CN114350763B - 一种鉴定硝化微生物的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明属于生物工程技术领域,具体涉及一种鉴定硝化微生物的方法。本发明利用15N‑Urea和15N‑(NH4)2SO4同位素标记硝化种群,利用稳定同位素探针标记技术(15N‑DNA‑SIP)准确快速鉴定具有硝化活性的微生物。并可以结合同位素比值质谱仪或者硝化潜势评估各个硝化类群对硝化过程的相对贡献,为提高氮素利用效率,减少氮素损失和N2O的排放提供基础。
Description
技术领域
本发明属于生物工程技术领域,具体涉及一种鉴定硝化微生物的方法。
背景技术
自基于DNA的稳定同位素探针(DNA-SIP)技术首次用于微生物生态研究(Radajewski et al.,2000)以来,近年来,它已被普遍用作将微生物的识别与特定环境过程联系起来的工具。除了少量纯培养实验外,大多数研究都是在复杂的生态系统中进行的,如土壤、沉积物、水和生物反应器。通常,在样品与这些底物一起孵育数小时至数周后(Jiang et al.,2015),土壤微生物的DNA被提取并与CsCl和GB缓冲液混合。理想情况下,与相应的天然底物丰度相比,在等密度超速离心后,同化标记底物的微生物的DNA会以相对较重的密度分数出现。随后,标记的DNA被挑出并通过克隆文库或高通量测序进行分析,以确定代谢相关碳源的特定微生物群。
这些程序的关键步骤是在超浓缩后识别标记的分数。考虑到精度和灵敏度,Lueders等人(Lueders et al.,2004)选择了荧光测量和实时PCR来检测"重层"核酸。虽然该实验基于纯培养,但这种方法也广泛应用于土壤微生物研究。以往,13CO2标记和12CO2对照处理之间的成对比较用于评估硝化种群是否同化13CO2进行自养生长,并利用13CO2+C2H2和13CO2+C8H14处理评估13CO2同化对氨氧化微生物的化学自养依赖性,氨氧化可以被100pa的C2H2完全抑制。该方法鉴定硝化种群的依据是间接的,指向性不那么明确,能确定的只是硝化微生物的自养生长,而不是直接的鉴定硝化微生物利用氮底物生长。
现有的13C标记技术已广泛应用于土壤微生物研究,用于确定代谢相关碳源的特定微生物类群。但是对于确定代谢相关氮源的特定微生物类群尤其是氮循环所涉及的微生物仍有难度,并且由于土壤微生物群落结构和功能的复杂性,找到标记的组分并不容易。对于以氮为底物的特定微生物,DNA-SIP的应用更是由于氮价态的变化而增加难度。
发明内容
本发明的目的在于针对现有技术中存在的不足,本发明提供一种利用氮底物准确快速鉴定硝化微生物的方法。
本发明的上述目的通过如下方案方式实现:一种鉴定硝化微生物的方法,所述方法包括如下步骤:
S1、对土壤进行预培养;
S2、取土壤分别加入14N-Urea、14N-(NH4)2SO4、15N-Urea和15N-(NH4)2SO4进行同位素微宇宙实验,分别孵育,然后分别提取土壤DNA;
S3、在DNA中加入CsCl溶液和GB溶液,调节折光率,然后进行超高速离心,然后进行分层纯化得到不同密度层级的DNA溶液;
S4、对DNA溶液每个密度层级进行折光率检测并计算浮力密度,经后处理再利用荧光定量PCR确定密度层级的amoA基因丰度;
S5、通过amoA基因丰度和浮力密度判断硝化微生物标记程度。
在上述的一种鉴定硝化微生物的方法中,步骤S1土壤预培养为在20-30℃下保持55-65%土壤田间最大持水量5-8天。对土壤进行预培养可以最大程度地恢复土壤中微生物的活性。
在上述的一种鉴定硝化微生物的方法中,步骤S2孵育过程土壤中含有90-110mg/kg的14N-Urea或14N-(NH4)2SO4或15N-Urea或15N-(NH4)2SO4。
在上述的一种鉴定硝化微生物的方法中,步骤S3调整折光率为1.4015±0.0002。本发明通过调整折光率为1.4015±0.0002可以确保大部分基因集中在密度梯度的中间部分。
作为优选,浮力密度计算公式为:
ρ=-75.9318+99.2031x-31.2551x2,其中ρ表示浮力密度,x表示折光率。
在上述的一种鉴定硝化微生物的方法中,步骤S3超高速离心转速设置为44000-46000rpm,离心力为180000-190000g,离心时间为45-50h。
在上述的一种鉴定硝化微生物的方法中,步骤S3密度层级总层数为16层。在本发明中超高速离心管的总容积是5.1ml,为了确保每层的体积为300-330μl,将密度层级总层数设置为16层,层数过少会增加鉴定成本,层数过多则密度层级不易分开,误差较大。
在上述的一种鉴定硝化微生物的方法中,步骤S4后处理前每个密度层级需要加入PEG6000溶液进行静置处理。
作为优选,PEG6000溶液配置过程具体为:150gPEG6000和46.8gNaCl溶解于去离子水中并定容至500ml,然后用0.2微米滤膜过滤并灭菌。
在上述的一种鉴定硝化微生物的方法中,步骤S4后处理具体为:对每个密度层级进行离心去上清,然后清洗干燥,最后溶解于无核酸水中。
作为优选,步骤S4后处理具体为:对每个密度层级离心后去除上清液,然后加入70%乙醇清洗两次,室温放置挥发剩余的酒精,然后溶于无核酸水。
在上述的一种鉴定硝化微生物的方法中,荧光定量PCR中引物为:AOA的引物CamoA23F/616R、AOB的引物amoA1F/2R、comammox clade A的引物comA_244F/659R、comammoxclade B的引物comB_244F/659R。
作为优选,AOA的定量PCR条件为95℃5min,95℃15s,53℃45s,72℃45s,45个循环,在83℃收集荧光信号。
作为优选,AOB的定量PCR条件为95℃5min,95℃15s,54℃40s,72℃45s,40个循环,在84℃收集荧光信号。
作为优选,comammox的定量PCR条件为95℃5min,95℃15s,52℃45s,72℃1min,45个循环,在82℃收集荧光信号。
14N标记和15N标记它们的浮力密度是不同的,当利用了15N时,浮力密度与丰度的折线图会往重层偏移,通过14N标记和15N标记引起的偏移确定微生物是否利用了标记的N进行自养生长。偏移量越大说明标记的程度越高,微生物活性越强,利用的底物越多。
与现有技术相比,本发明利用15N-Urea和15N-(NH4)2SO4同位素标记硝化种群,利用稳定同位素探针标记技术(15N-DNA-SIP)准确快速鉴定具有硝化活性的微生物。并可以结合同位素比值质谱仪或者硝化潜势评估各个硝化类群对硝化过程的相对贡献,为提高氮素利用效率,减少氮素损失和N2O的排放提供基础。
附图说明
图1为实施例1中16层密度层级的amoA基因丰度和浮力密度关系图。
图2为实施例1中7-15层密度层级的amoA基因丰度和浮力密度关系图。
图3为实施例1分层后DNA的PCR电泳条带图。
具体实施方式
以下是本发明的具体实施例,对本发明的技术方案作进一步的描述,但本发明并不限于这些实施例。
实施例1
S1、对土壤样品进行预处理:在20-30℃下保持55-65%土壤田间最大持水量5-8天。
S2、向120ml棕色血清瓶中分别加入14N-Urea、14N-(NH4)2SO4、15N-Urea和15N-(NH4)2SO4,分别在培养的第0、7、14、21天加入,含量为100mg/kg N每克干土;每隔3天进行换气和补充水分,并且分别在培养第0、1、3、7、14、21、28天破坏性取样;然后分别提取土壤样品DNA,其中提取土壤样品DNA利用MP土壤提取试剂盒(MP Biomedicals,Santa Ana,CA,USA)提取DNA,提取后用1%琼脂糖凝胶电泳检测DNA片段长度和Nanodrop 2000测定DNA浓度和纯度。
表1:DNA浓度和加入体积
ID | DNA浓度ng/μl | 加入体积μl |
14N-(NH4)2SO4-1 | 111.8 | 26.8 |
14N-(NH4)2SO4-2 | 105.5 | 28.4 |
14N-(NH4)2SO4-3 | 104.1 | 28.8 |
14N-Urea-1 | 120.0 | 25.0 |
14N-Urea-2 | 121.1 | 24.8 |
14N-Urea-3 | 121.8 | 24.6 |
15N-(NH4)2SO4-1 | 114.4 | 26.2 |
15N-(NH4)2SO4-2 | 111.9 | 26.8 |
15N-(NH4)2SO4-3 | 121.2 | 24.8 |
15N-Urea-1 | 111.8 | 26.8 |
15N-Urea-2 | 123.4 | 24.3 |
15N-Urea-3 | 138.3 | 21.7 |
S3、各取3μg DNA样品与4.4ml CsCl和1.1ml的GB溶液混合,并且调节折光率为1.4015,装入超高速离心管并封口,然后进行超高速离心,然后进行分层纯化得到不同密度层级的DNA溶液;超高速离心转速设置为45000rpm,离心力为184000g,离心时间为48h。
S4、离心完成后,取出超高速离心管。将样品分为16层,并且测定每一层的折光率,通过离心浓度的经验公式换算出每一层的浮力密度(ρ=-75.9318+99.2031x-31.2551x2,ρ表示浮力密度,x表示折光率)。在每一层的溶液中加入550μl PEG6000溶液静置2小时,离心30min后去除上清液,然后加入500μl 70%乙醇清洗两次,每次离心15min。室温放置挥发剩余的酒精,然后溶于30μl无核酸水。
S5、对DNA溶液每个密度层级进行折光率检测并计算浮力密度,经后处理再利用荧光定量PCR确定密度层级的amoA基因丰度;荧光定量PCR引物分别为AOA的引物CamoA 23F/616R,AOB的引物amoA1F/2R,comammox clade A的引物comA_244F/659R,comammox clade B的引物comB_244F/659R,其中clade A和clade B的引物都是由六对简并引物的混合而成。
AOA和AOB的20μl定量体系为10μl的mix,上下游引物各0.5μl,2μl的DNA模板,其余的用水补足。AOA的定量PCR条件为95℃5min,95℃15s,53℃45s,72℃45s,45个循环,在83℃收集荧光信号。AOB的定量PCR条件为95℃5min,95℃15s,54℃40s,72℃45s,40个循环,在84℃收集荧光信号。comammox的20μl定量体系为10μl的mix,上下游引物各3μl,1μl的DNA模板,其余的用水补足。comammox的定量PCR条件为95℃5min,95℃15s,52℃45s,72℃1min,45个循环,在82℃收集荧光信号。
S6、通过amoA基因丰度和浮力密度判断硝化微生物标记程度。
表2:不同密度层级的浮力密度
图1-2分别为实施例1中16层、7-15层密度层级的amoA基因丰度和浮力密度关系图。在初始折光率设置为1.4015可以确保大部分基因集中在密度梯度的中间部分,微生物利用N作为底物,确定代谢相关氮源的特定微生物类群,直接证明了完全氨氧化菌能够利用15N进行自养生长。
图3为实施例1分层后DNA的PCR电泳条带图。可以看出目的基因片段长度为415bp。
综上所述,本发明利用15N-Urea和15N-(NH4)2SO4同位素标记硝化种群,利用稳定同位素探针标记技术(15N-DNA-SIP)准确快速鉴定具有硝化活性的微生物。
本文中所描述的具体实施例仅仅是对本发明精神作举例说明。本发明所属技术领域的技术人员可以对所描述的具体实施例做各种修改或补充或采用类似的方式替代,但并不会偏离本发明的精神或者超越所附权利要求书所定义的范围。
尽管对本发明已作出了详细的说明并引证了一些具体实施例,但是对本领域熟练技术人员来说,只要不离开本发明的精神和范围可作各种变化或修正是显然的。
Claims (2)
1.一种鉴定硝化微生物的方法,其特征在于,所述方法包括如下步骤:
S1、对土壤进行预培养;
S2、取土壤分别加入14N-Urea、14N-(NH4)2SO4、15N-Urea或15N-(NH4)2SO4进行同位素微宇宙实验,分别孵育,然后分别提取土壤DNA;
S3、在DNA中加入CsCl溶液和GB溶液,调节折光率,然后进行超高速离心,然后进行分层纯化得到不同密度层级的DNA溶液;
S4、对DNA溶液每个密度层级进行折光率检测并计算浮力密度,经后处理再利用荧光定量PCR确定密度层级的amoA基因丰度;
S5、通过amoA基因丰度和浮力密度判断硝化微生物标记程度;14N标记和15N标记的浮力密度是不同的,当微生物利用了15N时,浮力密度与amoA基因丰度的折线图会往重层偏移,通过14N标记和15N标记引起的偏移确定微生物是否利用了标记的N进行自养生长,偏移量越大说明标记的程度越高,微生物活性越强,利用的底物越多;
步骤S2孵育过程土壤中含有90-110mg/kg的14N-Urea或14N-(NH4)2SO4或15N-Urea或15N-(NH4)2SO4;
步骤S3调整折光率为1.4015±0.0002;
步骤S1土壤预培养为在20-30℃下保持55-65%土壤田间最大持水量5-8天;
步骤S3超高速离心转速设置为44000-46000rpm,离心力为180000-190000g,离心时间为45-50h;
步骤S4后处理前每个密度层级需要加入PEG6000溶液进行静置处理;
步骤S4后处理具体为:对每个密度层级进行离心去上清,然后清洗干燥,最后溶解于无核酸水中。
2.根据权利要求1所述的一种鉴定硝化微生物的方法,其特征在于,步骤S3密度层级总层数为16层。
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