CN114288393A

CN114288393A - 两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用

Info

Publication number: CN114288393A
Application number: CN202210028494.9A
Authority: CN
Inventors: 范新炯; 张艺馨
Original assignee: Anhui Medical University
Current assignee: Anhui Medical University
Priority date: 2021-12-31
Filing date: 2022-01-11
Publication date: 2022-04-08
Anticipated expiration: 2042-01-11
Also published as: CN114288393B

Abstract

本发明适用于生物技术领域，提供了两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用，所述两种生物酶包括高丝氨酸内酯酶和糖苷水解酶；其中，所述高丝氨酸内酯酶的氨基酸序列为SEQ ID NO.3所示；所述糖苷水解酶的氨基酸序列为SEQ ID NO.4所示。本发明采用的高丝氨酸内酯酶AidH通过群体感应调控从源头上抑制生物膜的产生，糖苷水解酶PslG在生物膜成熟过程中不断瓦解已形成的生物膜，还可以联合抗生素，提高了抗生素在抗铜绿假单胞菌生物膜感染上的效果，进而缓解铜绿假单胞菌耐药性及致病性的问题。

Description

两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用

技术领域

本发明属于生物技术领域，尤其涉及两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用。

背景技术

群体感应(quorum sensing，QS)是广泛存在于细菌群体中的，依赖细菌密度的信号通讯系统。铜绿假单胞菌的群体感应系统可调控铜绿假单胞菌毒力因子的产生、生物被膜的形成、耐药基因的表达以及增强铜绿假单胞菌的致病性和耐药性等，铜绿假单胞菌群体感应系统包括LasI/LasR系统、RhlI/RhlR系统以及喹诺酮类信号系统(PQS)。

铜绿假单胞菌生物膜由胞外聚合物(Extracellular Polymeric Substance,EPS)和基质网(Matrix)组成，铜绿假单胞菌生物膜的形成是其耐药性增加的重要因素，且其致病性主要在于分泌的胞外毒性物质与粘附因子。

因此抑制铜绿假单胞菌生物膜的形成可以削弱其致病性与耐药性。

发明内容

本发明实施例的目的在于提供两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用，旨在解决上述背景技术中存在的问题。

本发明实施例是这样实现的，两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用，所述两种生物酶包括高丝氨酸内酯酶和糖苷水解酶；

其中，所述高丝氨酸内酯酶的氨基酸序列为SEQ ID NO.3所示；

所述糖苷水解酶的氨基酸序列为SEQ ID NO.4所示。

优选地，编码所述高丝氨酸内酯酶的基因其核苷酸序列为SEQ ID NO.1所示。

优选地，编码所述糖苷水解酶的基因其核苷酸序列为SEQ ID NO.2所示。

优选地，所述高丝氨酸内酯酶的制备方法包括以下步骤：

将所述基因经BamHI和HindIII双酶切后，与表达载体连接，并转化至宿主细胞中，获得重组菌；

将重组菌经IPTG诱导，得到所述高丝氨酸内酯酶。

优选地，所述糖苷水解酶的制备方法包括以下步骤：

将所述基因经NdeI和HindIII双酶切后，与表达载体连接，并转化至宿主细胞中，获得重组菌；

将重组菌经IPTG诱导，得到所述糖苷水解酶。

优选地，所述表达载体为pET-28a(+)载体，所述宿主细胞为大肠杆菌Escherichiacoli BL21(DE3)。

优选地，所述高丝氨酸内酯酶和糖苷水解酶联合抗生素使用。

本发明实施例提供的两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用，利用高丝氨酸内酯酶和糖苷水解酶两种生物酶，其中高丝氨酸内酯酶AidH通过群体感应调控从源头上抑制生物膜的产生，糖苷水解酶PslG在生物膜成熟过程中不断瓦解已形成的生物膜，还可以联合抗生素，提高了抗生素在抗铜绿假单胞菌生物膜感染上的效果，进而缓解铜绿假单胞菌耐药性及致病性的问题。

附图说明

图1为本发明实施例提供的两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用中AidH对QS相关基因抑制效果图；

图2为本发明实施例提供的两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用中AidH、PslG及两种酶联用对生物膜形成的抑制效果图。

具体实施方式

为了使本发明的目的、技术方案及优点更加清楚明白，以下结合附图及实施例，对本发明进行进一步详细说明。应当理解，此处所描述的具体实施例仅仅用以解释本发明，并不用于限定本发明。

以下结合具体实施例对本发明的具体实现进行详细描述。

实施例1

AidH对铜绿假单胞菌毒力因子、生物膜相关成分抑制效果检测

酶准备：将AidH基因与pET-28a(+)表达载体进行连接，转化大肠杆菌BL21(DE3)进行表达，用超声波破碎仪破碎细胞获得粗酶液，将带有组氨酸标签的酶使用重力纯化柱纯化后，使用PBS透析，去除可能对实验造成影响的杂蛋白与化学试剂。使用BCA方法对蛋白浓度进行测定，以方便对酶进行定量；

菌准备：在无抗性平板上对铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa,PA)进行四区划线，37℃温箱培养过夜，挑单克隆菌培养8h后，转接至LB培养基，测定OD值约为OD600＝0.1。然后将12孔板中加入2ml前述菌液。在37℃培养箱中培养24h，每组实验做3个平行，同时设立对照组，测定以下毒力因子：

①LasA蛋白酶量测定

配制反应溶液2％偶氮酪氨酸蛋白溶液50ml(称取1g偶氮酪氨酸蛋白，溶于含有2mM的CaCl₂,40mM PH7.5的Tris-HCl溶于中)，12孔板中的菌液吹打均匀后离心，将250uL反应溶液与150uL菌上清液混合，在37℃下反应40min。加入1.2mL 10％TAC终止反应。室温放置15min后离心，取1.2mL上清液加入1ml 1M NaOH，测定OD440；

②LasB蛋白酶

将500μL无细菌上清液加入到500μL含有10mg弹性蛋白-刚果红的100mM，1mMCaCl₂，PH7.5的Tris-HCl缓冲液中。将混合物在37℃下震荡孵育6h，冰水浴孵育5min，离心除去不溶性刚果红后，测量495nm处的吸光度；

③绿脓素测定

吸取1mL12孔板中的菌液离心获得的上清液，加入1mL三氯甲烷，混匀震荡1min。弃去上清液，将萃取出绿脓素的三氯甲烷中加入0.5mL 0.2MHCl酸化，混匀震荡1min后离心。取上层粉色水相，测量OD520处的吸光度；

④褐藻胶检测：

将0.5ml菌液与1.5mL 10％硫酸铜混合。反应液用1mol/L盐酸调PH至4.0，在室温下放置1h，13000rpm下离心2min。将沉淀物溶解于40μL 1mol/L氨水后，加入0.45mL ddH₂0稀释。向0.5mL的样品中加入1mL copper-HCl试剂(40ml浓盐酸与9ml ddH₂O与1ml2.5％硫酸铜的混合液)混合后加入1mL萘-间苯二酚试剂(100mg 1,3萘二酚溶于25mL水中)。沸水浴40min，冷却后与1mL乙酸丁酯混合，震荡1min后离心分离乙酸丁酯层，用20％氯化钠溶液清洗一次后，测量OD 565nm处吸光度；

⑤生物膜量测定：

通过上述培养方式培养PA，吸出菌液后。对12孔板底部用ddH₂O清洗3遍，加入0.2％结晶紫溶液染色30min，倒去结晶紫溶液后，再用ddH₂O洗3遍，烘干后用95％乙醇脱色，测量OD590吸光度；

表1

由表1可知，在>＝2μg/mL酶量基础上均有抑制效果，其中>＝200μg的抑制效果最佳。

实施例2

AidH对QS系统相关基因表达影响

采用Qiagen的试剂盒方法提取PA的RNA，采用takara公司编号为RR047A、RR820A的试剂进行逆转录及荧光定量PCR实验，步骤参照说明书。对基因LasI、LasR、RhlI、RhlR表达进行检测，结果如图1所示：

由图1可知，AidH对铜绿假单胞菌QS系统相关基因LasI、LasR、RhlI、RhlR均有明显抑制效果。

实施例3

AidH、PslG及两种酶联用对生物膜形成的抑制效果实验

酶准备：将AidH基因(核苷酸序列为SEQ ID NO.1所示)经BamHI和HindIII双酶切后，与pET-28a(+)表达载体进行连接，转化大肠杆菌BL21(DE3)进行表达，用超声波破碎仪破碎细胞获得粗酶液，将带有组氨酸标签的酶使用重力纯化柱纯化后，使用PBS透析，去除可能对实验造成影响的杂蛋白与化学试剂，得到所需酶液；

将PslG基因(核苷酸序列为SEQ ID NO.2所示)经NdeI和HindIII双酶切后，与pET-28a(+)表达载体进行连接，转化大肠杆菌BL21(DE3)进行表达，用超声波破碎仪破碎细胞获得粗酶液，将带有组氨酸标签的酶使用重力纯化柱纯化后，使用PBS透析，去除可能对实验造成影响的杂蛋白与化学试剂，得到所需酶液；

采用NEST玻底培养皿培养生物膜，每个小皿中加入OD600约等于0.1的铜绿假单胞菌PAO1培养液2ml，培养总时长72h，每间隔24h重新添加酶液，所添加酶量为AidH 200μg，PslG 50μg，联用组为同时加入相同量的AidH与PslG，对照组加入同等体积的缓冲液。采用FITC-ConA、PI双重染色观察结果。使用激光共聚焦显微镜观察，抑制效果如图2所示：

由图2可知，AidH、PslG及两种酶联用对铜绿假单胞菌生物膜均有抑制作用，AidH和PslG两种酶联用的抑制效果最佳。

实施例4

AidH、PslG及两种酶联用对PA抗生素敏感性提升效果

最小抑菌浓度(MIC)：挑取铜绿假单胞菌单克隆菌株接种到含10mL LB培养基的小瓶中，37℃220r/min振荡培养过夜。配置试验所需抗生素浓度的2倍浓度溶液(2048μg/mL)。用移液器向96孔板每孔加入100μL ddH₂O。之后在第一列中加入100μL 2倍浓度的抗生素溶液。用移液器将第一列200μL液体吹吸6-8次混匀，避免液体溅出。从第一列中取出100μL，置于第二列，吹吸6-8次混匀，完成2倍稀释，依次重复。将第十列取出的100μL溶液弃去，不要放入第十二列。1-11列加入适当吸光值菌液，使菌体终浓度达到2×104～105CFU/mL。第12列为LB培养基，作为空白对照。所添加酶量为AidH每孔20μg，PslG每孔5μg，联用组为同时加入相同量的AidH与PslG，对照组加入同等体积的缓冲液。将96孔板于37℃培养12h。用酶标仪读取600nm处吸光值，确定该抗生素对该菌株的最低抑菌浓度，如表2所示：

由表2可知，AidH与PslG联用抗生素显著提高了对铜绿假单胞菌MIC效果的提高。

最小杀菌浓度(MBC)：蘸取未见生长孔内的培养基，划线培养后，确定该抗生素对该菌株的最低杀菌浓度，如表3所示：

阿米卡星	MBC(μg/mL)
		对照	8
AidH	8
		PslG	4
联用	2

由表3可知，AidH与PslG联用抗生素显著提高了对铜绿假单胞菌MBC效果的提高。

以上所述仅为本发明的较佳实施例而已，并不用以限制本发明，凡在本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换和改进等，均应包含在本发明的保护范围之内。

序列表

<110> 安徽医科大学

<120> 两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用

<160> 4

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 816

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 1

atgacaatca attatcacga acttgaaacc agccatggcc gcattgctgt gcgtgaaagc 60

gagggcgagg gcgctccgct gctgatgatc catggcaatt caagttcggg tgccattttt 120

gcgccgcagc tcgaaggaga aatcggcaag aagtggcgtg tgatcgcgcc tgatcttccg 180

ggccatggca aatcaaccga tgccatcgac cccgaccgca gctattcgat ggaaggctat 240

gcggacgcga tgacggaagt catgcaacag ctcgggattg ccgatgcggt ggttttcggc 300

tggtcgctcg gcggacatat cggcatcgag atgattgccc gttatcctga aatgcggggc 360

ctgatgatca ctgggacgcc gcctgtcgcg cgcgaagaag tagggcaggg gttcaagagc 420

ggtcctgata tggcactcgc cggacaggaa atcttttcgg aacgcgatgt ggaatcctac 480

gctcgcagca cctgcggtga accattcgag gcatcgcttc tcgatatcgt tgcacgcacc 540

gacggacgcg cacgccgcat catgtttgaa aaatttggct ctggcaccgg cggcaaccag 600

cgcgacatcg tagcggaagc acaactccct atcgcggtcg tcaatggccg tgacgagcct 660

tttgttgaac tcgatttcgt gtcgaaagtg aaattcggca atctgtggga aggtaaaacc 720

cacgttatcg acaatgcagg tcatgcgcca ttccgtgaag cacccgcaga atttgacgcc 780

tatctcgcgc gctttatccg cgattgcaca caataa 816

<210> 2

<211> 1329

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 2

atggcacgta agggactcta tctgggcggc agcgcgctgc tgctcgccgt ggtactgctg 60

ctggtgttct gggggcgtcc cgccgacgcc gagatccagg tactgaaggc gcctcgcgcg 120

gtggtctgga aagacttcct cggggtcaac gcgcagttcc tctggttcag cccggagcgt 180

tacaacaagc agatcgaccg cctgcaggac ctggggctgg agtgggtgcg cctggacctg 240

cactgggacc gcctggaaac cgccgaggac cagtaccagc tggcctccct cgaccagttg 300

gtcaaagatc tcgaggcgcg ccagctgaag tcggtgttct acctggtcgg ctcggcccgc 360

ttcatcacca ccgcgccgtt ctactcgccc ttccaggacc agtatccgcc gcgcgacccg 420

gaagtcttcg cccggcgcat ggcgatgctc tcgcagcgct acccgagcgt ggccgcctgg 480

caggtatgga acgagcccaa cctgatcggc ttctggcggc ccaaggccga cccggaaggc 540

tacgccaagc tgctccaggc cagcaccatc gccctgcgca tggtcgaccc ggagaagccg 600

gtggtttccg ccggcatggc cttcttcagc gagatgcccg acggccgcac catgttcgac 660

gccctcggcc acctgggcgt ggagagcctc ggcaccatcg ccacctacca cccctatacc 720

cagttgccgg aaggcaacta cccgtggaac ctggacttcg tctcccacgc caaccagatc 780

aaccgcgccc tgcgcaacgc cggcgtgccg gcgatctgga gcaccgagtg gggctggtcg 840

gcctacaagg ggccgaagga gttgcaggac atcattggcg tcgaaggcca ggccgactac 900

gtgctgcgtc gcctggcgct gatgagtgcg ctggactacg accggatctt cctcttcacc 960

ctcagcgatc tcgaccagcg cgccagcgtg cgcgaccgcg actacggcct gctcgacctg 1020

gacgccaacc ccaagccggt ctacctggcc ctgcaacgct tcctcaaggt caccgggccg 1080

aagctgcgcc cggccgaccc gccggtcacc gaggacctgc ccgacggttc cttcagcatc 1140

ggctggaccc gcgaggacgg tcgcaacgtc tggctgttct ggtcggcccg cggcggcaac 1200

gtgcgcctgc cgaagctcaa ggaggccacc ctgcacgatc cgctcagcgg caaggtcacg 1260

cccttgagcg gcagcgacgg cctggaagtc ccggtgaagt ccagcctgca gatgctggtc 1320

tgggagtga 1329

<210> 3

<211> 271

<212> PRT

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 3

Met Thr Ile Asn Tyr His Glu Leu Glu Thr Ser His Gly Arg Ile Ala

1 5 10 15

Val Arg Glu Ser Glu Gly Glu Gly Ala Pro Leu Leu Met Ile His Gly

20 25 30

Asn Ser Ser Ser Gly Ala Ile Phe Ala Pro Gln Leu Glu Gly Glu Ile

35 40 45

Gly Lys Lys Trp Arg Val Ile Ala Pro Asp Leu Pro Gly His Gly Lys

50 55 60

Ser Thr Asp Ala Ile Asp Pro Asp Arg Ser Tyr Ser Met Glu Gly Tyr

65 70 75 80

Ala Asp Ala Met Thr Glu Val Met Gln Gln Leu Gly Ile Ala Asp Ala

85 90 95

Val Val Phe Gly Trp Ser Leu Gly Gly His Ile Gly Ile Glu Met Ile

100 105 110

Ala Arg Tyr Pro Glu Met Arg Gly Leu Met Ile Thr Gly Thr Pro Pro

115 120 125

Val Ala Arg Glu Glu Val Gly Gln Gly Phe Lys Ser Gly Pro Asp Met

130 135 140

Ala Leu Ala Gly Gln Glu Ile Phe Ser Glu Arg Asp Val Glu Ser Tyr

145 150 155 160

Ala Arg Ser Thr Cys Gly Glu Pro Phe Glu Ala Ser Leu Leu Asp Ile

165 170 175

Val Ala Arg Thr Asp Gly Arg Ala Arg Arg Ile Met Phe Glu Lys Phe

180 185 190

Gly Ser Gly Thr Gly Gly Asn Gln Arg Asp Ile Val Ala Glu Ala Gln

195 200 205

Leu Pro Ile Ala Val Val Asn Gly Arg Asp Glu Pro Phe Val Glu Leu

210 215 220

Asp Phe Val Ser Lys Val Lys Phe Gly Asn Leu Trp Glu Gly Lys Thr

225 230 235 240

His Val Ile Asp Asn Ala Gly His Ala Pro Phe Arg Glu Ala Pro Ala

245 250 255

Glu Phe Asp Ala Tyr Leu Ala Arg Phe Ile Arg Asp Cys Thr Gln

260 265 270

<210> 4

<211> 442

<212> PRT

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 4

Met Ala Arg Lys Gly Leu Tyr Leu Gly Gly Ser Ala Leu Leu Leu Ala

1 5 10 15

Val Val Leu Leu Leu Val Phe Trp Gly Arg Pro Ala Asp Ala Glu Ile

20 25 30

Gln Val Leu Lys Ala Pro Arg Ala Val Val Trp Lys Asp Phe Leu Gly

35 40 45

Val Asn Ala Gln Phe Leu Trp Phe Ser Pro Glu Arg Tyr Asn Lys Gln

50 55 60

Ile Asp Arg Leu Gln Asp Leu Gly Leu Glu Trp Val Arg Leu Asp Leu

65 70 75 80

His Trp Asp Arg Leu Glu Thr Ala Glu Asp Gln Tyr Gln Leu Ala Ser

85 90 95

Leu Asp Gln Leu Val Lys Asp Leu Glu Ala Arg Gln Leu Lys Ser Val

100 105 110

Phe Tyr Leu Val Gly Ser Ala Arg Phe Ile Thr Thr Ala Pro Phe Tyr

115 120 125

Ser Pro Phe Gln Asp Gln Tyr Pro Pro Arg Asp Pro Glu Val Phe Ala

130 135 140

Arg Arg Met Ala Met Leu Ser Gln Arg Tyr Pro Ser Val Ala Ala Trp

145 150 155 160

Gln Val Trp Asn Glu Pro Asn Leu Ile Gly Phe Trp Arg Pro Lys Ala

165 170 175

Asp Pro Glu Gly Tyr Ala Lys Leu Leu Gln Ala Ser Thr Ile Ala Leu

180 185 190

Arg Met Val Asp Pro Glu Lys Pro Val Val Ser Ala Gly Met Ala Phe

195 200 205

Phe Ser Glu Met Pro Asp Gly Arg Thr Met Phe Asp Ala Leu Gly His

210 215 220

Leu Gly Val Glu Ser Leu Gly Thr Ile Ala Thr Tyr His Pro Tyr Thr

225 230 235 240

Gln Leu Pro Glu Gly Asn Tyr Pro Trp Asn Leu Asp Phe Val Ser His

245 250 255

Ala Asn Gln Ile Asn Arg Ala Leu Arg Asn Ala Gly Val Pro Ala Ile

260 265 270

Trp Ser Thr Glu Trp Gly Trp Ser Ala Tyr Lys Gly Pro Lys Glu Leu

275 280 285

Gln Asp Ile Ile Gly Val Glu Gly Gln Ala Asp Tyr Val Leu Arg Arg

290 295 300

Leu Ala Leu Met Ser Ala Leu Asp Tyr Asp Arg Ile Phe Leu Phe Thr

305 310 315 320

Leu Ser Asp Leu Asp Gln Arg Ala Ser Val Arg Asp Arg Asp Tyr Gly

325 330 335

Leu Leu Asp Leu Asp Ala Asn Pro Lys Pro Val Tyr Leu Ala Leu Gln

340 345 350

Arg Phe Leu Lys Val Thr Gly Pro Lys Leu Arg Pro Ala Asp Pro Pro

355 360 365

Val Thr Glu Asp Leu Pro Asp Gly Ser Phe Ser Ile Gly Trp Thr Arg

370 375 380

Glu Asp Gly Arg Asn Val Trp Leu Phe Trp Ser Ala Arg Gly Gly Asn

385 390 395 400

Val Arg Leu Pro Lys Leu Lys Glu Ala Thr Leu His Asp Pro Leu Ser

405 410 415

Gly Lys Val Thr Pro Leu Ser Gly Ser Asp Gly Leu Glu Val Pro Val

420 425 430

Lys Ser Ser Leu Gln Met Leu Val Trp Glu

435 440

Claims

1.两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用，其特征在于，所述两种生物酶包括高丝氨酸内酯酶和糖苷水解酶；

其中，所述高丝氨酸内酯酶的氨基酸序列为SEQ ID NO.3所示；

所述糖苷水解酶的氨基酸序列为SEQ ID NO.4所示。

2.根据权利要求1所述的两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用，其特征在于，编码所述高丝氨酸内酯酶的基因其核苷酸序列为SEQ ID NO .1所示。

3.根据权利要求1所述的两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用，其特征在于，编码所述糖苷水解酶的基因其核苷酸序列为SEQ ID NO .2所示。

4.根据权利要求2所述的两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用，其特征在于，所述高丝氨酸内酯酶的制备方法包括以下步骤：

将所述基因经BamHI 和HindIII双酶切后，与表达载体连接，并转化至宿主细胞中，获得重组菌；

将重组菌经IPTG诱导，得到所述高丝氨酸内酯酶。

5.根据权利要求3所述的两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用，其特征在于，所述糖苷水解酶的制备方法包括以下步骤：

将重组菌经IPTG诱导，得到所述糖苷水解酶。

6.根据权利要求4或5所述的两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用，其特征在于，所述表达载体为pET-28a(+)载体，所述宿主细胞为大肠杆菌Escherichiacoli BL21 (DE3)。

7.根据权利要求1所述的两种生物酶联用在抑制铜绿假单胞菌生物膜形成上的应用，其特征在于，所述高丝氨酸内酯酶和糖苷水解酶联合抗生素使用。