CN117683651A - 基因工程菌及其构建方法和应用 - Google Patents
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Abstract
本发明属于合成生物技术领域,具体公开了提供了基因工程菌及其构建方法和应用。本发明首次实现了刺梨酸在真核生物中的全合成,通过对从刺梨中筛选得到的RrCYP450‑5基因、RrCYP450‑4基因、RrCYP450‑3基因在酿酒酵母中的表达进行研究,先选用基因拟南芥AtCPR1和长春花CrAS、CrAO构建了能够产熊果酸和齐墩果酸的酵母底盘菌株DYK02;接着以菌株DYK02作为底盘,将RrCYP450‑4基因与RrCYP450‑5基因在酿酒酵母菌株DYK02中进行异源表达,最终得到一株能够产生刺梨酸的酿酒酵母菌株DYK08,经过摇瓶发酵得到刺梨酸,产量为104±2μg/L。
Description
技术领域
本发明属于合成生物技术领域,具体涉及基因工程菌及其构建方法和应用。
背景技术
植物天然产物经过长期的分子进化,以其多样独特的分子结构,不仅在宿主体内发挥着信号转导、抗逆、防御等作用,在异源表达时也具有各种的活性,是药物和食品研发的重要来源。但植物中特有的植物次生代谢产物往往含量很少,且生物合成途径并不明晰,很大程度上阻碍了这些次生代谢产物通过合成生物学的方法进行大规模的生物制造。
刺梨中富含的三萜类化合物具有很好的药理活性,通过解析其生物合成途径可以更好的开发和应用刺梨三萜。由于植物次级代谢产物生物合成途径的关键基因与原核生物中天然产物的合成途径不同,其关键基因簇往往离散的分布在植物染色体的不同部位,导致其遗传表达体系的建立也十分困难,这极大的阻碍了利用基因敲除和突变的传统策略进行植物次级代谢产物生物合成途径的解析。
目前,已在酵母中进行功能验证的大多数 P450 属于双子叶植物 CYP716 家族。大多数 CYP450 表现出混合的底物和产物,不仅作用于各种结构类似物,还氧化底物的不同位置。CYP450 的混杂催化活性有助于植物中三萜类化合物的多样化,但可能导致酵母中不理想的结构类似物。异源表达的植物 P450 在微生物中表现出较差的化学和区域选择性,限制了相关天然产物的有效生物合成。
因此,从自然界中获取刺梨三萜的来源很有限,而且现有技术中缺少生产刺梨酸的基因工程菌。
发明内容
本发明的目的在于,针对现有技术的上述不足,提供了基因工程菌及其构建方法和应用,通过将RrCYP450-4与RrCYP450-5在酿酒酵母中进行异源表达,得到能够以熊果酸为底物产生刺梨酸的菌株 DYK08。
为实现上述目的,本发明采用如下的技术方案:
本发明的第一目的是提供一种生产刺梨酸的基因工程菌,以产熊果酸和齐墩果酸的酿酒酵母为底盘菌株,将RrCYP450-5基因和RrCYP450-4基因依次整合至所述底盘菌株的基因组上,得到生产刺梨酸的基因工程菌,所述RrCYP450-5基因的核苷酸序列如SEQ IDNO.1所示,所述RrCYP450-4基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。
进一步的,所述产熊果酸和齐墩果酸的酿酒酵母构建过程包括以下步骤:
S1、以酿酒酵母CEN.PK2-1D 菌株为底盘,构建过表达IPP和DMAPP的质粒载体,利用 CRISPR/Cas9 技术将相应的基因表达盒整合至酿酒酵母CEN.PK2-1D 中,得过表达 MVA途径的底盘菌株,记为酿酒酵母菌株 D3;
S2、利用CRISPR/Cas9 技术将CrAS基因、AtCPR1基因和CrAO基因整合至酿酒酵母菌株 D3 基因组中,即得到产熊果酸和齐墩果酸的酿酒酵母菌株 DYK02。
进一步的,步骤S1中,所述的过表达IPP和DMAPP的质粒载体包括 pD1 质粒、pD2质粒和pD3 质粒,所述pD1质粒含有tHMG1、ERG10和ERG13基因表达盒,所述pD2 质粒含有tHMG1、ERG12和IDI1基因表达盒,所述pD3 质粒含有ERG20、ERG8和MVD1基因表达盒。
进一步的,步骤S2中,整合的具体过程是通过将构建的pD4、pDYK01和pDYK02质粒导入到菌株 D3中;所述pD4质粒含有CrAS和ERG1基因表达盒,所述pDYK01质粒含有CrAO和AtCPR1基因表达盒,所述pDYK02质粒含有pHXT1基因表达盒。
本发明的第二目的是提供上述的基因工程菌的构建方法,包括以下具体步骤:
S1、以酿酒酵母DYK02 菌株为宿主,将RrCYP450-5基因表达盒整合至 ybr128C 位点,得到菌株 DYK03;
S2、以菌株 DYK03为底盘菌株,将RrCYP450-4基因表达盒整合至 DYK03酿酒酵母基因组上,得到所述基因工程菌,记为菌株 DYK08。
进一步的,所述RrCYP450-5基因表达盒的质粒载体为pDYK03质粒,所述pDYK03质粒的构建过程为:以酿酒酵母 CEN.PK2-1D 基因组为模板,用引物 1701-F 和1701-R,1705-F 和 1705-R,PCR 扩增整合位点同源左臂和同源右臂片段;以pDYK01质粒为模板,用引物1702-F和1702- R,PCR扩增得到GAL1启动子片段;以刺梨cDNA为模板,用引物1703-F和1703-R,PCR扩增得到RrCYP450-5基因片段;以43802质粒为模板,用引物1704-F和1704-R,PCR扩增得到CYC1终止子片段;以pRS426-URA质粒为模板,用引物1706-F和1706-R,PCR扩增得到质粒骨架片段;将上述片段预处理后,经酵母醋酸锂转化,组装成 pDYK03 质粒;
所述引物1701-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示,
所述引物1701-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.5所示,
所述引物1702-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.6所示,
所述引物1702-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.7所示,
所述引物1703-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.8所示,
所述引物1703-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.9所示,
所述引物1704-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.10所示,
所述引物1704-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.11所示,
所述引物1705-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.12所示,
所述引物1705-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.13所示,
所述引物1706-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.14所示,
所述引物1706-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.15所示。
进一步的,所述RrCYP450-4基因表达盒的质粒载体为pDYK05质粒,所述pDYK05质粒的构建过程为:以酿酒酵母 CEN.PK2-1D 基因组为模板,用引物 1901-F 和1901-R,1905-F 和 1905-R,PCR 扩增整合位点同源左臂和同源右臂片段;以pDYK01质粒为模板,用引物1902-F和1902-F,PCR扩增得到GAL1启动子片段;以刺梨cDNA为模板,用引物1903-F和1903-R,PCR扩增得到RrCYP450-4基因片段;以43802质粒为模板,用引物1904-F和1904-R,PCR扩增得到CYC1终止子片段;以pRS426-URA质粒为模板,用引物1906-F和1906-R,PCR扩增得到质粒骨架片段;将上述片段预处理后,经酵母醋酸锂转化,组装成 pDYK05 质粒;
所述引物1901-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.16所示,
所述引物1901-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.17所示,
所述引物1902-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.18所示,
所述引物1902-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.19所示,
所述引物1903-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.20所示,
所述引物1903-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.21所示,
所述引物1904-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.22所示,
所述引物1904-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.23所示,
所述引物1905-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.24所示,
所述引物1905-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.25所示,
所述引物1906-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.26所示,
所述引物1906-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.27所示。
本发明的第三目的是提供上述的基因工程菌在制备刺梨酸中的应用。
本发明的第四目的是提供一种生产刺梨酸的方法,将上述的基因工程菌发酵培养,从培养物中获得刺梨酸。
进一步的,所述发酵培养过程为在YPDG 培养基中进行摇瓶发酵培养 至少120 h。
现有技术比较,本发明提供的技术方案带来的有益效果是:
(1)本发明以刺梨(Rosa roxburghii Tratt.)为研究对象,对从刺梨中筛选得到的三个 RrCYP450 基因(RrCYP450-5基因、RrCYP450-4基因、RrCYP450-3基因)在真核生物中的表达进行研究,首先选用基因拟南芥AtCPR1和长春花CrAS、CrAO构建了一株能够产熊果酸和齐墩果酸的酵母底盘菌株 DYK02,经发酵检测该菌株能够生产熊果酸的产量为3.25± 0.35 mg/L,齐墩果酸 1.78 ±1.05 mg/L;接着以菌株 DYK02 作为底盘,将RrCYP450-4基因 与RrCYP450-5基因在酿酒酵母菌株 DYK02中进行异源表达,最终得到一株能够产生刺梨酸的酿酒酵母菌株 DYK08,经过摇瓶发酵得到刺梨酸的产量为 104 ±2μg/L。
(2)本发明首次实现了刺梨酸在酿酒酵母中的全合成。
附图说明
图1为质粒pD1、pD2、pD3基因表达盒示意图;
图2为质粒pD4、pDYK01、pDYK02基因表达盒示意图;
图3为质粒pDYK03、pDYK04、pDYK05基因表达盒示意图;
图4为菌株DYK02、DYK08、DYK11发酵产物含量对比图,图中刺梨酸(Roxburicacid),熊果酸(Ursolic acid),齐墩果酸(Oleanolic acid);
图5为菌株DYK08发酵产物HPLC检测图谱,图中1:刺梨酸;2:齐墩果酸;3:熊果酸;
图6为构建质粒pD1用到的引物序列表;
图7为构建质粒pD2用到的引物序列表;
图8为构建质粒pD3用到的引物序列表;
图9为构建质粒pD4用到的引物序列表;
图10为构建质粒pDYK01、pDYK02用到的引物序列表;
图11为构建质粒pDYK03用到的引物序列表;
图12为构建质粒pDYK04、pDYK05用到的引物序列表;
图13为构建质粒sgRNA质粒、sgRNA-D1D2、sgRNA-D3D4、sgRNA-△ DPP1、sgRNA-△pERG7、sgRNA-△ ybr128c、sgRNA-△ CIT2、sgRNA-△ ydr448w用到的引物序列表。
具体实施方式
为使本发明的目的、技术方案和优点更加清楚,下面结合具体实施例和附图,对本发明的具体实施方式作进一步详细描述。实施例中未注明具体技术或条件的,按照本领域内的文献所描述的技术或条件或者按照产品说明书进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者,均为可以通过市购获得的常规产品。
本发明中提供的RrCYP450-5基因和RrCYP450-4基因来自于刺梨叶片,于2019年在贵州省黔南布依族苗族自治州,贵定县昌明镇采集获得。
RrCYP450-5基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示,RrCYP450-4基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示,RrCYP450-3基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示。本发明中用到的质粒详细信息如表1和表2所示:
表1.
表2.
本发明中用到的菌株详细信息如表3所示:
表3.
本发明中使用的CRISPR/Cas9 基因编辑方法过程为:
本发明中Cas9质粒(addgene#43802)和sgRNA(addgene#43803)。由于要在不同位点进行基因的敲入和敲除,引导Cas9蛋白切割的sgRNA质粒是需要根据位点的变换而进行变化的。具体实施方式中sgRNA质粒的制备方法:以addgene#43803为基础,用PCR扩增的方式,替换gRNA scaffold序列前20bp序列,整合位点的相应序列如表4所示,随后,将43802质粒,经过变换的43803sgRNA质粒和经过NotⅠ线性化的质粒片段(pD1,pD2等),使用醋酸锂转化法转入酿酒酵母菌株,经过筛选验证得到正确整合的菌株。
表4.
本发明中用的溶液及培养基的配制:
(1)5’FOA固体培养基
准确称取无氨基酸酵母氮源 YNB 6.7 g,葡萄糖 20 g,相应氨基酸粉末 1.3 g,琼脂粉 18 g,上述组分在加入琼脂粉之前定容至 1L,使用 NaOH 溶液调节 pH=6.5。加入琼脂粉混匀后经 115 ℃高压蒸汽灭菌 30 min。等待培养基稍冷却,避光条件下加入无菌5’ FOA 溶液,混匀后倒平板,避光 4 ℃保存。
(2)酵母组装中 DNA 片段预处理溶液
3 M 乙酸钠的配制:准确称取 24.61 g 无水乙酸钠,蒸馏水溶解并定容至 100mL,经 115℃高压蒸汽灭菌 30 min,于 4 ℃保存。
10 mg/mL 糖原的配制:准确称取 100 mg 糖原,蒸馏水混匀并定容至 10 mL,经115℃高压蒸汽灭菌 30 min,室温保存。
(3)酿酒酵母感受态细胞及酵母醋酸锂转化时所需的溶液的制备
10×TE 溶液:准确称取 Tris base 12.114 g,乙二胺四乙酸二钠 3.7224 g,用蒸馏水溶解并定容至 1L,用稀 HCl 调节 pH=7.5,经 115℃高压蒸汽灭菌 30 min,室温保存。
10×LiAc 溶液:准确称取醋酸锂 10.2 g,用蒸馏水充分溶解,用冰醋酸调节pH=7.5,再用蒸馏水定容至 100 mL,使用 0.22 μm 无菌滤膜过滤除菌,4℃保存。
40% PEG4000 溶液:准确称取 PEG4000 80 g,蒸馏水溶解并定容至 160 mL。经115℃高压蒸汽灭菌 30 min,4℃保存。
(4)酿酒酵母细胞基因组提取的破壁缓冲液
准确称取 Triton-100 20 g,SDS 10 g,氯化钠 5.844 g,Tris-Hcl 1.211 g,乙二胺四乙酸 0.3695 g,蒸馏水充分溶解并定容至 1L,用盐酸调 pH=8.0,常温保存。
(5)用于酿酒酵母细胞基因组提取的 4 M 乙酸铵溶液
准确称取乙酸铵 30.83 g,蒸馏水充分溶解后,定容至 100 mL,混合均匀后,于115℃高压蒸汽灭菌 30 min,4℃保存。
本发明构建酵母底盘所用的引物包括:pD1 组装、pD2 组装、pD3
组装、pD4 组装、pDYK 01 组装、pDYK 02 组装、pDYK 03 组装、pDYK 04 组装、pDYK 05 组装、sgRNA 质粒构建通用引物、sgRNA-D1D2 组装、sgRNA-D3D4 组装、sgRNA-△DPP1 组装、sgRNA-△ pERG7 组装、sgRNA-△ ybr128c 组装、sgRNA-△ CIT2 组装和sgRNA-△ ydr448w 组装,引物序列的详细信息如图6-图13所示。
本发明中用到的长春花CrAS基因、长春花CrAO基因的核苷酸序列可参考文献:JINK, SHI X, LIU J, et al. Combinatorial metabolic engineering enables theefficient production of ursolic acid and oleanolic acid in Saccharomycescerevisiae [J]. Bioresour Technol, 2023, 374: 128819。
本发明中用到的拟南芥AtCPR1基因的核苷酸序列可参考文献:YU Y, CHANG P,YU H, et al. Productive Amyrin Synthases for Efficient alpha Amyrin Synthesisin Engineered Saccharomyces cerevisiae [J]. Acs Synth Biol, 2018, 7(10):2391-2402。
实施例1
本实施例提供生产刺梨酸的基因工程菌的构建。
1、产熊果酸和齐墩果酸的酿酒酵母底盘菌株的构建
1.1以酿酒酵母CEN.PK2-1D 菌株为底盘,构建过表达 MVA 途径基因的质粒载体pD1,pD2,pD3和pD4,具体信息详见表1所示。
pD1 质粒构建过程:以酿酒酵母 CEN.PK2-1D 基因组为模板,用引物 1101-F 和1101-R,1110-F 和 1110-R,PCR 扩增整合位点同源左臂和同源右臂片段;以酿酒酵母S288C 基因组为模板,用引物 1102-F 和 1102-R,PCR 扩增 ACT1 终止子片段;以酿酒酵母 S288C 基因组为模板,用引物 1103-F 和 1103-R,1105-F 和 1105-R,1107-F 和1107-R,1108-F 和 1108-R,1109-F 和 1109-R,PCR 扩增得到 tHMG1 基因片段、ERG10 基因片段、GAL7 启动子片段、ERG13 基因片段、ENO1 终止子片段;以 43802
质粒为模板,用引物 1104-F 和 1108-R,PCR 扩增得到 CYC1 终止子片段;以pESCURA 质粒为模板,用引物 1104-F 和 1104-R,PCR 扩增得到双向启动子 pGAL1pGAL10片段;以 pRS426-URA 质粒为模板,用引物 1111-F 和 1111-R,PCR 扩增得到质粒骨片段;将上述片段预处理后,经酵母醋酸锂转化,组装成 pD1 质粒,其相应的基因表达盒示意图如图1所示。
pD2 质粒构建过程:以酿酒酵母 CEN.PK2-1D 基因组为模板,用引物 1201-F 和1201-R,1208-F 和 1208-R,PCR 扩增整合位点同源左臂和同源右臂片段;以pD1质粒为模板,用引物1202-F和1202-R,PCR扩增得到ACT1t-tHMG1-pGAL1pGAL10片段;以酿酒酵母S288C 基因组为模板,用引物 1203-F 和 1203-R,1206-F和1206-R,PCR 扩增 得到ERG12基因和IDI1基因片段;以质粒43802为模板,用引物1204-F和1204-R,PCR扩增得到CYC1终止子片段;以酿酒酵母S288C 基因组为模板,用引物1205-F和1205-R, 引物1207-F和1207-R,分别PCR扩增得到GAL7启动子片段和CPS1终止子片段;以pRS426-URA质粒为模板,用引物1209-F和1209-R,PCR扩增得到质粒骨架片段;将上述片段预处理后,经酵母醋酸锂转化,组装成 pD2 质粒,其相应的基因表达盒示意图如图1所示。
pD3 质粒构建过程:以酿酒酵母 CEN.PK2-1D 基因组为模板,用引物 1301-F 和1301-R,1310-F 和 1310-R,PCR 扩增整合位点同源左臂和同源右臂片段;以酿酒酵母S288C 基因组为模板,用引物 1302-F 和 1302-R,PCR 扩增 ACT1 终止子片段;以酿酒酵母 S288C 基因组为模板,用引物 1303-F 和 1303-R,1305-F 和 1305-R,1307-F 和1307-R,1308-F 和 1308-R,1309-F 和 1309-R,PCR 扩增得到 ERG20 基因片段、ERG8 基因片段、GAL7 启动子片段、MVD1 基因片段、CPS1 终止子片段;以 43802质粒为模板,用引物1306-F 和 1306-R,PCR 扩增得到 CYC1 终止子片段;以 pESC-URA 质粒为模板,用引物1304-F 和 1304-R,PCR 扩增得到双向启动子 pGAL1pGAL10片段;以 pRS426-URA 质粒为模板,用引物 1311-F 和 1311-R,PCR 扩增得到质粒骨片段;将上述片段预处理后,经酵母醋酸锂转化,组装成 pD3 质粒,其相应的基因表达盒示意图如图1所示。
pD4 质粒构建过程:以酿酒酵母 CEN.PK2-1D 基因组为模板,用引物 1401-F 和1401-R,1407-F 和 1407-R,PCR 扩增整合位点同源左臂和同源右臂片段;以43802质粒为模板,用引物1402-F和1402-R, PCR扩增得到CYC1终止子片段;以长春花cDNA为模板,用引物1403-F和1403-R,PCR扩增得到CrAS基因片段;以pESC-URA质粒为模板,用引物1404-F和1404-R,和1406-F和1406-R,分别PCR扩增得到双向启动子pGAL1pGAL10片段和ADH1终止子片段;以酿酒酵母 S288C 基因组为模板,用引物1405-F和1405-R,PCR扩增得到ERG1基因片段;以pRS426-URA质粒为模板,用引物1408-F和1408-R, PCR扩增得到质粒骨架;将上述片段预处理后,经酵母醋酸锂转化,组装成 pD4 质粒,其相应的基因表达盒示意图如图1所示。
1.2 将构建的pD1基因表达盒、pD2基因表达盒和pD3基因表达盒,通过CRISPR/Cas9 基因编辑技术依次整合至酿酒酵母CEN.PK2-1D 中,得到菌株 D3,即为过表达 MVA途径的底盘菌株。菌株 D3对MVA 途径中的全部基因进行过表达,使其确保三萜的生物合成,供应充足的前体IPP 与 DMAPP。
1.3 构建pDYK 01质粒和pDYK 02质粒
pDYK 01质粒构建过程:以酿酒酵母 CEN.PK2-1D 基因组为模板,用引物 1501-F和1501-R,1506-F 和 1506-R,PCR 扩增整合位点同源左臂和同源右臂片段;以酿酒酵母S288C基因组为模板,用引物1502-F和1502-R,PCR扩增得到GAL1启动子片段;以长春花cDNA为模板,用引物1503-F和1503-R,PCR扩增得到CrAO基因片段;以拟南芥cDNA为模板,用引物1504-F和1504-R,PCR扩增得到AtCPR1基因片段;以43802质粒为模板,用引物1505-F和1505-R,PCR扩增得到CYC1终止子片段;以pRS426-URA质粒为模板,用引物1507-F和1507-R,PCR扩增得到质粒骨架;将上述片段预处理后,经酵母醋酸锂转化,组装成 pDYK01 质粒,其相应的基因表达盒示意图如图2所示。
pDYK 02质粒构建过程:以酿酒酵母 CEN.PK2-1D 基因组为模板,用引物 1601-F和1601-R,1603-F 和 1603-R,PCR 扩增整合位点同源左臂和同源右臂片段;以酿酒酵母S288C基因组为模板,用引物1602-F和1602-R,PCR扩增得到HXT1启动子片段;以pRS426-URA质粒为模板,用引物1604-F和1604-R,PCR扩增得到质粒骨架;将上述片段预处理后,经酵母醋酸锂转化,组装成 pDYK02 质粒,其相应的基因表达盒示意图如图2所示。
将构建的pD4基因表达盒,pDYK 01基因表达盒和pDYK 02基因表达盒通过CRISPR/Cas9 基因编辑技术依次整合至酿酒酵母菌株 D3 中,得到菌株 DYK02。
通过过表达ERG1角鲨烯单加氧酶有利于促进角鲨烯的转化和 2,3-氧化角鲨烯的形成,同时引入长春花中的CrAS基因,可以产生两种五环三萜产物:α- Amyrin 和 β-Amyrin;此外,由于甾醇和三萜共享同一生物合成途径,甾醇的合成会与三萜的生物合成之间存在底物的竞争。在酵母中有ERG7羊毛甾醇合酶的存在,会与本发明中的五环三萜合成通路竞争中间产物 2,3-氧化角鲨烯,因此选择用pHXT1启动子对其进行抑制表达,在低葡萄糖浓度下抑制其表达,实现对竞争旁路基因进行表达抑制目的。同时,引入长春花CrAO基因可以使酿酒酵母利用 α-Amyrin 和 β-Amyrin产生熊果酸和齐墩果酸,同时引入拟南芥AtCPR1基因可以使CrAO基因的催化效率提升。
将菌株 DYK02 在 YPDG 培养基中进行摇瓶发酵培养 120 h 后,采用 HPLC对发酵产物进行含量检测,具体方法:利用赛默飞 Vanquish 液相色谱仪对样品进行分析。流动相为水(A):色谱乙腈(C),色谱柱选择 HiQ sil C18W 色谱柱(4.6 mmΦ×250 mm),进样量为 10 μL;流速为 1mL/min;柱温为 30 ℃;检测波长为 λ=210 nm;Chromeleon 7 工作站软件用于数据的采集与分析。
检测结果为:熊果酸产量为 3.25 ± 0.35 mg/L,齐墩果酸产量为 1.78 ±1.05mg/L。
2、构建RrCYP450 基因的 Donor DNA 质粒载体pDYK 03、pDYK 04、pDYK 05.
pDYK 03质粒构建过程:以酿酒酵母 CEN.PK2-1D 基因组为模板,用引物 1701-F和1701-R,1705-F 和 1705-R,PCR 扩增整合位点同源左臂和同源右臂片段;以pDYK01质粒为模板,用引物1702-F和1702-F,PCR扩增得到GAL1启动子片段;以刺梨cDNA为模板,用引物1703-F和1703-R,PCR扩增得到RrCYP450-5基因片段;以43802质粒为模板,用引物1704-F和1704-R,PCR扩增得到CYC1终止子片段;以pRS426-URA质粒为模板,用引物1706-F和1706-R,PCR扩增得到质粒骨架片段;将上述片段预处理后,经酵母醋酸锂转化,组装成 pDYK03 质粒,其相应的基因表达盒示意图如图3所示。
pDYK 04质粒构建过程:以酿酒酵母 CEN.PK2-1D 基因组为模板,用引物 1801-F和1801-R,1805-F 和 1805-R,PCR 扩增整合位点同源左臂和同源右臂片段;以pDYK 01质粒为模板,用引物1802-F和1802-F,PCR扩增得到GAL1启动子片段;以刺梨cDNA为模板,用引物1803-F和1803-R,PCR扩增得到RrCYP450-3基因片段;以43802质粒为模板,用引物1804-F和1804-R,PCR扩增得到CYC1终止子片段;以pRS426-URA质粒为模板,用引物1806-F和1806-R,PCR扩增得到质粒骨架片段;将上述片段预处理后,经酵母醋酸锂转化,组装成 pDYK04质粒,其相应的基因表达盒示意图如图3所示。
pDYK 05质粒构建过程:以酿酒酵母 CEN.PK2-1D 基因组为模板,用引物 1901-F和1901-R,1905-F 和 1905-R,PCR 扩增整合位点同源左臂和同源右臂片段;以pDYK01质粒为模板,用引物1902-F和1902-F,PCR扩增得到GAL1启动子片段;以刺梨cDNA为模板,用引物1903-F和1903-R,PCR扩增得到RrCYP450-4基因片段;以43802质粒为模板,用引物1904-F和1904-R,PCR扩增得到CYC1终止子片段;以pRS426-URA质粒为模板,用引物1906-F和1906-R,PCR扩增得到质粒骨架片段;将上述片段预处理后,经酵母醋酸锂转化,组装成 pDYK05 质粒,其相应的基因表达盒示意图如图3所示。
以菌株 DYK02 为宿主,将RrCYP450-5(pDYK03)基因表达盒整合至 ybr128C 位点,得到菌株 DYK03;以菌株 DYK02 为宿主,将RrCYP450-3(pDYK04)基因表达盒整合至CIT2 位点,得到菌株 DYK04;以菌株 DYK02 为宿主,将RrCYP450-4(pDYK05)基因表达盒整合至 ydr448W 位点,得到菌株 DYK05。对上述菌株进行摇瓶发酵,均未检测到刺梨酸的生产。
以菌株 DYK03 为底盘菌株,将RrCYP450-4和RrCYP450-3基因分别整合至酿酒酵母DYK03基因组上,得到菌株 DYK08 和DYK11。
对菌株 DYK08 和 DYK11摇瓶发酵培养:挑取3-5颗长于YPD固体培养基(胰蛋白胨20 g/L,酵母抽提物 10 g/L,葡萄糖20 g/L, 琼脂粉16 g/L)的酿酒酵母菌株至含有5 mLYPD液体培养基(胰蛋白胨20 g/L,酵母抽提物 10 g/L,葡萄糖20 g/L)中,30 ℃ 220 rpm过夜培养(14-16 h),为种子液;种子液接种至含有200 mL YPDG液体培养基(胰蛋白胨20g/L,酵母抽提物 10 g/L,葡萄糖20 g/L,半乳糖10 g/L)中,接种前测定OD600值,保证接种后初始OD600在0.3-0.5之间。30 ℃ 220 rpm培养120 h。
对发酵产物进行HPLC检测,结果如图4和5所示,DYK08 菌株与 DYK02 菌株相比,其熊果酸产量明显减少,但齐墩果酸含量与对照菌株 DYK02 相同,同时在刺梨酸所在的保留时间有产物产生,经计算刺梨酸产量为 104 ±2μg/L。而菌株 DYK11 的发酵结果经检测并没有刺梨酸的产生。该部分实验结果也印证了体外酶活实验结果中齐墩果酸无法参与刺梨酸的产生的结论。
在不冲突的情况下,本文中上述实施例及实施例中的特征可以相互结合。
以上所述仅为本发明的较佳实施例,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (10)
1. 一种生产刺梨酸的基因工程菌,其特征在于,以产熊果酸和齐墩果酸的酿酒酵母为底盘菌株,将RrCYP450-5 基因和RrCYP450-4基因依次整合至所述底盘菌株的基因组上,得到生产刺梨酸的基因工程菌,所述RrCYP450-5 基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示,所述RrCYP450-4基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。
2.如权利要求1所述的基因工程菌,其特征在于,所述产熊果酸和齐墩果酸的酿酒酵母构建过程包括以下步骤:
S1、以酿酒酵母CEN.PK2-1D 菌株为底盘,构建过表达IPP和DMAPP的质粒载体,利用CRISPR/Cas9 技术将相应的基因表达盒整合至酿酒酵母CEN.PK2-1D 中,得过表达 MVA 途径的底盘菌株,记为酿酒酵母菌株 D3;
S2、利用CRISPR/Cas9 技术将CrAS基因、AtCPR1 基因和CrAO 基因整合至酿酒酵母菌株 D3 基因组中,即得到产熊果酸和齐墩果酸的酿酒酵母菌株 DYK02。
3. 如权利要求2所述的基因工程菌,其特征在于,步骤S1中,所述的过表达IPP和DMAPP的质粒载体包括 pD1 质粒、pD2 质粒和pD3 质粒,所述pD1质粒含有tHMG1、ERG10和ERG13基因表达盒,所述pD2 质粒含有tHMG1、ERG12和IDI1基因表达盒,所述pD3 质粒含有ERG20、ERG8和MVD1基因表达盒。
4. 如权利要求3所述的基因工程菌,其特征在于,步骤S2中,整合的具体过程是通过将构建的pD4、pDYK01和pDYK02质粒导入到菌株 D3中;所述pD4质粒含有CrAS和ERG1基因表达盒,所述pDYK01质粒含有CrAO和AtCPR1基因表达盒,所述pDYK02质粒含有pHXT1基因表达盒。
5.一种如权利要求4中所述的基因工程菌的构建方法,其特征在于,包括以下具体步骤:
S1、以酿酒酵母DYK02菌株为宿主,将RrCYP450-5基因表达盒整合至 ybr128C 位点,得到菌株 DYK03;
S2、以菌株 DYK03为底盘菌株,将RrCYP450-4基因表达盒整合至 DYK03酿酒酵母基因组上,得到所述基因工程菌,记为菌株 DYK08。
6. 如权利要求4所述的构建方法,其特征在于,所述RrCYP450-5基因表达盒的质粒载体为pDYK03质粒,所述pDYK03质粒的构建过程为:以酿酒酵母 CEN.PK2-1D 基因组为模板,用引物 1701-F 和1701-R,1705-F 和 1705-R,PCR 扩增整合位点同源左臂和同源右臂片段;以pDYK01质粒为模板,用引物1702-F和1702- R,PCR扩增得到GAL1启动子片段;以刺梨cDNA为模板,用引物1703-F和1703-R,PCR扩增得到RrCYP450-5基因片段;以43802质粒为模板,用引物1704-F和1704-R,PCR扩增得到CYC1终止子片段;以pRS426-URA质粒为模板,用引物1706-F和1706-R,PCR扩增得到质粒骨架片段;将上述片段预处理后,经酵母醋酸锂转化,组装成 pDYK03 质粒;
所述引物1701-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示,
所述引物1701-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.5所示,
所述引物1702-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.6所示,
所述引物1702-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.7所示,
所述引物1703-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.8所示,
所述引物1703-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.9所示,
所述引物1704-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.10所示,
所述引物1704-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.11所示,
所述引物1705-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.12所示,
所述引物1705-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.13所示,
所述引物1706-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.14所示,
所述引物1706-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.15所示。
7. 如权利要求4所述的构建方法,其特征在于,所述RrCYP450-4基因表达盒的质粒载体为pDYK05质粒,所述pDYK05质粒的构建过程为:以酿酒酵母 CEN.PK2-1D 基因组为模板,用引物 1901-F 和1901-R,1905-F 和 1905-R,PCR 扩增整合位点同源左臂和同源右臂片段;以pDYK01质粒为模板,用引物1902-F和1902-F,PCR扩增得到GAL1启动子片段;以刺梨cDNA为模板,用引物1903-F和1903-R,PCR扩增得到RrCYP450-4基因片段;以43802质粒为模板,用引物1904-F和1904-R,PCR扩增得到CYC1终止子片段;以pRS426-URA质粒为模板,用引物1906-F和1906-R,PCR扩增得到质粒骨架片段;将上述片段预处理后,经酵母醋酸锂转化,组装成 pDYK05 质粒;
所述引物1901-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.16所示,
所述引物1901-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.17所示,
所述引物1902-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.18所示,
所述引物1902-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.19所示,
所述引物1903-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.20所示,
所述引物1903-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.21所示,
所述引物1904-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.22所示,
所述引物1904-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.23所示,
所述引物1905-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.24所示,
所述引物1905-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.25所示,
所述引物1906-F的核苷酸序列如SEQ ID NO.26所示,
所述引物1906-R的核苷酸序列如SEQ ID NO.27所示。
8.如权利要求1-4中任一项所述的基因工程菌在制备刺梨酸中的应用。
9.一种生产刺梨酸的方法,其特征在于,将如权利要求1-4中任一项所述的基因工程菌发酵培养,从培养物中获得刺梨酸。
10. 如权利要求9所述的方法,其特征在于,所述发酵培养过程为在YPDG 培养基中进行摇瓶发酵培养至少120 h 。
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