CN113234706A - 一种利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法 - Google Patents
一种利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN113234706A CN113234706A CN202110479134.6A CN202110479134A CN113234706A CN 113234706 A CN113234706 A CN 113234706A CN 202110479134 A CN202110479134 A CN 202110479134A CN 113234706 A CN113234706 A CN 113234706A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- selenium
- enzymatic hydrolysis
- enzyme
- bacteria
- extracting
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Withdrawn
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2405—Glucanases
- C12N9/2434—Glucanases acting on beta-1,4-glucosidic bonds
- C12N9/2437—Cellulases (3.2.1.4; 3.2.1.74; 3.2.1.91; 3.2.1.150)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2405—Glucanases
- C12N9/2408—Glucanases acting on alpha -1,4-glucosidic bonds
- C12N9/2411—Amylases
- C12N9/2414—Alpha-amylase (3.2.1.1.)
- C12N9/2417—Alpha-amylase (3.2.1.1.) from microbiological source
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2405—Glucanases
- C12N9/2408—Glucanases acting on alpha -1,4-glucosidic bonds
- C12N9/2411—Amylases
- C12N9/2414—Alpha-amylase (3.2.1.1.)
- C12N9/2417—Alpha-amylase (3.2.1.1.) from microbiological source
- C12N9/242—Fungal source
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/48—Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
- C12N9/50—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
- C12N9/58—Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from fungi
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/90—Isomerases (5.)
- C12N9/92—Glucose isomerase (5.3.1.5; 5.3.1.9; 5.3.1.18)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P21/00—Preparation of peptides or proteins
- C12P21/06—Preparation of peptides or proteins produced by the hydrolysis of a peptide bond, e.g. hydrolysate products
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01001—Alpha-amylase (3.2.1.1)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y503/00—Intramolecular oxidoreductases (5.3)
- C12Y503/01—Intramolecular oxidoreductases (5.3) interconverting aldoses and ketoses (5.3.1)
- C12Y503/01018—Glucose isomerase (5.3.1.18)
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Mycology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
一种利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,包括制备分解酶系基质、制备多酶反应体系、酶解反应、后处理;制备分解酶系基质的步骤为将真菌中的担子菌与细菌中的乳酸杆菌、大肠杆菌、双歧杆菌混合,超声振荡后得到混合菌,然后向混合菌中加入氯化钠、氯化镁、甲壳素后超声振荡后得到分解酶系基质。本发明制备的小分子硒的优点有:分子量低于5000道尔顿,更易于人体吸收;有效成份利用率从传统的18%提高到92%‑93%;避免了高温、高压带来对中草药中硒的破坏及挥发;完全对人体无害;能够直接被人体吸收;起到保护细胞膜,修复激活细胞,直达病灶作用。
Description
技术领域
本发明涉及生物技术领域,尤其是涉及一种利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法。
背景技术
硒是人体中必不可少的微量元素之一,能够起到抗氧化、增强人体免疫力抗癌、调节蛋白质合成等作用,缺硒表现主要是脱发、脱甲,部分患者出现皮肤症状,少数患者可出现神经症状及牙齿损害,人体缺硒还可能产生的疾病有能量缺乏性营养不良、血溶性贫血、克山病、大骨节病、高血压、缺血性心脏病、肝硬化、胰腺炎、纤维瘤、癌症、肌瘤、不妊症、糖尿病、白内障等,所以,缺硒对人体影响很大,对于严重缺硒的人来说,必须要通过服用补硒产品进行补充,现有的补硒产品一般是从中草药中提取的。
中国传统的硒的提取方法都是对中草药通过煎、煮、蒸、熬、炼等各种以高温浓缩的方法到浸、抽、提等各种方法,但这些提取方法存在五大弊端:一是中草药原料资源浪费巨大,不环保,有效成份利用率仅为18%;二是由于高温、高压带来对中草药中硒的破坏及挥发;三是提取过程中可能会产生毒副物质,比如朱砂遇热会释放出汞等;四是提取的硒不易直接吸收;五是提取的硒还停留在大分子状态,不能直接进入人体细胞发挥作用。
专利CN110734948A公开了一种从大豆中提取硒多肽的提取装置及工艺,它包括备料、提取硒蛋白粉、混浆、超声酶解、改性、除杂和浓缩干燥,超声酶解时对乳液进行两次酶解。该专利的不足:提取的硒还停留在大分子状态,不能直接进入人体细胞发挥作用。
专利CN107353321B公开了一种从富硒大米中提取植物硒蛋白的方法,包括前处理、浸提处理和沉淀处理;浸提处理的具体步骤为将酶解后的浆液和浸提液混合,辅以远红外线照射处理,水浴振荡1-6h,在25℃下以3000-5000r/min的转速离心15-22min,得到蛋白液;沉淀处理的具体步骤为使蛋白液处于冰浴条件下,加入4倍于蛋白液体积的冰丙酮后,置于-27到-17℃的环境中,在超声波的声能密度为10-18W/mL的辅助处理条件下放置3-5h以进行硒蛋白沉淀,离心10-15min,取出沉淀物进行喷雾干燥后,得到硒蛋白成品。该专利的不足:浪费大,不环保,有效成份利用率低。
发明内容
为解决现有技术中存在的技术问题,本发明提供一种利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,能够提高原料的有效成分利用率,避免高温、高压带来对中草药中硒的破坏及挥发,同时还避免提取过程中产生毒副物质,而且提取的小分子硒容易吸收,服用后能直接进入人体细胞发挥作用。
为解决以上技术问题,本发明采取的技术方案如下:
一种利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,包括制备分解酶系基质、制备多酶反应体系、酶解反应、后处理。
所述制备分解酶系基质,将真菌中的担子菌与细菌中的乳酸杆菌、大肠杆菌、双歧杆菌混合,超声振荡4-5min后得到混合菌,然后向混合菌中加入氯化钠、氯化镁、甲壳素后超声振荡5-8min后得到分解酶系基质。
所述混合菌中担子菌的活菌含量为2×109CFU/g;乳酸杆菌的活菌含量为2×1010CFU/g;大肠杆菌的活菌含量为3×109CFU/g;双歧杆菌的活菌含量为1×1010CFU/g。
其中,混合菌、氯化钠、氯化镁和甲壳素的质量比20-25:2-3:5-6:10-12。
所述制备多酶反应体系,将纤维素酶、真菌蛋白酶、葡萄糖异构酶及α-淀粉酶混合均匀后形成复合酶,然后在25-30℃恒温条件下,将复合酶、腐殖酸钠和正硅酸甲酯溶于无水乙醇中,超声振荡10-12min后形成多酶反应体;将多酶反应体加入到分散酶系基质中,然后以200-250rpm的搅拌速度搅拌20-25min后,将分散酶系基质置于-5℃到0℃的环境中冷藏1-1.5h后取出,转移到25-30℃的环境下得到多酶反应体系。
所述多酶反应体中纤维素酶的酶活性为2000-2500U/g;真菌蛋白酶的酶活性为3200-3500U/g;葡萄糖异构酶的酶活性为1500-1800U/g;α-淀粉酶的酶活性为2700-3000U/g。
所述复合酶、腐殖酸钠、正硅酸甲酯和无水乙醇的质量比为5-7:2-3:3-5:40-45。
其中,多酶反应体和分散酶系基质的质量比为1:5-6。
所述酶解反应,将含硒中草药清洗后烘至含水率为4-7%,然后将烘干的含硒中草药粉碎成100-120目,然后加入到多酶反应体系中进行酶解,所述酶解过程中的酶解温度为25-40℃,PH为5.0-6.2,湿度为80-90%,酶解压力为0.1MPa,所述酶解反应在无菌环境下进行,待酶解3-3.5h后结束酶解,得到酶解液。
所述含硒中草药是黄芪、灵芝、菊花中的一种或两种。
所述后处理,将酶解液经过高速离心,所述高速离心中的转速为5000-6000rpm,高速离心时间为20-25min,待高速离心结束,将上清液以4000-5000道尔顿超滤膜加压过滤,得到超滤液,然后对超滤液进行喷雾干燥,得到小分子硒;所述喷雾干燥的热风进口温度为90-100℃,出口温度为70-75℃,流化床温度为60-65℃。
与现有技术相比,本发明的有益效果为:
(1)本发明的利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,通过多酶反应体系提取的小分子硒分子量低于5000道尔顿,更易于人体吸收;
(2)本发明的利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,通过控制反应条件,保证了小分子硒的活性,将小分子硒的有效成份利用率从传统的18%提高到92%-93%;
(3)本发明的利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,提取方法是在常温常压下进行,避免了高温、高压带来对中草药中硒的破坏及挥发;
(4)本发明的利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,反应中不产生任何毒副物质,完全对人体无害;
(5)本发明的利用菌草酸生物多酶解技术提取的小分子硒,能够以能量形式直接渗入病原细胞和大脑组织,直接被人体吸收;
(6)本发明的利用菌草酸生物多酶解技术提取的小分子硒,能够起到保护细胞膜,修复激活细胞,直达病灶作用。
具体实施方式
为了对本发明的技术特征、目的和效果有更加清楚的理解,现说明本发明的具体实施方式。
实施例1
一种利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,包括制备分解酶系基质、制备多酶反应体系、酶解反应、后处理。
所述制备分解酶系基质,将真菌中的担子菌与细菌中的乳酸杆菌、大肠杆菌、双歧杆菌混合,超声振荡4min后得到混合菌,然后向混合菌中加入氯化钠、氯化镁、甲壳素后超声振荡5min后得到分解酶系基质。
所述混合菌中担子菌的活菌含量为2×109CFU/g;乳酸杆菌的活菌含量为2×1010CFU/g;大肠杆菌的活菌含量为3×109CFU/g;双歧杆菌的活菌含量为1×1010CFU/g。
其中,混合菌、氯化钠、氯化镁和甲壳素的质量比20:2:5:10。
所述制备多酶反应体系,将纤维素酶、真菌蛋白酶、葡萄糖异构酶及α-淀粉酶混合均匀后形成复合酶,然后在25℃恒温条件下,将复合酶、腐殖酸钠和正硅酸甲酯溶于无水乙醇中,超声振荡10min后形成多酶反应体;将多酶反应体加入到分散酶系基质中,然后以200rpm的搅拌速度搅拌20min后,将分散酶系基质置于-5℃的环境中冷藏1h后取出,转移到25℃的环境下得到多酶反应体系。
所述多酶反应体中纤维素酶的酶活性为2000U/g;真菌蛋白酶的酶活性为3200U/g;葡萄糖异构酶的酶活性为1500U/g;α-淀粉酶的酶活性为2700U/g。
所述复合酶、腐殖酸钠、正硅酸甲酯和无水乙醇的质量比为5:2:3:40。
其中,多酶反应体和分散酶系基质的质量比为1:5。
所述酶解反应,将黄芪清洗后烘至含水率为4%,然后将烘干的含硒中草药粉碎成100目,然后加入到多酶反应体系中进行酶解,所述酶解过程中的酶解温度为25℃,PH为5.0,湿度为80%,酶解压力为0.1MPa,所述酶解反应在无菌环境下进行,待酶解3h后结束酶解,得到酶解液。
所述后处理,将酶解液经过高速离心,所述高速离心中的转速为5000rpm,高速离心时间为20min,待高速离心结束,将上清液以4000-5000道尔顿超滤膜加压过滤,得到超滤液,然后对超滤液进行喷雾干燥,得到小分子硒;所述喷雾干燥的热风进口温度为90℃,出口温度为70℃,流化床温度为60℃。
实施例2
一种利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,包括制备分解酶系基质、制备多酶反应体系、酶解反应、后处理。
所述制备分解酶系基质,将真菌中的担子菌与细菌中的乳酸杆菌、大肠杆菌、双歧杆菌混合,超声振荡4min后得到混合菌,然后向混合菌中加入氯化钠、氯化镁、甲壳素后超声振荡6min后得到分解酶系基质。
所述混合菌中担子菌的活菌含量为2×109CFU/g;乳酸杆菌的活菌含量为2×1010CFU/g;大肠杆菌的活菌含量为3×109CFU/g;双歧杆菌的活菌含量为1×1010CFU/g。
其中,混合菌、氯化钠、氯化镁和甲壳素的质量比22:3:5:11。
所述制备多酶反应体系,将纤维素酶、真菌蛋白酶、葡萄糖异构酶及α-淀粉酶混合均匀后形成复合酶,然后在27℃恒温条件下,将复合酶、腐殖酸钠和正硅酸甲酯溶于无水乙醇中,超声振荡11min后形成多酶反应体;将多酶反应体加入到分散酶系基质中,然后以220rpm的搅拌速度搅拌22min后,将分散酶系基质置于-3℃的环境中冷藏1.2h后取出,转移到28℃的环境下得到多酶反应体系。
所述多酶反应体中纤维素酶的酶活性为2300U/g;真菌蛋白酶的酶活性为3300U/g;葡萄糖异构酶的酶活性为1700U/g;α-淀粉酶的酶活性为2800U/g。
所述复合酶、腐殖酸钠、正硅酸甲酯和无水乙醇的质量比为6:2:4:43。
其中,多酶反应体和分散酶系基质的质量比为1:6。
所述酶解反应,将黄芪清洗后烘至含水率为5%,然后将烘干的含硒中草药粉碎成110目,然后加入到多酶反应体系中进行酶解,所述酶解过程中的酶解温度为30℃,PH为5.5,湿度为85%,酶解压力为0.1MPa,所述酶解反应在无菌环境下进行,待酶解3.2h后结束酶解,得到酶解液。
所述后处理,将酶解液经过高速离心,所述高速离心中的转速为5500rpm,高速离心时间为22min,待高速离心结束,将上清液以4000-5000道尔顿超滤膜加压过滤,得到超滤液,然后对超滤液进行喷雾干燥,得到小分子硒;所述喷雾干燥的热风进口温度为95℃,出口温度为72℃,流化床温度为62℃。
实施例3
一种利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,包括制备分解酶系基质、制备多酶反应体系、酶解反应、后处理。
所述制备分解酶系基质,将真菌中的担子菌与细菌中的乳酸杆菌、大肠杆菌、双歧杆菌混合,超声振荡5min后得到混合菌,然后向混合菌中加入氯化钠、氯化镁、甲壳素后超声振荡8min后得到分解酶系基质。
所述混合菌中担子菌的活菌含量为2×109CFU/g;乳酸杆菌的活菌含量为2×1010CFU/g;大肠杆菌的活菌含量为3×109CFU/g;双歧杆菌的活菌含量为1×1010CFU/g。
其中,混合菌、氯化钠、氯化镁和甲壳素的质量比25:3:6:12。
所述制备多酶反应体系,将纤维素酶、真菌蛋白酶、葡萄糖异构酶及α-淀粉酶混合均匀后形成复合酶,然后在30℃恒温条件下,将复合酶、腐殖酸钠和正硅酸甲酯溶于无水乙醇中,超声振荡12min后形成多酶反应体;将多酶反应体加入到分散酶系基质中,然后以250rpm的搅拌速度搅拌25min后,将分散酶系基质置于0℃的环境中冷藏1.5h后取出,转移到30℃的环境下得到多酶反应体系。
所述多酶反应体中纤维素酶的酶活性为2500U/g;真菌蛋白酶的酶活性为3500U/g;葡萄糖异构酶的酶活性为1800U/g;α-淀粉酶的酶活性为3000U/g。
所述复合酶、腐殖酸钠、正硅酸甲酯和无水乙醇的质量比为7:3:5:45。
其中,多酶反应体和分散酶系基质的质量比为1:6。
所述酶解反应,将黄芪清洗后烘至含水率为7%,然后将烘干的含硒中草药粉碎成120目,然后加入到多酶反应体系中进行酶解,所述酶解过程中的酶解温度为40℃,PH为6.2,湿度为90%,酶解压力为0.1MPa,所述酶解反应在无菌环境下进行,待酶解3.5h后结束酶解,得到酶解液。
所述后处理,将酶解液经过高速离心,所述高速离心中的转速为6000rpm,高速离心时间为25min,待高速离心结束,将上清液以4000-5000道尔顿超滤膜加压过滤,得到超滤液,然后对超滤液进行喷雾干燥,得到小分子硒;所述喷雾干燥的热风进口温度为100℃,出口温度为75℃,流化床温度为65℃。
实施例4
对比例1:采用实施例1所述的利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,其不同之处在于:在制备分解酶系基质步骤中不加入混合菌。
对比例2:采用实施例1所述的利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,其不同之处在于:在制备多酶反应体系步骤中省略“将散酶系基质置于-5℃到0℃的环境中冷藏1-1.5h”。
有效成分利用率试验的具体步骤包括:
试验动物及器材:100只昆明小鼠,雌雄各半,体重为22-24g。
给样剂量:每只小鼠每天给样剂量为100mg
造模、分组及实验:将120只小鼠随机分为6组,每组20只,雌雄各半,然后将实施例1-3和对比例1-2制备的小分子硒按照每天给样剂量分别灌喂,剩下的一组作为对照组灌喂相同剂量的生理盐水,连续灌喂10天后,测定血中的硒含量,如下表所示:
除非另有说明,本发明中所采用的百分数均为质量百分数。
最后应说明的是:以上所述仅为本发明的优选实施例而已,并不用于限制本发明,尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明,对于本领域的技术人员来说,其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改,或者对其中部分技术特征进行等同替换。凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (10)
1.一种利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,其特征在于,包括制备分解酶系基质、制备多酶反应体系、酶解反应、后处理;
所述制备分解酶系基质,将真菌中的担子菌与细菌中的乳酸杆菌、大肠杆菌、双歧杆菌混合,超声振荡后得到混合菌,然后向混合菌中加入氯化钠、氯化镁、甲壳素后超声振荡后得到分解酶系基质。
2.根据权利要求1所述的利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,其特征在于,所述混合菌中担子菌的活菌含量为2×109CFU/g;乳酸杆菌的活菌含量为2×1010CFU/g;大肠杆菌的活菌含量为3×109CFU/g;双歧杆菌的活菌含量为1×1010CFU/g。
3.根据权利要求1所述的利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,其特征在于,混合菌、氯化钠、氯化镁和甲壳素的质量比20-25:2-3:5-6:10-12。
4.根据权利要求1所述的利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,其特征在于,所述制备多酶反应体系,将纤维素酶、真菌蛋白酶、葡萄糖异构酶及α-淀粉酶混合均匀后形成复合酶,然后在恒温条件下与腐殖酸钠和正硅酸甲酯溶于无水乙醇中,超声振荡后形成多酶反应体;然后将多酶反应体加入到分散酶系基质中搅拌后,将分散酶系基质冷藏,然后转移到恒温环境下得到多酶反应体系。
5.根据权利要求4所述的利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,其特征在于,所述纤维素酶的酶活性为2000-2500U/g;真菌蛋白酶的酶活性为3200-3500U/g;葡萄糖异构酶的酶活性为1500-1800U/g;α-淀粉酶的酶活性为2700-3000U/g。
6.根据权利要求4所述的利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,其特征在于,所述复合酶、腐殖酸钠、正硅酸甲酯和无水乙醇的质量比为5-7:2-3:3-5:40-45。
7.根据权利要求4所述的利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,其特征在于,多酶反应体和分散酶系基质的质量比为1:5-6。
8.根据权利要求1所述的利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,其特征在于,所述酶解反应,将含硒中草药清洗后烘干后粉碎,然后加入到多酶反应体系中进行酶解得到酶解液。
9.根据权利要求1所述的利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,其特征在于,所述后处理,将酶解液经过高速离心后,将上清液以4000-5000道尔顿超滤膜加压过滤,得到超滤液,然后对超滤液进行喷雾干燥,得到小分子硒。
10.根据权利要求9所述的利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法,其特征在于,所述高速离心中的转速为5000rpm,高速离心时间为20min,所述喷雾干燥的热风进口温度为90℃,出口温度为70℃,流化床温度为60℃。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202110479134.6A CN113234706A (zh) | 2021-04-30 | 2021-04-30 | 一种利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202110479134.6A CN113234706A (zh) | 2021-04-30 | 2021-04-30 | 一种利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN113234706A true CN113234706A (zh) | 2021-08-10 |
Family
ID=77131582
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN202110479134.6A Withdrawn CN113234706A (zh) | 2021-04-30 | 2021-04-30 | 一种利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN113234706A (zh) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN114395401A (zh) * | 2021-12-24 | 2022-04-26 | 神究富硒农业发展(山东)有限公司 | 一种细胞修复液、制备方法及其应用 |
-
2021
- 2021-04-30 CN CN202110479134.6A patent/CN113234706A/zh not_active Withdrawn
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN114395401A (zh) * | 2021-12-24 | 2022-04-26 | 神究富硒农业发展(山东)有限公司 | 一种细胞修复液、制备方法及其应用 |
CN114395401B (zh) * | 2021-12-24 | 2023-11-24 | 神究富硒农业发展(山东)有限公司 | 一种细胞修复液、制备方法及其应用 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN108477612B (zh) | 一种包含铁皮石斛纯化提取物的石斛营养粉及制备方法 | |
CN104473188A (zh) | 一种米糠水溶性膳食纤维的提取方法 | |
CN101664167A (zh) | 花生水溶性膳食纤维酶法提取方法 | |
CN102357212B (zh) | 采用超临界co2萃取的复方制品及其制备方法 | |
CN101724667A (zh) | 运用生物工程酶技术提取石斛多糖的工艺及其制品和应用 | |
CN113150179A (zh) | 一种金耳多糖提取制备工艺 | |
CN113234706A (zh) | 一种利用菌草酸生物多酶解技术提取小分子硒的方法 | |
CN113912750B (zh) | 一种发酵预处理提取灵芝子实体多糖的方法 | |
CN101664180B (zh) | 一种具有保健功效的营养复合剂及其制备方法 | |
CN102614236B (zh) | 一种参原药品、食品、保健品原料加工方法 | |
CN109223603B (zh) | 治疗脱发组合物的制备方法 | |
CN108523112B (zh) | 一种蚕蛹食品基料及其制备方法和应用 | |
CN104543666A (zh) | 一种具有抗辐射功能的复合多糖保健食品及其制备工艺 | |
CN105768062A (zh) | 一种复合羊肚菌益生菌功能性食品 | |
CN110777185B (zh) | 一种植物破壁剂原液及其制备方法和应用 | |
CN104672345A (zh) | 一种从山瑞鳖甲中制备粗多糖的方法 | |
CN1416843A (zh) | 利用酶制剂制备中药的方法 | |
CN111700279A (zh) | 一种小麦麸皮膳食纤维的制备方法 | |
CN116196281A (zh) | 一种蛹虫草提取物水溶性粉末的制备方法 | |
CN105768061A (zh) | 一种复合真菌益生菌功能性食品 | |
CN110623251A (zh) | 一种药食两用的猴头菌养胃营养液的制备方法 | |
CN111587976B (zh) | 一种从富硒茶中提取生物活性功效成分的方法及应用 | |
Wu | Polysaccharide-protein complexes from edible fungi and applications | |
CN107432359A (zh) | 一种益生元姜糖的制备方法 | |
CN1261120C (zh) | 具有解酒功能的灵芝提取物的提取方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
WW01 | Invention patent application withdrawn after publication | ||
WW01 | Invention patent application withdrawn after publication |
Application publication date: 20210810 |