CN113912689B

CN113912689B - OsSGD1蛋白在提高水稻纹枯病抗病性中的应用

Info

Publication number: CN113912689B
Application number: CN202111518523.1A
Authority: CN
Inventors: 张执金; 靳茜; 张海文; 朱莉; 王嘉翼; 李梓萱; 李华
Original assignee: BAODING UNIVERSITY; Biotechnology Research Institute of CAAS
Current assignee: BAODING UNIVERSITY; Biotechnology Research Institute of CAAS
Priority date: 2021-12-14
Filing date: 2021-12-14
Publication date: 2022-02-25
Anticipated expiration: 2041-12-14
Also published as: CN113912689A

Abstract

本发明公开了OsSGD1蛋白在提高植物纹枯病抗病性中的应用。本发明过表达OsSGD1基因提高植物纹枯病抗性，理论分析为OsSGD1蛋白通过调控植物抗病基因表达，提高植物抗病性。研究结果表明OsSGD1蛋白在提高植物纹枯病抗性中具有重要作用。本发明对于培育高纹枯病抗性植物具有重大的应用价值。

Description

OsSGD1蛋白在提高水稻纹枯病抗病性中的应用

技术领域

本发明属于生物技术领域，具体涉及OsSGD1蛋白在提高水稻纹枯病抗性中的应用。

背景技术

纹枯病是我国水稻生成的三大病害之一，也是水稻生产的全球性重要病害。水稻纹枯病在我国各个水稻生产区域都有发生，水稻生产威胁极大，流行年份，一般减产10-20%。在纹枯病重发区，其导致的水稻减产可达40-50%，甚至绝收，严重危害我国的水稻生产。我国常年纹枯病发病面积300万公顷以上，纹枯病发病率之高，范围之广，损失程度之大，对国家粮食生产造成重大损失。近几年我国南方稻区纹枯病危害越来越严重。如，近几年江苏约95% 的稻田受到不同程度的纹枯病危害，受害田块一般减产10-20%，严重田块减产超过50%。在东北地区，辽宁省纹枯病发生较重，已成为当地水稻的主要病害之一。在纹枯病较为严重的2014年，我国纹枯病危害面积超过为500万公顷，损失稻谷300多万吨，经济损失上百亿元。所以水稻纹枯病防治对国家水稻生产稳产有重要影响，抗病品种选育责任重大，具有广大应用前景。水稻纹枯病是水稻病害中流行情况最复杂、潜在威协最大的病害之一。因此通过利用抗性基因的方法，培育抗纹枯病水稻新材料，对提高水稻产量和粮食安全有重要作用。

发明人前期研究发现OsSGD1蛋白具有核酸结合活性，参与DNA复制，在水稻细胞周期调控中重要作用，从而影响水稻籽粒发育（CN 112795588 A）。过表达OsSGD1蛋白增加水稻籽粒的长度和宽度，从而提高了水稻籽粒的千粒重，增加水稻产量。

发明内容

本发明的目的是提供OsSGD1蛋白在提高水稻纹枯病抗性中的应用。

OsSGD1蛋白具体来源于稻属亚洲栽培稻种02428品种（Oryza sativa L. 02428）。

OsSGD1蛋白在提高植物纹枯病抗病性中的应用。

所述OsSGD1蛋白为如下（a）或（b）或（c）所示的蛋白质：

（a）氨基酸序列是序列表中SEQ ID NO：1所示的蛋白质；

（b）将SEQ ID NO：1所示的蛋白质进行一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加得到的具有相同功能的蛋白质；

（c）与（a）具有95%以上同一性且具有相同功能的蛋白质。

所述植物为禾本科植物水稻、小麦、燕麦或甘蔗。

所述OsSGD1蛋白的编码基因为如下（1）或（2）或（3）所述的DNA分子：

（1）编码区如序列表中SEQ ID NO：2所示的DNA分子；

（2）与（1）具有90%以上同一性且编码与提高纹枯病抗性相关的蛋白的DNA分子；

（3）在严格条件下与（1）杂交且编码植物与提高纹枯病抗性相关的蛋白的DNA分子。

一种制备转基因植物的方法，包括如下步骤：在出发植物中导入OsSGD1基因，得到与所述出发植物相比增加了纹枯病抗性的转基因植物；所述OsSGD1基因为编码OsSGD1蛋白的基因。

一种植物育种的方法，包括如下步骤：提高目的植物中所述OsSGD1蛋白的活性和/或含量，从而提高植物纹枯病的抗病性。

以上任一所述方法中，“在出发植物中导入OsSGD1基因”是通过将重组表达载体导入出发植物实现的。所述重组表达载体为将所述OsSGD1基因插入植物表达载体得到的可以表达所述OsSGD1基因的质粒。所述重组表达载体具体可为：在pCAMBIA1307载体的多克隆位点（例如Xba

与Xho

酶切位点之间）插入序列表的序列2第1-3645位核苷酸所示双链DNA分子得到的重组质粒pCAMBIA1307-OsSGD1。

本发明的有益效果：本发明过表达OsSGD1基因提高植物纹枯病抗性，理论分析为OsSGD1蛋白通过调控植物抗病基因表达，提高植物抗病性。研究结果表明OsSGD1蛋白在提高植物纹枯病抗性中具有重要作用。本发明对于培育高纹枯病抗性植物具有重大的应用价值。

附图说明

图1为重组质粒pCAMBIA1307-OsSGD1的元件示意图。

图2为转基因株系中OsSGD1基因的相对表达水平。

图3为水稻纹枯病发病及统计结果。

图4 为转基因株系中水稻抗病相关基因的相对表达水平。

具体实施方式

为了便于理解本发明，下面将对本发明进行更全面的描述。但是，本发明可以以许多不同的形式来实现，并不限于本文所描述的实施例。相反地，提供这些实施例的目的是使对本发明的公开内容的理解更加透彻全面。

下述实施例中的实验方法，如无特殊说明，均为常规方法。下述实施例中所用的试验材料，如无特殊说明，均为自常规生化试剂商店购买得到的。以下实施例中的定量试验，均设置三次重复实验，结果取平均值。将序列表SEQ ID NO：1所示的蛋白质命名为OsSGD1蛋白。水稻cDNA中， OsSGD1蛋白的编码区如序列表SEQ ID NO：2所示，将其命名为OsSGD1基因。

pCAMBIA1307载体，全称为pCAMBIA1307-myc植物过表达载体：上海吉然生物科技有限公司，产品目录号为JR13080311。农杆菌LBA4404：行知生物科技有限公司，产品目录号为AABV02-03。

实施例1转基因植物的获得

一、重组质粒的构建

1、提取水稻02428的总RNA，然后反转录得到cDNA。

2、以步骤1得到的cDNA为模板，采用F1和R1组成的引物对进行PCR扩增，回收PCR扩增产物。

F15'-CGGTATCTAGAACTAGTGGAATGTCGACGGCCGCCAAGGAGG-3'

R1：5'- GGGCCCCCCCTCGAGGTCCACTGAGGAGCGCTCCAAACT

GC-3'。

3、用限制性内切酶Xba

与Xho

双酶切步骤2得到的PCR扩增产物，回收酶切产物。

4、用限制性内切酶Xba

与Xho

双酶切pCAMBIA1307载体，回收载体骨架。

5、将步骤3得到的酶切产物和步骤4得到的载体骨架连接，得到重组质粒pCAMBIA1307-OsSGD1。根据测序结果，对重组质粒pCAMBIA1307-OsSGD1进行结构描述如下：在pCAMBIA1307载体的Xba

与Xho

酶切位点之间插入了序列表的序列1第1-2424位核苷酸所示的双链DNA分子。重组质粒pCAMBIA1307-OsSGD1的元件示意图见图1。

二、转基因OsSGD1基因水稻的获得

1、将重组质粒pCAMBIA1307-OsSGD1导入农杆菌LBA4404，得到重组农杆菌。

2、将步骤1得到的重组农杆菌悬浮于液体ASAA培养基中，得到OD_600nm值=0.3的菌液。

液体ASAA培养基：含2mg/L 2，4-D和100μM/L AS的液体NB培养基。

3、取水稻02428的种子，用75%乙醇灭菌，然后置于固体NB培养基平板上，28℃暗培养2周，然后将愈伤组织转移到新的固体NB培养基平板上28℃暗培养2周，然后将愈伤组织转移到新的固体NB培养基平板上28℃暗培养2周。

4、完成步骤3后，将愈伤组织中自然分散、颜色淡黄的胚性愈伤颗粒置于继代培养基平板上，28℃暗培养3天。

继代培养基：含2mg/L 2，4-D的固体NB培养基。

5、完成步骤4后，取愈伤组织，置于步骤2得到的菌液中浸泡10-20分钟，其间轻轻摇动。

6、完成步骤5后，取愈伤组织，用滤纸吸干表面菌液，然后置于共培养培养基平板上，21℃-22℃暗培养3天。

共培养培养基：含2mg/L 2,4-D和100μM AS的固体NB培养基。

7、完成步骤6后，取愈伤组织，置于筛选培养基平板上28℃暗培养2周，然后将愈伤组织转移到新的筛选培养基平板上28℃暗培养2周，然后将愈伤组织转移到新的筛选培养基平板上28℃暗培养2周。

筛选培养基: 含2mg/L 2,4-D和50mg/L 潮霉素的固体NB培养基。

8、完成步骤7后，取生长旺盛，呈乳白色或微黄色的新鲜愈伤组织，置于预分化培养基平板上，先28℃暗培养1周再28℃光照培养2周，然后转移到分化培养基平板上， 28℃光照培养，得到分化苗。

预分化培养基：含5mg/L ABA和0.5mg/L NAA的固体NB培养基。

分化培养基：含0.5mg/L NAA和3mg/L 6-BA的固体NB培养基。

9、完成步骤8后，将长势好的分化成苗转移至装有固体MS培养基的三角瓶内，28℃光照培养1-2周后移栽至温室，持续培养至收获种子，即为T₁代种子。

10、将T₁代种子培育为植株，即为T₁代植株，T₁代植株自交，得到T₂代种子。

12、将T₂代种子培育为植株，即为T₂代植株，T₂代植株自交，得到T₃代种子。

13、将T₃代种子培育为植株，即为T₃代植株。

对于某一T₁代植株来说，如果满足如下两个条件，该T₁代植株即为单拷贝插入的转基因植株：①该T₁代植株具有潮霉素抗性；②该T₁代植株自交得到的T₂代植株中，潮霉素抗性植株与非潮霉素抗性植株的数量比基本符合3:1。

对于某一T₂代植株来说，如果满足如下三个条件，该T₂代植株及其自交后代为一个纯合的转基因株系：①该T₂代植株具有潮霉素抗性；②其T₁代植株为单拷贝插入的转基因植株；③其抽样检测的T₃代植株均具有潮霉素抗性。

三、PCR鉴定

随机从步骤三得到的纯合的转基因株系中取2个株系，OE1株系和OE2株系，对T₃代植株进行鉴定。将水稻02428作为转基因株系的野生型对照。

提取植株幼穗（抽穗前1周）中的总RNA，反转录为cDNA,将cDNA作为模板，通过定量PCR鉴定OsSGD1基因的表达水平。

PCR鉴定OsSGD1基因的引物如下：

F2：5'- ATGTCGACGGCCGCCAAGGAG-3'；

R2：5'- CCACTGAGGAGCGCTCCAAAC-3'。

将水稻02428植株幼穗中OsSGD1基因的表达水平作为1，计算转基因株系的植株幼穗中OsSGD1基因的相对表达水平。结果见图2。

实施例2 转基因植株中相关基因表达情况的检测

供试植株：OE1株系的T₃代植株、OE2株系的T₃代植株和水稻02428植株（WT）。

提取供试幼穗（抽穗前1周）的总RNA，反转录为cDNA,将cDNA作为模板，通过定量PCR鉴定各个相关基因的表达水平。将水稻02428幼穗中基因的表达水平作为1,计算转基因株系的幼穗中该基因的相对表达水平。

用于鉴定MYC2基因的引物如下：

上游引物：5'- CGGCGCCACCACCGTCCAGGA-3'；

下游引物：5'- GCCATTAGCATGGTGATGATGA-3'；

用于鉴定PR1基因的引物如下：

上游引物：5'-GCGCTGCAGGAGGACTACGTA-3'；

下游引物：5'-CCCTCCGGCACAAGTATACA-3'。

用于鉴定OsPR4基因的引物如下：

上游引物：5'-CTTCAAGAAGATCGACACAGA-3'；

下游引物：5'-CAGAGTGCCAACCTCTTCCA-3

用于鉴定Chitinase的引物如下：

上游引物：5'-TTGGCGGCGGTGCAGTGAACA-3'；

下游引物：5'-CATGCATATATATCGGTTTCA-3'。

将水稻02428植株中的基因表达水平作为1，计算转基因株系中基因的相对表达水平。结果见图4。转基因植株幼穗中的各个细胞壁合成相关基因的相对表达量均高于水稻02428植株中的表达量，表明过表达OsSGD1基因可以显著提高PR1等水稻抗病相关基因表达。上述结果显示OsSGD1基因对水稻抗病相关基因的表达有重要的影响，过表达OsSGD1基因可以通过增加水稻细胞壁合成及抗病相关基因的表达，进而提高对水稻纹枯病的抗性。

实施例3 转基因植株水稻纹枯病抗性分析

供试植株：水稻02428植株(WT)、OE1株系的T₃代植株和OE2株系的T₃代植株。供试植株种植于试验场田间，按生产规范要求种植。

图3A是不同材料水稻纹枯病抗性的照片。图3B是不同材料水稻纹枯病抗性的统计分析。与水稻02428相比，转基因植株的发病程度均小于野生型对照，转基因植株发病的严重性也显著低于对照野生型，表明过表达OsSGD1基因对提高水稻纹枯病抗病性有重要作用。OsSGD1基因可以通过增加水稻抗病相关基因表达，提高水稻纹枯病抗性。

以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式，其描述较为具体和详细，但并不能因此而理解为对发明专利范围的限制。应当指出的是，对于本领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明构思的前提下，还可以做出若干变形和改进，这些都属于本发明的保护范围。因此，本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。

序列表

<110> 中国农业科学院生物技术研究所

保定学院

<120> OsSGD1蛋白在提高水稻纹枯病抗病性中的应用

<160> 2

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 808

<212> PRT

<213> 水稻(Oryza sativa L.)

<400> 1

Met Ser Thr Ala Ala Lys Glu Glu Ala Ala Ala Ser Ala Pro Ala Pro

1 5 10 15

Ala Met Gly Gly Glu Glu Ala Ala Ala Arg Ala Ala Gln Lys Arg Tyr

20 25 30

Glu Gly Leu Leu Thr Val Arg Ala Lys Ala Val Lys Gly Lys Gly Ala

35 40 45

Trp Tyr Trp Ala His Leu Glu Pro Val Leu Ile Pro Ala Ala Asp Thr

50 55 60

Gly Met Pro Pro Lys Ala Val Lys Leu Arg Cys Gly Leu Cys Ser Ala

65 70 75 80

Val Phe Ser Ala Ser Asn Pro Ser Arg Thr Ala Ser Glu His Leu Lys

85 90 95

Arg Gly Thr Cys Pro Asn Phe Ser Ala Pro Pro Pro Gly Ala Ala Ala

100 105 110

Ala Ser Gly Ser Ser Gly Ser Gln His Gln Gln Gln Thr Pro Gln Ala

115 120 125

Ala Leu Gln Ala Leu Pro Pro Pro Asn Ser Thr Ala Ser Ser Pro Ile

130 135 140

Pro Ile Ser Ser Ile Ala Pro Ser Ser Pro Arg His Pro His His His

145 150 155 160

Ser Gln Pro Gln Gln Pro Gln Ser His His His His His His His Ser

165 170 175

Gly Ser Arg Lys Arg His Ser Met Pro Pro Ala Tyr Thr Ala Ala Glu

180 185 190

Pro Val Ser His His His His Leu Val Val Val Asp Pro Ser Thr Val

195 200 205

Tyr Ser Pro Pro Leu Pro Ala Leu Pro Pro Pro Pro Pro Gln Gln Pro

210 215 220

Gln Ser Ala Leu Val Leu Ser Gly Gly Lys Glu Asp Leu Gly Ala Leu

225 230 235 240

Ala Met Leu Glu Asp Ser Val Lys Arg Leu Lys Ser Pro Lys Ala Ser

245 250 255

Pro Gly Ala Met Leu Pro Lys Pro Gln Ala Asp Ala Ala Leu Ala Leu

260 265 270

Leu Ala Glu Trp Phe Leu Glu Ser Ser Gly Gly Val Ser Leu Ser Ala

275 280 285

Val Ala Asn Pro Lys Leu Arg Ser Phe Leu Arg His Val Gly Leu Pro

290 295 300

Glu Leu Gln Arg Thr Asp Leu Ala Gly Ala Arg Leu Asp Ala Arg Phe

305 310 315 320

Ala Glu Ala Arg Ala Asp Ala Thr Ala Arg Val Arg Asp Ala Leu Phe

325 330 335

Phe Gln Leu Ala Ala Asp Gly Trp Arg Glu Gln Val Val Thr Leu Cys

340 345 350

Val Asn Leu Pro Asn Gly Thr Ser Val Phe His Arg Gly Val Pro Val

355 360 365

Pro Ala Pro Ala Pro Ser Asp Tyr Ala Glu Glu Val Leu Leu Asp Ala

370 375 380

Val Ala Ser Val Ser Ala Ser Gly Ser Ser Asn Asp Leu His His Cys

385 390 395 400

Ala Gly Ile Val Ala Asp Arg Phe Lys Ser Lys Ala Leu Arg Asp Leu

405 410 415

Glu Asn Lys His His Trp Met Val Asn Leu Ser Cys Gln Ile His Gly

420 425 430

Phe Thr Arg Leu Val Arg Asp Phe Ala Arg Glu Leu Pro Leu Phe Arg

435 440 445

Ser Ala Ala Ala Lys Ser Ala Lys Leu Ala Ala Tyr Phe Asn Ala Lys

450 455 460

Pro Thr Val Arg Ser Leu Leu His Lys His Gln Ile Gln Glu Leu Gly

465 470 475 480

His Ala Ser Leu Leu Arg Val Ala His Val Pro Phe Asn Ser Ser Gly

485 490 495

Ser Asp Tyr Arg Ala Ala Phe Glu Met Leu Glu Asp Val Leu Thr Ser

500 505 510

Ala Arg Pro Leu Gln Leu Ala Val Leu Glu Glu Ser Tyr Lys Leu Val

515 520 525

Cys Ile Asp Asp Ser Ala Ala Arg Glu Met Ala Asp Met Leu Gln Asp

530 535 540

Gly Ser Phe Trp Ser Glu Val Glu Ala Val His Leu Leu Val Lys Leu

545 550 555 560

Ile Met Asp Met Val Lys Glu Met Glu Thr Asp Arg Pro Leu Val Gly

565 570 575

Gln Cys Leu Pro Leu Trp Glu Asp Leu Arg Gly Lys Val Arg Asp Trp

580 585 590

Cys Asp Lys Phe Asn Thr Asp Glu Gly Ala Ala Leu Asn Val Val Glu

595 600 605

Lys Arg Phe Arg Lys Asn Tyr His Pro Ala Trp Ser Ala Ala Phe Ile

610 615 620

Leu Asp Pro Leu Tyr Leu Ile Lys Asp Ala Ser Gly Arg Tyr Leu Pro

625 630 635 640

Pro Phe Lys Phe Leu Thr Pro Asp Gln Glu Lys Asp Val Asp Met Leu

645 650 655

Ile Thr Arg Met Val Ser Arg Glu Glu Ala His Ile Ala Val Met Glu

660 665 670

Leu Met Lys Trp Arg Thr Glu Gly Leu Asp Pro Leu Tyr Ala Gln Ala

675 680 685

Val Gln Val Arg Gln Pro Asp Pro Ser Thr Gly Lys Met Lys Val Ala

690 695 700

Asn Lys Gln Ser Ser Arg Leu Val Trp Glu Thr Cys Leu Ser Glu Leu

705 710 715 720

Lys Ser Leu Val Ala Val Arg Leu Ile Phe Leu His Ala Thr Ala Arg

725 730 735

Gly Phe Arg Cys Ser Pro Ser Met Leu Arg Trp Leu Ser Ala Pro Gly

740 745 750

Ser Leu Ala Gly Gly Ile Asp Arg Ala His Arg Leu Val Phe Val Ala

755 760 765

Ala Asn Ser Lys Leu Glu Arg Arg Asp Phe Ser Ser Asp Glu Asp Lys

770 775 780

Asp Ala Glu Leu Leu Thr Glu Gly Asp Asp Asp Val Leu Asn Glu Pro

785 790 795 800

Gly Ser Leu Glu Arg Ser Ser Val

805

<210> 2

<211> 2427

<212> DNA

<213> 水稻(Oryza sativa L.)

<400> 2

atgtcgacgg ccgccaagga ggaggcggca gcgtcggctc cggcgccggc aatgggcggc 60

gaggaggcgg cggcgcgggc ggcgcagaag cggtacgagg ggctcctcac ggtgcgggcc 120

aaggcggtca agggcaaggg cgcctggtac tgggcgcacc tggagccggt gctcatcccc 180

gccgccgaca ccgggatgcc gcccaaggcc gtcaagctgc gctgcggcct ctgctccgcc 240

gtcttctccg cctccaaccc atcgcgcacg gcttcggagc acctcaagcg gggcacctgc 300

cccaacttct ccgcgccacc gccgggcgcc gccgcggcat ccggttcgtc cggttcgcag 360

catcagcagc agacgccaca ggcggcgctg caggcgttgc cgccgcccaa ctcgacggca 420

tcgtccccta tcccaatctc gtccattgcg ccctcgtcgc cgcgccaccc gcaccaccac 480

tcgcagcccc aacagccgca gtcgcatcac caccatcacc atcactccgg cagccggaag 540

cgccactcga tgcctccggc gtacacggcc gcggagcccg tgtcccacca ccaccatctc 600

gtcgtcgtcg acccgtcgac ggtttactcc cctccgctgc ccgccctgcc gccgccacca 660

ccgcaacaac cgcagtcggc gctcgtgctc tccggcggca aggaggatct cggcgcgttg 720

gccatgctgg aggacagcgt gaagcggctc aagtcgccca aggcgtcgcc gggggcgatg 780

ctgccgaagc cgcaggccga cgcggcgctc gccctgctcg ccgaatggtt tctcgagtcg 840

tcgggcggcg tgtcgctgtc ggccgtggcg aacccgaaac tccggtcctt cctccgccac 900

gtcggcctgc cggagctgca gcggacagac ctggcggggg ctcggctgga tgcgcggttc 960

gccgaggccc gcgccgacgc caccgcgcgc gtccgcgacg cgctcttttt ccagctcgcg 1020

gcggacgggt ggcgggagca ggtggtaact ctgtgtgtca acctcccaaa tggaacatcc 1080

gtgttccacc gcggcgtgcc ggtccccgcc ccggcgccct cggactacgc cgaggaggtg 1140

ttgctggacg cggtggcgtc cgtgtccgcg tctggctcct ccaacgacct gcaccattgc 1200

gcgggcatcg tggctgaccg cttcaagtca aaggcccttc gtgatctgga gaacaagcac 1260

cattggatgg tgaacctgtc ctgccaaatc catggcttca cccggctggt tcgggacttc 1320

gcgcgggagc tccctctgtt ccgctccgct gcggctaaat ccgccaagct ggccgcctac 1380

ttcaatgcca agccgacggt gcggtccctg ctgcacaagc accaaatcca ggagctcggg 1440

catgcgtcgc ttctccgtgt ggcgcatgtg ccattcaata gcagcggcag cgactaccgt 1500

gcggccttcg agatgctgga ggacgtgttg acctctgctc gcccgctcca gctcgccgtc 1560

ttggaagagt cctataagct ggtctgcatc gacgattcgg ccgccaggga gatggcggac 1620

atgttgcagg atgggtcatt ctggagtgag gttgaggccg tgcatctgct cgtgaagctg 1680

atcatggaca tggtgaaaga gatggagact gacaggcctc tggttggcca atgcctgcct 1740

ctctgggagg acctacgtgg caaggttagg gattggtgcg ataaattcaa cactgatgag 1800

ggcgctgccc tgaatgtggt ggagaaaagg ttcaggaaga actaccatcc agcctggtca 1860

gcggctttca tattggatcc tctctaccta atcaaggatg ccagtgggcg ctacctcccg 1920

cccttcaagt tcttgactcc tgatcaagag aaggatgtgg acatgctcat caccaggatg 1980

gtgtcgcggg aggaggcgca cattgcggtc atggagctca tgaaatggcg gacggaaggg 2040

ctggacccgt tgtatgcgca ggcggtgcag gtccggcagc ctgacccgtc caccgggaag 2100

atgaaggtcg caaacaagca gagcagccgc cttgtctggg agacgtgcct gagcgagctc 2160

aagtccctcg tggctgtacg gctcatcttc ctccatgcca ctgctagggg gttcaggtgc 2220

tcaccctcca tgctgcgttg gctctctgct cctggcagtt tagccggtgg cattgatcgt 2280

gcgcaccggc tagtgttcgt tgctgcaaat tccaagctag agaggaggga tttctcaagt 2340

gatgaagaca aggatgctga gttactcact gaaggggacg atgatgtgct aaacgagcct 2400

ggcagtttgg agcgctcctc agtgtaa 2427

Claims

1.OsSGD1蛋白在提高植物纹枯病抗病性中的应用，其特征在于，所述OsSGD1蛋白的氨基酸序列如序列表中SEQ ID NO：1所示。

2.根据权利要求1所述OsSGD1蛋白在提高植物纹枯病抗病性中的应用，其特征在于，所述植物为禾本科植物水稻、小麦、燕麦或甘蔗。

3.一种制备转基因植物的方法，其特征在于，包括如下步骤：在出发植物中导入OsSGD1基因，得到与所述出发植物相比增加了纹枯病抗性的转基因植物；所述OsSGD1基因为编码权利要求1中所述OsSGD1蛋白的基因。

4.一种植物育种的方法，其特征在于，包括如下步骤：提高目的植物中权利要求1所述OsSGD1蛋白的活性和/或含量，从而提高植物纹枯病的抗病性。