CN113666974A - 一种靛苷的制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种靛苷的制备方法,包括以下步骤:将蓝草叶片在‑15℃~0℃的有机溶剂中浸泡10~30min;②将水加热至80℃~100℃,将步骤①浸泡后的蓝草叶片加入热水中浸取10~30min,去除叶片,得浸取液;③向步骤②得到的浸取液中投加新鲜的有机溶剂低温浸泡处理的蓝草叶片,在80℃~100℃下浸取10~30min,得靛苷浓度更高的浸取液;④重复步骤③的操作2~5次,得到高浓度的靛苷浸取液;⑤提纯得到靛苷纯品。本申请设置的提取条件,能够从含靛苷的植物中提取到以靛苷为主体的生物活性物质,产率高,本发明方法可推广至其它含靛苷中草药中活性成分靛苷的提取,有利于提高相关中药资源的利用。
Description
技术领域
本发明涉及植物中活性物质的提取方法,具体涉及一种靛苷的制备方法。
背景技术
靛苷(indoxyl-β-D-glucoside,又称吲哚苷) 存在于菘蓝、木蓝、马蓝等叶子中,由吲哚和葡萄糖组成,是一种可溶于水的无色透明化合物,结构式如下:
当菘蓝、木蓝、马蓝等植物的叶片受到破坏时,靛苷从细胞液泡中释放出来,经酶解反应水解成吲哚和葡萄糖;吲哚继而生成吲哚酚,吲哚酚在空气中发生自我氧化反应产生靛蓝,同时在碱性条件下吲哚酚会发生缩合发应形成靛蓝。因此靛苷是靛蓝生产的前体物质。此外靛苷对病毒、病原菌也有很强的抑制作用,是板蓝根等中药的重要成分。但是以目前板蓝根的萃取方法及条件,从板蓝根中提取的主要成分为靛蓝及靛玉红,靛苷并不是板蓝根相关药品的主要成分。
中国专利文献CN 101701028B(申请号 200910113500.5)公开了一种吲哚苷的制备方法,按下列步骤进行:a、将大青叶加8倍量的水提取3次,每次0.5小时,合并提取液,静置过夜,取上清液;b、加水稀释,用中空纤维膜在压力0.1MPa、室温进行超滤,重复3 次,合并超滤液,再用纳滤膜浓缩;c、将浓缩液用旋转蒸发器在70℃继续浓缩,加入大孔树脂中用水和乙醇进行梯度洗脱,收集乙醇洗脱液,回收乙醇浓缩至流浸膏,用50毫升蒸馏水稀释后以等量的乙醚萃取3次,分离出水层;所述的梯度洗脱为先用 水洗脱,然后再用浓度为20%的乙醇洗脱;所述的大孔树脂为AB-8、X-5、 DM301、DM130型的大孔树脂;d、加2倍的乙酸乙酯热回流5-6小时,收集乙酸乙酯层,减压浓缩至 十分之一体积,室温下静置析晶,滤过,得到吲哚苷粗品;e、加热水溶解,趁热滤过,放冷析晶,反复5次,即可得到吲哚苷晶品,为灰白色无定型结晶粉末。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是提供一种提取成本低、产率高的靛苷的制备方法。
实现本发明目的的技术方案是一种靛苷的制备方法,包括以下步骤:
①将含有靛苷的蓝草叶片在-15℃~0℃的有机溶剂中浸泡10~30min,然后取出。
②将水加热至80℃~100℃,将步骤①浸泡后的蓝草叶片加入热水中,在80℃~100℃下浸取10~30min,浸取结束后固液分离去除叶片,得浸取液。
③向步骤②得到的浸取液中投加新鲜的有机溶剂低温浸泡处理的蓝草叶片,在80℃~100℃下浸取10~30min,浸取结束后固液分离去除叶片,得靛苷浓度更高的浸取液。
④重复步骤③的操作2~5次,得到高浓度的靛苷浸取液。
⑤将步骤④得到的靛苷浸取液提纯得到靛苷纯品。
所述有机溶剂为甲醇、乙醇或丙酮。
所述含有靛苷的蓝草叶片为蓼蓝、菘蓝、木蓝或马蓝。
进一步的,步骤②中将水加热至90℃~100℃,步骤②、③、④中在90℃~100℃下浸取靛苷。
步骤②、③、④中,投加蓝草叶片时,每1L水中加入蓝草叶片10g~50g。
步骤⑤中,向步骤④得到的高浓度的靛苷浸取液中添加大孔树脂,然后收集吸附好的大孔树脂,分别用10%,30%,50%,75%的乙醇依次洗脱,收集洗脱液,将乙醇旋干后冷冻干燥,得到靛苷粉末。
本发明具有积极的效果:
(1)本申请设置的提取条件,能够从含靛苷的植物中提取到以靛苷为主体的生物活性物质,本发明方法可推广至其它含靛苷的中草药中活性成分靛苷的提取,有利于提高相关中药资源的利用。
(2)在本发明的研发过程中,研究、发现、提出利用靛苷与葡萄糖苷酶的热稳定性的差异,先钝化酶活再将水温提前控制在80℃以上然后添加钝化处理后的蓝草叶片,成功采用水煮叶片的方式将靛苷从蓝草叶片中提取出来,在提取靛苷的同时有效抑制、破坏葡萄糖苷酶的活性,减少或避免副产物如吲哚酚的生成。
(3)为了避免添加叶片后水温剧烈变化导致副产物的大量生成,本发明用预冷的有机溶剂钝化酶活,在水温提前控制在80℃后少量添加蓝草叶片提取靛苷并固液分离,重复少量添加叶片提取并固液分离的步骤,最终得到含有高浓度靛苷的液体。
(4)本发明的制备方法步骤简单,对设备要求低,大大降低了靛苷的提取成本;最终提取得到的靛苷的产率达1.2% (g/g 叶湿重)以上。
附图说明
图1为实施例1制备的靛苷的HPLC图谱。
图2为实施例2制备的靛苷的HPLC图谱。
图3为靛苷标准品的HPLC图谱。
图4为靛苷的标准曲线。
图5为乙醇钝化酶活实验。
图6为乙醇钝化后糖苷提取实验。
具体实施方式
(实施例1)
本实施例的靛苷的制备方法包括以下步骤:
①将有机溶剂冷却至-15℃,将蓝草叶片浸没在有机溶剂中,浸泡30min后取出蓝草叶片待处理。
所述有机溶剂是能够与水互溶的有机溶剂,例如甲醇、乙醇、丙酮等,本实施例中为乙醇。
②将水加热至80℃~100℃(本实施例中将水加热至80℃),将步骤①浸泡后的蓝草叶片加入热水中,每1L水中加入蓝草叶片10g~50g(以新鲜蓝草叶片重量计算,本实施例中为50g);
在80℃下浸取10~30min(本实施例中浸取30min)。浸取结束后固液分离去除叶片,得浸取液。
所述蓝草叶片是含有靛苷的叶片,如蓼蓝、菘蓝、木蓝和马蓝等,本实施例中所述的蓝草叶片是蓼蓝。
③向步骤②得到的浸取液中投加新鲜的有机溶剂低温浸泡处理的蓼蓝叶片,投加量同步骤②;在80℃下浸取10~30min(本实施例中浸取30min)。浸取结束后固液分离去除叶片,得靛苷浓度更高的浸取液。
④重复步骤③的操作2~5次(本实施例中重复4次),得到高浓度的靛苷浸取液,待提纯处理。
⑤将步骤④得到的靛苷浸取液,按1:10,1:5,1:3的比例添加预处理好的大孔树脂;例如对于50mL高浓度的靛苷浸取液,按1:10,1:5,1:3的比例添加预处理好的大孔树脂5、10、15g(湿重)。收集吸附好的大孔树脂,分别用10%,30%,50%,75%的乙醇依次洗脱,收集洗脱液,将乙醇旋干后冷冻干燥,得到靛苷粉末。
将本实施例得到的靛苷粉末进行HPLC检测,HPLC图谱见图1, 本实施例靛苷产率为1.28 % (g/g 叶湿重)。
(实施例2)
本实施例的靛苷的制备方法其余与实施例1相同,不同之处在于:
步骤①中使用的有机溶剂是甲醇,冷却至-10℃,将蓝草叶片浸没在有机溶剂中,浸泡15min。
步骤②中将水加热至90℃。
步骤②中,向90℃水中投加蓝草叶片菘蓝,每1L水中加入蓝草叶片40g;蓝草叶片在90℃下浸取15min。
步骤③中,向步骤②得到的浸取液中投加新鲜的有机溶剂低温浸泡处理的菘蓝叶片,每1L水中加入蓝草叶片40g;在90℃下浸取15min。
步骤④中,重复步骤③的操作2次,得到高浓度的靛苷浸取液,待提纯处理。
将本实施例得到的靛苷粉末进行HPLC检测,HPLC图谱见图2, 本实施例靛苷产率为1.40 % (g/g 叶湿重)。
(试验例1、靛苷标准品的分析)
HPLC检测条件:C18柱,采用A相:水,B相:乙腈梯度洗脱;检测波长240 nm , 柱温30 ℃ , 进样量10uL。洗脱条件:80%A-20%B 0-15min 1mL/min。
在上述检测条件下,靛苷标准品的HPLC图谱见图3,由图3可见,靛苷标准品在4.7min处有特征峰。
另外,靛苷标准曲线见图4,在靛苷浓度为0.02g/L至0.1g/L的范围内有非常好的线性关系,R2=0.9984,说明在该条件下分析靛苷具有准确性。
(试验例2、热稳定性试验)
一、蓝草叶片中的葡萄糖苷酶的热稳定性试验
实验方法:取1g蓼蓝叶片,加入放有10 mL 预冷磷酸盐缓冲液(50 mM, pH 7.8)、1% (w/w)聚乙烯吡咯烷酮溶液20mL和少量石英砂的研钵中,冰浴条件下进行研磨。待研磨均匀后在8000rpm下离心10min,得到的上层酶液待测。分别在常温(23℃)、45℃、60℃、80℃条件下测定酶活标曲,同时测定上清液的酶活。
分析方法:向0.2 mL pH 5、0.5 M的醋酸缓冲液加入0.65 mL 水和0.05 mL待测酶液,在45 ℃下预热5 min,加入0.1 mL 10 mmol/L的pNPG-Glu溶液,在45 ℃下反应10 min,加入500 μL 、1 mol/L的 Na2CO3 终止反应。每分钟产生1 μmol 对硝基苯酚定义为一个酶活力单位,即1 U。
对硝基苯酚标准曲线的制作:
配制2 mM的对硝基苯酚溶液,分别取0、0.1、0.2、0.3、0.4和0.5 mL加入6个试管中,补加水至0.7 mL,加入0.2 mL pH 5、0.5 M的醋酸缓冲液,加入0.1 mL 10 mmol/L的pNPG-Glu溶液,最后加入500 μL 1 mol/L的 Na2CO3,在420 nm处测定其吸光度值。
酶活的定义:单位时间单位体积内产生1 μmol的对硝基苯酚所需酶量为一个酶活力。
N表示稀释倍数,V表示样品体积(mL),t表示反应时间(min)。
实验结果见下表:
在室温条件下(23 ℃),葡萄糖苷酶活为650.3U;当温度上升到45℃时,酶活也随之上升到1024.5U。但是,随着温度的进一步上升,酶活呈下降趋势。在80℃时,酶活下降到76.1U。这个结果说明酶活最适温度在45℃左右,温度过高会破坏酶的活性,超过80℃基本失活。
二、靛苷的热稳定性试验
实验方法:取靛苷标准品溶于10mL UP水(超纯水)中配制成浓度为0.1g/L的靛苷溶液,取1mL待测。剩余溶液置于100℃的沸水中10min,取出后置于冰浴中迅速冷却,补足液体总体积为9mL,取1mL样品待测。
分析方法:C18柱,采用A相:水,B相:乙腈梯度洗脱;检测波长240 nm , 柱温30 ℃, 进样量10uL。洗脱条件:80%A-20%B 0-15min 1mL/min。
实验结果:
未水煮的靛苷溶液浓度为0.1g/L。
水煮10分钟后,靛苷的浓度为0.1g/L,含量没有变化,说明靛苷在100℃的条件下具有很好的稳定性。
(实施例5、酶活钝化实验)
实验方法:取新鲜蓼蓝叶片1 g,在 100 mL、-15℃、pH=2的60%乙醇溶液中浸泡30min,取出后将叶片置于研钵中的冰上,加入1 g PVP粉末,一定量pH=5的0.5 M醋酸缓冲液,在研钵中研磨至匀浆后取出,定容至20 mL;将混合液于4℃、8000 rpm条件下离心20min,离心分离后取上清得到粗酶液。
取试管加入0.2 mL pH=5的0.5 M醋酸缓冲液,0.65 mL水以及0.05 mL待测酶液,在25℃下预热5 min,加入0.1 mol/L的pNPG-Glu溶液,在25℃下反应10 min,加入0.5 ml的1 mol/L的Na2CO3溶液终止反应,于420 nm处测定吸光值,计算得出β-葡萄糖苷酶酶活。
另取新鲜叶片1g,不进行低温乙醇预冷处理,直接进行同样操作测定酶活作为对照,比较两者酶活差异。
分析方法:向0.2 mL pH=5的0.5 M的醋酸缓冲液加入0.65 mL 水和0.05 mL待测酶液,在45 ℃下预热5 min,加入0.1 mL 10 mmol/L的pNPG-Glu溶液,在45 ℃下反应10min,加入500 μL 、1 mol/L的 Na2CO3 终止反应。每分钟产生1 μmol 对硝基苯酚定义为一个酶活力单位,即1 U。
实验结果:如图5所示,未经处理的叶片的酶活超过了600U/g。而经过乙醇预冷处理的叶片的酶活下降至30U/g一下。说明乙醇预冷能够有效钝化酶活。
(实施例6、乙醇钝化后糖苷提取实验)
实验方法:取新鲜叶片5 g*2,在100 mL、-15℃、pH=2的60 %乙醇溶液中浸泡30min,将两组叶片分别加入沸水中预热5 min的100 mL水与60%乙醇溶液中,水煮10 min后冷却,测定上清糖苷、吲哚酚含量。
另取新鲜叶5 g,加入沸水中预热5 min的100 mL水中,水煮10 min后冷却,测定上清糖苷、吲哚酚含量。
分析方法:C18柱,采用A相:水,B相:乙腈梯度洗脱;检测波长240 nm , 柱温30 ℃, 进样量10uL。洗脱条件:80%A-20%B 0-15min 1mL/min。
实验结果:如图6所示,对照组在水煮过程就已产生了一定量的吲哚酚。这是叶片升温过程中β葡萄糖苷酶失活较慢照成的。而经过乙醇预冷处理后不论是利用水或者乙醇提取靛苷,吲哚酚的产率都非常低,从而靛苷的产率得到了很大提升,证明了酶活的钝化效果。
Claims (6)
1.一种靛苷的制备方法,其特征在于包括以下步骤:
①将含有靛苷的蓝草叶片在-15℃~0℃的有机溶剂中浸泡10~30min,然后取出;
②将水加热至80℃~100℃,将步骤①浸泡后的蓝草叶片加入热水中,在80℃~100℃下浸取10~30min,浸取结束后固液分离去除叶片,得浸取液;
③向步骤②得到的浸取液中投加新鲜的有机溶剂低温浸泡处理的蓝草叶片,在80℃~100℃下浸取10~30min,浸取结束后固液分离去除叶片,得靛苷浓度更高的浸取液;
④重复步骤③的操作2~5次,得到高浓度的靛苷浸取液;
⑤将步骤④得到的靛苷浸取液提纯得到靛苷纯品。
2.权利要求1所述的靛苷的制备方法,其特征在于:所述有机溶剂为甲醇、乙醇或丙酮。
3.根据权利要求1所述的靛苷的制备方法,其特征在于:所述含有靛苷的蓝草叶片为蓼蓝、菘蓝、木蓝或马蓝。
4.根据权利要求1所述的靛苷的制备方法,其特征在于:步骤②中将水加热至90℃~100℃,步骤②、③、④中在90℃~100℃下浸取靛苷。
5.根据权利要求1所述的靛苷的制备方法,其特征在于:步骤②、③、④中,投加蓝草叶片时,每1L水中加入蓝草叶片10g~50g。
6.根据权利要求1所述的靛苷的制备方法,其特征在于:步骤⑤中,向步骤④得到的高浓度的靛苷浸取液中添加大孔树脂,然后收集吸附好的大孔树脂,分别用10%,30%,50%,75%的乙醇依次洗脱,收集洗脱液,将乙醇旋干后冷冻干燥,得到靛苷粉末。
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