CN113234667A - 一种多能干细胞的建立与干性维持方法 - Google Patents

一种多能干细胞的建立与干性维持方法 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种多能干细胞的建立与干性维持方法,包括以下步骤,步骤一:选择合适母体细胞;步骤二;提取母体细胞,对细胞进行培养,选取健康母体细胞;步骤三:对母体细胞进行处理,获取新型多能干细胞;本发明通过采用不同浓度的bHLH转录因子对多能干细胞分化情况进行抑制,并通过设置不同浓度梯度的bHLH转录因子对多能干细胞进行探究,从而能够确认出具体浓度的bHLH转录因子对干细胞分化的影响情况,通过这种方式能够实现将多能干细胞放置在含有具体浓度的bHLH转录因子培养液内,实现对多能干细胞干性的维持,从而能够使多能干细胞适用于后续疾病机制、模型制备、染色体工程、基因组稳定性等生物学或医学研究。

Description

一种多能干细胞的建立与干性维持方法
技术领域
本发明属于多能干细胞技术领域,具体涉及一种多能干细胞的建立与干性维持方法。
背景技术
多能干细胞(Pluripotent Stem Cells)是一类具有自我更新、自我复制能力的多潜能细胞。在一定条件下,它可以分化成多种APSC多能细胞,多能干细胞(HSC)具有分化出多种细胞组织的潜能,但失去了发育成完整个体的能力,发育潜能受到一定的限制。多能干细胞(Pluripotent stem cell,Ps)是当前干细胞研究的热点和焦点。它可以分化成体内所有的细胞,进而形成身体的所有组织和器官。因此,多能干细胞的研究不仅具有重要的理论意义,而且在器官再生、修复和疾病治疗方面极具应用价值。多能干细胞(pluripotentstem cell),具有分化出多种细胞组织的潜能,但失去了发育成完整个体的能力,发育潜能受到一定的限制。骨髓多能造血干细胞是典型的例子,它可分化出至少十二种血细胞,但不能分化出造血系统以外的其它细胞。2009年6月3日中国科学家肖磊领导的科研小组首次从猪的体细胞中培育出多能干细胞,这也是世界上首次提取出家养有蹄类动物的多能干细胞。
在多能干细胞研究过程中,并没有利用多能干细胞开展疾病机制、模型制备、染色体工程、基因组稳定性等生物学或医学研究,针对哺乳动物细胞倍性调控、染色体重构、复杂疾病发生等问题,因此对于多能干细胞的研究还需要更深层次的探究。
发明内容
本发明要解决的技术问题是克服现有的缺陷,提供一种多能干细胞的建立与干性维持方法,以解决上述背景技术中提出的没有对多能干细胞进行深层次探究的问题。
为实现上述目的,本发明提供如下技术方案:一种多能干细胞的建立与干性维持方法,包括无菌培养箱和以下步骤,
步骤一:选择合适母体细胞;
步骤二;提取母体细胞,对细胞进行培养,选取健康母体细胞;
步骤三:对母体细胞进行处理,获取新型多能干细胞;
步骤四:对新型多能干细胞进行培养,筛选健康新型多能干细胞:
步骤五:对多能干细胞采用基因修饰技术,导入较容易标记的目标DNA;步骤六:分别对基因修饰后的新型多能干细胞进行诱导分化和抑制分化实验,并分别设置不同对照组实验;
步骤七:对分化后的细胞采用免疫染色确定修饰基因表达情况,并对数据进行记录。
优选的,所述步骤一中,从健康年轻供体采集骨髓或从健康产妇采集脐带。
优选的,所述步骤二中,采用机械剪切的方法,将母体细胞组织剪切为细小组织,并将剪切后的细胞组织采用原代建系、重编程和胚胎分离等技术手段获取新型多能干细胞。
优选的,所述步骤四中,提前备好细胞培养皿,向培养皿内加入小牛血清,并加入激素、微量元素、矿物质和脂肪等营养物质,细胞增殖后,光学显微镜下观察细胞生长情况并拍照,每4天换液,弃除不贴壁的细胞,到细胞生长至80%融合状态时,用trypsin/EDTA消化传代细胞,并筛选健多能干细胞。
优选的,所述步骤五中,选取多能干细胞,并对多能干细胞采用基因修饰技术,向多能干细胞内基因内导入Oct-4,Nanog-3,Sox-2目标基因。
优选的,所述步骤六中,使用相同浓度的转化生长因子-β诱导多能干细胞分化,并将该组设为实验组,对照组不采用转化生长因子。
优选的,所述步骤六中,分别采用浓度范围为0.5-2mol/LbHLH转录因子对多能干细胞进行分化抑制,对照组不采用bHLH转录因子。
优选的,所述步骤七中,对不同实验组内分化后的多能干细胞采用PCR对Oct-4,Nanog-3,Sox-2修饰基因进行检测,并将表达和未表达的基因进行数据记录。
优选的,所述无菌培养箱下表面四角均转动连接有移动轮,所述无菌培养箱上端一侧固定连接有扶手,所述无菌培养箱一侧通过铰链铰接有密封门,所述密封门一侧固定连接有把手,所述无菌培养箱一侧设置有显示器,所述显示器上下两端均设置有观察窗口。
优选的,所述无菌培养箱内部中间固定连接有分隔板,所述分隔板和无菌培养箱上表面均设置有存放皿,所述无菌培养箱内部一侧上下两端均设置有加温板,所述无菌培养箱内部两侧均设置有紫外线灯,所述紫外线灯数量设置为四个。
与现有技术相比,本发明提供了一种多能干细胞的建立与干性维持方法,具备以下有益效果:
1、本发明通过采用不同浓度的bHLH转录因子对多能干细胞分化情况进行抑制,并通过设置不同浓度梯度的bHLH转录因子对多能干细胞进行探究,从而能够确认出具体浓度的bHLH转录因子对干细胞分化的影响情况,通过这种方式能够实现将多能干细胞放置在含有具体浓度的bHLH转录因子培养液内,实现对多能干细胞干性的维持,从而能够使多能干细胞适用于后续疾病机制、模型制备、染色体工程、基因组稳定性等生物学或医学研究;
2、本发明通过对母体细胞进行原代培养、重编程和胚胎分离的技术,能够对母体细胞进行初代培养,从而能够使母体细胞产生增殖和和分化效果更好的母体细胞,从而能够为后续实验提供较好的原细胞,增加了实验的真实性;
3、本发明通过采用免疫染色的方法,能够通过显微镜对细胞内染色位置进行观察的方法,能够确定修饰基因表达情况,从而能够确定修饰基因的具体分化位置,通过采用转化生长因子-β诱导多能干细胞分化,能够促进多能干细胞的分化效果,从而能够方便研究人员观察修饰基因表达情况。
附图说明
附图用来提供对本发明的进一步理解,并且构成说明书的一部分,与本发明的实施例一起用于解释本发明,并不构成对本发明的限制,在附图中:
图1为本发明提出的多能干细胞的建立与干性维持方法中获取多能干细胞的系统框架图;
图2为本发明提出的多能干细胞的建立与干性维持方法中多能干细胞干性维持方法的系统框架图;
图3为本发明提出的多能干细胞的建立与干性维持方法中多能干细胞干性维持方法中无菌培养箱的结构示意图;
图4为本发明提出的多能干细胞的建立与干性维持方法中多能干细胞干性维持方法中无菌培养箱的剖视图;
具体实施方式
下面将结合本发明实施例中的附图,对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。
请参阅图1-4,本发明提供以下技术方案:一种多能干细胞的建立与干性维持方法,包括无菌培养箱1和以下步骤,
步骤一:选择合适母体细胞;
步骤二;提取母体细胞,对细胞进行培养,选取健康母体细胞;
步骤三:对母体细胞进行处理,获取新型多能干细胞;
步骤四:对新型多能干细胞进行培养,筛选健康新型多能干细胞:
步骤五:对多能干细胞采用基因修饰技术,导入较容易标记的目标DNA;步骤六:分别对基因修饰后的新型多能干细胞进行诱导分化和抑制分化实验,并分别设置不同对照组实验;
步骤七:对分化后的细胞采用免疫染色确定修饰基因表达情况,并对数据进行记录。
本发明中,优选的,步骤一中,从健康年轻供体采集骨髓或从健康产妇采集脐带。
本发明中,优选的,步骤二中,采用机械剪切的方法,将母体细胞组织剪切为细小组织,并将剪切后的细胞组织采用原代建系、重编程和胚胎分离等技术手段获取新型多能干细胞。
本发明中,优选的,步骤四中,提前备好细胞培养皿,向培养皿内加入小牛血清,并加入激素、微量元素、矿物质和脂肪等营养物质,细胞增殖后,光学显微镜下观察细胞生长情况并拍照,每4天换液,弃除不贴壁的细胞,到细胞生长至80%融合状态时,用trypsin/EDTA消化传代细胞,并筛选健多能干细胞。
本发明中,优选的,步骤五中,选取多能干细胞,并对多能干细胞采用基因修饰技术,向多能干细胞内基因内导入Oct-4,Nanog-3,Sox-2目标基因。
本发明中,优选的,步骤六中,使用相同浓度的转化生长因子-β诱导多能干细胞分化,并将该组设为实验组,对照组不采用转化生长因子。
本发明中,优选的,步骤六中,分别采用浓度范围为0.5-2mol/LbHLH转录因子对多能干细胞进行分化抑制,对照组不采用bHLH转录因子。
本发明中,优选的,步骤七中,对不同实验组内分化后的多能干细胞采用PCR对Oct-4,Nanog-3,Sox-2修饰基因进行检测,并将表达和未表达的基因进行数据记录。
本发明中,优选的,无菌培养箱1下表面四角均转动连接有移动轮2,无菌培养箱1上端一侧固定连接有扶手8,无菌培养箱1一侧通过铰链4铰接有密封门3,密封门3一侧固定连接有把手5,无菌培养箱1一侧设置有显示器6,显示器6上下两端均设置有观察窗口7。
本发明中,优选的,无菌培养箱1内部中间固定连接有分隔板9,分隔板9和无菌培养箱1上表面均设置有存放皿12,无菌培养箱1内部一侧上下两端均设置有加温板11,无菌培养箱1内部两侧均设置有紫外线灯10,紫外线灯10数量设置为四个。
实施例一:
一种多能干细胞的建立与干性维持方法,包括以下步骤,
步骤一:选择合适母体细胞;
步骤二;提取母体细胞,对细胞进行培养,选取健康母体细胞;
步骤三:对母体细胞进行处理,获取新型多能干细胞;
步骤四:对新型多能干细胞进行培养,筛选健康新型多能干细胞:
步骤五:对多能干细胞采用基因修饰技术,导入较容易标记的目标DNA;步骤六:分别对基因修饰后的新型多能干细胞进行诱导分化和抑制分化实验,并分别设置不同对照组实验;
步骤七:对分化后的细胞采用免疫染色确定修饰基因表达情况,并对数据进行记录。
本发明中,优选的,步骤一中,从健康年轻供体采集骨髓或从健康产妇采集脐带。
本发明中,优选的,步骤二中,采用机械剪切的方法,将母体细胞组织剪切为细小组织,并将剪切后的细胞组织采用原代建系、重编程和胚胎分离等技术手段获取新型多能干细胞。
本发明中,优选的,步骤四中,提前备好细胞培养皿,向培养皿内加入小牛血清,并加入激素、微量元素、矿物质和脂肪等营养物质,细胞增殖后,光学显微镜下观察细胞生长情况并拍照,每4天换液,弃除不贴壁的细胞,到细胞生长至80%融合状态时,用trypsin/EDTA消化传代细胞,并筛选健多能干细胞。
本发明中,优选的,步骤五中,选取多能干细胞,并对多能干细胞采用基因修饰技术,向多能干细胞内基因内导入Oct-4,Nanog-3,Sox-2目标基因。
本发明中,优选的,步骤六中,使用相同浓度的转化生长因子-β诱导多能干细胞分化,并将该组设为实验组,对照组不采用转化生长因子。
本发明中,优选的,步骤六中,分别采用浓度范围为0.5mol/LbHLH转录因子对多能干细胞进行分化抑制,对照组不采用bHLH转录因子。
本发明中,优选的,步骤七中,对不同实验组内分化后的多能干细胞采用PCR对Oct-4,Nanog-3,Sox-2修饰基因进行检测,并将表达和未表达的基因进行数据记录。
本发明中,优选的,无菌培养箱1下表面四角均转动连接有移动轮2,无菌培养箱1上端一侧固定连接有扶手8,无菌培养箱1一侧通过铰链4铰接有密封门3,密封门3一侧固定连接有把手5,无菌培养箱1一侧设置有显示器6,显示器6上下两端均设置有观察窗口7。
本发明中,优选的,无菌培养箱1内部中间固定连接有分隔板9,分隔板9和无菌培养箱1上表面均设置有存放皿12,无菌培养箱1内部一侧上下两端均设置有加温板11,无菌培养箱1内部两侧均设置有紫外线灯10,紫外线灯10数量设置为四个。
实施例二:
一种多能干细胞的建立与干性维持方法,包括以下步骤,
步骤一:选择合适母体细胞;
步骤二;提取母体细胞,对细胞进行培养,选取健康母体细胞;
步骤三:对母体细胞进行处理,获取新型多能干细胞;
步骤四:对新型多能干细胞进行培养,筛选健康新型多能干细胞:
步骤五:对多能干细胞采用基因修饰技术,导入较容易标记的目标DNA;步骤六:分别对基因修饰后的新型多能干细胞进行诱导分化和抑制分化实验,并分别设置不同对照组实验;
步骤七:对分化后的细胞采用免疫染色确定修饰基因表达情况,并对数据进行记录。
本发明中,优选的,步骤一中,从健康年轻供体采集骨髓或从健康产妇采集脐带。
本发明中,优选的,步骤二中,采用机械剪切的方法,将母体细胞组织剪切为细小组织,并将剪切后的细胞组织采用原代建系、重编程和胚胎分离等技术手段获取新型多能干细胞。
本发明中,优选的,步骤四中,提前备好细胞培养皿,向培养皿内加入小牛血清,并加入激素、微量元素、矿物质和脂肪等营养物质,细胞增殖后,光学显微镜下观察细胞生长情况并拍照,每4天换液,弃除不贴壁的细胞,到细胞生长至80%融合状态时,用trypsin/EDTA消化传代细胞,并筛选健多能干细胞。
本发明中,优选的,步骤五中,选取多能干细胞,并对多能干细胞采用基因修饰技术,向多能干细胞内基因内导入Oct-4,Nanog-3,Sox-2目标基因。
本发明中,优选的,步骤六中,使用相同浓度的转化生长因子-β诱导多能干细胞分化,并将该组设为实验组,对照组不采用转化生长因子。
本发明中,优选的,步骤六中,分别采用浓度范围为1mol/LbHLH转录因子对多能干细胞进行分化抑制,对照组不采用bHLH转录因子。
本发明中,优选的,步骤七中,对不同实验组内分化后的多能干细胞采用PCR对Oct-4,Nanog-3,Sox-2修饰基因进行检测,并将表达和未表达的基因进行数据记录。
本发明中,优选的,无菌培养箱1下表面四角均转动连接有移动轮2,无菌培养箱1上端一侧固定连接有扶手8,无菌培养箱1一侧通过铰链4铰接有密封门3,密封门3一侧固定连接有把手5,无菌培养箱1一侧设置有显示器6,显示器6上下两端均设置有观察窗口7。
本发明中,优选的,无菌培养箱1内部中间固定连接有分隔板9,分隔板9和无菌培养箱1上表面均设置有存放皿12,无菌培养箱1内部一侧上下两端均设置有加温板11,无菌培养箱1内部两侧均设置有紫外线灯10,紫外线灯10数量设置为四个。
实施例三:
一种多能干细胞的建立与干性维持方法,包括以下步骤,
步骤一:选择合适母体细胞;
步骤二;提取母体细胞,对细胞进行培养,选取健康母体细胞;
步骤三:对母体细胞进行处理,获取新型多能干细胞;
步骤四:对新型多能干细胞进行培养,筛选健康新型多能干细胞:
步骤五:对多能干细胞采用基因修饰技术,导入较容易标记的目标DNA;步骤六:分别对基因修饰后的新型多能干细胞进行诱导分化和抑制分化实验,并分别设置不同对照组实验;
步骤七:对分化后的细胞采用免疫染色确定修饰基因表达情况,并对数据进行记录。
本发明中,优选的,步骤一中,从健康年轻供体采集骨髓或从健康产妇采集脐带。
本发明中,优选的,步骤二中,采用机械剪切的方法,将母体细胞组织剪切为细小组织,并将剪切后的细胞组织采用原代建系、重编程和胚胎分离等技术手段获取新型多能干细胞。
本发明中,优选的,步骤四中,提前备好细胞培养皿,向培养皿内加入小牛血清,并加入激素、微量元素、矿物质和脂肪等营养物质,细胞增殖后,光学显微镜下观察细胞生长情况并拍照,每4天换液,弃除不贴壁的细胞,到细胞生长至80%融合状态时,用trypsin/EDTA消化传代细胞,并筛选健多能干细胞。
本发明中,优选的,步骤五中,选取多能干细胞,并对多能干细胞采用基因修饰技术,向多能干细胞内基因内导入Oct-4,Nanog-3,Sox-2目标基因。
本发明中,优选的,步骤六中,使用相同浓度的转化生长因子-β诱导多能干细胞分化,并将该组设为实验组,对照组不采用转化生长因子。
本发明中,优选的,步骤六中,分别采用浓度范围为1.5mol/LbHLH转录因子对多能干细胞进行分化抑制,对照组不采用bHLH转录因子。
本发明中,优选的,步骤七中,对不同实验组内分化后的多能干细胞采用PCR对Oct-4,Nanog-3,Sox-2修饰基因进行检测,并将表达和未表达的基因进行数据记录。
本发明中,优选的,无菌培养箱1下表面四角均转动连接有移动轮2,无菌培养箱1上端一侧固定连接有扶手8,无菌培养箱1一侧通过铰链4铰接有密封门3,密封门3一侧固定连接有把手5,无菌培养箱1一侧设置有显示器6,显示器6上下两端均设置有观察窗口7。
本发明中,优选的,无菌培养箱1内部中间固定连接有分隔板9,分隔板9和无菌培养箱1上表面均设置有存放皿12,无菌培养箱1内部一侧上下两端均设置有加温板11,无菌培养箱1内部两侧均设置有紫外线灯10,紫外线灯10数量设置为四个。
实施例四:
一种多能干细胞的建立与干性维持方法,包括以下步骤,
步骤一:选择合适母体细胞;
步骤二;提取母体细胞,对细胞进行培养,选取健康母体细胞;
步骤三:对母体细胞进行处理,获取新型多能干细胞;
步骤四:对新型多能干细胞进行培养,筛选健康新型多能干细胞:
步骤五:对多能干细胞采用基因修饰技术,导入较容易标记的目标DNA;步骤六:分别对基因修饰后的新型多能干细胞进行诱导分化和抑制分化实验,并分别设置不同对照组实验;
步骤七:对分化后的细胞采用免疫染色确定修饰基因表达情况,并对数据进行记录。
本发明中,优选的,步骤一中,从健康年轻供体采集骨髓或从健康产妇采集脐带。
本发明中,优选的,步骤二中,采用机械剪切的方法,将母体细胞组织剪切为细小组织,并将剪切后的细胞组织采用原代建系、重编程和胚胎分离等技术手段获取新型多能干细胞。
本发明中,优选的,步骤四中,提前备好细胞培养皿,向培养皿内加入小牛血清,并加入激素、微量元素、矿物质和脂肪等营养物质,细胞增殖后,光学显微镜下观察细胞生长情况并拍照,每4天换液,弃除不贴壁的细胞,到细胞生长至80%融合状态时,用trypsin/EDTA消化传代细胞,并筛选健多能干细胞。
本发明中,优选的,步骤五中,选取多能干细胞,并对多能干细胞采用基因修饰技术,向多能干细胞内基因内导入Oct-4,Nanog-3,Sox-2目标基因。
本发明中,优选的,步骤六中,使用相同浓度的转化生长因子-β诱导多能干细胞分化,并将该组设为实验组,对照组不采用转化生长因子。
本发明中,优选的,步骤六中,分别采用浓度范围为2mol/LbHLH转录因子对多能干细胞进行分化抑制,对照组不采用bHLH转录因子。
本发明中,优选的,步骤七中,对不同实验组内分化后的多能干细胞采用PCR对Oct-4,Nanog-3,Sox-2修饰基因进行检测,并将表达和未表达的基因进行数据记录。
本发明中,优选的,无菌培养箱1下表面四角均转动连接有移动轮2,无菌培养箱1上端一侧固定连接有扶手8,无菌培养箱1一侧通过铰链4铰接有密封门3,密封门3一侧固定连接有把手5,无菌培养箱1一侧设置有显示器6,显示器6上下两端均设置有观察窗口7。
本发明中,优选的,无菌培养箱1内部中间固定连接有分隔板9,分隔板9和无菌培养箱1上表面均设置有存放皿12,无菌培养箱1内部一侧上下两端均设置有加温板11,无菌培养箱1内部两侧均设置有紫外线灯10,紫外线灯10数量设置为四个。
以上实验数据通过下述表格进行说明:
Figure BDA0003054946500000121
Figure BDA0003054946500000131
综合上述实施例,得出以下结论:
在bHLH转录因子添加浓度范围在0.5-2mol/L的情况下,bHLH转录因子浓度在1.5mol/L左右的情况对多能干细胞的分化抑制效果较为明显,当bHLH转录因子浓度超过1.5mol/L或低于1.5mol/L都会降低对多能干细胞分化的抑制效果,由此可见,将多能干细胞放置在1.5mol/L左右的bHLH转录因子内能够维持多能干细胞的干性。
尽管已经示出和描述了本发明的实施例,对于本领域的普通技术人员而言,可以理解在不脱离本发明的原理和精神的情况下可以对这些实施例进行多种变化、修改、替换和变型,本发明的范围由所附权利要求及其等同物限定。

Claims (10)

1.一种多能干细胞的建立与干性维持方法,包括无菌培养箱(1)和以下步骤,其特征在于:步骤一:选择合适母体细胞;
步骤二;提取母体细胞,对细胞进行培养,选取健康母体细胞;
步骤三:对母体细胞进行处理,获取新型多能干细胞;
步骤四:对新型多能干细胞进行培养,筛选健康新型多能干细胞:
步骤五:对多能干细胞采用基因修饰技术,导入较容易标记的目标DNA;
步骤六:分别对基因修饰后的新型多能干细胞进行诱导分化和抑制分化实验,并分别设置不同对照组实验;
步骤七:对分化后的细胞采用免疫染色确定修饰基因表达情况,并对数据进行记录。
2.根据权利要求1所述的一种多能干细胞的建立与干性维持方法,其特征在于:所述步骤一中,从健康年轻供体采集骨髓或从健康产妇采集脐带。
3.根据权利要求1所述的一种多能干细胞的建立与干性维持方法,其特征在于:所述步骤二中,采用机械剪切的方法,将母体细胞组织剪切为细小组织,并将剪切后的细胞组织采用原代建系、重编程和胚胎分离等技术手段获取新型多能干细胞。
4.根据权利要求1所述的一种多能干细胞的建立与干性维持方法,其特征在于:所述步骤四中,提前备好细胞培养皿,向培养皿内加入小牛血清,并加入激素、微量元素、矿物质和脂肪等营养物质,细胞增殖后,光学显微镜下观察细胞生长情况并拍照,每4天换液,弃除不贴壁的细胞,到细胞生长至80%融合状态时,用trypsin/EDTA消化传代细胞,并筛选健多能干细胞。
5.根据权利要求1所述的一种多能干细胞的建立与干性维持方法,其特征在于:所述步骤五中,选取多能干细胞,并对多能干细胞采用基因修饰技术,向多能干细胞内基因内导入Oct-4,Nanog-3,Sox-2目标基因。
6.根据权利要求1所述的一种多能干细胞的建立与干性维持方法,其特征在于:所述步骤六中,使用相同浓度的转化生长因子-β诱导多能干细胞分化,并将该组设为实验组,对照组不采用转化生长因子。
7.根据权利要求1所述的一种多能干细胞的建立与干性维持方法,其特征在于:所述步骤六中,分别采用浓度范围为0.5-2mol/LbHLH转录因子对多能干细胞进行分化抑制,对照组不采用bHLH转录因子。
8.根据权利要求1所述的一种多能干细胞的建立与干性维持方法,其特征在于:所述步骤七中,对不同实验组内分化后的多能干细胞采用PCR对Oct-4,Nanog-3,Sox-2修饰基因进行检测,并将表达和未表达的基因进行数据记录。
9.根据权利要求1所述的一种多能干细胞的建立与干性维持方法,其特征在于:所述无菌培养箱(1)下表面四角均转动连接有移动轮(2),所述无菌培养箱(1)上端一侧固定连接有扶手(8),所述无菌培养箱(1)一侧通过铰链(4)铰接有密封门(3),所述密封门(3)一侧固定连接有把手(5),所述无菌培养箱(1)一侧设置有显示器(6),所述显示器(6)上下两端均设置有观察窗口(7)。
10.根据权利要求1所述的一种多能干细胞的建立与干性维持方法,其特征在于:所述无菌培养箱(1)内部中间固定连接有分隔板(9),所述分隔板(9)和无菌培养箱(1)上表面均设置有存放皿(12),所述无菌培养箱(1)内部一侧上下两端均设置有加温板(11),所述无菌培养箱(1)内部两侧均设置有紫外线灯(10),所述紫外线灯(10)数量设置为四个。
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Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106635966A (zh) * 2017-03-01 2017-05-10 安徽大学 一种维持小鼠上胚层干细胞自我更新状态的培养方法
CN108018259A (zh) * 2017-11-29 2018-05-11 安徽大学 一种维持人胚胎干细胞自我更新状态的培养方法
CN109679848A (zh) * 2018-12-28 2019-04-26 合肥中科干细胞再生医学有限公司 一种多能干细胞的培养装置及该装置的应用
CN110366590A (zh) * 2017-02-27 2019-10-22 田边刚士 细胞处理系统及细胞处理装置
CN110982694A (zh) * 2019-12-30 2020-04-10 安徽惠恩生物科技股份有限公司 一种培养多能干细胞的培养装置
CN211665110U (zh) * 2019-12-06 2020-10-13 天九再生医学(天津)科技有限公司 一种节能环保无菌干细胞培养箱

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110366590A (zh) * 2017-02-27 2019-10-22 田边刚士 细胞处理系统及细胞处理装置
CN106635966A (zh) * 2017-03-01 2017-05-10 安徽大学 一种维持小鼠上胚层干细胞自我更新状态的培养方法
CN108018259A (zh) * 2017-11-29 2018-05-11 安徽大学 一种维持人胚胎干细胞自我更新状态的培养方法
CN109679848A (zh) * 2018-12-28 2019-04-26 合肥中科干细胞再生医学有限公司 一种多能干细胞的培养装置及该装置的应用
CN211665110U (zh) * 2019-12-06 2020-10-13 天九再生医学(天津)科技有限公司 一种节能环保无菌干细胞培养箱
CN110982694A (zh) * 2019-12-30 2020-04-10 安徽惠恩生物科技股份有限公司 一种培养多能干细胞的培养装置

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
DIVVELA,SSK等: "bHLH Transcription Factor Math6 Antagonizes TGF-beta Signalling in Reprogramming,Pluripotency and Early Cell Fate Decisions", 《CELLS》 *
NIOLA, FRANCESCO等: "Id proteins synchronize sternness and anchorage to the niche of neural stern cells", 《NATURE CELL BIOLOGY》 *
任建军等: "诱导性多能干细胞相关基因Oct4、Sox2、Nanog的研究进展", 《医学综述》 *
安立龙等: "分化抑制物对动物胚胎干细胞克隆率的影响", 《动物医学进展》 *

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