CN115960767A - 一种植物乳植杆菌及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及微生物技术领域,具体涉及一种植物乳植杆菌及其应用。所述植物乳植杆菌命名为:植物乳植杆菌YYS‑99,保藏编号:CGMCC No.25838。本发明提供的植物乳植杆菌YYS‑99分离筛选自云南省玉溪市易门县油坊油料中,其为天然菌种,具有较高食品安全性,能够高效地将亚油酸转化为具有生物活性且对人体健康有益的共轭亚油酸,同时,该菌具有良好的耐胃酸、耐胆盐及肠道定植能力,可应用于生产富含共轭亚油酸的发酵产品,或应用于益生菌产品,改善肠道菌群结构,起到抗氧化、降低人体胆固醇、抗动脉粥样硬化、降低体内脂肪沉积等作用。

Description

一种植物乳植杆菌及其应用
技术领域
本发明涉及微生物技术领域,具体涉及一种植物乳植杆菌及其应用。
背景技术
共轭亚油酸(Conjugated linoleic acid,CLA)是含有共轭双键的十八碳二烯酸的总称,是人体无法合成,必须从外界食物中获取但又必不可少的脂肪酸之一,被称为“二十一世纪的新型营养素”。研究表明,CLA具有增强人体抗氧化能力和免疫能力的作用,并且在调节血液胆固醇和甘油三酸脂水平、防止动脉粥样硬化、促进脂肪氧化分解等方面具有调节作用。CLA最重要的天然来源是反刍动物相关食品,但含量却非常低。另外,在亚麻籽油、红花油、花生油、葵花籽油、棉籽油和玉米油等植物油脂中存在着大量的CLA的前体物亚油酸(Linoleic acid,LA),但其中CLA的含量却很低,通常低于0.1%,很难实现对它的提取利用。
近年来,利用微生物代谢合成CLA的研究越来越为研究者所关注,其中应用最多的是乳酸菌,很多乳酸菌都具有转化LA为CLA的能力,并且由于乳酸菌所产生的亚油酸异构酶有很强的专一性,大部分的乳酸菌生成CLA均具有生理活性。另外,由于乳酸菌兼性厌氧的特点,很容易培养,乳酸菌生物转化CLA的转化率较高,培养条件易于控制、稳定安全,可进行大规模培养。同时,乳酸菌是人体肠道中的正常菌群,具有帮助消化、维持肠道微生态平衡、增强免疫力等生理功能。乳酸菌良好的益生性和营养功效使其广泛应用于食品加工行业,它既可以改善食品风味,也能提高食品的营养价值和贮藏性。因此,利用乳酸菌来转化生成CLA具有很好的发展前景。
目前,国内外产CLA微生物的研究尚处在菌株筛选、产CLA微生物培养条件优化阶段。市场上销售的CLA产品多以游离的LA或具有高含量LA的植物油为前体物,在一定条件下,通过碱催化的异构化来生产CLA。然而化学法得到的CLA往往是由多种异构体组成,对底物的实际利用效率也十分有限,这就造成极大的浪费。
马青雯,吉佳佳,钱白萍等培养的乳酸菌M9在培养温度为30℃,培养时间为28h、发酵液初始pH值为6的条件下进行发酵,CLA含量为67.53μg/mL(乳酸菌M9高产共轭亚油酸培养条件优化[J].食品与发酵科技,2019,55(3):51-55)。上述产CLA的菌株产量较低。
申请号:CN202210790287.7的中国发明专利公开了:鼠李糖乳杆菌SG906接种至含有游离亚油酸和谷氨酸的培养基中发酵72h,产CLA含量虽高达7.95g/L,但该鼠李糖乳杆菌是经过诱变技术后高产CLA的,不是天然菌种,不符合食品相关法规,不能应用于食品。
因此,现有技术中尝试将产CLA的菌种应用到食品中,但是大部分学者筛选到的产CLA的菌株产量过低(诱变菌株产量高,但不安全),且不耐胃液、肠液消化,对食源性致病菌没有抑制作用,不适合应用到食品中。
发明内容
为了解决上述技术问题,本发明提供一种植物乳植杆菌及其应用,本发明的植物乳植杆菌在高产CLA的同时,耐胃液、耐胆盐并有较好的肠道定植能力,对食源性致病菌具有抑制作用,其在食品或保健品等领域具有重要的应用价值。
本发明的技术方案为:提供了一种植物乳植杆菌YYS-99,该菌株的分类命名为:植物乳植杆菌YYS-99,拉丁文学名:Lactiplantibacillus plantarum,保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,保藏日期:2022年9月28日,保藏编号:CGMCC No.25838。
本发明的另一技术方案为:提供一种上述植物乳植杆菌YYS-99在生产益生菌产品中的应用。
本发明的又一技术方案为:提供上述植物乳植杆菌YYS-99在生产富含共轭亚油酸的食品中的应用。
本发明的又一技术方案为:提供上述植物乳植杆菌YYS-99在生产抑制食源性致病菌的食品中的应用。
本发明的又一技术方案为:提供上述植物乳植杆菌YYS-99在生产耐胃酸,耐胆盐的食品中的应用。
本发明的又一技术方案为:提供一种菌剂,所述菌剂包含上述的植物乳植杆菌YYS-99。
本发明的又一技术方案为:提供一种富含共轭亚油酸的发酵产品,所述发酵产品为上述植物乳植杆菌YYS-99进行发酵得到。
本发明的又一技术方案为:提供一种生产共轭亚油酸的方法,将上述植物乳植杆菌YYS-99进行发酵,得到发酵产物,即得到共轭亚油酸。
优选的,上述生产共轭亚油酸的方法中,所述发酵所用底物包括亚油酸。
优选的,上述生产共轭亚油酸的方法中,所述底物中亚油酸浓度为0.5mg/mL。
本发明的有益效果:本发明提供的植物乳植杆菌YYS-99分离筛选自云南省玉溪市易门县油坊油料中,其为天然菌种,具有较高食品安全性,在底物亚油酸浓度为0.5mg/mL时,其转化生成共轭亚油酸(CLA)的量最大,为205.4μg/mL,转化率约为41.1%,因此其能够较为高效的将亚油酸转化为具有生物活性且对人体健康有益的共轭亚油酸,可应用于生产富含共轭亚油酸的发酵产品。
进一步的,本发明的植物乳植杆菌还对食源性致病菌具有明显的抑制作用,同时,该菌具有良好的耐胃酸、耐胆盐及肠道定植能力,可应用于益生菌产品,改善肠道菌群结构,起到抗氧化、降低人体胆固醇、抗动脉粥样硬化、降低体内脂肪沉积等作用。
附图说明
图1为本发明具体实施方式实施例1的植物乳植杆菌YYS-99溶钙圈;
图2为本发明具体实施方式实施例1的植物乳植杆菌YYS-99的菌落形态;
图3为本发明具体实施方式实施例2的共轭亚油酸(CLA)测定标准曲线;
图4为本发明具体实施方式实施例4的植物乳植杆菌YYS-99的革兰氏染色;
图5为本发明具体实施方式实施例4的植物乳植杆菌YYS-99的16S r RNA扩增产物琼脂糖凝胶电泳。
图6为本发明具体实施方式实施例4的基于16S r RNA序列的植物乳植杆菌YYS-99系统发育树。
具体实施方式
为详细说明本发明的技术内容、构造特征、所实现目的及效果,以下结合实施方式并配合附图详予说明。
实施例1乳酸菌的分离
从云南省玉溪市易门县油坊中无菌采取油料样品,采用涂布平板法,取5g油料样品放入无菌均质袋中,做好标记,加入45mL 0.85%的生理盐水后完全拍打混匀。然后吸取100μL样品进行10倍系列的梯度稀释,分别吸取稀释倍数为10-3、10-4、10-5、10-6的样品100μL,涂布于含2.5% CaCO3的MRS平板上,37℃倒置培养24h。挑取长势良好,溶钙圈大的菌落(如图1),通过平板划线分离法反复分离纯化(如图2),直至得到单菌落,将该分离菌株命名为YYS-99,-80℃甘油菌库保藏。
实施例2高产共轭亚油酸条件筛选
1、CLA标准曲线绘制
称取100mg CLA标准品和200mg吐温80,混匀,再溶于水并定容至10mL,充分搅拌乳化后,经0.45pm无菌滤膜过滤除菌后获得10mg/mL的CLA标准储备液,于-20℃避光保存。分别取以下表1标准储备液,充分振荡30s,再静置2-10min;测定233nm下的吸光值。以CLA质量浓度为横坐标,吸光值为纵坐标,绘制标准曲线(如图3)。
表1 CLA标准曲线配置表
Figure BDA0003933374560000041
Figure BDA0003933374560000051
2、待测样品的检测分析
(1)底物亚油酸(LA)的配制
底物LA母液的配制(30mg/ml):按照300mg LA,200mg吐温80的比例蜗旋震荡混合均匀,用去离子水定容至10mL,常温磁力搅拌20min至混合物充分乳化,然后混合物经过0.22μm无菌水系滤膜过滤除菌后避光保存于-20℃环境中。为了保证母液不会因反复冻融而出现破乳现象,母液使用前需要重新涡旋震荡10min。
底物小麦胚芽粉母液的配制:微粉碎的小麦胚芽粉1g,200mg吐温80的比例,用去离子水定容至10mL,搅拌均匀,超声波细胞粉碎机乳化5min。
(2)培养基配置
按照表2配置各培养基,高温高压灭菌锅121℃灭菌15min。
表2培养基配置表
Figure BDA0003933374560000052
(3)样品检测
将活化好的植物乳植杆菌YYS-99按照2%的接种量接种至各类MRS培养基中,37℃培养箱中培养72h,以未发酵的空白液为对照,发酵液经过8000g离心10min,收集上清液于干净离心管中,按照发酵液:异丙醇:正己烷为3:3:6(v/v/v)的比例进行混合,漩涡震荡充分混合后,静止分层,转移上层的正己烷层于干净的储液瓶中,每个样品做3个平行,233nm测定吸光值。
由测得的标准曲线获得CLA浓度与OD233nm吸光值的线性关系,从而试验得出YYS-99在底物亚油酸浓度为0.5mg/mL时(LA+MRS培养基),其转化生成共轭亚油酸(CLA)的量最大,为205.4μg/mL,转化率约为41.1%。
实施例3对食源性致病菌的抑菌作用
采用牛津杯法,分别取100μL活菌数为107CFU/mL的大肠埃希氏菌、金黄色葡萄球菌、宋内氏志贺氏菌于平板内,倒入适量加热熔化的LB固体培养基,摇晃均匀,待其冷却凝固后,在平板内适当的间隔依次放入牛津杯,然后取YYS-99发酵液100μL添加至牛津杯孔内,以MRS液体培养基做阴性对照,以乳酸链球菌素做阳性对照,3个重复。37℃静置培养24h后,拍照并用游标卡尺采用十字交叉法测定抑菌圈直径。
试验结果得,YYS-99对大肠埃希氏菌的抑菌圈直径为(15.27±0.22)mm,对金黄色葡萄球菌的抑菌圈直径为(14.28±0.12)mm,对宋内氏志贺氏菌的抑菌圈直径为(16.84±0.32)mm,均高于阳性对照乳酸链球菌素(13.68±0.16)mm。表明YYS-99对食源性致病菌具有较好的抑制效果。
实施例4乳酸菌的鉴定
(1)生理生化试验
将筛选纯化的菌株YYS-99进行革兰氏染色(如图4)及过氧化氢酶试验,并对其生理生化指标进行测定,试验结果对照《伯杰氏系统细菌学手册第八版》进行菌种的初步判定。试验得出该筛选菌株YYS-99革兰氏染色为紫色,呈阳性。其细胞形状为杆状,接触酶和氧化酶为阴性,无芽孢形成。
(2)16S r RNA鉴定
根据细菌基因DNA提取试剂盒说明操作提取未知菌株基因DNA,以基因DNA为模板进行16S r RNA基因的PCR扩增。
扩增引物使用通用引物27F(5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3')和1492R(5'-TACGGCTACCTTGTTACGACTT-3')。
其中PCR反应体系:DNA2μL,27F 2μL,1492R 2μL,Premix Ex Taq 25μL,ddH2O 19μL。PCR反应条件:94℃预变性3min;94℃变性30s,55℃退火30s,72℃延伸1min,30次循环;最后72℃延伸5min。YYS-99提取DNA基因组后16S r RNA扩增片段如图5所示。然后将PCR扩增产物送去DNA测序(广州擎科生物工程有限公司)。测序序列结果在NCBI数据库中用Blast软件搜索近似序列,将所测得的序列和从基因库中获得的相关种属的16S r RNA基因序列进行比对,运用Mega7.0软件构建系统发育树,结果如图6所示。
27F:5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3'(SEQ ID NO.1)。
1492R:5'-TACGGCTACCTTGTTACGACTT-3'(SEQ ID NO.2)。
16S r RNA基因序列测定结果如下:
TTAGGCGGCTGGTTCCTAAAAGGTTACCCCACCGACTTTGGGTGTTACAAACTCTCATGGTGTGACGGGCGGTGTGTACAAGGCCCGGGAACGTATTCACCGCGGCATGCTGATCCGCGATTACTAGCGATTCCGACTTCATGTAGGCGAGTTGCAGCCTACAATCCGAACTGAGAATGGCTTTAAGAGATTAGCTTACTCTCGCGAGTTCGCAACTCGTTGTACCATCCATTGTAGCACGTGTGTAGCCCAGGTCATAAGGGGCATGATGATTTGACGTCATCCCCACCTTCCTCCGGTTTGTCACCGGCAGTCTCACCAGAGTGCCCAACTTAATGCTGGCAACTGATAATAAGGGTTGCGCTCGTTGCGGGACTTAACCCAACATCTCACGACACGAGCTGACGACAACCATGCACCACCTGTATCCATGTCCCCGAAGGGAACGTCTAATCTCTTAGATTTGCATAGTATGTCAAGACCTGGTAAGGTTCTTCGCGTAGCTTCGAATTAAACCACATGCTCCACCGCTTGTGCGGGCCCCCGTCAATTCCTTTGAGTTTCAGCCTTGCGGCCGTACTCCCCAGGCGGAATGCTTAATGCGTTAGCTGCAGCACTGAAGGGCGGAAACCCTCCAACACTTAGCATTCATCGTTTACGGTATGGACTACCAGGGTATCTAATCCTGTTTGCTACCCATACTTTCGAGCCTCAGCGTCAGTTACAGACCAGACAGCCGCCTTCGCCACTGGTGTTCTTCCATATATCTACGCATTTCACCGCTACACATGGAGTTCCACTGTCCTCTTCTGCACTCAAGTTTCCCAGTTTCCGATGCACTTCTTCGGTTGAGCCGAAGGCTTTCACATCAGACTTAAAAAACCGCCTGCGCTCGCTTTACGCCCAATAAATCCGGACAACGCTTGCCACCTACGTATTACCGCGGCTGCTGGCACGTAGTTAGCCGTGGCTTTCTGGTTAAATACCGTCAATACCTGAACAGTTACTCTCAGATATGTTCTTCTTTAACAACAGAGTTTTACGAGCCGAAACCCTTCTTCACTCACGCGGCGTTGCTCCATCAGACTTTCGTCCATTGTGGAAGATTCCCTACTGCTGCCTCCCGTAGGAGTTTGGGCCGTGTCTCAGTCCCAATGTGGCCGATTACCCTCTCAGGTCGGCTACGTATCATTGCCATGGTGAGCCGTTACCCCACCATCTAGCTAATACGCCGCGGGACCATCCAAAAGTGATAGCCGAAGCCATCTTTCAAGCTCGGACCATGCGGTCCAAGTTGTTATGCGGTATTAGCATCTGTTTCCAGGTGTTATCCCCCGCTTCTGGGCAGGTTTCCCACGTGTTACTCACCAGTTCGCCACTCACTCAAATGTAAATCATGATGCAAGCACCAATCAATACCAGAGTTCGTTCG(SEQID NO.3)。
根据该菌株的细胞形态、生理生化特征、16S r RNA基因序列等数据综合分析,参考《伯杰氏系统细菌学手册第八版》,鉴定该菌株为植物乳植杆菌(Lactiplantibacillusplantarum)YYS-99。
实施例5菌株模拟胃液耐酸性和肠液耐胆盐试验
1、菌株模拟胃液耐酸性试验
称取0.2g NaCl与0.35g胃蛋白酶溶解于适量蒸馏水中,用1mol/L盐酸调节pH值为1.5、2.5、3.5,用100ml容量瓶定容至刻度。将植物乳植杆菌YYS-99活化后培养24h的发酵液按2%接种量分别接入不同pH值的模拟人工胃酸溶液中,37℃水浴恒温处理0、2、4h后,分别十倍梯度稀释,振荡均匀后取100μL菌液倒板,37℃下培养24h,计算YYS-99活菌数和存活率。
表3菌株模拟胃液耐酸性试验统计表
Figure BDA0003933374560000081
由表3可得植物乳植杆菌YYS-99在不同模拟人工胃液pH下,随着pH值的升高,存活率不断提高;处理更长时间时,存活率不降反升,表明一部分活菌对胃酸具有耐受性,开始增殖。
2、菌株模拟肠液耐胆盐试验
将植物乳植杆菌YYS-99活化后培养24h的发酵液按2%接种量分别接入0.3%、0.5%与0.7%质量浓度的猪胆盐溶液中,37℃水浴恒温处理0、2、4h后,分别十倍梯度稀释,振荡均匀后取100μL菌液倒板,37℃下培养24h后,计算YYS-99活菌数和存活率。
表4菌株模拟肠液耐胆盐试验统计表
Figure BDA0003933374560000091
由表4可得植物乳植杆菌YYS-99在模拟人工肠液胆盐不同质量浓度下,随着模拟人工肠液胆盐质量浓度的升高,存活率也在不断下降,但处理更长时间时,存活率不降反升,表明一部分活菌对胆盐具有耐受性,开始增殖。
实施例6利用本发明植物乳植杆菌YYS-99制备发酵食品
实验一、添加亚油酸
分别称取花生40g、芝麻30g和杏仁30g,加入500mL无菌水,煮沸后熬煮1h,过滤残渣,留下混合液,补水至500mL。然后往混合液中加入10%益生元(低聚果糖),并添加2ml亚油酸,于121℃灭菌15min。按5%接种量接入植物乳植杆菌YYS-99发酵液,置于37℃摇床180r/min振荡培养72h后按照异丙醇-正己烷萃取法测定共轭亚油酸(CLA)的含量。
实验二、不添加亚油酸
分别称取花生40g、芝麻30g和杏仁30g,加入500mL无菌水,煮沸后熬煮1h,过滤残渣,留下混合液,补水至500mL。然后往混合液中加入10%益生元(低聚果糖),于121℃灭菌15min。按5%接种量接入植物乳植杆菌YYS-99发酵液,置于37℃摇床180r/min振荡培养72h后按照异丙醇-正己烷萃取法测定共轭亚油酸(CLA)的含量。
试验得出经植物乳植杆菌YYS-99发酵后,呈现出独特的良好风味,测出实验一中共轭亚油酸(CLA)的含量为360.1μg/mL、实验二中共轭亚油酸(CLA)的含量为11.6μg/mL,表明该植物乳植杆菌YYS-99可以将富含亚油酸的食品原料经发酵转化生成对人体健康有益的共轭亚油酸(CLA)。既改善了食品风味,也提高了食品的营养健康功效,为其广泛应用于食品加工行业奠定了良好的基础。
实施例7利用本发明植物乳植杆菌YYS-99制备菌剂
将植物乳植杆菌YYS-99以培养基质量的3%接种量接种于121℃灭菌15min的培养基中,以培养基总质量添加10%酶水解脱脂乳、0.5%葡萄糖、1.5%胰蛋白胨、0.3%酵母浸膏和余量水组成,调节pH6.8。然后,在温度37℃下培养18h后,于4℃下6000r/min离心20min,弃上清,加入pH 7.2磷酸盐缓冲液清洗2-4次,得到菌泥,再用保护剂重悬菌液浓度为1010CFU/mL。所述的保护剂含有100g/L脱脂奶粉、30mL/L甘油、100g/L麦芽糊精、150g/L海藻糖与10g/LL-谷氨酸钠。
然后,将该悬浮液在温度37℃下预培养60min,再进行冷冻干燥,得到所述的植物乳植杆菌YYS-99菌剂。利用上述方法制备的菌剂中含有大于1×1010CFU/g的活性植物乳植杆菌YYS-99。
实施例8利用本发明植物乳植杆菌YYS-99制备益生菌产品
所述益生菌产品为植物乳植杆菌YYS-99与其他配料的组合物;所述产品中,植物乳植杆菌YYS-99的活菌数不低于1×106CFU/mL或1×106CFU/g。所述配料包含益生元、填充剂、酸味剂、溶剂、抛射剂、增溶剂、助溶剂、乳化剂、着色剂、黏合剂、崩解剂、润滑剂、润湿剂、渗透压调节剂、稳定剂、助流剂、矫味剂、防腐剂、助悬剂、包衣材料、芳香剂、抗黏合剂、整合剂、渗透促进剂、pH值调节剂、缓冲剂、增塑剂、表面活性剂、消泡剂、增稠剂、包合剂、保湿剂、吸收剂、稀释剂、絮凝剂与反絮凝剂以及助滤剂中的一种或几种。
所述益生菌产品的剂型可以为固体饮料、饮料、压片糖果、颗粒剂、胶囊剂、片剂、丸剂或口服液。
更为具体的是,一种植物乳植杆菌YYS-99固体饮料的制造方法,将所述植物乳植杆菌YYS-99菌种用液体培养液培养,收集和洗涤菌体,添加辅料,干燥制备成活性菌粉;取菌粉10份,木糖醇24份,全脂奶粉24份,发酵猕猴桃粉13.705份,麦芽糊精21.6份,低聚半乳糖6.1份,低聚果糖0.1份,无水柠檬酸0.495份,混合均匀,得到植物乳植杆菌YYS-99固体饮料。所述固体饮料中植物乳植杆菌YYS-99活菌数不低于1×108CFU/g。
综上所述,本发明提供的植物乳植杆菌YYS-99分离筛选自云南省玉溪市易门县油坊油料中,为天然菌种,具有较高食品安全性,在底物亚油酸浓度为0.5mg/mL时,其转化生成共轭亚油酸(CLA)的量最大,为205.4μg/mL,转化率约为41.1%,可应用于生产富含共轭亚油酸的发酵产品。其改善了食品风味,也提高了食品的营养健康功效。
进一步的,本发明的植物乳植杆菌YYS-99还对食源性致病菌具有明显的抑制作用,有利于减少由食源性致病菌引起的食品腐败变质对人体健康的危害,且具有一定的耐胃酸,耐胆盐作用,可在人体肠道中定植,起到改善肠道菌群结构的作用,其具有较高的商业应用价值。
如未明确指出,本发明实施例中涉及的实验操作方法为本领域常规的实验操作方法,涉及的试剂或仪器均可从正规渠道商购获得。
试验用到的菌种及其培养基如表5所示。
表5试验菌种及培养基
Figure BDA0003933374560000111
Figure BDA0003933374560000121
注:a:ATCC,美国典型菌种保藏中心(American Type Culture Collection),b:CICC,中国工业微生物菌种保藏管理中心(China Center ofIndustrial CultureCollection)。
本发明实施例中所涉及的培养基:MRS液体培养基:葡萄糖20.0g,胰蛋白胨10.0g,牛肉膏10.0g,酵母浸粉5.0g,吐温80 1.0m L,磷酸氢二钾2.0g,柠檬酸铵2.0g,无水乙酸钠5.0g,硫酸镁0.5g,一水硫酸锰0.25g,去离子水1L,pH 6.5(加1.5%琼脂为固体培养基)。
LB培养基:蛋白胨10.0g,氯化钠5.0g,牛肉膏3.0g,去离子水1L,pH 7.0(加1.5%琼脂为固体培养基)。
以上所述仅为本发明的实施例,并非因此限制本发明的专利范围,凡是利用本发明说明书及附图内容所作的等同变换,或直接或间接运用在相关的技术领域,均同理包括在本发明的专利保护范围内。

Claims (10)

1.一种植物乳植杆菌(Lactiplantibacillus plantarum)YYS-99,保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏编号为CGMCC No.25838。
2.权利要求1所述的植物乳植杆菌YYS-99在生产益生菌产品中的应用。
3.权利要求1所述的植物乳植杆菌YYS-99在生产富含共轭亚油酸的食品中的应用。
4.权利要求1所述的植物乳植杆菌YYS-99在生产抑制食源性致病菌的食品中的应用。
5.权利要求1所述的植物乳植杆菌YYS-99在生产耐胃酸,耐胆盐的食品中的应用。
6.一种菌剂,其特征在于,所述菌剂包含权利要求1所述的植物乳植杆菌YYS-99。
7.一种富含共轭亚油酸的发酵产品,其特征在于,所述发酵产品为权利要求1所述植物乳植杆菌YYS-99进行发酵得到。
8.一种生产共轭亚油酸的方法,其特征在于,将如权利要求1所述植物乳植杆菌YYS-99进行发酵,得到发酵产物,即得到共轭亚油酸。
9.根据权利要求8所述生产共轭亚油酸的方法,其特征在于,所述发酵所用底物包括亚油酸。
10.根据权利要求9所述生产共轭亚油酸的方法,其特征在于,所述底物中亚油酸浓度为0.5mg/mL。
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