CN113249318A - 一种干细胞定向分化及细胞转分化方法 - Google Patents

一种干细胞定向分化及细胞转分化方法 Download PDF

Info

Publication number
CN113249318A
CN113249318A CN202110541661.5A CN202110541661A CN113249318A CN 113249318 A CN113249318 A CN 113249318A CN 202110541661 A CN202110541661 A CN 202110541661A CN 113249318 A CN113249318 A CN 113249318A
Authority
CN
China
Prior art keywords
cells
differentiation
culture
stem cells
cell
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN202110541661.5A
Other languages
English (en)
Inventor
彭伟群
曹小伍
曹得明
邵草品
雷铭轩
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Hangzhou Yisheng Medical Technology Co ltd
Original Assignee
Hangzhou Yisheng Medical Technology Co ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hangzhou Yisheng Medical Technology Co ltd filed Critical Hangzhou Yisheng Medical Technology Co ltd
Priority to CN202110541661.5A priority Critical patent/CN113249318A/zh
Publication of CN113249318A publication Critical patent/CN113249318A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/0634—Cells from the blood or the immune system
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/0634—Cells from the blood or the immune system
    • C12N5/0641—Erythrocytes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10—Growth factors
    • C12N2501/14—Erythropoietin [EPO]
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/20—Cytokines; Chemokines
    • C12N2501/22—Colony stimulating factors (G-CSF, GM-CSF)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2506/00—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells
    • C12N2506/02—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells from embryonic cells

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

本发明公开了一种干细胞定向分化及细胞转分化方法，包括以下步骤：步骤一：从年轻健康孕妇胎盘内提取胚胎组织，将胚胎组织放置在装有细胞培养液的培养皿内静置15min，静置后，将胚胎组织取出，将胚胎组织剪碎，获取胚胎母体细胞，将母体细胞放置在培养皿内继续培养，本发明通过采用不同分化刺激因子对胚胎干细胞进行不同分化诱导，并通过胚胎干细胞分化结果能够对不同刺激因子定向分化结果进行探究，从而能够了解胚胎干细胞在刺激因子作用下定向分化结果，实现对胚胎干细胞体外分化情况进行深层次探究，能够了解胚胎干细胞的定向分化结果和转分化结果，以便于科研人员了解胚胎干细胞的具体分化影响因素条件。

Description

一种干细胞定向分化及细胞转分化方法
技术领域
本发明属于干细胞研究技术领域，具体涉及一种干细胞定向分化及细胞转分化方法。
背景技术
目前大多数生物学家和医学家认为干细胞是来自于胚胎、胎儿或成人体内具有在一定条件下无限制自我更新与增殖分化能力的一类细胞，能够产生表现型与基因型和自己完全相同的子细胞，也能产生组成机体组织、器官的已特化的细胞，同时还能分化为祖细胞。
细胞分化(cell differentiation)是指同一来源的细胞逐渐产生出形态结构、功能特征各不相同的细胞类群的过程，其结果是在空间上细胞产生差异，在时间上同一细胞与其从前的状态有所不同。细胞分化的本质是基因组在时间和空间上的选择性表达，通过不同基因表达的开启或关闭，最终产生标志性蛋白质。一般情况下，细胞分化过程是不可逆的。然而，在某些条件下，分化了的细胞也不稳定，其基因表达模式也可以发生可逆性变化，又回到其未分化状态，这一过程称为去分化(dedifferentiation)。
目前针对于干细胞的定向分化和转分化并没有深层次的研究，因此无法了解干细胞定向分化和转分化的方法。
发明内容
本发明要解决的技术问题是克服现有的缺陷，提供一种干细胞定向分化及细胞转分化方法，以解决上述背景技术中提出的没有对干细胞定向分化进行深层次研究的问题。
为实现上述目的，本发明提供如下技术方案：一种干细胞定向分化及细胞转分化方法，包括以下步骤：
步骤一：从年轻健康孕妇胎盘内提取胚胎组织，将胚胎组织放置在装有细胞培养液的培养皿内静置15min，静置后，将胚胎组织取出，将胚胎组织剪碎，获取胚胎母体细胞，将母体细胞放置在培养皿内继续培养；
步骤二：母体细胞分裂后，使用显微镜观察母体细胞分裂状态，并从分裂细胞内提取第二代子细胞，用膜酶消化，用培养基含高糖DMEM、非必需氨基酸、10％胎牛血清、不含白血病抑制因子制成单细胞悬液，按约600个/3化L接种于培养皿盖子内表面上，将盖子翻转形成悬滴，置培养箱中37°℃培养3天，得到ES细胞拟胚体的悬滴；
步骤三：将前述得到的ES细胞拟胚体的悬滴转入盛有lOmL培养基，含高糖DMEM、非必需氨基酸、10％胎牛血清、不含白血病抑制因子的培养皿内，继续悬浮培养1天，第二天加入终浓度为lT7mol/L的化合物，共培养4天，得到预分化细胞；
步骤四：提取预分化细胞，将预分化细胞设置为三组不同实验，将三组预分化细胞放置放置在三组装有培养液的培养皿内，并在培养名内分别加入浓度相同的诱导分化因子，向不同组内加入浓度范围为1-2mol/L的红细胞生成素、粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子，以及生理盐水为空白对照，等待细胞分化，观察实验结果。
优选的，所述步骤二中，在母体细胞分离过程中，定期通过显微镜对母体细胞分裂过程进行观察，当细胞整体数量范围在显微镜内变化为之前的2倍时，为第二代子细胞。
优选的，所述步骤四中，干细胞分化后，通过显微镜观察分化细胞状态，在红细胞生成素和粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子两种刺激因子作用下，干细胞分化为两种不同类型血细胞，并将不同刺激因子作用结果和干细胞分化结果进行记录。
与现有技术相比，本发明提供了一种干细胞定向分化及细胞转分化方法，具备以下有益效果：
本发明通过采用不同分化刺激因子对胚胎干细胞进行不同分化诱导，并通过胚胎干细胞分化结果能够对不同刺激因子定向分化结果进行探究，从而能够了解胚胎干细胞在刺激因子作用下定向分化结果，实现对胚胎干细胞体外分化情况进行深层次探究，能够了解胚胎干细胞的定向分化结果和转分化结果，以便于科研人员了解胚胎干细胞的具体分化影响因素条件。
附图说明
附图用来提供对本发明的进一步理解，并且构成说明书的一部分，与本发明的实施例一起用于解释本发明，并不构成对本发明的限制，在附图中：
图1为本发明提出的干细胞定向分化及细胞转分化方法的系统流程图。
具体实施方式
下面将结合本发明实施例中的附图，对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。
请参阅图1，本发明提供以下技术方案：一种干细胞定向分化及细胞转分化方法，包括以下步骤：
步骤一：从年轻健康孕妇胎盘内提取胚胎组织，将胚胎组织放置在装有细胞培养液的培养皿内静置15min，静置后，将胚胎组织取出，将胚胎组织剪碎，获取胚胎母体细胞，将母体细胞放置在培养皿内继续培养；
步骤二：母体细胞分裂后，使用显微镜观察母体细胞分裂状态，并从分裂细胞内提取第二代子细胞，用膜酶消化，用培养基含高糖DMEM、非必需氨基酸、10％胎牛血清、不含白血病抑制因子制成单细胞悬液，按约600个/3化L接种于培养皿盖子内表面上，将盖子翻转形成悬滴，置培养箱中37°℃培养3天，得到ES细胞拟胚体的悬滴；
步骤三：将前述得到的ES细胞拟胚体的悬滴转入盛有lOmL培养基，含高糖DMEM、非必需氨基酸、10％胎牛血清、不含白血病抑制因子的培养皿内，继续悬浮培养1天，第二天加入终浓度为lT7mol/L的化合物，共培养4天，得到预分化细胞；
步骤四：提取预分化细胞，将预分化细胞设置为三组不同实验，将三组预分化细胞放置放置在三组装有培养液的培养皿内，并在培养名内分别加入浓度相同的诱导分化因子，向不同组内加入浓度范围为1-2mol/L的红细胞生成素、粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子，以及生理盐水为空白对照，等待细胞分化，观察实验结果。
本发明中，优选的，步骤二中，在母体细胞分离过程中，定期通过显微镜对母体细胞分裂过程进行观察，当细胞整体数量范围在显微镜内变化为之前的2倍时，为第二代子细胞。
本发明中，优选的，步骤四中，干细胞分化后，通过显微镜观察分化细胞状态，在红细胞生成素和粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子两种刺激因子作用下，干细胞分化为两种不同类型血细胞，并将不同刺激因子作用结果和干细胞分化结果进行记录。
实施例一：
一种干细胞定向分化及细胞转分化方法，包括以下步骤：
步骤一：从年轻健康孕妇胎盘内提取胚胎组织，将胚胎组织放置在装有细胞培养液的培养皿内静置15min，静置后，将胚胎组织取出，将胚胎组织剪碎，获取胚胎母体细胞，将母体细胞放置在培养皿内继续培养；
步骤二：母体细胞分裂后，使用显微镜观察母体细胞分裂状态，并从分裂细胞内提取第二代子细胞，用膜酶消化，用培养基含高糖DMEM、非必需氨基酸、10％胎牛血清、不含白血病抑制因子制成单细胞悬液，按约600个/3化L接种于培养皿盖子内表面上，将盖子翻转形成悬滴，置培养箱中37°℃培养3天，得到ES细胞拟胚体的悬滴；
步骤三：将前述得到的ES细胞拟胚体的悬滴转入盛有lOmL培养基，含高糖DMEM、非必需氨基酸、10％胎牛血清、不含白血病抑制因子的培养皿内，继续悬浮培养1天，第二天加入终浓度为lT7mol/L的化合物，共培养4天，得到预分化细胞；
步骤四：提取预分化细胞，将预分化细胞设置为三组不同实验，将三组预分化细胞放置放置在三组装有培养液的培养皿内，并在培养名内分别加入浓度相同的诱导分化因子，向不同组内加入浓度范围为1-2mol/L的红细胞生成素、粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子，以及生理盐水为空白对照，等待细胞分化，观察实验结果。
本发明中，优选的，步骤二中，在母体细胞分离过程中，定期通过显微镜对母体细胞分裂过程进行观察，当细胞整体数量范围在显微镜内变化为之前的2倍时，为第二代子细胞。
本发明中，优选的，步骤四中，干细胞分化后，通过显微镜观察分化细胞状态，在红细胞生成素和粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子两种刺激因子作用下，干细胞分化为两种不同类型血细胞，并将不同刺激因子作用结果和干细胞分化结果进行记录。
实施例二：
一种干细胞定向分化及细胞转分化方法，包括以下步骤：
步骤一：从年轻健康孕妇胎盘内提取胚胎组织，将胚胎组织放置在装有细胞培养液的培养皿内静置15min，静置后，将胚胎组织取出，将胚胎组织剪碎，获取胚胎母体细胞，将母体细胞放置在培养皿内继续培养；
步骤二：母体细胞分裂后，使用显微镜观察母体细胞分裂状态，并从分裂细胞内提取第二代子细胞，用膜酶消化，用培养基含高糖DMEM、非必需氨基酸、10％胎牛血清、不含白血病抑制因子制成单细胞悬液，按约600个/3化L接种于培养皿盖子内表面上，将盖子翻转形成悬滴，置培养箱中37°℃培养3天，得到ES细胞拟胚体的悬滴；
步骤三：将前述得到的ES细胞拟胚体的悬滴转入盛有lOmL培养基，含高糖DMEM、非必需氨基酸、10％胎牛血清、不含白血病抑制因子的培养皿内，继续悬浮培养1天，第二天加入终浓度为lT7mol/L的化合物，共培养4天，得到预分化细胞；
步骤四：提取预分化细胞，将预分化细胞设置为三组不同实验，将三组预分化细胞放置放置在三组装有培养液的培养皿内，并在培养名内分别加入浓度相同的诱导分化因子，向不同组内加入浓度范围为1-2mol/L的红细胞生成素、粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子，以及生理盐水为空白对照，等待细胞分化，观察实验结果。
本发明中，优选的，步骤二中，在母体细胞分离过程中，定期通过显微镜对母体细胞分裂过程进行观察，当细胞整体数量范围在显微镜内变化为之前的2倍时，为第二代子细胞。
本发明中，优选的，步骤四中，干细胞分化后，通过显微镜观察分化细胞状态，在红细胞生成素和粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子两种刺激因子作用下，干细胞分化为两种不同类型血细胞，并将不同刺激因子作用结果和干细胞分化结果进行记录。
实施例三：
一种干细胞定向分化及细胞转分化方法，包括以下步骤：
步骤一：从年轻健康孕妇胎盘内提取胚胎组织，将胚胎组织放置在装有细胞培养液的培养皿内静置15min，静置后，将胚胎组织取出，将胚胎组织剪碎，获取胚胎母体细胞，将母体细胞放置在培养皿内继续培养；
步骤二：母体细胞分裂后，使用显微镜观察母体细胞分裂状态，并从分裂细胞内提取第二代子细胞，用膜酶消化，用培养基含高糖DMEM、非必需氨基酸、10％胎牛血清、不含白血病抑制因子制成单细胞悬液，按约600个/3化L接种于培养皿盖子内表面上，将盖子翻转形成悬滴，置培养箱中37°℃培养3天，得到ES细胞拟胚体的悬滴；
步骤三：将前述得到的ES细胞拟胚体的悬滴转入盛有lOmL培养基，含高糖DMEM、非必需氨基酸、10％胎牛血清、不含白血病抑制因子的培养皿内，继续悬浮培养1天，第二天加入终浓度为lT7mol/L的化合物，共培养4天，得到预分化细胞；
步骤四：提取预分化细胞，将预分化细胞设置为三组不同实验，将三组预分化细胞放置放置在三组装有培养液的培养皿内，并在培养名内分别加入浓度相同的诱导分化因子，向不同组内加入浓度范围为1-2mol/L的红细胞生成素、粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子，以及生理盐水为空白对照，等待细胞分化，观察实验结果。
本发明中，优选的，步骤二中，在母体细胞分离过程中，定期通过显微镜对母体细胞分裂过程进行观察，当细胞整体数量范围在显微镜内变化为之前的2倍时，为第二代子细胞。
本发明中，优选的，步骤四中，干细胞分化后，通过显微镜观察分化细胞状态，在红细胞生成素和粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子两种刺激因子作用下，干细胞分化为两种不同类型血细胞，并将不同刺激因子作用结果和干细胞分化结果进行记录。
Figure BDA0003072047680000071
综合上述多个实施例实验结果，可得知相同干细胞加入不同分化刺激因子后能够使干细胞定向分化为不同细胞。
尽管已经示出和描述了本发明的实施例，对于本领域的普通技术人员而言，可以理解在不脱离本发明的原理和精神的情况下可以对这些实施例进行多种变化、修改、替换和变型，本发明的范围由所附权利要求及其等同物限定。

Claims (3)

1.一种干细胞定向分化及细胞转分化方法，其特征在于：包括以下步骤：
步骤一：从年轻健康孕妇胎盘内提取胚胎组织，将胚胎组织放置在装有细胞培养液的培养皿内静置15min，静置后，将胚胎组织取出，将胚胎组织剪碎，获取胚胎母体细胞，将母体细胞放置在培养皿内继续培养；
步骤二：母体细胞分裂后，使用显微镜观察母体细胞分裂状态，并从分裂细胞内提取第二代子细胞，用膜酶消化，用培养基含高糖DMEM、非必需氨基酸、10％胎牛血清、不含白血病抑制因子制成单细胞悬液，按约600个/3化L接种于培养皿盖子内表面上，将盖子翻转形成悬滴，置培养箱中37°℃培养3天，得到ES细胞拟胚体的悬滴；
步骤三：将前述得到的ES细胞拟胚体的悬滴转入盛有lOmL培养基，含高糖DMEM、非必需氨基酸、10％胎牛血清、不含白血病抑制因子的培养皿内，继续悬浮培养1天，第二天加入终浓度为lT7mol/L的化合物，共培养4天，得到预分化细胞；
步骤四：提取预分化细胞，将预分化细胞设置为三组不同实验，将三组预分化细胞放置放置在三组装有培养液的培养皿内，并在培养名内分别加入浓度相同的诱导分化因子，向不同组内加入浓度范围为1-2mol/L的红细胞生成素、粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子，以及生理盐水为空白对照，等待细胞分化，观察实验结果。
2.根据权利要求1所述的一种干细胞定向分化及细胞转分化方法，其特征在于：所述步骤二中，在母体细胞分离过程中，定期通过显微镜对母体细胞分裂过程进行观察，当细胞整体数量范围在显微镜内变化为之前的2倍时，为第二代子细胞。
3.根据权利要求1所述的一种干细胞定向分化及细胞转分化方法，其特征在于：所述步骤四中，干细胞分化后，通过显微镜观察分化细胞状态，在红细胞生成素和粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子两种刺激因子作用下，干细胞分化为两种不同类型血细胞，并将不同刺激因子作用结果和干细胞分化结果进行记录。
CN202110541661.5A 2021-05-19 2021-05-19 一种干细胞定向分化及细胞转分化方法 Pending CN113249318A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202110541661.5A CN113249318A (zh) 2021-05-19 2021-05-19 一种干细胞定向分化及细胞转分化方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202110541661.5A CN113249318A (zh) 2021-05-19 2021-05-19 一种干细胞定向分化及细胞转分化方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN113249318A true CN113249318A (zh) 2021-08-13

Family

ID=77182672

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202110541661.5A Pending CN113249318A (zh) 2021-05-19 2021-05-19 一种干细胞定向分化及细胞转分化方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN113249318A (zh)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011101468A1 (en) * 2010-02-22 2011-08-25 Université Pierre Et Marie Curie (Paris 6) Cell culture medium for the growth and differentiation of cells of the hematopoietic lineage
CN102329769A (zh) * 2011-09-28 2012-01-25 浙江大学 一种获得造血干细胞的方法
CN109266618A (zh) * 2018-10-18 2019-01-25 浙江大学 能够靶向肿瘤细胞的巨噬细胞及其制备方法

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011101468A1 (en) * 2010-02-22 2011-08-25 Université Pierre Et Marie Curie (Paris 6) Cell culture medium for the growth and differentiation of cells of the hematopoietic lineage
CN103068972A (zh) * 2010-02-22 2013-04-24 皮埃尔-玛丽-居里大学(巴黎第六大学) 用于造血谱系细胞生长和分化的细胞培养基
CN102329769A (zh) * 2011-09-28 2012-01-25 浙江大学 一种获得造血干细胞的方法
CN109266618A (zh) * 2018-10-18 2019-01-25 浙江大学 能够靶向肿瘤细胞的巨噬细胞及其制备方法
WO2020078079A1 (zh) * 2018-10-18 2020-04-23 浙江大学 能够靶向肿瘤细胞的巨噬细胞及其制备方法

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
刘雨潇: "人胚胎干细胞向造血细胞诱导分化的研究", 《中国优秀博硕士学位论文全文数据库（博士）医药卫生科技辑》 *
刘雨潇: "人胚胎干细胞向造血细胞诱导分化的研究", 《中国优秀博硕士学位论文全文数据库（博士）医药卫生科技辑》, no. 11, 15 November 2008 (2008-11-15), pages 059 - 8 *
杨超: "人胚胎干细胞定向诱导分化为造血细胞的实验研究", 《中国优秀博硕士学位论文全文数据库（博士）医药卫生科技辑》 *
杨超: "人胚胎干细胞定向诱导分化为造血细胞的实验研究", 《中国优秀博硕士学位论文全文数据库（博士）医药卫生科技辑》, no. 12, 15 December 2010 (2010-12-15), pages 05 - 10 *
郭斯启等: "以红细胞生成素为基础的新型红系造血促进剂研究进展", 《中华血液学杂志》 *
郭斯启等: "以红细胞生成素为基础的新型红系造血促进剂研究进展", 《中华血液学杂志》, vol. 25, no. 11, 30 November 2004 (2004-11-30), pages 698 - 700 *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN109642212A (zh) 将血液重编程成诱导多能干细胞的新型且有效的方法
CN114317443B (zh) 乳腺癌类器官培养液及其培养试剂组合和培养方法
CN108504625B (zh) 一种小鼠成纤维细胞及其用途
CN112961822B (zh) 一种睾丸类器官及其构建方法与应用
CN101821383A (zh) 一种用于人成体原始间充质干细胞体外规模化培养的培养基、方法及获得的原始间充质干细胞及其应用
CN104178456B (zh) 一种人诱导多能干细胞的传代方法及应用
CN101984050B (zh) 用于产生诱导多能干细胞(iPS)的细胞类型及其制备方法和应用
CN106119191A (zh) 一种胎盘绒毛板间充质干细胞及临床化制备方法
CN104726401A (zh) 一种利用胎盘间充质干细胞提高脐血间充质干细胞培养成功率的方法
CN117004559A (zh) 一种人多能干细胞来源的脑和心肌复合模型的构建方法
CN111235100B (zh) 一种人脐带血间充质干细胞的培养方法
CN113249318A (zh) 一种干细胞定向分化及细胞转分化方法
KR102142254B1 (ko) 3,4''-다이하이드록시플라본을 이용한 소변줄기세포의 분리 효율 향상 및 소변줄기세포유래 만능줄기세포의 조혈줄기세포 분화 효율을 촉진시키는 방법
CN108034634B (zh) 一种从经血中分离宫内膜间充质干细胞的方法
CN104862277B (zh) 高效离体人造血干细胞扩增培养液配方
CN108048390B (zh) 一种制备血管内皮细胞的方法及其专用试剂盒
CN113736737B (zh) 一种原代胶质瘤相关成纤维细胞培养方法
CN105073978B (zh) 利用植物干细胞或植物去分化干细胞的提取物诱导定制亚全能干细胞的方法以及利用该方法的方式制得的亚全能干细胞
KR101927586B1 (ko) miRNA를 이용하여 유도만능줄기세포의 분화를 유도하는 각막 상피세포를 배양하는 방법 및 시스템
CN106834211B (zh) 汗腺细胞的培养基及其制备方法
CN111206015B (zh) 一种利用fact ⅲ微载体体外扩增精原干细胞的三维动态培养方法
AU2021106553A4 (en) Modification method for MFS Patient-specific Induced Pluripotent Stem Cells
CN107779428A (zh) 一种分离鸡胚生殖嵴来源的原始生殖干细胞方法
CN116555169B (zh) 一种简单、快速的体细胞化学重编程方法
KR101491445B1 (ko) 포유동물 정원 줄기세포의 장기 배양방법

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20210813