CN113425907A - 一种心包膜材料及其制备方法和用途 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及生物材料领域,具体涉及一种取自基因编辑动物的心包膜材料,进一步进行优化的脱细胞处理技术和交联技术处理,由此制备的心包膜材料及其用途。本发明提供的心包膜材料免疫原性低,且生物相容性好,可用于临床瓣膜、补片等领域。
Description
技术领域
本发明涉及生物材料领域,特别涉及一种心包膜材料及其制备方法和用途。
背景技术
心包膜材料已广泛用于临床瓣膜、补片等。面对异种心包膜材料存在的免疫原性问题,一般通过去除各种组织器官中的异种细胞或戊二醛交联等方法降低其免疫原性。常规高浓度试剂或一次性处理方式,比如,仅从脱细胞程度上说,均可制备出脱细胞程度较高的产品,但不可避免的导致细胞外基质成分的丢失,尤其是可溶性的蛋白多糖和糖蛋白成分,从临床应用效果来看,处理后心包膜材料的力学强度或生物学活性等仍不令人满意。比如,目前临床上生物瓣膜来自戊二醛固定的非基因编辑普通猪或者牛组织的心脏瓣膜。虽然成功应用于临床,但是存在一些不足之处影响瓣膜功能。现有瓣膜材料的钙化导致结构性瓣膜退化,引起瓣膜狭窄和关闭不全,使发病率和死亡率上升,极大地影响瓣膜正常工作。现有报道的解决钙化方法主要思路包括戊二醛残留醛基消除,提高材料稳定性等方法,提高材料抗钙化效率有限。瓣膜的衰败损毁,使用寿命不长,需要再次进行瓣膜置换术,给患者和国家带来沉重经济负担,这成为业界亟待解决的重大难题。为了提高心包膜材料性能,满足临床治疗效果,需要进一步优化降低生物材料免疫原性的技术方案。
发明内容
有鉴于此,本发明提供一种心包膜材料及其制备方法和用途。利用本发明加工制备的心包膜材料,不含活细胞,通过基因编辑技术从原材料源头降低其免疫原性,使用优化的脱细胞处理技术和交联技术进一步降低其免疫原性。本发明提供的心包膜材料免疫原性低,且生物相容性好,可用于临床瓣膜、补片等领域,在使用过程中可以结合活性分子和/或活细胞。
为了实现上述发明目的,本发明提供以下技术方案:
本发明提供了一种心包膜材料的制备方法,包括如下步骤:
步骤1、繁育基因编辑动物;
步骤2、采集步骤1所述动物的心包膜作为原料;
步骤3、取步骤2制得的所述原料脱细胞;
步骤4、取步骤3制得的材料交联化;
其中,步骤3具体为:
超声波清洗,20~100KHz处理30min~6h,功率500W~5KW,温度为0~40℃;
浸没于0.001~5wt.%SDS溶液中1~24h,振荡频率为100~1000rpm,温度为0~40℃;
超声波清洗,40~80KHz处理3~6h,功率1~5KW,温度为20~40℃;
浸没于0.001~1wt.%SDS溶液中3~6h,振荡频率为100~500rpm,温度为20~40℃;
超声波清洗,60~100KHz处理3~6h,功率1~5KW,温度为20~40℃。
步骤4具体为:
浸没于0.00001~5wt.%京尼平溶液中0.5~12h,浸没温度为0~40℃,重复浸没1~10次;
浸没于0.001~1wt.%戊二醛溶液中0.5~24h,浸没温度为25~40℃,重复浸没1~5次;
浸没于0.005~5wt.%原花青素溶液中0.5~12h,浸没温度为25~40℃,重复浸没1~5次。
在本发明的一些具体实施方案中,步骤3具体为:
超声波清洗,100KHz处理6h,功率5KW,温度为30℃;
浸没于0.001wt.%SDS溶液中24h,振荡频率为1000rpm,温度为30℃;
超声波清洗,40KHz处理3,功率1KW,温度为20℃;
浸没于1wt.%SDS溶液中3,振荡频率为100rpm,温度为20℃;
超声波清洗,80KHz处理3h,功率5KW,温度为40℃;
步骤4具体为:
浸没于0.01wt.%京尼平溶液中12h,浸没温度为30℃,重复浸没3次;
浸没于0.001wt.%戊二醛溶液中24h,浸没温度为25℃,重复浸没2次;
浸没于0.005wt.%原花青素溶液中2h,浸没温度为37℃,重复浸没5次。
本发明的一些具体实施方案中,步骤3具体为:
超声波清洗,20KHz处理4h,功率1KW,温度为20℃;
浸没于5wt.%SDS溶液中6h,振荡频率为300rpm,温度为20℃;
超声波清洗,80KHz处理3h,功率5KW,温度为40℃;
浸没于1wt.%SDS溶液中2h,振荡频率为250rpm,温度为30℃;
超声波清洗,100KHz处理3h,功率5KW,温度为20℃。
步骤4具体为:
浸没于0.00001wt.%京尼平溶液中10h,浸没温度为30℃,重复浸没10次;
浸没于1wt.%戊二醛溶液中2h,浸没温度为25℃,重复浸没5次;
浸没于0.2wt.%原花青素溶液中4h,浸没温度为30℃,重复浸没2次。
本发明的一些具体实施方案中,步骤3具体为:
超声波清洗,60KHz处理5h,功率3KW,温度为30℃;
浸没于0.01wt.%SDS溶液中10h,振荡频率为400rpm,温度为28℃;
超声波清洗,50KHz处理4.5h,功率3KW,温度为37℃;
浸没于0.5wt.%SDS溶液中3.5h,振荡频率为450rpm,温度为25℃;
超声波清洗,70KHz处理5.5h,功率2KW,温度为20℃。
步骤4具体为:
浸没于0.00005wt.%京尼平溶液中8h,浸没温度为35℃,重复浸没4次;
浸没于0.05wt.%戊二醛溶液中3h,浸没温度为30℃,重复浸没2次;
浸没于0.07wt.%原花青素溶液中2h,浸没温度为30℃,重复浸没3次。
在本发明的一些具体实施方案中,所述基因编辑包括巨型核酸酶(Meganuclease)、锌指核酸酶(ZFNs)、转录激活样效应因子核酸酶(TALEN)或成簇规律间隔短回文重复(CRISPR/Cas)系统中的至少一种。
在本发明的一些具体实施方案中,所述基因编辑包括基因敲除和/或基因转入;
所述基因敲除中敲除的基因包括GGTA1、CMAH、β4GalNT2或PERV中的至少一种;
基因转入中转入的基因包括hCD46、hCD55、hCD47、LEA29Y、hTBM、hTFPI或EPCR中的至少一种。
在本发明的一些具体实施方案中,所述动物包括猪、牛、羊、马、猴、狗、兔、鸡、鼠、蚕、鱼、海洋生物、驴中的至少一种;所述动物为基因编辑后稳定传代3代以上的动物。在另一些具体实施方案中,选用基因编辑后稳定传代6代的动物制备心包膜材料。
所述鱼包括淡水鱼类。
所述海洋生物包括海洋动物和海洋植物;所述海洋动物包括海洋哺乳动物、海洋爬行动物、海洋鱼类、海洋节肢动物、藤壶、海洋软体动物、海洋棘皮动物或海洋腔肠动物中的一种或多种。所述海洋哺乳动物包括蓝鲸、抹香鲸、虎鲸、齿鲸、海豚、海豹、海狮、儒艮中的一种或多种。所述海洋爬行动物包括海蛇、海龟中的一种或多种。所述海洋鱼类包括前口蝠鲼、电鳐、刺鳐、星鳐、何氏鳐、中国团扇鳐、瞻星鱼、电鳗、康吉鳗、电鲶、箱鲀、鲂鮄、海马、石首鱼类、象鼻鱼、鲨鱼、蝴蝶鱼、刺盖鱼、甲尻鱼、石斑鱼、粗皮鲷、躄鱼、蝙蝠鱼、小丑鱼、带鱼、龙头鱼、烛光鱼、翻车鱼中的一种或多种。所述海洋节肢动物包括鲎、虾、蟹中的一种或多种。所述海洋软体动物包括石鳖、螠蛏、海兔中的一种或多种。所述海洋棘皮动物包括海星、海胆、海参中的一种或多种。所述海洋腔肠动物包括水母、薮枝螅、海蜇、珊瑚或海葵中的一种或多种。所述海洋植物包括浮游藻和底栖藻;所述底栖藻包括绿藻类、褐藻类和红藻类。
在上述研究的基础上,本发明还提供了所述的方法制得的心包膜材料。
本发明还提供了所述的心包膜材料在制备组织工程材料、再生医学材料、转化医学材料中的应用。具体应用包括但不限于如下:
心脏或组织修补材料,如牛或猪心包生物瓣膜。
在上述研究的基础上,本发明还提供了组合物,包括本发明所述的动物源性心包膜材料以及医学或药学上可接受的活性分子或活细胞,所述活性分子包括生长因子;所述活细胞包括干细胞。
本发明还提供了所述的组合物在组织工程、再生医学、转化医学中的应用。具体应用包括但不限于如下:心脏或组织修补材料,如牛或猪心包生物瓣膜。
本发明提供了一种心包膜材料及其制备方法和用途。(1)“基因编辑技术”,通过基因编辑技术获得低免疫原性动物,采集心包膜原材料,即通过基因编辑技术从材料来源上降低动物源性心包膜材料的免疫原性;(2)“渐次脱细胞技术”,不同于常规方法(如高浓度试剂一次性脱细胞),采用“少量多次”的原则进行脱细胞处理,比如,通过多次循环使用超声、十二烷基硫酸钠(SDS)溶液浸泡等步骤脱除心包膜原材料中的细胞、多糖等活性成分,降低其免疫原性且尽量减少对生物活性的影响;(3)“渐次交联技术”,不同于常规方法(如高浓度交联剂一次性交联),通过低浓度交联剂多次交联进一步封闭其免疫抗原活性位点。利用本发明加工制备的心包膜材料,不含活细胞,通过基因编辑技术从原材料源头降低其免疫原性,使用优化的脱细胞处理技术和交联技术进一步降低其免疫原性。本发明的心包膜材料用于临床瓣膜、补片等使用,在使用过程中可以结合活性分子或活细胞。
本发明制备心包膜材料的方法,涉及基因编辑技术,与常规方法不同(通过物理、化学、生物方法对既有动物组织/器官进行处理),基因编辑技术是对目标基因进行定点“编辑”,实现对特定DNA片段的修饰,从心包膜材料的源头(采集动物)降低其免疫原性。此过程中,根据心包膜材料的特点,经过筛选确定编辑系统、目标基因、动物种类等,其中目标基因范围包括GGTA1、CMAH、β4GalNT2和PERV等敲除基因,以及hCD46、hCD55、hCD47、LEA29Y、hTBM、hTFPI和EPCR等转入基因。以α-Gal为例,当心包膜材料中残留的异种抗原进入人体内时,会引发超急性免疫排斥反应,这种免疫排斥反应的主要靶抗原被认为是由存在于动物组织中的α-Gal抗原引起的,α-Gal抗原存在于除人和高等灵长动物以外的大部分哺乳动物体内;通过基因编辑技术开发α-Gal抗原敲除(GTKO)心包膜材料,可以明显降低其免疫原性。
另一方面,本发明制备心包膜的方法,涉及脱细胞技术和交联技术,与常规方法不同(如高浓度SDS溶液单次脱细胞或高浓度戊二醛单次交联),根据基因编辑技术降低其免疫原性的效果,将优化脱细胞处理和交联处理,比如,低浓度SDS溶液多次脱细胞或低浓度戊二醛多次交联,通过温和的处理方式尽量减小处理过程中对材料生物活性等影响。
因此,本发明提供的心包膜材料及其制备方法和用途具有重要的现实意义。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案,下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍。
图1示实施例1与对比例1的免疫组化检测结果;
图2示实施例1与对比例1的组织相容性测试结果;
图3示实施例2与对比例2的免疫组化检测结果;
图4示实施例2与对比例2的组织相容性测试结果;
图5示实施例3与对比例3的免疫组化检测结果;
图6示实施例3与对比例3的组织相容性测试结果。
具体实施方式
本发明公开了一种心包膜材料及其制备方法和用途,本领域技术人员可以借鉴本文内容,适当改进工艺参数实现。特别需要指出的是,所有类似的替换和改动对本领域技术人员来说是显而易见的,它们都被视为包括在本发明。本发明的方法及应用已经通过较佳实施例进行了描述,相关人员明显能在不脱离本发明内容、精神和范围内对本文所述的方法和应用进行改动或适当变更与组合,来实现和应用本发明技术。
本发明提供了一种心包膜材料的制备方法,包括如下步骤:
a.繁育基因编辑技术动物;
b.采集基因编辑动物的心包膜作为原材料;
c.将原材料进行多次循环处理,比如,处理方式包括超声、十二烷基硫酸钠(SDS)溶液浸泡;
d.将处理后材料多次浸没于交联剂溶液中。
在一些实施例中,所述基因编辑技术包括巨型核酸酶(Meganuclease)、锌指核酸酶(ZFNs)、转录激活样效应因子核酸酶(TALEN)和成簇规律间隔短回文重复(CRISPR/Cas)系统中的至少一种。
在一些实施例中,所述基因编辑技术包括基因敲除和基因转入两种,其中,敲除的基因包括GGTA1、CMAH、β4GalNT2和PERV中的至少一种,转入的基因包括hCD46、hCD55、hCD47、LEA29Y、hTBM、hTFPI和EPCR中的至少一种。
在一些实施例中,所述动物包括猪、牛、羊、马、猴、狗、兔、鸡、鼠、蚕、鱼、海洋生物、驴中的至少一种;所述的动物为基因编辑后稳定传代3代以上的动物,进一步的,选用基因编辑后稳定传代6代的动物制备心包膜材料。
在一些实施例中,所述超声处理中超声频率为20~100KHz,处理时间为30min~6h,超声功率为500W~5KW,超声温度为0~40℃;所述SDS处理中SDS浓度范围为0.001~5wt.%,振荡频率为100~1000rpm,处理温度为0~40℃,处理时间为1~24h;所述多次循环处理是将上述处理方法进行组合使用,每种处理方法的使用次数为0~10次。
在一些实施例中,所述交联剂包括化学交联剂和生物交联剂中的至少一种;进一步的,化学交联剂包括醛类、亚氨酸酯类、N-羟基琥珀酰亚胺酯类(NHS酯)、马来酰亚胺类、卤乙酰基类、二硫代联吡啶、酰肼类、碳二亚酰胺类中的至少一种;更进一步的,醛类包括戊二醛、多聚甲醛中的至少一种;生物交联剂包括原花青素、京尼平中的至少一种;交联剂浓度范围为0.00001~5wt.%,浸没温度为0~40℃,单次浸没时间为0.5~24h,浸没次数为1~10次。
本发明还提供了所述的方法制备的心包膜材料。
本发明还提供了所述的心包膜材料在制备组织工程材料、再生医学材料、转化医学材料中的应用,在使用过程中可以结合活性分子和/或活细胞,活性分子包括生长因子;活细胞包括干细胞。
本发明提供的心包膜材料及其制备方法和用途中所用试剂均可由市场购得。
下面结合实施例,进一步阐述本发明:
实施例1
一种猪源心包膜材料及其制备方法和在心脏瓣膜中的应用。
制备方法如下:
a.通过CRISPR/Cas9系统基因编辑制备敲除GGTA1的猪,使用稳定传代6代的基因编辑猪;
b.采集基因编辑猪的心包膜作为原材料;
c.将心包膜原材料进行如下处理:
c1.超声波清洗,100KHz处理6h,功率5KW,温度为30℃;
c2.浸没于0.001wt.%SDS溶液中24h,振荡频率为1000rpm,温度为30℃;
c3.超声波清洗,40KHz处理3,功率1KW,温度为20℃;
c4.浸没于1wt.%SDS溶液中3,振荡频率为100rpm,温度为20℃;
c5.超声波清洗,80KHz处理3h,功率5KW,温度为40℃;
d.浸没于0.01wt.%京尼平溶液中12h,浸没温度为30℃,重复浸没3次;
浸没于0.001wt.%戊二醛溶液中24h,浸没温度为25℃,重复浸没2次;
浸没于0.005wt.%原花青素溶液中2h,浸没温度为37℃,重复浸没5次。
通过以上步骤制备的猪源心包膜材料,进一步开发介入式心脏瓣膜产品,用于经导管主动脉瓣置入术(Transcatheter Aortic Valve Implantation,TAVI)。
对比例1
采集普通猪心包膜。脱细胞处理为:浸没于0.5wt.%SDS溶液中48h,振荡频率为100rpm,温度为25℃。交联处理为:浸没于1wt.%戊二醛溶液中6h,浸没温度为25℃。
效果例1免疫原性测试
1.1Gal含量检测:通过人α半乳糖苷酶(αGAL)ELISA试剂盒定量检测样品中Gal含量。
结果如下:
参照行业标准《组织工程医疗器械产品动物源性支架材料残留αGal抗原检测》(YY/T1561-2017)中的方法,按照中检院器械所质量评价室的“动物源医疗器槭中残留α-Gal抗原含量和Gal抗原清除率检测标准操作规范”(NIFDC-SOP-F-T-3001)进行检测,敲除GGTA1的猪(GTKO猪,实施例1用猪)心包膜样品的Gal抗原含量低于最低检测限(湿重),对照组野生猪(对比例1用猪)Gal抗原含量为6.15±0.87×1015个/mg(湿重),最低检测限为0.03125(相对于Gal-BSA)ug/mL(相当于8.25×1011个抗原表位/每个反应)。说明实施例1样品具有更低的免疫原性。
1.2免疫组化检测:在大鼠皮下植入样品,经特定时间后,处死实验大鼠,取出植入材料以及周围皮肤组织,用4wt.%多聚甲醛固定液固定,用CD68单抗做免疫组化染色。
结果如图1所示:
CD68单抗进行免疫组化染色,主要标识由于免疫排斥反应测试样品中出现的巨噬细胞(深棕色)。结果表明,经过1个月大鼠皮下植入,实施例1样品基本没有发现巨噬细胞,而对比例1发现大量巨噬细胞,说明实施例1样品的免疫原性远远低于对比例1。
效果例2生物活性测试
2.1组织相容性检测:将样品植入大鼠肌肉内,经特定时间后,处死实验大鼠,取出植入材料以及周围肌肉组织,用4wt.%多聚甲醛固定液固定,进行HE染色。
结果如图2所示:
HE染色表明,经过1个月大鼠肌肉植入,实施例1样品和周围肌肉组织完全融合,细胞进入样品生长,而对比例1样品和周围肌肉组织有明显界限,说明实施例1样品的生物活性更好。
实施例2
一种牛源心包膜材料及其制备方法和在腹壁疝气修补中的应用。
制备方法如下:
a.通过TALEN系统基因编辑制备敲除GGTA1、CMAH的牛,使用稳定传代4代的基因编辑牛;
b.采集基因编辑牛的心包膜作为原材料;
c.将心包膜原材料进行如下处理:
c1.超声波清洗,20KHz处理4h,功率1KW,温度为20℃;
c2.浸没于5wt.%SDS溶液中6h,振荡频率为300rpm,温度为20℃;
c3.超声波清洗,80KHz处理3h,功率5KW,温度为40℃;
c4.浸没于1wt.%SDS溶液中2h,振荡频率为250rpm,温度为30℃;
c5.超声波清洗,100KHz处理3h,功率5KW,温度为20℃。
d.浸没于0.00001wt.%京尼平溶液中10h,浸没温度为30℃,重复浸没10次;
浸没于1wt.%戊二醛溶液中2h,浸没温度为25℃,重复浸没5次;
浸没于0.2wt.%原花青素溶液中4h,浸没温度为30℃,重复浸没2次。
通过以上步骤制备的牛源心包膜材料,进一步开发腹壁疝气修补产品。
对比例2
采集普通牛心包膜。脱细胞处理为:浸没于1wt.%SDS溶液中12h,振荡频率为300rpm,温度为30℃。交联处理为:浸没于2wt.%戊二醛溶液中12h,浸没温度为30℃。
效果例3免疫原性测试
3.1免疫组化检测:在大鼠皮下植入样品,经特定时间后,处死实验大鼠,取出植入材料以及周围皮肤组织,用4wt.%多聚甲醛固定液固定,用CD68单抗做免疫组化染色。
结果如图3所示:
CD68单抗进行免疫组化染色,主要标识由于免疫排斥反应测试样品中出现的巨噬细胞(深棕色)。结果表明,经过1个月大鼠皮下植入,实施例2样品基本发现少量巨噬细胞,而对比例2发现大量巨噬细胞,说明实施例2样品的免疫原性低于对比例2。
效果例4生物活性测试
4.1组织相容性检测:将样品植入大鼠肌肉内,经特定时间后,处死实验大鼠,取出植入材料以及周围肌肉组织,用4wt.%多聚甲醛固定液固定,进行HE染色。
结果如图4所示:
HE染色表明,经过1个月大鼠肌肉植入,实施例2样品和周围肌肉组织融合情况比对比例2样品更好,说明实施例2样品的生物活性更好。
实施例3
一种猴源心包膜材料及其制备方法和在脑补片中的应用。
制备方法如下:
a.通过ZFNs系统基因编辑制备敲除GGTA1、β4GalNT2,转入hTBM的猴,使用稳定传代3代的基因编辑猴;
b.采集基因编辑猴的心包膜作为原材料;
c.将心包膜原材料进行如下处理:
c1.超声波清洗,60KHz处理5h,功率3KW,温度为30℃;
c2.浸没于0.01wt.%SDS溶液中10h,振荡频率为400rpm,温度为28℃;
c3.超声波清洗,50KHz处理4.5h,功率3KW,温度为37℃;
c4.浸没于0.5wt.%SDS溶液中3.5h,振荡频率为450rpm,温度为25℃;
c5.超声波清洗,70KHz处理5.5h,功率2KW,温度为20℃。
d.浸没于0.00005wt.%京尼平溶液中8h,浸没温度为35℃,重复浸没4次;
浸没于0.05wt.%戊二醛溶液中3h,浸没温度为30℃,重复浸没2次;
浸没于0.07wt.%原花青素溶液中2h,浸没温度为30℃,重复浸没3次。
通过以上步骤制备的猴源心包膜材料,进一步开发脑补片产品。
对比例3
采集普通猴心包膜。脱细胞处理为:浸没于5wt.%SDS溶液中12h,振荡频率为500rpm,温度为20℃。交联处理为:浸没于5wt.%戊二醛溶液中12h,浸没温度为30℃。
效果例5免疫原性测试
5.1免疫组化检测:在大鼠皮下植入样品,经特定时间后,处死实验大鼠,取出植入材料以及周围皮肤组织,用4wt.%多聚甲醛固定液固定,用CD3单抗做免疫组化染色。
结果如图5所示:CD3单抗进行免疫组化染色,主要标识由于免疫排斥反应测试样品中出现的T细胞(深棕色)。结果表明,经过1个月大鼠皮下植入,实施例3样品基本发现少量T细胞,而对比例3发现大量T细胞,说明实施例3样品的免疫原性低于对比例3。
效果例6生物活性测试
6.1组织相容性检测:将样品植入大鼠肌肉内,经特定时间后,处死实验大鼠,取出植入材料以及周围肌肉组织,用4wt.%多聚甲醛固定液固定,进行HE染色。
结果如图6所示:HE染色表明,经过1个月大鼠肌肉植入,实施例3样品和周围肌肉组织融合情况比对比例3样品更好,说明实施例3样品的生物活性更好。
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
Claims (7)
1.一种心包膜材料的制备方法,其特征在于,包括如下步骤:
步骤1、繁育基因编辑动物;
步骤2、采集步骤1所述动物的心包膜作为原料;
步骤3、取步骤2制得的所述原料脱细胞;
步骤4、取步骤3制得的材料交联化;
其中,步骤3具体为:
超声波清洗,20~100KHz处理30min~6h,功率500W~5KW,温度为0~40℃;
浸没于0.001~5wt.%SDS溶液中1~24h,振荡频率为100~1000rpm,温度为0~40℃;
超声波清洗,40~80KHz处理3~6h,功率1~5KW,温度为20~40℃;
浸没于0.001~1wt.%SDS溶液中3~6h,振荡频率为100~500rpm,温度为20~40℃;
超声波清洗,60~100KHz处理3~6h,功率1~5KW,温度为20~40℃;
步骤4具体为:
浸没于0.00001~5wt.%京尼平溶液中0.5~12h,浸没温度为0~40℃,重复浸没1~10次;
浸没于0.001~1wt.%戊二醛溶液中0.5~24h,浸没温度为25~40℃,重复浸没1~5次;
浸没于0.005~5wt.%原花青素溶液中0.5~12h,浸没温度为25~40℃,
重复浸没1~5次。
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于,所述基因编辑包括巨型核酸酶(Meganuclease)、锌指核酸酶(ZFNs)、转录激活样效应因子核酸酶(TALEN)或成簇规律间隔短回文重复(CRISPR/Cas)系统中的至少一种。
3.如权利要求1或2所述的方法,其特征在于,所述基因编辑包括基因敲除和/或基因转入;
所述基因敲除中敲除的基因包括GGTA1、CMAH、β4GalNT2或PERV中的至少一种;
基因转入中转入的基因包括hCD46、hCD55、hCD47、LEA29Y、hTBM、hTFPI或EPCR中的至少一种。
4.如权利要求1至3任一项所述的方法,其特征在于,所述动物包括猪、牛、羊、马、猴、狗、兔、鸡、鼠、蚕、鱼、海洋生物、驴中的至少一种;所述动物为基因编辑后稳定传代3代以上的动物;优选的,选用基因编辑后稳定传代6代的动物制备心包膜材料。
5.如权利要求1至4任一项所述的方法制得的动物源性心包膜材料。
6.如权利要求5所述的动物源性心包膜材料在制备组织工程材料、再生医学材料、转化医学材料中的应用。
7.组合物,其特征在于,包括如权利要求6所述的动物源性心包膜材料以及医学上可接受的辅料。
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