CN115181679A - 一种分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺 - Google Patents

一种分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺 Download PDF

Info

Publication number
CN115181679A
CN115181679A CN202211019830.XA CN202211019830A CN115181679A CN 115181679 A CN115181679 A CN 115181679A CN 202211019830 A CN202211019830 A CN 202211019830A CN 115181679 A CN115181679 A CN 115181679A
Authority
CN
China
Prior art keywords
straw
edible fungi
fermentation process
chitin
straw powder
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN202211019830.XA
Other languages
English (en)
Inventor
应汉杰
陈勇
单军强
刘庆国
温庆仕
刘桂文
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Nanjing Institute Of White Biotech Co ltd
Original Assignee
Nanjing Institute Of White Biotech Co ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Nanjing Institute Of White Biotech Co ltd filed Critical Nanjing Institute Of White Biotech Co ltd
Priority to CN202211019830.XA priority Critical patent/CN115181679A/zh
Publication of CN115181679A publication Critical patent/CN115181679A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B65—CONVEYING; PACKING; STORING; HANDLING THIN OR FILAMENTARY MATERIAL
    • B65D—CONTAINERS FOR STORAGE OR TRANSPORT OF ARTICLES OR MATERIALS, e.g. BAGS, BARRELS, BOTTLES, BOXES, CANS, CARTONS, CRATES, DRUMS, JARS, TANKS, HOPPERS, FORWARDING CONTAINERS; ACCESSORIES, CLOSURES, OR FITTINGS THEREFOR; PACKAGING ELEMENTS; PACKAGES
    • B65D81/00—Containers, packaging elements, or packages, for contents presenting particular transport or storage problems, or adapted to be used for non-packaging purposes after removal of contents
    • B65D81/02—Containers, packaging elements, or packages, for contents presenting particular transport or storage problems, or adapted to be used for non-packaging purposes after removal of contents specially adapted to protect contents from mechanical damage
    • B65D81/05—Containers, packaging elements, or packages, for contents presenting particular transport or storage problems, or adapted to be used for non-packaging purposes after removal of contents specially adapted to protect contents from mechanical damage maintaining contents at spaced relation from package walls, or from other contents
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/38—Chemical stimulation of growth or activity by addition of chemical compounds which are not essential growth factors; Stimulation of growth by removal of a chemical compound
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/04—Polysaccharides, i.e. compounds containing more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic bonds
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645—Fungi ; Processes using fungi
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02W—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES RELATED TO WASTEWATER TREATMENT OR WASTE MANAGEMENT
    • Y02W90/00—Enabling technologies or technologies with a potential or indirect contribution to greenhouse gas [GHG] emissions mitigation
    • Y02W90/10—Bio-packaging, e.g. packing containers made from renewable resources or bio-plastics

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Mechanical Engineering (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

本发明公开了一种分泌表达产几丁质的食用菌发酵工艺及其应用。通过培养、分纯食用菌菌种，并接种制备菌丝体，经脱模，烘干灭活得到秸秆菌丝体材料。本发明通过优化分泌表达产几丁质的食用菌发酵工艺，获得了大量的菌丝体，通过菌丝体对秸秆进行固定和包裹，得到了粘结性好，性能稳定，不易断裂的秸秆菌丝体材料。本发明以秸秆粉作为几丁质诱导物，有效提高了种子液中几丁质的含量，使材料的坚固性、稳定性得到了有效的提高。

Description

一种分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺
技术领域
本发明属于生物工程领域，具体涉及一种分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺。
背景技术
目前传统的石油基聚合物材料在处置过程中会释放有毒物质和温室气体，塑料在合理的时间范围内无法降解，对环境和生态系统造成了严重的污染。我国塑料产量达6000万吨以上，其中泡沫塑料240万吨，很大一部分用于包装材料。因此人们对“绿色”材料和生产工艺的需求日益增长。
目前主流的生物降解塑料主要包括利用生物技术直接制取的高分子材料，如聚羟基脂肪酸酯(PHA)等；生物原料再经聚合得到的高分子材料，如聚乳酸(PLA)、聚丁二酸丁二醇酯(PBS)等；此外还有淀粉基生物降解塑料、二氧化碳共聚脂肪族塑料(PPC)等。然而与传统塑料相比，生物降解塑料通常机械性能较差，不耐高温、生产成本及价格普遍较高，部分共混型材料降解后塑料微粒长期留存，粮食型材料存在“与人争粮”问题。寻找新型可降解、安全、成本低廉的生物降解塑料制品一直是研究的热点与重点。
因此，开发良好环境兼容性的绿色缓冲包装材料已成为世界包装可持续发展的主流。目前有一种缓冲包装材料是以农作物为原料，接种真菌菌种，利用菌丝体的生长特性，通过菌丝连接形成疏松多孔的缓冲结构，制成一种绿色环保的可降解缓冲包装材料。目前现有技术仅仅公开了该材料的形成原理和生产工艺，但由于其原料组成、制备方法上存在的不足，基于现有公布技术制备得到的缓冲包装材料，材料内部菌丝量低，粘结性差，导致材料静缓冲性能差、易断裂，不能较好地作为缓冲包装材料使用。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是针对现有技术的不足，提供一种分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺。
本发明还要解决的技术问题是利用上述食用菌发酵工艺在制备缓冲包装材料中的应用。
为了解决上述技术问题，本发明公开了一种分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺，将食用菌菌种接入种子液中培养后，再将食用菌种子液接种至固态基质中，搅拌均匀。密封后进行固态发酵制备菌丝体。
其中，所述的种子液包含诱导物秸秆粉，其诱导物秸秆粉为玉米秸秆粉、小麦秸秆粉、稻秸秆粉、芦苇秸秆粉、高粱秸秆粉中的任意一种或几种的组合，优选的为玉米秸秆粉。
具体的，由于菌株在生长过程中需要通过菌丝末端捕获多糖代谢利用，而相较于易于利用葡萄糖或其它纯多糖，秸秆内的纤维多糖利用则需要菌丝渗透至秸秆内部才能消化吸收这部分糖源，这一过程会刺激细胞壁提高具有刚性的几丁质浓度，因此秸秆粉能作为诱导几丁质高分泌的诱导物。
其中，所述的固态基质，包括如下重量百分比的组分：秸秆20～80％，木屑20％～80％、麸皮5％～25％。优选的为玉米秸秆40％，木屑40％、麸皮20％。
其中，所述的食用菌菌种预先经过培养和纯化处理，方法为：将食用菌切片接入固态平板培养基中25℃下培养，待菌丝体长满平板后，挑取无杂菌的菌丝体转接入种子液中25℃、170rpm下继续培养，直至菌液生物量大于15g/L，再转接入新的固态平板培养基中进行划线培养。挑取单菌落继续在新的固态平板培养基中培养，得到分纯后的食用菌菌种。
具体的，所述的食用菌为平菇、草菇、茶树菇、金针菇、杏鲍菇、猴头菇、羊肚菌、灵芝中的任意一种或几种的组合，优选的为灵芝，最优选的为泰山赤芝。
具体的，所述的固态平板培养基，配方如下：葡萄糖(基础碳源)20g/L，硫酸二氢钾3g/L，七水硫酸镁1.5g/L，维生素B1 0.1g/L，琼脂15g/L，酵母粉(基础氮源)7.6g/L。
具体的，所述的种子液，配方如下：氮源0.9-1.1g/L，碳源21-25g/L，秸秆粉1～5g/L(诱导物)，MgSO4 0.4g/L，FeSO4·7H2O 0.1g/L，KH2PO4 0.1g/L，VB1 0.01g/L。优选的碳源含量为25g/L，氮源含量为1.1g/L，秸秆粉含量为1.5g/L。
具体的，所述的种子液，其碳源为葡萄糖、半纤维素、玉米淀粉和商品纸浆中的任意一种或几种的组合，优选的为玉米淀粉。
具体的，所述的种子液，其氮源为酵母粉、酵母浸膏、氨基酸发酵废液和玉米浆中的任意一种或几种的组合，优选的为氨基酸发酵废液。
具体的，所述的种子液，其秸秆粉粒径包括12目、60目、150目和200目中的任意一种，优选的为150目。
具体的，所述的种子液，其几丁质含量通过红外半定量进行分析，根据1371cm-1几丁质吸收峰的高低比较几丁质含量浓度(参考文献Haneef M,Ceseracciu L,Canale C,etal.Advanced Materials From Fungal Mycelium:Fabrication and Tuning of PhysicalProperties[J].Rep,2017,7:41292.)。当吸收峰高时，表示几丁质含量浓度高；当吸收峰低时，表示几丁质含量浓度低。
具体的，将食用菌菌种接入种子液中25～28℃，170rpm下培养5-10天后，再将食用菌种子液按16％～23％体积比接种至固态基质中，填入模具，密封模具并置于摇床上静置培养进行固态发酵制备菌丝体，固态发酵温度为25～32℃，固态发酵时间为5-10天。优选的种子液培养温度为25℃，培养时间为7天，优选的食用菌种子液按20％体积比接种至固态基质，优选的固态发酵的发酵温度为25℃，发酵时间为7天。
其中，制备得到的菌丝体经脱模，烘干灭活，得到秸秆菌丝体材料，其材料密度为0.181-0.201g/cm3，压缩强度为0.32-0.45MPa。优选的材料密度为0.183g/cm3，压缩强度为0.45MPa。。
具体的，固态发酵结束后，脱模取出已经定型且表面长满白色菌丝体的材料，将该材料置于70℃烘箱中干燥脱水处理20h的同时，灭活基质内部的菌，使其停止生长，得到秸秆菌丝体材料。
具体的，将得到的秸秆菌丝体材料进行力学性能及密度检测：力学性能检测设备为万能试验机，检测的性能为压缩强度，检测标准参考国标《GB/T 8813—2020》；密度检测参考国标《GB/T 6343-2009》。
所述的分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺制备得到的秸秆菌丝体材料也在本发明的保护范围之内。
所述的秸秆菌丝体材料在制备缓冲包装材料中的应用也在本发明的保护范围之内。
有益效果：
(1)材料的力学性能直接是由菌丝的量决定，表面菌丝越多，材料的性能越坚固。本发明通过优化分泌表达产几丁质的食用菌发酵工艺，使固态基质表面菌丝富集量高于普通发酵工艺，通过菌丝体对秸秆进行固定和包裹，得到了粘结性好，性能稳定，不易断裂的秸秆菌丝体材料。
(2)几丁质决定着秸秆菌丝体材料的力学性能，本发明以秸秆粉作为几丁质诱导物，有效提高了种子液中几丁质的含量，使材料的坚固性、稳定性得到了有效的提高。
附图说明
下面结合附图和具体实施方式对本发明做更进一步的具体说明，本发明的上述和/或其他方面的优点将会变得更加清楚。
图1为表面几乎无菌丝(左)与表面长满菌丝(右)的秸秆菌丝体材料对比图
图2为最优碳氮源配方(2A)和普通碳氮源配方(2B)秸秆菌丝体材料内部基质的SEM图。
图3为在种子液培养基中，不添加玉米秸秆粉、添加不同粒径的玉米秸秆粉作为几丁质诱导物时，种子液中菌球的红外对比图(其中红色为添加的诱导物为最优粒径的150目的玉米秸秆粉，绿色为添加的诱导物为粒径60目的玉米秸秆粉，蓝色为未添加诱导物玉米秸秆粉)。
具体实施方式
下述实施例中所述实验方法，如无特殊说明，均为常规方法；所述试剂和材料，如无特殊说明，均可从商业途径获得。
下述实施例中，所用菌株材料泰山赤芝、平菇草屑28、金针菇F3、草菇V901均购自天达食用菌研究所。
实施例1：分泌表达产几丁质的泰山赤芝(灵芝)发酵工艺及其应用
在超净工作台下将泰山赤芝切片接入固态平板培养基中25℃下培养。待菌丝体长满平板后，挑取无杂菌的菌丝体转接入种子液培养基中25℃、170rpm下继续培养，直至菌液浓稠，再转接入新的平板进行划线培养。挑取单菌落继续在新的平板中培养，得到分纯后的泰山赤芝菌种。
将泰山赤芝菌种接入种子液培养基中，25℃、170rpm下培养7天左右。在超净台中将上述培养结束所得种子液按照固态基质体积的20％接种至固态基质(接种前先进行灭菌处理：121℃、15min)，搅拌均匀后填入模具，模具封口并置于25℃摇床中静置培养7天，进行固态发酵制备菌丝体材料。
其中固态平板培养基，配方如下：葡萄糖(基础碳源)20g/L，硫酸二氢钾3g/L，七水硫酸镁1.5g/L，维生素B1 0.1g/L，琼脂15g/L，酵母粉(基础氮源)7.6g/L。
其中种子液培养基，配方如下：氮源1.1g/L，碳源25g/L，玉米秸秆粉1.5g/L(诱导物)，MgSO4 0.4g/L，FeSO4·7H2O 0.1g/L，KH2PO4 0.1g/L，VB1 0.01g/L。氮源为氨基酸发酵废液，碳源为玉米淀粉，秸秆粉粒径为150目。
其中固态基质包括如下重量百分比的组分：玉米秸秆40％，木屑40％、麸皮20％。
固态发酵结束后，脱模取出已经定型且表面长满白色菌丝的秸秆菌丝体材料(如图1所示)，将该材料置于70℃烘箱中干燥脱水处理20h，同时达到灭活基质内部的菌的目的，使其停止生长。
对处理结束的材料进行性能检测，力学性能检测设备为万能试验机，检测的性能为压缩强度，检测标准参考国标《GB/T 8813—2020》；密度检测参考国标《GB/T 6343-2009》。性能检测结果：表观密度：0.183g/cm3；压缩强度：0.45MPa。
实施例2：分泌表达产几丁质的平菇草屑28发酵工艺及其应用
在超净工作台下将平菇草屑28切片接入固态平板培养基中25℃下培养。待菌丝体长满平板后，挑取无杂菌的菌丝体转接入种子液培养基中25℃、170rpm下继续培养，直至菌液浓稠，再转接入新的平板进行划线培养。挑取单菌落继续在新的平板中培养，得到分纯后的平菇草屑28菌种。
将平菇草屑28菌种接入种子液培养基中，25℃、170rpm下培养5天左右。在超净台中将上述培养结束所得种子液按照固态基质体积的20％接种至固态基质(接种前先进行灭菌处理：121℃、15min)，搅拌均匀后填入模具，模具封口并置于25℃摇床中静置培养5天，进行固态发酵制备菌丝体材料。
其中固态平板培养基，配方如下：葡萄糖(基础碳源)20g/L，硫酸二氢钾3g/L，七水硫酸镁1.5g/L，维生素B1 0.1g/L，琼脂15g/L，酵母粉(基础氮源)7.6g/L。
其中种子液培养基，配方如下：氮源0.9g/L，碳源21g/L，玉米秸秆粉1.5g/L(诱导物)，MgSO4 0.4g/L，FeSO4·7H2O 0.1g/L，KH2PO4 0.1g/L，VB1 0.01g/L。氮源为氨基酸发酵废液，碳源为玉米淀粉，秸秆粉粒径为150目。
其中固态基质包括如下重量百分比的组分：玉米秸秆40％，木屑40％、麸皮20％。
固态发酵结束后，脱模取出已经定型且表面长满白色菌丝的秸秆菌丝体材料，将该材料置于70℃烘箱中干燥脱水处理20h，同时达到灭活基质内部的菌的目的，使其停止生长。
对处理结束的材料进行性能检测，力学性能检测设备为万能试验机，检测的性能为压缩强度，检测标准参考国标《GB/T 8813—2020》；密度检测参考国标《GB/T 6343-2009》。性能检测结果：表观密度：0.191g/cm3；压缩强度：0.43MPa(25％形变)。
实施例3：分泌表达产几丁质的草菇V901发酵工艺及其应用
在超净工作台下将草菇V901切片接入固态平板培养基中25℃下培养。待菌丝体长满平板后，挑取无杂菌的菌丝体转接入种子液培养基中25℃、170rpm下继续培养，直至菌液浓稠，再转接入新的平板进行划线培养。挑取单菌落继续在新的平板中培养，得到分纯后的草菇V901菌种。
将草菇V901菌种接入种子液培养基中，25℃、170rpm下培养7天左右。在超净台中将上述培养结束所得种子液按照固态基质体积的20％接种至固态基质(接种前先进行灭菌处理：121℃、15min)，搅拌均匀后填入模具，模具封口并置于25℃摇床中静置培养7天，进行固态发酵制备菌丝体材料。
其中固态平板培养基，配方如下：葡萄糖(基础碳源)20g/L，硫酸二氢钾3g/L，七水硫酸镁1.5g/L，维生素B1 0.1g/L，琼脂15g/L，酵母粉(基础氮源)7.6g/L。
其中种子液培养基，配方如下：氮源0.9g/L，碳源21g/L，玉米秸秆粉1.5g/L(诱导物)，MgSO4 0.4g/L，FeSO4·7H2O 0.1g/L，KH2PO4 0.1g/L，VB1 0.01g/L。氮源为氨基酸发酵废液，碳源为玉米淀粉，秸秆粉粒径为150目。
其中固态基质包括如下重量百分比的组分：玉米秸秆40％，木屑40％、麸皮20％。
固态发酵结束后，脱模取出已经定型且表面长满白色菌丝的秸秆菌丝体材料(如图1所示)，将该材料置于70℃烘箱中干燥脱水处理20h，同时达到灭活基质内部的菌的目的，使其停止生长。
对处理结束的材料进行性能检测，力学性能检测设备为万能试验机，检测的性能为压缩强度，检测标准参考国标《GB/T 8813—2020》；密度检测参考国标《GB/T 6343-2009》。性能检测结果：表观密度：0.189g/cm3；压缩强度：0.43MPa(25％形变)。
实施例4：分泌表达产几丁质的金针菇F3发酵工艺及其应用
在超净工作台下将金针菇F3切片接入固态平板培养基中25℃下培养。待菌丝体长满平板后，挑取无杂菌的菌丝体转接入种子液培养基中25℃、170rpm下继续培养，直至菌液浓稠，再转接入新的平板进行划线培养。挑取单菌落继续在新的平板中培养，得到分纯后的金针菇F3菌种。
将金针菇F3菌种接入种子液培养基中，28℃、170rpm下培养10天左右。在超净台中将上述培养结束所得种子液按照固态基质体积的20％接种至固态基质(接种前先进行灭菌处理：121℃、15min)，搅拌均匀后填入模具，模具封口并置于25℃摇床中静置培养10天，进行固态发酵制备菌丝体材料。
其中固态平板培养基，配方如下：葡萄糖(基础碳源)20g/L，硫酸二氢钾3g/L，七水硫酸镁1.5g/L，维生素B1 0.1g/L，琼脂15g/L，酵母粉(基础氮源)7.6g/L。
其中种子液培养基，配方如下：氮源0.9g/L，碳源21g/L，玉米秸秆粉1.5g/L(诱导物)，MgSO4 0.4g/L，FeSO4·7H2O 0.1g/L，KH2PO4 0.1g/L，VB1 0.01g/L。氮源为氨基酸发酵废液，碳源为玉米淀粉，秸秆粉粒径为150目。
其中固态基质包括如下重量百分比的组分：玉米秸秆40％，木屑40％、麸皮20％。
固态发酵结束后，脱模取出已经定型且表面长满白色菌丝的秸秆菌丝体材料，将该材料置于70℃烘箱中干燥脱水处理20h，同时达到灭活基质内部的菌的目的，使其停止生长。
对处理结束的材料进行性能检测，力学性能检测设备为万能试验机，检测的性能为压缩强度，检测标准参考国标《GB/T 8813—2020》；密度检测参考国标《GB/T 6343-2009》。性能检测结果：表观密度：0.2g/cm3；压缩强度：0.41MPa(25％形变)。
实施例5分泌表达产几丁质的泰山赤芝发酵工艺及其应用(普通碳氮源组合)
与实施例1对比，将碳氮源配方改为氮源种类：酵母浸膏；碳源种类：葡萄糖，其余条件不变。
对处理结束的材料进行性能检测，力学性能检测设备为万能试验机，检测的性能为压缩强度，检测标准参考国标《GB/T 8813—2020》；密度检测参考国标《GB/T6343-2009》。性能检测结果：表观密度：0.191g/cm3；压缩强度：0.32MPa。
对材料内部的基质进行SEM分析，与实施例1对比如图2所示，左图的固态基质表面缠绕着密集生长密集的菌丝体(类似于蜘蛛丝包裹着秸秆等固态基质)，而右图由于未采用最优配方，表面的菌丝体较为稀疏，因此左图的高含量的菌丝材料表现出更高力学性能。
实施例6分泌表达产几丁质的泰山赤芝发酵工艺及其应用(改变碳源种类)
制备过程同实施例1，只更换了种子液中的碳源种类，其它条件不变。性能检测结果如下表1所示。
表1不同碳源种类下材料性能检测结果
Figure BDA0003813859540000071
Figure BDA0003813859540000081
实施例7分泌表达产几丁质的泰山赤芝发酵工艺及其应用(改变氮源种类)
制备过程同实施例1，只更换了种子液中的氮源种类，其它条件不变。性能检测结果如下表2所示。
表2不同氮源种类下材料性能检测结果
氮源 材料密度 压缩性能
酵母粉 0.197g/cm<sup>3</sup> 0.34MPa
酵母浸膏 0.188g/cm<sup>3</sup> 0.34MPa
氨基酸发酵废液 0.183g/cm<sup>3</sup> 0.45MPa
玉米浆 0.193g/cm<sup>3</sup> 0.38MPa
实施例8分泌表达产几丁质的泰山赤芝发酵工艺及其应用(改变秸秆粉粒径)
制备过程同实施例1，只更换了种子液中的玉米秸秆粉粒径，其它条件不变。性能检测结果如下表3所示。
玉米秸秆粉粒径 材料密度 压缩性能
12目 0.196g/cm<sup>3</sup> 0.33MPa
60目 0.194g/cm<sup>3</sup> 0.41MPa
150目 0.183g/cm<sup>3</sup> 0.45MPa
200目 0.181g/cm<sup>3</sup> 0.44MPa
实施例9无诱导物实施例(与实施例1对比)
制备过程同实施例1，只不添加诱导物秸秆粉，其它条件不变。对处理结束的材料进行性能检测，力学性能检测设备为万能试验机，检测的性能为压缩强度，检测标准参考国标《GB/T 8813—2020》；密度检测参考国标《GB/T 6343-2009》。性能检测结果：表观密度：0.185g/cm3；压缩强度：0.28MPa。
如图3所示，为在种子液培养基中，不添加玉米秸秆粉、添加不同粒径的玉米秸秆粉作为几丁质诱导物时，种子液中菌球的红外对比图。其中红色为添加的诱导物为最优粒径的150目的玉米秸秆粉，绿色为添加的诱导物为粒径60目的玉米秸秆粉，蓝色为未添加诱导物玉米秸秆粉，从图中用框线框出部分的1371cm-1几丁质吸收峰可以看出，绿色与红色的吸收峰明显高于蓝色的吸收峰。
本发明提供了一种分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺及其在材料中的应用的思路及方法，具体实现该技术方案的方法和途径很多，以上所述仅是本发明的优选实施方式，应当指出，对于本技术领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明原理的前提下，还可以做出若干改进和润饰，这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。本实施例中未明确的各组成部分均可用现有技术加以实现。

Claims (10)

1.一种分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺，其特征在于，将食用菌菌种接入种子液中培养后，再将食用菌种子液接种至固态基质中，搅拌均匀，密封后进行固态发酵制备菌丝体；
其中，所述的种子液包含诱导物秸秆粉，其诱导物秸秆粉为玉米秸秆粉、小麦秸秆粉、稻秸秆粉、芦苇秸秆粉、高粱秸秆粉中的任意一种或几种的组合；
其中，所述的固态基质，包括如下重量百分比的组分：秸秆20～80％，木屑20％～80％、麸皮5％～25％。
2.根据权利要求1所述的分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺，其特征在于，所述的食用菌预先经过纯化处理，纯化方法为：将食用菌切片接入固态平板培养基中培养，挑取无杂菌的菌丝体转接入种子液中继续培养至菌液生物量大于15g/L，再转接入新的固态平板培养基中划线培养，得到分纯后的食用菌菌种。
3.根据权利要求2所述的分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺，其特征在于，所述的食用菌为平菇、草菇、茶树菇、金针菇、杏鲍菇、猴头菇、羊肚菌、灵芝中的任意一种或几种的组合。
4.根据权利要求1或2所述的分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺，其特征在于，所述的种子液，其碳源为葡萄糖、半纤维素、玉米淀粉和商品纸浆中的任意一种或几种的组合，碳源含量21-25g/L。
5.根据权利要求1或2所述的分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺，其特征在于，所述的种子液，其氮源为酵母粉、酵母浸膏、氨基酸发酵废液和玉米浆中的任意一种或几种的组合，氮源含量0.9-1.1g/L。
6.根据权利要求1或2所述的分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺，其特征在于，所述的种子液，其秸秆粉粒径包括12目、60目、150目和200目中的任意一种，秸秆粉含量含量1～5g/L。
7.根据权利要求1所述的分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺，其特征在于，将食用菌菌种接入种子液中25-28℃，170rpm下培养5-10天后，再将食用菌种子液按16％～23％体积比接种至固态基质中，搅拌均匀，密封后进行固态发酵，固态发酵温度为25～32℃，固态发酵时间为5-10天。
8.根据权利要求1所述的分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺，其特征在于，制备得到的菌丝体经脱模，烘干灭活，得到秸秆菌丝体材料，其材料密度为0.181-0.201g/cm3，压缩强度为0.32-0.45MPa。
9.权利要求8所述的分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺制备得到的秸秆菌丝体材料。
10.权利要求9所述的秸秆菌丝体材料在制备缓冲包装材料中的应用。
CN202211019830.XA 2022-08-24 2022-08-24 一种分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺 Pending CN115181679A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202211019830.XA CN115181679A (zh) 2022-08-24 2022-08-24 一种分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202211019830.XA CN115181679A (zh) 2022-08-24 2022-08-24 一种分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN115181679A true CN115181679A (zh) 2022-10-14

Family

ID=83522730

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202211019830.XA Pending CN115181679A (zh) 2022-08-24 2022-08-24 一种分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN115181679A (zh)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US11920126B2 (en) 2018-03-28 2024-03-05 Ecovative Design Llc Bio-manufacturing process
US11932584B2 (en) 2006-12-15 2024-03-19 Ecovative Design Llc Method of forming a mycological product

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US11932584B2 (en) 2006-12-15 2024-03-19 Ecovative Design Llc Method of forming a mycological product
US11920126B2 (en) 2018-03-28 2024-03-05 Ecovative Design Llc Bio-manufacturing process

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN115181679A (zh) 一种分泌表达几丁质的食用菌发酵工艺
US10266695B2 (en) Cultivation of Xylaria species biomass as a binding agent in material production
CN111972212B (zh) 一种人工栽培桑黄的栽培料及其制备方法
Rezaeian et al. A comparative study on bioconversion of different agro wastes by wild and cultivated strains of Flammulina velutipes
CN109588208B (zh) 一种生物多孔材料及制备方法
CN108823102B (zh) 寒地秸秆腐熟真菌被孢霉菌株及其在水稻秸秆腐熟中的应用
CN107183312B (zh) 一种促进马铃薯渣干燥脱水的方法及其应用
CN108370817B (zh) 一种菌糠回收再利用的方法
CN103652327B (zh) 一种利用废弃物生产的生物饲料
CN116285405B (zh) 一种菌丝体秸秆复合材料及其应用
CN110923281A (zh) 一种食用菌多糖提取方法、食用菌多糖、食用菌饮料
CN116064684A (zh) 一种轻质生物基缓冲材料及其制备方法
CN106431658B (zh) 一种平菇培养基及平菇栽培方法
CN115838632B (zh) 一株美网柄牛肝菌内生木霉真菌及其应用
CN103343156A (zh) 一种纤维质原料固态发酵生产燃料乙醇的方法和装置
CN115340964B (zh) 一种具有膨胀素活性的芽孢菌属菌株及其应用
CN113597974B (zh) 一种食用菌可再生栽培基质、制备方法及应用
Rolz Ethanol from sugar crops
CN112877217B (zh) 一种黄褐奈尼兹皮真菌菌株及其降解鸡毛中的用途
CN105613049B (zh) 一种可分解松柏树木屑的黑木耳菌种的栽培方法
CN115746386B (zh) 一种真菌菌丝体基泡沫材料、制备方法及应用
CN110938575A (zh) 一株高效降解纤维菌株及其应用
CN114908134B (zh) 含有苹果渣酶解液的发酵培养基及生产布拉迪酵母的方法
CN110923175B (zh) 芽孢杆菌及其餐厨垃圾减量化资源化生产有机肥中的应用
CN114621908B (zh) 一种白僵菌菌浆膜的发酵方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination