等进行表面清洗，再通过酒精、次氯酸钠表面消毒初次用75％的酒精浸泡3-5min，再经2％次氯酸钠浸泡30-40min，表面消毒完毕后用无菌水冲洗5次，无菌条件下晾干，每个样品加入6ml无菌水在灭菌研钵中研磨，静置10-15min后将研磨上清液按倍比稀释到10-3，吸取80-100μL涂布LB培养基里，每个处理样品3次重复，30℃恒温培养2-3天。
以表面消毒后的最后一次无菌水冲洗液作为对照，来检验是否是内生细菌，若对照的平板上没有杂菌生长，即进行后续植物内生细菌的筛选。根据上述方法筛选出79株菌株进行后续筛选与鉴定，分别如表1所示。
表1植物内生菌筛选
实施例2：内生菌株的促生功能分析
配置溶磷、解钾和固氮的培养基，115℃，20min高压灭菌后倒入培养皿中备用，吸取活化后的种子液2μL点样于培养基中央，28℃倒置培养72h后观察结果。
实验结果如表2所示，对分离筛选得到的79株内生菌株分别进行溶有机磷、溶无机磷、解钾和固氮功能分析，实验结果发现有12株菌具有溶有机磷、无机磷、解钾和固氮的功能。其中菌株C1、C2、C4、C5、JC1和JC2具有较好的溶解有机磷和无机磷、固氮和溶解矿物钾的功能，菌株C3具有溶无机磷、解钾和固氮的功能。
分析菌株溶解无机磷能力的配置，所述培养基的配置如下，葡萄糖10g/L、硫酸铵0.5g/L、氯化钠0.3g/L、硫酸镁0.3g/L、硫酸锰0.03g/L、硫酸钾0.3g/L、硫酸亚铁0.03g/L、磷酸钙5g/L、琼脂15g/L。
分析菌株溶解有机磷能力的配置，所述培养基的配置如下，葡萄糖10g/L、硫酸铵0.5g/L、酵母浸粉0.5g/L、氯化钠0.3g/L、氯化钾0.3g/L、硫酸镁0.03g/L、硫酸亚铁0.03g/L、磷酸钙5g/L、琼脂15g/L。
分析菌株是否具有固氮能力的配置，所述培养基的配置如下，葡萄糖10g/L、硫酸铵0.5g/L、酵母浸粉0.5g/L、氯化钠0.3g/L、氯化钾0.3g/L、硫酸镁0.03g/L、硫酸亚铁0.03g/L、磷酸钙5g/L、琼脂15g/L。
表2内生菌促生功能分析
实施例3：内生菌株的促生功能鉴定
配置溶磷、解钾和固氮的培养基，115℃，20min高压灭菌后倒入培养皿中备用，吸取活化后的种子液2μL点样于培养基中央，28℃倒置培养72h后观察结果。
对上述12种菌株进行促生功能鉴定，如表3所示，分析得出C1、C2、C3、C4、C5、JC1和JC2这七株具有较好溶有机磷、无机磷、解钾和固氮能力的促生能力，并且显著高于其他五种菌株。因此选择这七株菌进行进一步的分析。
解钾解磷评估标准：直径比＝透明圈直径/菌斑直径*100％
固氮评估标准：测定菌落直径。
图1显示菌株C5的溶磷、解钾和固氮能力
表3内生菌促生功能分析
实施例4：内生菌株分泌生长素和赤霉素
通过现有技术的方法对实施例3中筛选的C1、C2、C3、C4、C5、JC1和JC2这七株菌株进行分泌铁载体、生长素和赤霉素能力的测定。
实验结果分析发现在这七株菌中只有C2、C5和JC1这三株菌同时具有分泌生长素和赤霉素的能力。生长素可以促进植物生长，赤霉素可以促进种子萌发。
对C2、C5和JC1进行分泌生长素和赤霉素含量进行测定，实验结果显示在这三株菌中C5可以产生较多的生长素和赤霉素，其含量分别是5.07μg/ml和5.23μg/ml。因此综合促生能力菌株C5最强。
表4不同内生菌分泌生长素和赤霉素的能力
实施例5：内生菌株C5的形态学观察
利用平板划线的方法分别对菌株C5划线和单菌落进行培养，由图2可以看出，菌株C5的单菌落在LB培养基上生长24h，呈边缘不规则的椭圆状，外表湿润粘稠，乳白色不透明且隆起。如图3所示，菌株C5革兰氏染色与指示菌枯草芽孢杆菌颜色均为紫色，因此鉴定菌株C5为革兰氏阳性菌，同时，图4芽孢染色显示菌株C5可以产生芽孢。
实施例6：内生菌株C5的生理生化鉴定
菌株C5的生理生化鉴定表明，唯一碳源利用实验表明菌株C5可以利用乳糖、蔗糖和麦芽糖产酸，可以水解淀粉和液化明胶，并且可以产生生长素和赤霉素。吲哚实验结果为阳性，氧化酶试验结果为阴性。不具有产生纤维素酶的能力，具有运动性。
表3菌株C5生理生化测定结果
实施例7：内生菌株C5的16srDNA基因序列扩增示意图
基于形态学观察和生理生化实验，菌株C5被初步鉴定为芽孢杆菌属菌株。提取菌株C5的DNA并将其作为模板，采用16SrDNA通用上游引物27F和下游引物1492R对16S rDNA核苷酸片段进行扩增，扩增体系见表1，将扩增得到的产物送至生工公司进行测序。
引物序列如下：
上游引物27F:5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′；
下游引物1492R:5′-TACGGTTACCTTGTTACGACTT-3′。
表4 16S rDNA的PCR体系
测序结果显示，菌株C5的16SrDNA的长度为1445bp，测序结果见序列表中SEQ IDNo:1。将测序得到的序列提交到NCBI进行BLAST比对，选择相似度较高的菌株序列进行下载。利用软件MEGA 6.0构建系统发育进化树，具体见图6。16SrDNA的序列比对结果显示，C5与Bacillus velez的相似度最高。
因此，结合该菌的形态、生理生化特征和16S rDNA序列分析结果可确定，该菌株为贝莱斯芽孢杆菌，将其命名为贝莱斯芽孢杆菌(Bacillus velez)C5。
将上述筛选到的贝莱斯芽孢杆菌C5于2023年7月3日保藏于：中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏编号为CGMCC No27764，地址为：北京市朝阳区北辰西路1号院3号，请求保藏单位为青岛农业大学。
实施例8：内生菌株C5的耐盐性分析
取-80℃保存的菌株C5种子液接种于20ml LB培养基中28℃、160r/min摇瓶培养20h后以5％的接种量将菌株C5的菌液分别转接相同量到不同盐浓度的LB液体培养基中，本实施例中，液体培养基中NaCl的质量浓度分别为1％、2％、4％、6％、8％和10％，于温度27～29℃、转速120～180r/min条件下摇床培养24h后，观察不同盐浓度下菌株C5的生长情况，测试菌的生物量，从而确定耐盐促生菌菌株的耐盐度。24h后测其菌浓度(OD600)，以确定该菌株的耐盐程度，得到如图7所示的耐盐度折线图。
根据图7和图8的结果显示，耐盐促生菌菌株C5对NaCl有较大的适应范围，其在1～6％的盐浓度下均可生长，这说明菌株C5的耐盐性最高可达6％。
实施例9：内生菌株C5菌液对盐胁迫下玉米种子发芽的影响
挑选颗粒完整饱满的玉米种子作为实验材料，挑选颗粒饱满无霉变、大小一致无损的玉米种子，首先置于70％酒精溶液内表面消毒20s，后用5％次氯酸钠消毒2min，无菌水洗涤3-5次，最后浸种6h。
菌株C5在LB培养基中28℃、160r/min摇瓶发酵20h后稀释进行后续处理。设置正常条件和盐胁迫条件，每个条件3种处理，分别为对照、灭菌的LB、C5菌液，其中C5菌液、灭菌的LB是有无菌水稀释100倍后处理。
浸种结束后用滤纸吸干表面水分放在9cm的培养皿中，培养皿中提前放置双层滤纸，然后把培养皿放入25℃恒温培养箱中进行培养，期间补充水分保持湿润，72h后测定发芽率和发芽势。
表5实验设计
发芽率＝(发芽种子粒数÷供试种子粒数)×100％。
发芽势＝发芽总粒数÷试验总粒数×100％。
2、实验结果及分析
在150mM NaCl的条件下，种子萌发被抑制，对照组的发芽率仅为30.3％，经过C5发酵液处理后提高了种子的发芽率，C5发酵液处理后的发芽率较对照组提高到了66.7％，发芽势提高到了55.1％，由图9和表6结果表明菌株C5可以提高玉米种子发芽率。
表6盐胁迫下C5对玉米种子萌发的影响
实施例10：不同稀释倍数菌株C5发酵液对盐胁迫下烟草幼苗生长的影响1、实验方法：
烟草盆栽实验是在青岛农业大学温室中进行，温度为28℃、光周期为14h/10h、光照强度为1000Lux，土壤为营养土。
将烟草种子按每穴孔2粒的量点至装有泥炭土的穴盘中，上覆盖0.5cm的泥炭土，将穴盘置于托盘中，加入1L水，待种子发芽，每周浇水2次，每次1L水，待烟草幼苗长至四叶一心期，移栽入花盆中(高10cm、上口直径10cm)，一周后再次移栽入大花盆中(高20cm、上口直径20cm)，进行盆栽实验。
对烟草设置以下四个处理组：
(1)空白对照组(不做任何处理)；
(2)盐胁迫处理组(150mmol/L NaCl盐水处理草炭土，设置营养土的盐度为4‰)；
(3)盐胁迫处理组+菌株C5菌液处理(28℃，160r/min培养20h后稀释5倍灌根处理)
(4)盐胁迫处理组+菌株C5菌液处理(28℃，160r/min培养20h后稀释10倍灌根处理)
(5)盐胁迫处理组+菌株C5菌液处理(28℃，160r/min培养20h后稀释15倍灌根处理)
对以上各个处理的烟草幼苗进行固定用量50ml灌根，烟草处理一次。期间使用吡蚜酮和烯啶虫胺进行喷洒，防止病虫害。待烟草生长3周后对其进行生长指标的测量。
2、实验结果及分析
如图10所示烟草植物受到盐胁迫后生长受到抑制，其株高、茎粗、叶片数和叶面积相比于正常土壤降低了29.82％、35.74％、37.40％和34.80％，分别用稀释5倍、10倍和15倍菌株C5发酵液进行灌根处理，用5倍稀释发酵液处理后因浓度较高导致土壤和植株内环境离子稳态失衡加剧从而抑制了植株生长。10倍稀释发酵液灌根处理后，其烟草株高、茎粗、叶片数和叶面积相比于盐胁迫下的植株提高了25.00％、17.59％、30.00％和31.73％，接近正常土壤条件下烟草幼苗的生长状况。15倍稀释发酵液处理后由于稀释倍数过高导致菌株对烟草耐盐促生功能不显著，因此选择稀释10倍的菌株发酵液进行后续研究。
实施例11：菌株C5发酵液对辣椒幼苗生长的影响
1、实验方法：
将营养土与珍珠岩按照9:1的比例进行混合得到育苗基质。取辣椒的种子分别放置于育苗穴盘中在28℃黑暗条件下萌发，萌发1周后移栽于花盆中放置于28℃，4h/10h光周期，光强为1200Lux的温室中进行培养2周。分别选取长势一致的材料进行如下的盆栽实验。取菌株C5在LB培养基中28℃、160r/min摇瓶发酵20h的菌液进行后续处理
对辣椒设置以下四个处理组：
(1)空白对照组(不做任何处理)；
(2)盐胁迫处理组(150mmol/L NaCl盐水处理营养土，设置营养土的盐度为4‰)；
(3)菌株C5发酵液处理(28℃，160r/min培养20h后稀释10倍灌根处理)
(4)盐胁迫处理+菌株C5发酵液处理
对以上各个处理的辣椒幼苗进行固定用量50ml灌根，处理两次。期间使用吡蚜酮和烯啶虫胺进行喷洒，防止病虫害。待辣椒生长4周后分别对其进行生长指标的测量。
2、实验结果及分析
(1)从表7可知，盐胁迫条件下耐盐菌株C5发酵液能够有效促进辣椒的生长；从表7的结果可知，相对于盐胁迫处理组，盐胁迫下进行菌株C5发酵液处理组的辣椒的株高、叶片数及叶面积显著增加，分别依次提高了16.15％、19.59％和15.40％。同时发现，与空白对照组相比，单独施加耐盐菌株C5发酵液能够促进辣椒的生长。
表7盐胁迫下C5对辣椒幼苗生长的影响
实施例12：菌株C5发酵液对烟草幼苗抗氧化酶的影响
1、实验方法：
将烟草种子按每穴孔2粒的量点至装有泥炭土的穴盘中，上覆盖0.5cm的泥炭土，将穴盘置于托盘中，加入1L水，待种子发芽，每周浇水2次，每次1L水，待烟草幼苗长至四叶一心期，移栽入花盆中(高10cm、上口直径10cm)，一周后再次移栽入大花盆中(高20cm、上口直径20cm)，进行盆栽实验。
对烟草设置以下四个处理组：
(1)空白对照组(不做任何处理)；
(2)盐胁迫处理组(150mmol/L NaCl盐水处理草炭土，通过盐度计测定土壤盐含量为4‰)；
(3)空白对照+菌株C5发酵液处理(28℃，160r/min培养20h后稀释10倍灌根处理)
(4)盐胁迫处理组+菌株C5发酵液处理(28℃，160r/min培养20h后稀释10倍灌根处理)
对以上各个处理的烟草幼苗进行固定用量50ml灌根，烟草处理2次。待烟草生长4周后对其进行抗氧化酶的测量。SOD酶活性测定参考Li等人(2021)所述的氮蓝四唑(NBT)法；POD酶活性测定参考Yu等人(2020)所述的愈创木酚法进行测定；CAT酶活性测定参考Shen等人(2021)所述。2、实验结果及分析：
抗氧化酶包括SOD、POD和CAT三类酶，抗氧化酶是作物抵御非生物胁迫的重要指标之一，对POD、SOD和CAT的酶活性进行测定，由图11可以看出在4‰盐含量胁迫条件下菌株C5发酵液处理后POD的酶活性和对照相比提升了63.39％，SOD的酶活性提高了12.85％，CAT的酶活性提高了28.85％。由此可见在盐胁迫下菌株C5菌液处理后显著提高了烟草叶片中的抗氧化酶活性。说明菌株C5菌液处理后可以通过提高烟草幼苗的抗氧化酶活性来提高烟草幼苗的耐盐性
可以理解的是，对本领域普通技术人员来说，可以根据本发明的技术方案及本发明构思加以等同替换或改变，而所有这些改变或替换都应属于本发明所附的权利要求的保护范围。
Claims (10)
1.一株贝莱斯芽孢杆菌，其特征在于，为贝莱斯芽孢杆菌C5，其保藏编号为CGMCCNo.27764。
2.利用权利要求1所述的贝莱斯芽孢杆菌C5制备的菌发酵液。
3.利用权利要求1所述的贝莱斯芽孢杆菌C5制备的活性提取物。
4.一种用于培养如权利要求1所述的贝莱斯芽孢杆菌的发酵培养基，其特征在于，包括以下成分：NaCl 10g/L、蛋白胨5g/L、酵母提取物10g/L。
5.一种如权利要求1所述的贝莱斯芽孢杆菌的培养方法，其特征在于，取菌株C5种子液以5％的接种量接种于20mL LB培养基中，28℃、160r/min培养20h。
6.一种微生物菌剂，其特征在于，所述微生物菌剂包括如权利要求1所述的贝莱斯芽孢杆菌C5、权利要求2所述的菌发酵液和/或权利要求3所述的活性提取物。
7.根据权利要求6所述的一种微生物菌剂，其特征在于，所述微生物菌剂还包括其他与贝莱斯芽孢杆菌C5发挥互补作用或协同作用的其他菌种。
8.一种微生物肥料，其特征在于，所述微生物肥料包括如权利要求1所述的贝莱斯芽孢杆菌C5、权利要求2所述的菌发酵液和/或权利要求3所述的活性提取物。
9.根据权利要求8所述的一种微生物肥料，其特征在于，所述微生物肥料还包括其他与贝莱斯芽孢杆菌C5发挥互补作用或协同作用的其他菌种。
10.如权利要求1所述的贝莱斯芽孢杆菌C5、如权利要求2所述的菌发酵液、如权利要求3所述的活性提取物、如权利要求6所述的微生物菌剂、如权利要求8所述的微生物肥料在植物耐盐胁迫和/或促生长中的应用。
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